이 작품은 NIH (MW 케이에 R01-HL095828)에서 교부금에 의해 지원되었다.

1. 학습을위한 설정 <ol><li> 118 NaCl, 3.30 KCl, 2.00 CaCl 2, 1.20 MgSO 4, 24.0 NaHCO 3, 1.20 KH 2 PO 4, 10.0 포도당, 2.00 NaPyruvate 및 20.0 MG / L 알부민 : 수정된 Krebs-Henseleit 솔루션 16 네 가지 리터 (㎜의 준비 ). 솔루션은 가능한 한 실험의 시작 근처로 준비되어야한다. 산도는 살균 필터링 (: 22 μm의, 코닝 기공 크기) 후 7.4로 조정해야합니다. 솔루션 osmolality는 275 및 295 mOsm / kg 사이 여야합니다. </li><li> 물을 정화와 함께 일하는 마음이 시스템의 모든 튜브와 챔버를 씻어. 모든 물이 시스템에서 제거되었습니다 때까지 펌프를 실행합니다. </li><li> 관류 펌프 (Langendorff 재관류 펌프, 왼쪽 심장 관류 펌프, 및 오른쪽 심장 관류 펌프)의 각과 일치 : 셀룰로스 멤브레인 필터 (5 μm의, Advantec 기공 크기) 추가합니다. </li><li> 각 압력 센서에 대한 두 포인트 교정 (0와 60 mmHg) 수행합니다. </li><li>물이 욕조를 켭니다. 온수 순환 물 목욕 (콜 팔머가) 물 외피 튜브 및 열교환기을 따뜻하게하는 데 사용됩니다. Perfusate는 별도의 물을 욕조 (Oakton 인 스트 루먼트)에 미리 예열한다. 두 온천은 37 ° C의 용액 온도를 유지하기 위해 설정됩니다 </li><li> 폐쇄 루프에서 perfusate를 순환하기 위해 펌프를 켭니다. Perfusate 80 kPa에서 95% O 2 5 % CO 2 가스에 마이크로 화이버의 oxygenators (hemofilters)를 통해 전달합니다. 산소 perfusate 그러면 심장 캐뉼러에 들어가기 전에 37 ° C의 온도를 유지하기 위해 열교환기 흐르는. </li></ol> 2. 심장 절단 <ol><li> 정압 Langendorff 모드에서 작동하는 일하는 심장 시스템을 설정하여 시작합니다. 50-60 mmHg의 범위 내에서 대동맥 블록의 압력을 설정합니다. </li><li> 케타민을 (44 밀리그램 / kg)과 xylazine (10 밀리그램 / 킬로그램)의 근육내 주사로 토끼를 마취. 토끼 (진정제를 pentobarbital되면 50 밀리그램 / Kg)과 헤파린은 (2000 U) 정맥 내 뒷다리 안쪽에 한계 귀 정맥 또는 측면 saphenous 정맥을 통해 주입된다. </li><li> 토끼가 완전히 무반응되면 같은 고통 반사의 부족에 의해 결정, 흉강 신속하게 열, 심장막가 슬라이스되어 대동맥이 채워되고, 심장과 폐가 excised됩니다. 이때 폐가 폐 혈관을 분리를 도와 심장에 붙어 남아 있어야합니다. </li><li> 60 ML의 perfusate과 헤파린 200 단위로 가득 주사기에 연결된 5 밀리미터 직경 정맥과 대동맥 격리하고 cannulate. 사이즈 제로의 실크 봉합사로 정맥으로 대동맥을 고정하고 천천히 혈액의 심장을 내리려고 주사기를 우울하게. </li></ol> 3. Biventricular Cannulation <ol><li> 근무 심장 시스템의 대동맥 블록에 마음을 연결합니다. 관상 emboli가 발생할 수 있습니다 대동맥을 입력에서 공기를 방지. 그것은 대동맥 BL로 정맥을 첨부하는 것이 가장 좋습니다비스듬한 각도로 대동맥 커넥터에 접근하고 그것이 연결되어있는 동안 perfusate가 부드럽게 정맥으로 커넥터에서 드립함으로써 ock. </li><li> 심장이 일정한 압력 Langendorff 모드에서 perfused되는 동안 지방과 결합 조직을 제거하고 다음과 같은 혈관 찾습니다 열등하고 우수한 대정 맥, azygos 정맥, 폐동맥, 폐동맥 혈관을. </li><li> 우수한 대정 맥을 Ligate. 아래 폐동맥을 절단 오른쪽과 왼쪽 폐 동맥까지 어디 그것은 나뭇가지. </li><li> 그룹 심장과 폐의 하나의 봉합사를 사용하여 그들을 모두 ligate 사이 나머지 혈관 (폐동맥 혈관). 폐를 제거합니다. </li><li> 왼쪽 심방 부위요의 모서리에 작은 구멍을 잘라 버릴거야. 라이 perfusate 가득되었는지 확인하십시오. 그것이 삽입되는 동안 정맥이 완전히 perfusate으로 가득차있다는 확보하면서 LA를 Cannulate. 라 부위요으로 정맥을 봉합해. </li><li> t에 흐름을 제공하기 위해 왼쪽 펌프 (펌프 # 2)를 켭니다그는 안마당을 떠났어. 6 mmHg 및 조정 ± 2 mmHg와 같은 심방 팽창에 의해 결정 - 2 사이에 미리 압력을 설정합니다. </li><li> Langendorff 펌프 (펌프 # 1)을 해제하여 작업 심장 모드로 마음을 전환합니다. </li><li> 순간적으로 10 mmHg로 대동맥 압력을 감소하고 서서히 80-100 mmHg의 범위 내에서 그것을 향상시킬 수 있습니다. 이것은 대동맥 밸브가 열리고 그것이 정상적인 physiologic 조건 중에처럼 작동할 수 있습니다. 최종 afterload 압력 LV의 수축성에 따라 다릅니다. 이것은 피크 LV 압력보다 약 20 mmHg 이하 값으로 설정되어야합니다. </li><li> LV 심장 출력은 대동맥 블록 (ML / 분)를 종료 perfusate의 유량을 측정하여 결정하실 수 있습니다. 정상적인 심장 출력은 14.77 명에서 16.43 ML / 100 체중 17 g 및 평균 당 최소 340 ML / 2.2 kg의 토끼를위한 분. 대동맥 압력은 그림 1에 표시된 압력 신호 유사합니다. </li><li> 제가 통해 RA를 Cannulatenferior 대정 맥. RA과 정맥 모두가 완전히 perfusate 채워져 있는지 확인하고 기포의 형성을 방지하면서 정맥을 삽입합니다. 정맥으로 정맥을 봉합해. </li><li> 오른쪽 아트리움으로 흐름을 제공하기 위해 오른쪽 펌프 (펌프 # 3)를 켭니다. 약 3 mmHg까지 압력을 설정합니다. </li><li> RV가 perfusate 가득되었는지 확인하고 폐동맥을 cannulate. 그것이 공기 방울을 방지하기 위해 삽입하는 동안 정맥이 완전히 perfusate들로 구성이되어 있는지 확인하십시오. 폐동맥으로 정맥을 봉합해. </li></ol> 4. 신호 수집 : 압력, Monophasic 액션 후보, 그리고 fNADH <ol><li> biventricular cannulation가 완료되면 조심스럽게 대동맥의 정맥을 통해 대동맥으로 압력 변환기의 카테터 (밀라)를 삽입합니다. 부드럽게 대동맥 밸브 과거와 LV로 그것을 이동하십시오. 카테터 선단의 적절한 포지셔닝을 보장하기 LV 압력 신호를 모니터링합니다. LV 압력의 예를 나타납니다그림 1인치 </li><li> 부드럽게 심실 epicardium 대해 monophasic 실천 가능성 전극을 누르십시오. 적절한 조치 잠재력 측정을 달성하기 위해 신호를 모니터링합니다. 신호에 약간의 모션 유물은 정상입니다. </li><li> 마음을 맞춰 권리 아트리움에서 바이폴라 자극 전극을 삽입합니다. 우리의 프로토콜에서, 마음은 각각 200 400 BPM에 해당하는 300과 150 밀리초 사이의 사이클 길이,에서 진행했다. </li><li> LV epicardial 표면의 온도를 측정합니다. 연구는 온도가 37로 유지하는 것이 필요한 경우 ° C ~ 후 물을 외피 심장 챔버 또는 잠수함 심장 내내 일정한 온도를 유지하기 위해 예열 superfusate 욕조에서 심장 내부의 마음을 배치. </li><li> CCD 카메라 (Andor iXon DV860, 128x128 픽셀)에 자리잡고 전망이 해당 필드가 관찰되는 렌즈와 같은 초점을 맞춥니다. 카메라 워크 스테이션에 연결되어 있고 이미지가 Andor SOLIS softwa를 사용하여 두 프레임에 인수된다정말 기쁩니다. </li><li> 이전 이미징의 시작으로 수은 램프 라이트를 켭니다. 라이트는 심장의 표면을 밝게하기 위해 여기 필터 (350 ± 25 nm의, 채도 기술)를 통해 광섬유 라이트 가이드 (Horiba Jobin Yvon 모델 1950-1M)로 이동합니다. 라이트 가이드를 통해 자외선 광 감쇄는 작아요. 