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Method Article
현재 연구의 목적은 폐 염증 연구에서 혈관 내 면역 세포와 실질 내 면역 세포를 구별하기 위한 프로토콜을 설명하는 것입니다. 우리는 폐 적출 전에 형광 태그가 붙은 항체를 경정맥 내 주사합니다. 또한, 우리는 인플레이션에 기반한 폐 소화 과정을 사용하여 폐에서 백혈구의 수율을 개선합니다.
일주기 리듬은 24시간 주기로 발생하는 다양한 생물학적 과정의 진동을 나타냅니다. 분자 수준에서 이러한 리듬은 핵심 시계 유전자의 TTFL(transcriptional-translational feedback loops)의 웹으로 구성됩니다. 면역계를 포함한 개별 조직과 장기 시스템에는 자체 시계가 있습니다. 전신 순환에서 CD45+ 개체군의 다양한 구성원은 하루 종일 진동합니다. 그러나 이러한 리듬의 대부분은 조직에 상주하는 CD45+ 백혈구 집단에서 동일하지 않거나 유사하지 않습니다. 폐 염증의 일주기 조절의 역할을 연구할 때 폐 내 CD45+ 를 조사해야 할 수 있습니다. 그러나 최적화된 관류 방법에도 불구하고 순환에서 갇힌 백혈구는 폐에 남아 있습니다. 이 프로토콜을 설계하는 목적은 혈관 내 백혈구와 실질 내 백혈구를 구별하는 것이었습니다. 이를 위해 쥐는 폐 채취 직전에 형광 태그가 지정된 CD45 항체를 주정맥 주사합니다. 그 후, 폐는 맞춤형 폐 소화 기술을 사용하여 소화되어 단일 세포 현탁액을 얻습니다. 샘플은 실질내 면역 세포(다른 CD45 항체 포함)에 대한 일반 항체 패널에 대해 염색됩니다. 유세포 분석은 개체군에 대한 명확한 설명을 보여줍니다. 따라서 폐내 CD45+ 세포를 라벨링하고 정의하는 방법은 폐내 및 순환 면역 세포의 거동이 수치적으로나 기능적으로 구별되는 경우 특히 중요합니다.
여기에서는 혈관 내 백혈구와 폐 백혈구를 구별하는 효율적이고 신뢰할 수 있는 방법을 설명합니다. 최고의 관류 기술을 사용하더라도 연구에 따르면 혈액 순환으로 인한 잔류 CD45+ 가 폐에 남아 있는 것으로 나타났습니다. 이것은 순환계와 폐의 리듬을 구별하는 능력을 손상시킵니다. 이 효과는 폐 염증의 경우 더욱 증폭됩니다. 이것은 특히 염증의 일주기 조절에 대한 연구와 관련이 있습니다.
일주기 리듬은 24시간 동안 발생하는 다양한 생물학적 과정의 일주일 진동을 나타냅니다. 일주기 시스템은 감염 위협과 같은 환경 변화에 직면할 때 숙주를 보호하는 진화적으로 보존된 예측 메커니즘입니다. 세포 수준에서 시계는 핵심 시계 유전자1을 구성하는 자체 유지 전사-번역 피드백 루프로 구성됩니다. 면역 체계는 병원체와 염증성 모욕에 대한 반응에 영향을 미치는 자체 시계를 가지고 있습니다 2,3. 환경에 지속적으로 노출되는 기관으로서 일주기 리듬은 폐에서 특히 중요합니다4. 폐의 다양한 면역 과정은 시계의 통제를 받습니다 5,6,7. 그러나 폐의 다양한 생물학적 과정과 전신 순환의 단계는 동일하지 않으며,8 이는 더 나아가 폐에서 백혈구의 진동과 순환이 동일하지 않을 수 있음을 시사합니다. 따라서 폐 백혈구와 혈관 내 백혈구를 효율적으로 구별할 수 있는 방법을 갖는 것은 일주기 맥락에서 매우 중요합니다.
