This work was funded by grant from the BBSRC (grant number BB/H019685/1 and BB/E527663/1) to the University of Exeter.

(한 자릿수 이내 즉,) 해리 상수에 대한 대략적인 값의 1 결정 <ol><li> 표 1에 설명 된 혼합물을 준비합니다. </li><li> 가장 높은 농도에서 관심있는 리간드의 주식을 준비하고,이 중 다음의 6 ~ 10 배 희석. 대략 K D의 데이터가 종래에 공지되는 경우, 적어도 두 개의 상기 농도와 K의 D 이하가 목표. </li><li> 나누어지는 qPCR에 접시에 팔 우물에 혼합물의 18 μL. 첫째도에 용매의 2 μl를 추가합니다. 나머지 일곱 우물을 잘 한 각 리간드 희석 시리즈 (단계 1.2)의 각 구성원의 2 μl를 추가합니다. </li><li> 접시 위에 qPCR에 실을 배치합니다. 플레이트의 좋은 밀봉을 달성하기 위해, 판의 중앙에 (특정 시약의 표를 참조) 핸드 어플리케이터를 배치했다. 한쪽으로 씰을 부드럽게 한 다음의 나머지 절반에 반복접시입니다. </li><li> 공기 방울을 제거하기 위해 두 분 동안 500 XG에서 플레이트를 원심 분리기. </li><li> StepOne qPCR의 상품에 접시를 놓습니다. (이 40 분에 걸쳐 99 ° C에 경사로 다음 25 ° C에서 2 분의 일시 정지, 다음 2 분의 일시 정지를 제공합니다) &quot;용융 곡선&quot;옵션, ROX 필터를 선택하고 빠른 램프 속도를 선택합니다. 열 변성을 실행합니다. 참고 : 실행을 수행하기위한 스크립트 파일은 HTTP에서 온라인으로 사용할 수 있습니다 // <a href="http://www.exeter.ac.uk/biosciences/capsular">www.exeter.ac.uk/biosciences/capsular.</a> </li><li> 악기 실행의 결론에서, 화면에 &quot;분석&quot;버튼을 클릭합니다. 결과 파일을 저장합니다. </li><li> 단백질 열 시프트 소프트웨어를 엽니 다. <ol><li> 새로운 연구를 만들기; 속성 탭에서이 이름을 지정하고, 조건 탭에서, 세부 사항 리간드. </li><li> 실험 파일 탭으로 이동하고, 저장된 결과 파일 (XXX.eds)를 가져, 각도 (템플릿 FIL의 내용을 설정ES)은 저자에서 사용할 수 있습니다. </li><li> 분석 탭으로 이동하고 &quot;분석&quot;버튼을 누릅니다. 참고 :이 결과를 분석 할 것이다. 그것은 엑셀 내보내기 탭을 사용하여 함께 추가 조사에 대한 결과를 내보낼 수 있습니다. 결과는 탭 서술 형식으로 수출하고 있습니다. 그것은 Excel에서 내 보낸 파일을 열고 즉시 엑셀 형식으로 저장하는 것이 가장 좋습니다. </li></ol></li><li> 단독으로 용매의 존재 하에서 단백질이도 1a에 도시 된 것과 유사한 결과를 제공하는지 확인. 다음에, &quot;복제&quot;창에서 관찰 된 결과에 용융 온도를 조사한다. 이 증가 리간드 농도 용융 온도에서 명확한 증가가 표시되는지 확인합니다. 주 : 용융 온도가 리간드없이 단백질과의 중간 어디 이상적으로,이 (단백질이 완전히 리간드 바인딩되는 것으로 가정) 맑은 최대 용융 온도 및 대략 K d를 제공한다최대. </li></ol> 해리 상수 결정을위한 2 실험 장치 <ol><li> 마스터 믹스로 표 2에 설명 된 혼합물을 준비합니다. </li><li> 마지막 실험에서 열 배 희석 될 것이다 십오 서로 다른 농도에서 리간드의 주식을 준비합니다. 이상적으로, 농도보기 예상 K d를 상하 크기 중 적어도 두 개의 명령을 포함하고, 상기 추정 된 K D의 농도를 가운데. 