자외선 조명도 LED는 스포트 라이트로 구성된 고전력 LED는 시스템 (Mightex의 PLS-0365-030-S)와 제어 장치 (Mightex SLC-SA04-US)을 사용하여 제공될 수 있습니다. </li><li> 실내 조명을 끄고 모든 주변 조명을 최소화. 균일한 epicardial 조명을 달성하기 위해 심장에 빛의 가이드 (또는 LED 스포트 라이트)의 ferrules를 목표로합니다. 방출 NADH 형광 (fNADH)는 방출 필터 (460 ± 20 nm의 채도 기술)를 통과하여 CCD 카메라에 의해 몇 군데있다. </li><li> 이미징 소프트웨어를 사용하여 관심 영역을 선택하여 시간이 지남에 fNADH 변경 사항을 모니터링합니다. 지역 O 내에 평균 픽셀 강도를 모니터링하기 위해 살고 업데이트 모드를 선택하십시오F 관심. </li><li> 심장은 적절한 압력을 생성하는 biventricular 작업 모드로 작동되어야합니다. fNADH 수준은 적절한 관상 동맥 재관류를 확인 epicardial 표면 위로 낮게하고 안정해야합니다. 연구의이 시점에서 구체적인 실험 프로토콜은 가설을 테스트하기 위해 구현해야합니다. </li><li> 연구가 완료되면 시스템에서 심장을 제거하고 모든 perfusate 드레인. 물을 정화와 시스템 튜브와 챔버를 씻어. 정기 점검 내용은 시스템이 주기적으로 Mucasol 솔루션이나 필요에 따라 희석 과산화수소 용액과 함께 씻어서해야합니다. </li></ol> 5. fNADH 이미지의 오프라인 처리 <ol><li> NADH 데이터 세트를 비교할 수있는 방법 중 하나 (fNADH (I, J, T)) 실험 사이 참조 이미지를 사용하여 각 형광 이미지를 정상화하는 것입니다 아래의 방정식에 표시된 데이터 세트 9 (fNADH (I, J, T 0)), . NADH 형광을 정상화하는 또 다른 방법은 PL에게ACE 실험 9, 18, ​​19 이전보기의 분야에서 uranyl 유리의 작은 조각. 안정적인 참고 자료로 사용할 수있는 신호를 제공하기 위해 자외선과 조명 - Uranyl 유리 것입니다 형광 (550 nm의 450). </li></ol><img alt="등식 1" src="/files/ftp_upload/4115/4115eq1.jpg" /> 6. 대표 결과 biventricular 작업 토끼 심장 준비 앞부분과 기저 전망은 그림 1에 표시됩니다. 왼쪽 심실 압력이 대동맥 밸브 과거와 좌심실에 압력 변환기의 카테터 (밀라 SPR-407)를 이동하여 측정되었다. 대동맥, 폐동맥, 좌우 심실 압력 (LVP)은 그림 1C에 표시됩니다. Diastolic LVP는 보통 0 사이와 10 mmHg이다. 최소 diastolic 대동맥 압력은 약 60 mmHg이다. 피크 수축기 LVP는 충전 압력 (미리이나 라 압력)와 수축성에 의존적일 수그리고, 최적, 80 및 100 mmHg 사이 여야합니다. 그림 1C와 같이 최대 대동맥 압력과 최대 LVP는 밀접하게 일치해야합니다. 토끼의 마음을위한 전형적인 빠른 탈분극 단계 및 repolarization 단계로 Monophasic 실천 가능성은 (MAPS) 그림 1D 표시됩니다. 그림 1D와 같이지도는, 계약의 마음에서 비교적 쉽게 기록할 수 있지만 일반적으로 심장 확장하는 동안 작은 움직임 유물을해야합니다. 지도 서성 동안 심장 (캡쳐)의 성공적인 진입을 확인하는 데 유용하며 국소 빈혈 또는 다른 급성 perturbations로 인해 로컬 electrophysiological 변화를 측정하는 데 사용할 수 있습니다. ECG도 따뜻한 superfusate의 목욕탕에서 심장을 잠수함이 잠수과 심장의 왼쪽과 오른쪽 양쪽에있는 목욕탕에 전극을 배치하여 측정 수 있습니다. 셋째 무관심 전극은 어느 거리에 심장에서, 목욕탕에 배치되거나 대동맥에 첨부되어 있습니다.ECG는 전반적인 전기적 기능을 평가 및 국소 빈혈의 존재를 드러내는 데 유용 글로벌 여기와 repolarization 프로세스에 관한 정보를 제공합니다. fNADH 이미징은 허혈성 또는 hypoxic 지역 spatiotemporal 진행을 측정하는 데 사용할 수있는 심장 mitochondrial 산화 환원 상태의 변화를 보여준다. 본 연구의 경우 epicardial fNADH는주기 300 길이 (CLS), 200, 150 밀리초 세 서성 요금 중 산화 환원 상태의 변화를 모니터링하는 측정되었다. 관심 지역 (빨간색 상자, 그림 2)에서 평균 fNADH 값은주기 길이가 단축되면 기준 fNADH 수준이 증가한다는 것을 보여주기. 속도를 서성 때하면 기준 fNADH 수준이 상대적으로 일정 부비동 리듬 (CL = 300 밀리초)에 인접해 있습니다. 사이클의 길이는 짧은 CL (150 밀리초)에서 가장 큰 증가 300 밀리초, 기준 fNADH 수준 증가, 아래 단축되고 있습니다. 전체 앞부분은 표면의 고해상도 이미징 fNADH200 400 BPM은 그림 3에 표시됩니다. 200 BPM에 fNADH 수준은 지속 및 spatially 균질했다. 400 BPM, fNADH 수준 epicardium에 걸쳐 크게 증가했다. 중요한 공간적 이질은 RV와 LV의 septal 지역 내에서 발생하는 최대 규모의 증가와 함께 관찰되었다. fNADH 신호 수축 (모션 유물)로 진동하고 진동의 주파수는 심장 박동 (그림 2)에 해당합니다. biventricular cannulation에서, 마음의 기본은 자궁이 수축하는 동안 스윙에서 심장을 방지하는 데 도움이 네 캐뉼러에 의해 개최됩니다. 따라서 진동 진폭은 더 이상 시간 척도 (5-10 초) 국소 빈혈이나 hypoxia로 인해 발생하는 fNADH의 동향보다 항상 작습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/4115/4115fig1.jpg" /> 1 그림. 격리된 biventricular의 전형적인 압력과 monophasic 행동 잠재력은 라스 근무bbit 심장. 네 개의 캐뉼러 보여주는 마음의 A. 자연적으로 흐르는 것과, 반사적으로 흐르는보기 :; 2, 폐동맥, 1, 대동맥 오른쪽 심방 및 4 B. 좌심실 (LV)을 보여주는 심장의 앞쪽에 전망과 우심실을, 3, 심방 떠났어. (RV). C. 담당자 압력. 탑 : 왼쪽 심실 압력 (실선)과 대동맥 압력 (점선). 하단 :. 폐동맥 압력 D. 대표 monophasic 액션 잠재력. 신호가 패널 C로 표시된 압력에 부합되는 <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/4115/4115fig1large.jpg" target="_blank">큰 그림을 보려면 여기를 누르십시오</a> . <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/4115/4115fig2.jpg" /> 그림 2. 토끼 심장을 작동 격리된 biventricular의 fNADH 이미징. 탑 볼 (왼쪽)과 세 fNADH 영상 분야의 만평이 표시됩니다. 해당 서성주기 길이 (CL)가 각 이미지에 표시됩니다.하단 패널의 fNADH 신호에 대한 관심이 지역은 빨간색 상자로 표시됩니다. monophasic 작업 잠재 전극의 끝부분은 관심 영역의 오른쪽에 보인다. epicardium는 그림 5와 같이, 수은 램프와 라이트 가이드를 사용하여 조명했다. 만이 관심의 영역을 둘러싼 epicardial 표면이 켜지지되었다 회 :. 관심 지역에 관한 fNADH은 상단 패널에 빨간색 상자로 표시. 감소 사이클 길이가 평균 fNADH 증가합니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/4115/4115fig3.jpg" /> 그림 3. 토끼 심장을 작동 격리된 biventricular의 전체 앞부분은 표면의 fNADH 이미지. 마음이 200 BPM 400 BPM에서 RA에서 진행했습니다. 이 고전력 LED는 (Mightex PLS-0365-030-S, 365 nm의 4 %를 사용하여 전체 앞쪽에 epicardium를 조명하면서 fNADH은 (2 FPS, 0.4 mm의 해상도 128x128 픽셀) 몇 군데해서,ntensity, 50 MW 최대).