이 연구의 목적은 혈관내 백혈구와 실질내 백혈구를 안정적으로 구별할 수 있는 방법을 고안하는 것이었습니다. 이를 위해 혈관 내 백혈구 라벨링과 폐 소화 방법을 사용했습니다. 혈관 내 백혈구 표지를 위해 우리는 큰 혈관을 표적으로 하고 모든 균주와 크기의 마우스에서 재현 가능하게 사용할 수 있는 경정맥 내 주사를 사용합니다. 다른 많은 방법들은 꼬리 정맥 주사 9,10을 사용했는데, 이는 Bl6 마우스에서 수행하기 어려운 것으로 악명이 높습니다11. 경정맥내 주사는 마취를 필요로 하며 해부 현미경 또는 확대경을 사용한 직접 시각화 하에서 가장 잘 수행됩니다. 따라서, 경정맥 내 주사의 용이성과 신뢰성은 마취 및 특수 장비의 필요성과 비교되어야 합니다. 그러나 대부분의 연구실에서 이러한 장비를 즉시 사용할 수 있다는 점을 감안할 때 이것이 제한 요인으로 간주되지 않습니다. 그러나 사례별로 고려하는 것이 현명해 보입니다.
모든 동물 연구는 펜실베니아 대학교 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 승인을 받았으며 실험실 동물의 관리 및 사용 가이드의 규정을 충족했습니다.
참고: 전체 과정은 1) CD45 정맥 내 라벨링, 2) 수확, 3) 분해, 4) 염색 및 유세포 분석으로 나눌 수 있습니다. 이러한 단계는 그림 1에 요약되어 있습니다.
1. 용액/시약 준비
2. CD45 정맥 주사 라벨링
3. 해부/수확(그림 1)
4. 단일 세포 현탁액에 대한 소화
5. 유세포 분석을 위한 염색 세포
이 기술을 사용하여 나이브 해리된 폐의 총 세포 수(대표 데이터에는 왼쪽 엽만 사용됨)는 27.3 x 106 에서 71.1 x 106 cells/mL 사이였습니다. 크기에 대한 게이팅과 이중선과 사세포를 게이팅한 후( 그림 2의 게이팅 방식) 백혈구 수는 6.9 x 106 에서 13.5 x 106 cells/mL 사이였습니다. 폐를 청소하기 위해 관류한 후에도 갇혀 있는 ?...
폐 염증 및 폐 면역 반응에 대한 신중한 연구는 많은 질병 상태를 이해하는 데 매우 중요합니다. 유세포 분석은 폐 백혈구에 대한 기능적 관련성을 열거하고 부여하는 데 일상적으로 사용됩니다. 백혈구의 기능은 적어도 부분적으로는 백혈구가 발견되는 위치에 달려 있습니다. 완벽한 관류 프로토콜 후에도 많은 혈관 내 백혈구가 폐에 잔존한다는 것을 뒷받침하는 축적?...
저자는 공개할 내용이 없습니다.
이 작업은 NHLBI-K08HL132053(SS)의 지원을 받았습니다. 저자들은 G. A. FitzGerald 박사에게 해부 현미경과 흔들리는 수조를 사용할 수 있게 해준 것에 대해 감사를 표합니다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Boekel Scientific Medium Water Bath | Boekel Grant Scientific | 290200 | |
10 mL BD Syringes with BD Luer-Lok Tip | BD Biosciences | 309604 | |
5 mL BD Syringes with BD Luer-Lok Tip | BD Biosciences | 309646 | |
Anti-CD45- Pac Blue | Biolegend | 103114 | |
Anti-CD45- Pe/Cy7 | Biolegend | 103114 | |
Cell strainer 70 µm Nylon | Fisher | 352350 | |
Corning Conical-Bottom Centrifuge Tube 50 mL | Avantor | 21008-714 | |
Corning Falcon Test Tube with Cell Strainer Snap Cap | EMSCO | 10004637 | |
Dissection Microscope | Olympus | SZX-SDO2 | |
DMEM, high glucose | Life Technologies | 11965084 | |
Dnase | Roche | 10104159001 | |
DPBS without Ca++ & Mg++ | 14190136 | ||
Fc Block | Biolegend | 101320 | |
HyClone Fetal Bovine Serum | GE Healthcare | SH30071.03 | |
L-Glutamine (200 mM) | Life Technologies | 25030-081 | |
Liberase Research Grade | Sigma | 5401127001 | |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Life Technologies | 15140-122 | |
Precision Shaking Water Bath | Thermo Fisher | TSSWB15 | |
Red Blood Cell Lysing Buffer | Sigma | R7757 | |
Suture Silk 4-0 | Roboz | SUT-15-2 |
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