이 양쪽에 또 다른 4 점, 추정 K (D)의 크기 순서 내에서 점의 칠에 초점; 선택의 여지가있는 경우, 포화 된 값에 더 많은 포인트를 포함한다. 주 : 필요한, ​​그것은 리간드 주식 리간드의 용해도가 제한되는 이중 실험 농도에 있는지 실험 조건은 변경하도록하면 가능하다. </li><li> 마스터의 120 μl를 추가마스터 믹스의 편리한 분배를위한 저장소 역할을하도록, U 바닥 96 웰 플레이트에 웰 팔에 혼합한다. PCR 플레이트의 한 컬럼에 18 μl를 분배하는 8 채널 피펫을 사용합니다. 접시에 6 × 8 패턴 48 가득 우물의 총을주고, 또 다른 다섯 열을 반복합니다. </li><li> U-바닥 96 웰 플레이트에 우물을 분리, 20 리간드 주식 μL, 또는 용매를 추가합니다. 8 채널 피펫, 기음 8 개의 서로 다른 리간드 주식 (또는 용매)의 2 μl를 사용. 단계 2.3에서 마스터 믹스로 가득 차 있었다 PCR 플레이트의 한 컬럼이 추가. 이 더 컬럼에 대해 동일한 팔 리간드 / 용매 주식으로 반복합니다. 대기음이 나머지 8 리간드 또는 용매 주식 μL, 그리고 접시에 네 번째 열에 추가 할. 이 더 컬럼에 대해이 작업을 반복합니다. 이것은 모든 16 리간드 및 용매 샘플 세중의 샘플을 제공 할 것입니다. </li><li> 접시 위에 qPCR에 실을 배치한다 (단계 1.4 참조). </li><li> 500 XG에서 접시를 원심 분리기두 분. </li><li> qPCR에 상품에 접시를 놓습니다. 단계 1.6에서 지정된 파라미터를 이용하여 열 변성을 실행. </li><li> 악기 실행의 결론에서, 화면에 &quot;분석&quot;버튼을 클릭합니다. 결과 파일을 저장합니다. </li><li> 단백질 열 시프트 소프트웨어를 엽니 다. 새로운 연구를 만들기; 속성 탭에서이 이름을 지정하고, 조건 탭에서, 세부 사항 리간드. </li><li> 실험 파일 탭으로 이동하고, 저장된 결과 파일 (XXX.eds)를 가져, 잘 각각의 내용을 설정합니다. 참고 : 템플릿 파일은 HTTP에서 온라인으로 사용할 수 있습니다 // <a href="http://www.exeter.ac.uk/biosciences/capsular">www.exeter.ac.uk/biosciences/capsular.</a> </li><li> 분석 탭으로 이동하고 &quot;분석&quot;버튼을 누릅니다. <ol><li> 에서 삼중 같은 결과를 표시하는 화면의 좌측에 메뉴 &quot;를 복제&quot;탭을 선택한다. 에서 삼중 얼마나 타이트에 기초하여 데이터의 신뢰성을 평가한다. Shoul에서 삼중 가난한 재현성을 보여 D 밀접하게 원시 데이터를 검사합니다. </li><li> 용융 온도를 평가하는 방법 볼츠만 파생물 또는 모두를 사용하여 데이터를 분석한다. &quot;결과를 복제&quot;탭을 선택하고 &quot;로 플롯&quot;을 전환, &quot;결과 플롯을 복제&quot;의 사이 버튼 &quot;TM - 볼츠만&quot;와 &quot;TM - 파생 상품&quot;. 샘플에 대한 더 큰 재현성을 제공하는 방법을 선택합니다. 엑셀 내보내기 탭을 사용하여 함께 추가 조사에 대한 결과를 내 보냅니다. NOTE : 여러 전이를 보여주는 샘플의 경우, 다수의 모드에서 용융 파생물 방법을 사용하는 것이 거의 항상 최적이다. 결과는 탭 서술 형식으로 수출하고 있습니다. 그것은 Excel에서 내 보낸 파일을 열고 즉시 엑셀 형식으로 저장하는 것이 가장 좋습니다. </li><li> 결과의 재현성을 보장하기 위해, 별도의 일 반복을 포함한 적어도 두 번 실험을 반복한다. 