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J., Gallagher, W. J., Hjelle, M. A., Laske, T. G., Morissette, J., Iaizzo, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolated+four-chamber+working+swine+heart+model.">Isolated four-chamber working swine heart model.</a> Ann. Thorac. Surg. 70, 1607-1614 (2000).</li><li>Hill, A. J., Laske, T. G., Coles, J. A., Sigg, D. C., Skadsberg, N. D., Vincent, S. A., Soule, C. L., Gallagher, W. J., Iaizzo, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+studies+of+human+hearts.">In vitro studies of human hearts.</a> Ann. Thorac. Surg. 79, 168-177 (2005).</li><li>Schenkman, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+performance+as+a+function+of+intracellular+oxygen+tension+in+buffer-perfused+hearts.">Cardiac performance as a function of intracellular oxygen tension in buffer-perfused hearts.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 281, H2463-H2472 (2001).</li><li>Pijl, A. J., Pfaffendorf, M., Mathy, M., Van Zwieten, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardioprotection+by+nifedipine+in+isolated+working+hearts:+A+comparative+study+on+three+different+types+of+experimental+ischemia.">Cardioprotection by nifedipine in isolated working hearts: A comparative study on three different types of experimental ischemia.</a> J. Cardiovasc. Pharmacol. 21, 70-76 (1993).</li><li>Khatib, S. Y., Boyett, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+glyburide+(glibenclamide)+on+myocardial+function+in+langendorff+perfused+rabbit+heart+and+on+myocardial+contractility+and+slow+calcium+current+in+guinea-pig+single+myocytes.">Effects of glyburide (glibenclamide) on myocardial function in langendorff perfused rabbit heart and on myocardial contractility and slow calcium current in guinea-pig single myocytes.</a> Mol. Cell Biochem. 242, 81-87 (2003).</li><li>Kates, R. E., Yee, Y. G., Hill, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+albumin+on+the+electrophysiologic+stability+of+isolated+perfused+rabbit+hearts.">Effect of albumin on the electrophysiologic stability of isolated perfused rabbit hearts.</a> J. Cardiovasc. Pharmacol. 13, 168-172 (1989).</li><li>Combs, C. A., Balaban, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+imaging+of+dehydrogenase+activity+within+living+cells+using+enzyme-dependent+fluorescence+recovery+after+photobleaching+(ED-FRAP).">Direct imaging of dehydrogenase activity within living cells using enzyme-dependent fluorescence recovery after photobleaching (ED-FRAP).</a> Biophys. J. 80, 2018-2028 (2001).</li><li>Coremans, J. M., Ince, C., Bruining, H. A., Puppels, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=(Semi-)quantitative+analysis+of+reduced+nicotinamide+adenine+dinucleotide+fluorescence+images+of+blood-perfused+rat+heart.">(Semi-)quantitative analysis of reduced nicotinamide adenine dinucleotide fluorescence images of blood-perfused rat heart.</a> Biophys J. 72, 1849-1860 (1997).</li><li>Scholz, T. D., Laughlin, M. R., Balaban, R. S., Kupriyanov, V. V., Heineman, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+substrate+on+mitochondrial+NADH,+cytosolic+redox+state,+and+phosphorylated+compounds+in+isolated+hearts.">Effect of substrate on mitochondrial NADH, cytosolic redox state, and phosphorylated compounds in isolated hearts.</a> Am. J. Physiol. 268, 82-91 (1995).</li><li>Holcomb, M. R., Woods, M. C., Uzelac, I., Wikswo, J. P., Gilligan, J. M., Sidorov, V. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+potential+of+dual+camera+systems+for+multimodal+imaging+of+cardiac+electrophysiology+and+metabolism.">The potential of dual camera systems for multimodal imaging of cardiac electrophysiology and metabolism.</a> Exp. Biol. Med. (Maywood). 234, 1355-1373 (2009).</li></ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

격리된 Langendorff perfused 마음이 심장 생리학 2 공부를위한 눈에 띄는 도구가 남아있다. 그것은 특히 심장 arrhythmias, transmembrane 잠재력 20 형광 이미징을 사용하는 사람들의 연구에 특히 유용합니다. 이점은 고립된 심장의 전체 epicardium가 21, 22을 관찰할 수있다는 것입니다. 또 다른 장점은, 혈액과는 달리, 맑은 정질 버퍼 솔루션 관류는 형광 신호에 방해가되지 않는다는 것입니다. 한계는 Langendorff 기술은 종종 심장이 physiologic 미리로드하고 afterload 압력의 컨텍스트 내에서 작업을 수행하도록 요구 심장 대사의 연구에 적합되지 않는 것입니다. Neely 적절한 왼쪽 심실 (LV) 미리와 afterload 압력 3 확립 Langendorff 기법으로 개조를 도입 대사 연구를위한 절연 심장 준비의 관련성을 상승.모델은 절연 LV 근무 심장 모델로 알려져 있고, LV 성능 및 대사 4-6을 공부하는 데 광범위하게 사용되고 있습니다. LV 근무 심장 모델은 기능 평가를위한 Langendorff 모델보다 우월이며, 아직은 제대로로드 우심실 (RV)를 제공하지 않습니다. Demmy 외. 첫 번째는 LV 근무 심장 모델 7, 8 개조로 biventricular 모델 (LV &amp; RV)을보고했다. 그들은 biventricular 작동 모드 8로 작업 LV 모드에서 변환된 마음에 개선 그 뇌졸중 볼륨, 심장 출력 및 압력 발전을 발견. 제대로로드 RV는 또한 심장에 걸쳐 비정상적인 압력 그라디언트를 감소하여 septal 기능을 향상시킵니다. Biventricular 근무 마음이 정리 3시간 8을위한 대동맥 출력, 폐의 흐름, 대동맥의 압력을 뜻 폐동맥 압력, 심장 박동과 심근 ATP를 의미하고, 크레아틴 인산 수준을 유지하기 위해 표시되었습니다. Biventricular 작업 심장 연구는 일반적으로 마음을 금 할 사용같은 쥐 및 토끼 등 톰 작은 동물, 심장 출력 및 perfusate의 필수 량은 훨씬 더 큰 동물들의 마음 대한보다 때문입니다. 그러나 biventricular 근무 심장 연구는 돼지, 개부대, 심지어 인간 23, 24 일부터 마음을 사용하여 수행되었습니다. biventricular 동작 모드에서 격리된 마음의 신진 대사 수요가 Langendorff 재관류에 비해 상당히 높다. 그것은 perfusate 솔루션은 충분한 산소와 biventricular 심장 기능을 지원하는 신진 대사 기판을 제공하는 것이 중요합니다. 이러한 Krebs-Henseleit 16, 17, 25 또는 Tyrodes 26, 27과 같은 표준 정질 버퍼 솔루션은 같은 높이 산소 solubilities가 5.6 밀리그램 / L. 이러한 솔루션은 carbogen (95% O 2 5 % CO 2 가스 혼합물)와 가스에 적합 대사 기질 (포도당, 덱스 트로 오스, 및 / 또는 나트륨 pyruvate)를 포함하는 경우, 그들은 정상에 박동 biventricular 근무 마음에 적합한알 부비동 속도 (토끼에 대한 약 180 BPM). 신진 대사 수요 빠른 리듬에 대한 증가 및 표준 perfusates에 녹아있는 산소의 양을 완벽하게 높은 속도로 수축되는 biventricular 작업 심장을 지원하기 위해 충분하지 않을 수 있습니다. 적혈구 또는 전체 혈액과 혼합을 포함하는 정질 버퍼 솔루션은 적절한 산소 가용성을 보장하기 위해 최선을 심장 준비에 사용되었습니다. 이전 연구는 Krebs-Henseleit 솔루션으로 적혈구를 추가하는 것은 엄격한 서성 프로토콜 동안 근무 심장 기능을 개선하며 심실세동 16 발병률을 감소하는 것으로 나타났습니다. 적혈구 또는 전체 혈액의 혼합 사용의 제한은 그 헤모글로빈은 형광 이미징 13 사용되는 빛의 파장을 방해합니다. 같은 알부민과 같은 다른 기판은 또한 심장 생존을 연장하고 부종 28 줄이기 위해 솔루션을 perfusate 추가됩니다. 형광 이미징 동안 여기 광의 강도 높은 있어야하고 가벼운 분포 균일이어야합니다. 균일한 조명을 달성하는 것은 항상 epicardial 표면의 곡률로 인해 쉽지 않다. 우리의 연구에서는 수은 램프에서 빛을 (350 ± 25 nm의) 필터링에 의해 우리는 이미지 fNADH. bifurcated 광섬유 조명 가이드 epicardial 표면에 자외선을 지시하는 데 사용됩니다. 통일 조명은 적절한 포지셔닝 두 출력 ferrules에 의해 달성될 수있다. 자외선은 우리가 그림 3에 보여준 것처럼 광원도, 사용될 수있는 LED가. LED가 소스가 비교적 저렴​​해서 정말 여러 소스는 이미징 시스템에 통합될 수 있습니다. LED는 또한 이미지 수집과 여기 광을 동기화 높은 속도로 켜거나 그렇게 했어요하실 수 있습니다. NADH의 Photobleaching 것은 조직 조명의 시간을 줄임으로써 29 최소화해야한다. 이것에 조명을 자전거로하고 전자를 사용 해제 할 수 있습니다IC 셔터 및 램프 또는 LED가 조명 시스템과 컨트롤러. 조명은 심장주기와 동기화되면, 그때 fNADH 이미지 수집은 형광 신호에 모션 유물을 줄일 것이있는 음절 연장에 갇혀 수 있습니다. 같은 LV 압력과 같은 압력 신호를 사용 Trigging 조명과 이미지 수집, 이러 한 방법이 될 것입니다. 우리의 연구에서는 단위 시간 당 fNADH의 변화 200 BPM에서 400 BPM에 높은 이상 5 배 수있다는 것을 관찰했다. 이것은 빠른 리듬은 심장의 산화 환원 상태를 향상되었음을 나타냅니다. 이것은 hypoxia 또는 NAD를 NADH를 산화하는 myocytes의 무능력으로 인해 발생 여부에 상관없이 + NADH의 축적을 피하기 위해 신속하게 충분한은 여전히​​ 답이없는 질문이다. biventricular 작동 심장 준비의 성능은 여러 요인을 조건으로하고있다. 가장 중요한 중 하나는 생리를 모방하기 위해 적절한 미리로드하고 afterload 압력을 설정하는 것입니다조사를 받고있는 상태. 특히, LV의 afterload (대동맥 압력)을 체계적 압력을 나타내도록 조정되어야합니다. 너무 높으면 LV는 병리 결과, 압력을 극복할 수 없습니다. 너무 낮은 압력이 부정적인 관상 동맥 재관류에 영향을줍니다. LV의 미리 압력은 (왼쪽 심방 압력)도 실험 프로토콜에 적합한 최종 diastolic 볼륨을 제공하기 위해 조정되어야한다. 살아있는 조직의 fNADH 영상은 형광 이미징 13 안정적인 모드입니다. 그들이 관상 동맥 혈관 14 결합 후 지역 허혈성 조직 내에서 fNADH의 강렬 고도를보고했을 때 심장 조직에의 응용은 Barlow와 우연히 그림되었다. 그들의 fNADH 이미지는 페어차일드의 오실로 스코프 카메라와 자외선 플래시 촬영을해서 필름에 기록되었다. Coremans 외. measur에 NADH UV / 형광 반사율 비율을 사용하여이 개념에 따라 확대전자 Langendorff 혈중 perfused 쥐 하트 30 epicardium의 대사 상태. videofluorimeter은 이미징에 사용되었고 데이터는 비디오 레코더를 사용하여 기록되었다. 나중에 Scholz 외. LV의 많은 지역에서 평균 fNADH를 측정하기위한 분광기와 photodiode 어레이를 사용했습니다. fNADH 31 매크로 작업 관련 유사 콘텐츠를 공개하면서이 접근법은 epicardial 형광 heterogeneities과 순환의 지역 변화의 효과를 감소. 이 방법은 그림 2에서 그림 fNADH 이미징 데이터 세트의 모든 프레임에 걸쳐 관심 영역에 대한 컴퓨팅 평균 fNADH 수준과 비슷합니다. 우리는이 문서에 제시된 것처럼, 오늘날의 기술은 고속 CCD 카메라를 제공하며 디지털 고출력 자외선 스포트 라이트를 관리하고 있죠. 이러한 기술은 fNADH과 심장 대사 spatiotemporal 역학은 많은 새로운 관점에서 연구 수 있도록합니다. 광학 및 광원의 상대적으로 저렴한 비용 f를 만드는NADH 이미징 종래의 심장 광학 매핑 시스템을위한 유용한 액세서리 9., 32