데이터 분석은 (아래 단계 3 참조)해야K (D)의 값이 원래의 추정치와 크게 차이가 있음을 나타내는, K D의 주위 값의 양호한 범위를 보장하기 위해 (단계 2.2 참조) 따라서 리간드 농도를 변경. </li></ol> 3 데이터 분석 열 변성에서 해리 상수를 확인하는 <ol><li> 리간드 농도 Excel의 테이블 및 용융 온도를 만든다. </li><li> 그래프 패드 프리즘 소프트웨어를 열고 XY 테이블을 만들 수 있습니다. 리간드 농도 및 온도 결과를 용융 Y 열의 X 컬럼을 사용하여, 데이터를 입력한다. 참고 : 나타내는 예는 그림 1B이다. 사전로드 된 수식 및 SPSS 통계 패키지를 사용하여 대체 지침 스크립트는 HTTP에서 온라인으로 사용할 수 있습니다 // <a href="http://www.exeter.ac.uk/biosciences/capsular">www.exeter.ac.uk/biosciences/capsular.</a> </li><li> 분석 탭에서 분석 매개 변수를 변경하는 옵션을 선택합니다의합니다 (Ctrl + T). 올바른 모델을 입력 &quot;새&quot;를 선택하고 &quot;새 방정식을 만들기&quot;를합니다. &quot;단일 사이트 리간드가 결합&quot;으로 표 3에 설명 된 방정식을 삽입합니다. 참고 :이 단계의 예는 그림 1C에 표시됩니다. 방정식 사전로드와 스크립트를 사용하는 경우, 관련 식은리스트보다는로부터 선택 지시를 입력 할 수있다. 이 방정식의 유도는 부록에 제공됩니다. </li><li> 상자 &quot;초기 값에 대한 규칙&quot;을 선택하고 표 3에 설명 된대로 초기 값에 대한 규칙을 입력합니다. </li><li> (리간​​드에 주어진 것과 동일한 단위) 및 단백질의 최종 농도를 입력 &quot;을 같은 상수&quot;로서, 파라미터 P 구속. </li><li> 분석을 수행하기 위해 OK를 선택합니다. 참고 :이 단계의 예는 그림 1D에 표시됩니다. 그래프 소프트웨어는 데이터 모델에 대한 착용감을 나타내는 수치를 생성한다. t의 예HESE 분석은 대표 데이터에 표시됩니다. </li></ol> 협동 모델에 4 피팅 데이터 단순한 협력 모델 또는 두 개의 별도의 해리 상수가 정의 된 모델 중 하나를 선택할 협동 조합 모델에 데이터를 맞게합니다. 첫 번째 방법은 네거티브 협동성의 경우에 바람직한, 또는 초기 조사 등이다. 그러나 원칙적으로는 두 가지가 18 해리 상수 모델링 긍정적 협동성 가지 경우에 더 좋다. 이 경우, 모델링은 리간드의 순차적 결합 또는 리간드의 결합 독립적를 가정 진행할 수 있습니다. <ol><li> , &quot;단순 협력 모델&quot;로 나열 표 3 식 중 하나를 삽입 단계 3.3에서, 그러나 프로토콜 3과 &quot;이 리간드의 연속 바인딩을&quot;같은 초기 단계를 따르거나 18 &quot;독립적 인 두 개의 리간드의 결합&quot;. </li><li> 초기 값에 대한 적절한 규칙을 선택표 3에 이들 방정식의 각각과 연관된. </li><li> 데이터 모델의 적합성을 검사합니다. 데이터가 제대로 맞는 경우, 다른 모델을 생각해 볼 수 있습니다. NOTE : 그것은 또한 신중 단백질 열 시프트 소프트웨어 (스텝 2.9)에 의해 데이터에 용융 온도의 피팅을 조사하는 것이 중요하다 : 때때로 최상의 결과를 얻을 수 있도록 위치 파라미터를 변경하는 것이 필요하다. K (D)의 양쪽에서 데이터의 한정된 세트 또는 (특히 높은 리간드 농도에서) 단일 변칙 점 역시 상당히 영향을 줄 수있다 : 또 다른 고려 사항은 데이터 포인트의 범위가 적합하고, 어떤 변칙적 포인트가 있는지 여부이다 결과. </li><li> 재현성을 보장하기 위해 적어도 두 배 (단계 2.12 참조) 실험을 반복한다. </li></ol> 녹는 온도에서 이진 교대보기 곡선에 5 피팅 데이터 때때로, 오히려 리간드에 등급을 매긴 응답보다 단백질왔다바인딩 샘플을 명확하게 결합되지 않은 샘플로부터 분리되어있는 이진 응답을 채택 관찰했다. 