<table border="1"><tbody><tr><td> 화학 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> NaCl </td><td> 시그마 - 올드 리치, 세인트 루이스, 미주리 </td><td> S-3014 </td></tr><tr><td> KCl </td><td> 시그마 - 올드 리치, 세인트 루이스, 미주리 </td><td> P3911-500G </td></tr><tr><td> CaCl 2 </td><td> 피셔 과학, 공정한 잔디, 뉴저지 </td><td> C77-500 </td></tr><tr><td> MgSO 4 </td><td> 시그마 - 올드 리치, 세인트 루이스, 미주리 </td><td> M-7506 </td></tr><tr><td> NaHCO 3 </td><td> 피셔 과학, 공정한 잔디, 뉴저지 </td><td> S-233 </td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 </td><td> 피셔 과학, 공정한 잔디, 뉴저지 </td><td> 423-316 </td></tr><tr><td> 포도당 </td><td> 시그마 - 올드 리치, 세인트 루이스, 미주리 </td><td> 158968-500G </td></tr><tr><td> NaPyruvate </td><td> 시그마 - 올드 리치, 세인트 루이스, 미주리 </td><td> P2256-25G </td></tr><tr><td> 알부민 </td><td> 시그마 - 올드 리치, 세인트 루이스, 미주리 </td><td> A9418-100G </td></tr></tbody></table>

nadh fluorescence imaging of isolated biventricular working rabbit hearts

Langendorff 1 일까지 창설 이래 고립된 perfused 마음이 심장 생리학 2 공부를위한 눈에 띄는 도구가 남아있다. 그러나, 그것은 심장이 physiologic 미리로드하고 afterload 압력의 컨텍스트 내에서 작업을 수행하도록 요구 심장 대사 연구에 적합하지 않습니다. 적절한 왼쪽 심실 (LV) 미리와 afterload 압력 3 설립 Langendorff 기법에 Neely 소개 수정. 모델은 절연 LV 근무 심장 모델로 알려져 있고, LV 성능 및 대사 4-6을 공부하는 데 광범위하게 사용되고 있습니다. 이 모델은, 그러나, 제대로로드 우심실 (RV)를 제공하지 않습니다. Demmy 외. 첫 번째는 LV 근무 심장 모델 7, 8 개조로 biventricular 모델을보고했다. 그들은 biventricular 작동 모드 8로 작업 LV 모드에서 변환된 마음에 개선 그 뇌졸중 볼륨, 심장 출력 및 압력 개발 발견 </sup&gt;. 제대로로드 RV도 septal 기능을 향상시키기 위해 심장에 걸쳐 비정상적인 압력 그라디언트가 줄어들. Biventricular 근무 마음이 정리 3시간 8을위한 대동맥 출력, 폐의 흐름, 대동맥 혈압, 심장 박동을 의미하고, 심근 ATP 수준을 유지하기 위해 표시되었습니다. 이러한 국소 빈혈과 같은 심근 손상의 신진 대사 효과를 공부하면 종종 영향을받는 조직의 위치를​​ 확인할 필요가 있습니다. 이것은 NADH (니코틴 아데닌 dinucleotide의 감소 양식) 9-11의 형광이 보조 효소는 mitochondria에서 대량으로 발견 이미징하여 수행할 수 있습니다. NADH 형광 (fNADH)는 지역의 산소 농도 12과 가까운 선형 반비례 관계를 표시하고 mitochondrial 산화 환원 상태 13 측정을 제공합니다. hypoxic 및 허혈성 조건 중 fNADH 이미징은 hypoxic 지역 14, 15를 식별하고의 진행을 모니터링하기 위해 염료가없는 방법으로 사용되었습니다시간이 10여 hypoxic 조건. 메서드의 목적은 myocyte 신진 대사의 속도를 변경하거나 hypoxia를 유발하거나 두 가지의 조합을 만드는 프로토콜 중 biventricular 근무 마음의 mitochondrial 산화 환원 상태를 모니터링하는 것입니다. 뉴질랜드 화이트 토끼의 하트는 37 ° C.에 biventricular 근무 심장 체제 (휴고 삭스 Elektronik)에 연결하고 수정된 Krebs-Henseleit 솔루션을 16으로 perfused되었습니다 대동맥, LV, 폐동맥, 그리고 왼쪽 및 오른쪽 심방 압력이 기록되었다. 전기 활동 monophasic 실천 가능성 전극을 사용하여 측정되었다. 이미지 fNADH하려면, 수은 램프에서 빛이 필터 (350 ± 25 nm의)과 epicardium을 조명하는 데 사용되었다. 방출되는 빛이 필터 (460 ± 20 nm의)와 CCD 카메라를 사용하여 몇 군데했습니다. 다른 서성 요금 중 biventricular 근무 마음의 epicardial fNADH의 추이가 제공됩니다. 심장 모델과 fNADH 이미징의 결합현실적인 생리적 조건의 컨텍스트 내에서 급성 심장병 pathologies를 공부를위한 새롭고 가치있는 실험 도구를 제공합니다.

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NADH Fluorescence Imaging of Isolated Biventricular Working Rabbit Hearts

목표는 physiologic 미리와 afterload 압력의 컨텍스트 내에서 격리된 마음의 mitochondrial 산화 환원 상태를 모니터링하는 것입니다. biventricular 작업 토끼 심장 모델이 제공됩니다. NADH 높은 spatiotemporal 해상도 형광 이미지는 epicardial 조직의 mitochondrial 산화 환원 상태를 모니터링하는 데 사용됩니다.

절연 Biventricular의 NADH 형광 이미징은 토끼 하트 워킹

Since its inception by Langendorff1, the isolated perfused heart remains a prominent tool for studying cardiac physiology2. However, it is not well-suited ...

nadh-fluorescence-imaging-isolated-biventricular-working-rabbit

Research

JoVE Journal

Medicine

17.9K 조회수.  The George Washington University. 목표는 physiologic 미리와 afterload 압력의 컨텍스트 내에서 격리된 마음의 mitochondrial 산화 환원 상태를 모니터링하는 것입니다. biventricular 작업 토끼 심장 모델이 제공됩니다. NADH 높은 spatiotemporal 해상도 형광 이미지는 epicardial 조직의 mitochondrial 산화 환원 상태를 모니터링하는 데 사용됩니다.

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Assessment of Cardiac Function and Energetics in Isolated Mouse Hearts Using 31P NMR Spectroscopy

Bioengineered mouse models have become powerful research tools in determining causal relationships between molecular alterations and models of cardiovascular disease. Although molecular biology is necessary in identifying key changes in the signaling pathway, it is not a surrogate for functional significance. While physiology can provide answers to the question of function, combining physiology with biochemical assessment of metabolites in the intact, beating heart allows for a complete picture of cardiac function and energetics. For years, our laboratory has utilized isolated heart perfusions combined with nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy to accomplish this task. Left ventricular function is assessed by Langendorff-mode isolated heart perfusions while cardiac energetics is measured by performing 31P magnetic resonance spectroscopy of the perfused hearts. With these techniques, indices of cardiac function in combination with levels of phosphocreatine and ATP can be measured simultaneously in beating hearts. Furthermore, these parameters can be monitored while physiologic or pathologic stressors are instituted. For example, ischemia/reperfusion or high workload challenge protocols can be adopted. The use of aortic banding or other models of cardiac pathology are apt as well. Regardless of the variants within the protocol, the functional and energetic significance of molecular modifications of transgenic mouse models can be adequately described, leading to new insights into the associated enzymatic and metabolic pathways. Therefore, 31P NMR spectroscopy in the isolated perfused heart is a valuable research technique in animal models of cardiovascular disease.

Assessment of Cardiac Function and Energetics in Isolated Mouse Hearts Using 31P NMR Spectroscopy

Langendorff-mode isolated heart perfusion, in conjunction with 31P NMR spectroscopy, combines the fields of biochemistry and physiology into one experiment. The protocol allows for the dynamic measurement of high energy phosphate content and turnover in the heart while concurrently monitoring physiologic function. When performed correctly, this is a valuable technique in the assessment of cardiac energetics.

를 사용하여 절연 마우스 마음에 심장 기능 및 에너 지학 평가 31 P NMR 분광학

Bioengineered mouse models have become powerful research tools in determining causal relationships between molecular alterations and models of ...

연구

의학

In vivo Imaging of Tumor Angiogenesis using Fluorescence Confocal Videomicroscopy

Fibered confocal fluorescence in vivo imaging with a fiber optic bundle uses the same principle as fluorescent confocal microscopy. It can excite fluorescent in situ elements through the optical fibers, and then record some of the emitted photons, via the same optical fibers. The light source is a laser that sends the exciting light through an element within the fiber bundle and as it scans over the sample, recreates an image pixel by pixel. As this scan is very fast, by combining it with dedicated image processing software, images in real time with a frequency of 12 frames/sec can be obtained.
We developed a technique to quantitatively characterize capillary morphology and function, using a confocal fluorescence videomicroscopy device. The first step in our experiment was to record 5 sec movies in the four quadrants of the tumor to visualize the capillary network. All movies were processed using software (ImageCell, Mauna Kea Technology, Paris France) that performs an automated segmentation of vessels around a chosen diameter (10 &mu;m in our case). Thus, we could quantify the 'functional capillary density', which is the ratio between the total vessel area and the total area of the image. This parameter was a surrogate marker for microvascular density, usually measured using pathology tools.
The second step was to record movies of the tumor over 20 min to quantify leakage of the macromolecular contrast agent through the capillary wall into the interstitium. By measuring the ratio of signal intensity in the interstitium over that in the vessels, an 'index leakage' was obtained, acting as a surrogate marker for capillary permeability.

In vivo Imaging of Tumor Angiogenesis using Fluorescence Confocal Videomicroscopy

In this paper, we present a method to analyze tumor microvessels in vivo using dynamic contrast-enhanced fluorescence videomicroscopy. Two quantitative parameters were acquired: functional capillary density reflecting the vascularity of the tumor, and index leakage reflecting the leakiness of the endothelial wall.