예는 대표적인 결과 (그림 4)에서 제공됩니다. 이 경우, 용융 온도의 피팅 K D에 대해 좋은 착용감을 제공하지 않을 것이다. <ol><li> 단백질 열 시프트 소프트웨어의 원시 데이터 출력을 내 보냅니다. 각 포인트에 대한 온도, 리간드에 대한 제로 평균 형광 및 높은 리간드 농도를 계산한다. 이러한 옆 각 데이터 포인트로부터의 결과를 표로. NOTE : 여기서 작성된 에러가 장착 융점의 에러보다 작다. </li><li> SPSS 통계 패키지를 엽니 다. SPSS에서 데이터 윈도우에 대한 각 실험 온도, 평균이 데이터 집합, 데이터를 복사한다. 변수 탭에서 &quot;낮음&quot;으로 더 리간드의 평균 데이터 집합, 그리고 &quot;하이&quot;로 가장 높은 리간드 농도에 대한 평균 데이터 집합을 설정합니다. </li><li> 사용할 수있는 구문 파일을 다운로드온라인에서는 http : // <a href="http://www.exeter.ac.uk/biosciences/capsular">www.exeter.ac.uk/biosciences/capsular</a> . &quot;실행 → 실행을 모두&quot;를 선택합니다. </li><li> 관련 리간드 농도, 새 Excel 통합 문서에 비례에게 결합 된 결과를 복사합니다. </li><li> 을 Graphpad 소프트웨어를 열고 XY 테이블을 만들 수 있습니다. 리간드 농도 및 온도 결과를 용융 Y 열의 X 컬럼을 사용하여, 데이터를 입력한다. 분석 탭에서 &quot;변경 분석 매개 변수&quot;를 선택합니다. 올바른 모델을 입력 &quot;새&quot;를 선택하고 &quot;새 방정식을 만들기&quot;를합니다. &quot;용융 온도 이진 변화 분석&quot;에 들어있는 표 3에 주어진 식을 입력합니다. </li><li> &quot;초기 값에 대한 규칙&quot;상자를 선택하고 표 3에 설명 된 초기 값에 대한 규칙을 입력합니다. &quot;에 같은 상수&quot;로, 매개 변수 P를 구속하고, 리가와 같은 단위 (단백질의 최종 농도를 입력ND는)에서 제공됩니다. 주 : 제 3의 프로토콜이 상자를 완료의 예는 그림 1C, D로 표시됩니다. </li><li> 좋은 착용감이 있다면, 결과가 무한 리간드 농도에서 예상되는 결과를 외삽함으로써 개선 될 수있다. 각 리간드 농도에서 바인딩 비율의 모델에서, 리간드 농도의 최대 값에 대한 값을 조사한다. 이 0.99 이상이면, 상기 분석 결과를 향상시키기 어렵다. </li><li> 비율이 0.99보다 작 으면, 추가적인 공정은 높은 리간드 농도 샘플에 결합되지 않은 단백질의 효과를 보정하기 위해 요구된다. 단계 5.2에서, (다른 셀이 사용될 수 있고, R2는 표 3에 수학 식 적절히 대체) 셀 R2에 (단계 14.4로부터) 가장 높은 리간드 농도 시점에서 바인딩 리간드의 비율 물품. 가장 높은 리간드 농도 결과의 평균 후 여분의 열을 만듭니다. 전나무에서t 셀은 &quot;리간드 농도 infinite로 외삽&quot;로서 표 3의 방정식을 복사한다. 이 칼럼의 나머지 셀에이 수식을 복사합니다. 참고 :이 계산은 가장 높은 리간드 농도의 결합되지 않은 단백질의 효과를 제거합니다. 자유 리간드 단백질과 리간드 높은 농도의 차이는 각각의 온도 지점에서 완전히 결합 단백질과 결합되지 않은 상태 사이의 예상 차이를 제공하기 위해 가장 높은 농도로 리간드 바인딩 비율의 역수로 승산된다. 이 차이는 추가되거나 완전히 리간드 바인딩 단백질의 예상 형광을 수득 바운드 상태로부터 감산된다. </li><li> 이 새로운 열이있는 SPSS의 데이터 시트에서 최대의 리간드 농도에 대한 컬럼을 교체 및 데이터 피팅을 반복합니다. NOTE : - 모델에서 최대 concentrati 리간드 바인딩 비례 더 큰 변화를 제안하는 경우 5.9 반복 될 필요가있다 5.7 단계(이 경우, 아마도 더 포함 리간드 농도 점으로 실험을 반복 이상적 일 것이다)에. </li><li> 단백질 이진 시프트 및 디스플레이 협동 동작을 도시의 경우는 수학 식 4.1로부터 단계들로 치환한다 단계 5.5에 제시 하였다. &quot;상위&quot;및 &quot;하부&quot;파라미터는 각각 1과 0으로 대체되어야한다. </li><li> 재현성을 보장하기 위해 적어도 두 배 (단계 2.12 참조) 실험을 반복한다. </li></ol></li></ol>

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A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+scanning+fluorimetry+measurement+of+protein+stability+changes+upon+binding+to+glycosaminoglycans:+a+screening+test+for+binding+specificity.">Differential scanning fluorimetry measurement of protein stability changes upon binding to glycosaminoglycans: a screening test for binding specificity.</a> Anal Chem. 82, 3796-3802 (2010).</li><li>Wan, K. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+scanning+fluorimetry+as+secondary+screening+platform+for+small+molecule+inhibitors+of+Bcl-XL.">Differential scanning fluorimetry as secondary screening platform for small molecule inhibitors of Bcl-XL.</a> Cell Cycle. 8, 3943-3952 (2009).</li><li>Koropatkin, N. M., Holden, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+structure+of+alpha-D-glucose-1-phosphate+cytidylyltransferase+from+Salmonella+typhi.">Molecular structure of alpha-D-glucose-1-phosphate cytidylyltransferase from Salmonella typhi.</a> J Biol Chem. 279, 44023-44029 (2004).</li><li>Paleskava, A., Konevega, A. L., Rodnina, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thermodynamics+of+the+GTP-GDP-operated+conformational+switch+of+selenocysteine-specific+translation+factor+SelB.">Thermodynamics of the GTP-GDP-operated conformational switch of selenocysteine-specific translation factor SelB.</a> J Biol Chem. 287, 27906-27912 (2012).</li></ol>

The authors declare that they have nothing to disclose.