형광 공 초점 Videomicroscopy를 사용하여 종양 혈관의 생체 내 이미징

Fibered confocal fluorescence in vivo imaging with a fiber optic bundle uses the same principle as fluorescent confocal microscopy. It can excite ...

An Isolated Working Heart System for Large Animal Models

Since its introduction in the late 19th century, the Langendorff isolated heart perfusion apparatus, and the subsequent development of the working heart model, have been invaluable tools for studying cardiovascular function and disease1-15. Although the Langendorff heart preparation can be used for any mammalian heart, most studies involving this apparatus use small animal models (e.g., mouse, rat, and rabbit) due to the increased complexity of systems for larger mammals1,3,11. One major difficulty is ensuring a constant coronary perfusion pressure over a range of different heart sizes &#8211; a key component of any experiment utilizing this device1,11. By replacing the classic hydrostatic afterload column with a centrifugal pump, the Langendorff working heart apparatus described below allows for easy adjustment and tight regulation of perfusion pressures, meaning the same set-up can be used for various species or heart sizes. Furthermore, this configuration can also seamlessly switch between constant pressure or constant flow during reperfusion, depending on the user&#8217;s preferences. The open nature of this setup, despite making temperature regulation more difficult than other designs, allows for easy collection of effluent and ventricular pressure-volume data.

Most studies involving the Langendorff apparatus use small animal models due to the increased complexity of systems for larger mammals. We describe a Langendorff system for large animal models that allows for use across a range of species, including humans, and relatively easy data acquisition.

큰 동물 모델에 대한 격리 된 작업 심장 시스템

Since its introduction in the late 19th century, the Langendorff isolated heart perfusion apparatus, and the subsequent development of the working heart ...

Working with Human Tissues for Translational Cancer Research

Medical research for human benefit is greatly impeded by the necessity for human tissues and subjects. However, upon obtaining consent for human specimens, precious samples must be handled with the greatest care in order to ensure integrity of organs, tissues, and cells to the highest degree. Unfortunately, tissue processing by definition requires extraction of tissues from the host, a change which can cause great cellular stress and have major repercussions on subsequent analyses. These stresses could result in the specimen being no longer representative of the site from which it was retrieved. Therefore, a strict protocol must be adhered to while processing these specimens to ensure representativeness. The desired assay(s) must also be taken into consideration in order to ensure that an optimal technique is used for sample processing. Outlined here is a protocol for tissue retrieval, processing and various analyses which may be performed on processed tissue in order to maximize downstream production from limited tissue samples.

Translational cancer research is dependent on extraction of human tissues. Much work has gone into optimizing extraction methods for ex vivo analysis. Here, we describe tissue processing methods allowing for maximal data output from limited samples.

번역 상 암 연구를위한 인체 조직에 대한 작업

Medical research for human benefit is greatly impeded by the necessity for human tissues and subjects. However, upon obtaining consent for human ...

Fluorescence-mediated Tomography for the Detection and Quantification of Macrophage-related Murine Intestinal Inflammation

Murine models of disease are indispensable to scientific research. However, many diagnostic tools such as endoscopy or tomographic imaging are not routinely employed in animal models. Conventional experimental readouts often rely on post mortem and ex vivo analyses, which prevent intra-individual follow-up examinations and increase the number of study animals needed. Fluorescence-mediated tomography enables the non-invasive, repetitive, quantitative, three-dimensional assessment of fluorescent probes. It is highly sensitive and permits the use of molecular makers, which allows for the specific detection and characterization of distinct molecular targets. In particular, targeted probes represent an innovative tool for analyzing gene activation and protein expression in inflammation, autoimmune disease, infection, vascular disease, cell migration, tumorigenesis, etc. In this article, we provide step-by-step instructions on this sophisticated imaging technology for the in vivo detection and characterization of inflammation (i.e., F4/80-positive macrophage infiltration) in a widely used murine model of intestinal inflammation. This technique might also be used in other research areas, such as immune cell or stem cell tracking.

Target-specific probes represent an innovative tool for analyzing molecular mechanisms, such as protein expression in various types of disease (e.g., inflammation, infection, and tumorigenesis). In this study, we describe a quantitative three-dimensional tomographic assessment of intestinal macrophage infiltration in a murine model of colitis using F4/80-specific fluorescence-mediated tomography.

검색 및 대 식 세포 관련 Murine 창 자 염증의 정량화에 대 한 단층 형광 중재

Murine models of disease are indispensable to scientific research. However, many diagnostic tools such as endoscopy or tomographic imaging are not ...

Semi-Minimal Invasive Method to Induce Myocardial Infarction in Rats and the Assessment of Cardiac Function by an Isolated Working Heart System

Myocardial infarction (MI) remains the main contributor to morbidity and mortality worldwide. Therefore, research on this topic is mandatory. An easily and highly reproducible MI induction procedure is required to obtain further insight and better understanding of the underlying pathological changes. This procedure can also be used to evaluate the effects or potency of new and promising treatments (as drugs or interventions) in acute MI, subsequent remodeling and heart failure (HF). After intubation and pre-operative preparation of the animal, an anesthetic protocol with isoflurane was performed, and the surgical procedure was conducted&#160;quickly. Using a minimally invasive approach, the left anterior descending artery (LAD) was located and occluded by a ligature. The occlusion can be performed acutely for subsequent reperfusion (ischemia/reperfusion injury). Alternatively, the vessel can be ligated permanently to investigate the development of chronic MI, remodeling or HF. Despite common pitfalls, the drop-out rates are minimal. Various treatments such as remote ischemic conditioning can be examined for their cardioprotective potential pre-, peri- and post-operatively. The post-operative recovery was quick as the anesthesia was precisely controlled and the duration of the operation was short. Post-operative analgesia was administered for three days. The minimally invasive procedure reduces the risk of infection and inflammation. Furthermore, it facilitates rapid recovery. The &#8220;working heart&#8221; measurements were performed ex vivo and enabled precise control of preload, afterload and flow. This procedure requires specific equipment and training for adequate performance. This manuscript provides a detailed step-by-step introduction for conducting these measurements.

This article presents an efficient method to perform myocardial ischemia and subsequent chronic reperfusion in rats using a minimally invasive approach. In addition, left ventricular hemodynamic function of rats is assessed by echocardiography and isolated working heart methods.&#160;

쥐의 심근 경색과 격리 된 작업 심장 시스템에 의한 심장 기능 평가를 유도하는 반 최소 침습 적 방법

Myocardial infarction (MI) remains the main contributor to morbidity and mortality worldwide. Therefore, research on this topic is mandatory. An easily ...

Biventricular Assessment of Cardiac Function and Pressure-Volume Loops by Closed-Chest Catheterization in Mice

Assessment of cardiac function is essential to conduct cardiovascular and pulmonary-vascular preclinical research. Pressure-volume loops (PV loops) generated by recording both pressure and volume during cardiac catheterization are vital when assessing both systolic and diastolic cardiac function. Left and right heart function are closely related, reflected in ventricular interdependence. Thus, recording biventricular function in the same animal is important to get a complete assessment of cardiac function. In this protocol, a closed chest approach to cardiac catheterization consistent with the way catheterization is performed in patients is adopted in mice. While challenging, the closed chest strategy is a more physiological approach, because opening the chest results in major changes in preload and afterload that create artifacts, most notably a fall in systemic blood pressure. While high-resolution echocardiography is used to assess rodents, cardiac catheterization is invaluable, particularly when assessing diastolic pressures in both ventricles.
Described here is a procedure to perform invasive, closed chest, sequential left and right ventricular pressure-volume (PV) loops in the same animal. PV loops are acquired using&#160;admittance technology with a mouse pressure-volume catheter and pressure-volume system acquisition. The procedure is described, beginning with the neck dissection, which is required to access the right jugular vein and the right carotid artery, to the insertion and positioning of the catheter, and finally the data acquisition. Then, the criteria required to ensure the acquisition of high-quality PV loops are discussed. Finally, the analysis of the left and right ventricular PV loops and the different hemodynamic parameters available to quantify systolic and diastolic ventricular function are briefly described.

Presented here is a protocol to assess biventricular heart function in mice by generating pressure-volume (PV) loops from the right and left ventricle in the same animal using closed chest catheterization. The focus is on the technical aspect of surgery and data acquisition.

생쥐의 폐쇄 흉부 카테터 삽입에 의한 심장 기능 및 압력-부피 루프의 양심실 평가

Assessment of cardiac function is essential to conduct cardiovascular and pulmonary-vascular preclinical research. Pressure-volume loops (PV loops) ...

Refined CLARITY-Based Tissue Clearing for Three-Dimensional Fibroblast Organization in Healthy and Injured Mouse Hearts

Cardiovascular disease is the most prevalent cause of mortality worldwide and is often marked by heightened cardiac fibrosis that can lead to increased ventricular stiffness with altered cardiac function. This increase in cardiac ventricular fibrosis is due to activation of resident fibroblasts, although how these cells operate within the 3-dimensional (3-D) heart, at baseline or after activation, is not well understood. To examine how fibroblasts contribute to heart disease and their dynamics in the 3-D heart, a refined CLARITY-based tissue clearing and imaging method was developed that shows fluorescently labeled cardiac fibroblasts within the entire mouse heart. Tissue resident fibroblasts were genetically labeled using Rosa26-loxP-eGFP florescent reporter mice crossed with the cardiac fibroblast expressing Tcf21-MerCreMer knock-in line. This technique was used to observe fibroblast localization dynamics throughout the entire adult left ventricle in healthy mice and in fibrotic mouse models of heart disease. Interestingly, in one injury model, unique patterns of cardiac fibroblasts were observed in the injured mouse heart that followed bands of wrapped fibers in the contractile direction. In ischemic injury models, fibroblast death occurred, followed by repopulation from the infarct border zone. Collectively, this refined cardiac tissue clarifying technique and digitized imaging system allows for 3-D visualization of cardiac fibroblasts in the heart without the limitations of antibody penetration failure or previous issues surrounding lost fluorescence due to tissue processing.

A refined method of tissue clearing was developed and applied to the adult mouse heart. This method was designed to clear dense, autofluorescent cardiac tissue, while maintaining labeled fibroblast fluorescence attributed to a genetic reporter strategy.

건강하고 부상당한 마우스 심혼에 있는 3차원 섬유아세포 조직을 위한 정제된 CLARITY 기지를 둔 조직 정리

Cardiovascular disease is the most prevalent cause of mortality worldwide and is often marked by heightened cardiac fibrosis that can lead to increased ...

Isolated Lung Perfusion System in the Rabbit Model

The isolated lung perfusion system has been widely used in pulmonary research, contributing to elucidate the lungs&#39; inner workings, both micro and macroscopically. This technique is useful in the characterization of pulmonary physiology and pathology by measuring metabolic activities and respiratory functions, including interactions between circulatory substances and the effects of inhaled or perfused substances, as in drug testing. While in vitro methods involve the slicing and culturing of tissues, the isolated ex vivo lung perfusion system allows to work with a complete functional organ making possible the study of a continuous physiological function while recreating ventilation and perfusion. However, it should be noted that the effects of the absence of central innervation and lymphatic drainage still have to be fully assessed. This protocol aims to describe the assembly of the isolated lung apparatus, followed by the surgical extraction and cannulation of lungs and heart from experimental lab animals, as well as to display the perfusion technique and signal processing of data. The average viability of the isolated lung ranges between 5-8 h; during this period, the pulmonary capillary permeability increases, causing edema and lung injury. The functionality of preserved pulmonary tissue is measured by the capillary filtration coefficient (Kfc), used to determine the extent of pulmonary edema through time.

The isolated rabbit lung preparation is a gold standard tool in pulmonary research. This publication aims to describe the technique as developed for the study of physiological and pathological mechanisms involved in airway reactivity, lung preservation, and preclinical research in lung transplantation and pulmonary edema.

토끼 모델의 절연 폐 관류 시스템

The isolated lung perfusion system has been widely used in pulmonary research, contributing to elucidate the lungs&#39; inner workings, both micro and ...

Assessment of Ex Vivo Murine Biventricular Function in a Langendorff Model

Primary graft dysfunction (PGD) remains the leading cause of early death following heart transplantation. Prolonged ischemic time during cold preservation is an important risk factor for PGD, and reliable evaluation of cardiac function is essential to study the functional responses of the donor heart after cold preservation. The accompanying video describes a technique to assess murine right and left ventricular function using ex vivo perfusion based in a Langendorff model after cold preservation for different durations. In brief, the heart is isolated and stored in a cold histidine-tryptophan-ketoglutarate (HTK) solution. Then, the heart is perfused with a Kreb buffer in a Langendorff model for 60 min. A silicone balloon is inserted into the left and right ventricle, and cardiac functional parameters are recorded (dP/dt, pressure-volume relationships). This protocol allows the reliable evaluation of cardiac function after different heart preservation protocols. Importantly, this technique allows the study of cardiac preservation responses specifically in native cardiac cells. The use of very small murine hearts allows access to an enormous array of transgenic mice to investigate the mechanisms of PGD.

Assessment of Ex Vivo Murine Biventricular Function in a Langendorff Model

Presented here is a protocol to reliably quantify the right and left ventricular function of donor hearts after cold preservation using an ex vivo perfusion system.

Langendorff 모델에서 생체 외 쥐 뇌실 기능 평가

Primary graft dysfunction (PGD) remains the leading cause of early death following heart transplantation. Prolonged ischemic time during cold preservation ...