시차 주사 fluorimetry 단백질을 특성화하고, 잠재적 인 단백질 리간드를 식별하기위한 강력하고 다양한 방법으로 그 능력을 보여 주었다. (특히 덜 자금 실험실에서) 단백질의 안정화, 신약 개발을 촉진 결정화 10,23-25에서 잘 문서화 성공은 화합물의 초기 선별 매력적인 방법을 만들었습니다. 단백질에 추가 화합물은 명백 융점 7,9 분명 농도 의존적 증가를 보여준다. 그러나, 그들의 선호도 화합물 순위에 도움 겉보기 결합 상수를 결정하기 위해 이들 실험 결과를 사용하는 몇 가지 시도가있어왔다. 여기서는 체계적 리간드의 존재하에 단백질 겉보기 해리 상수를 결정하기위한 방법을 제시한다. 여기에 제시된 결과는 DSF 신속하고 견고 대한 해리 상수의 추정치를 제공 할 수 있음을 입증단백질 - 리간드 결합. 관측 데이터는 파라미터의 가능한 값에 관한 가정을 할 필요없이, K (D)의 신속한 결정을 제공하는 상업적으로 이용 가능한 도구를 조작 할 수있다. 이 방법은 필요한 단백질과 시간 모두에서 간략한되는 일부 유사한 방법에 비해 상당한 이점을 갖는다. 여기서 설명하는 실험은 실험 당 (중으로 반복 실험 약 0.4 ㎎)의 0.13 mg의 단백질을 소비한다. 이것은 평균 40 kDa의 단백질을 가진 단일 실험이 유사한 양을 소비 할 등온 적정 열량 측정 (ITC), 필적하는. 이 프로토콜에 필요한 실험 풀세트 실험의 단일 세트에 대해, 제제를 포함하여 약 4 시간을 소비 할 것이다. 다시, 이것은 예컨대 강력한 동안 가장 자주 데이터를 얻기 위해 상당한 최적화를 필요 ITC 또는 표면 플라즈몬 공명 등의 방법보다 상당히 빠를 것으로 예상된다. 우리의 결과는 심하게 원시 데이터를 검사 할 필요가 남아 있음을 입증, 이들 데이터의 착용감 용융 온도를 결정하고, 용융 온도 데이터의 착용감 해리 상수를 결정하기 위해. 첫 번째 과제는 단백질 용해 제조 원시 데이터의 형태이다. 일부 경우에, 형상은도 1a에서 관찰 된 것과 대략 수 없다. 일반적인 문제는 리간드 결합에 낮은 온도 변화, 높은 배경 형광 및 온도에서 특이한 여러 변이를 포함한다. 저온 시프트는 리간드의 결합 수에 보인다. 이 방법의 경우, 가장 중요한 매개 변수는 온도 변화에 비해, T m의 측정에서의 오차이다. 삼중 측정의 표준 편차가 충분히 결합되지 않은 결합 단백질 사이의 용융 온도 변화의 10 %를 초과하지 않을 때, 데이터는 일반적으로 합리적으로 장착 할 수있다. 우리의 경험은 그 곳과 같은 온도입니다erature 이동은 개별 데이터 포인트가 매우 정확 경우에만 2 ° C, 이것은 데이터를 피팅에 충분 될 수 있습니다. 두 번째 문제는 비정상적으로 커브를 형성한다. 바인딩 리간드 단백질의 모드에 영향을 주므​​로 이러한 전개는 종종 자유 단백질과 리간드 바인딩 형태간에 다르다. 이러한 경우, 사용자는 데이터가 용융 온도와 해리 상수를 결정하기 위해 사용되도록 적절한 모델을 고려하여 사용될 수 있는지 여부를 고려해야한다. 또 다른 일반적인 문제는 단백질 공동 인자의 첨가 (예를 들면, 헥소 키나제와의 예를 MgCl 2) 가장 신뢰성있는 데이터를 얻기 위해 필요하다는 것이다. 우리의 경험은 초기 판독을 복용하는 것이 가장 좋은 결과를 얻기에 필수적인의 단계에서 실험에 모든 가능성 요인의주의 깊은 고려하고있다. 또한, 대안 이론 치료는 이러한 데이터 15,17의 기능을 표시 할 수 있습니다. 마지막으로, 그 일부 C 단백질 드물지 않다ontain 기본적으로 높은 배경 형광을 보여 소수성 영역을 노출. 광범위하게 다른 6,9 검토 한 이러한 문제에 대한 솔루션은 여러 가지가있다. 특히, 사용자는 (예를 들어,도 4), 및 그 유도체를 사용하는 경우에, 복수의 용융물 모델링되어야하는지 여부 또는 유도체 볼츠만 모델을 사용할지 여부를 고려해야한다. 전개 열 모델링 두 가지 방법 볼츠만 방법 전개 곡선에 정규 S 자형 형상을 가정하면, 볼츠만 방정식에 실험적 데이터 맞는지 다르다. 대조적으로, 유도체 방법은 각 점 (도 1a의 하부 패널)에서 실험 데이터의 1 차 도함수를 취하고, 가장 높은 제 유도체의 포인트로 용융 온도를 고려한다. 3 °의 C - 파생 방법은 일반적으로 약 2에 의해 더 높은 용융 온도를 반환합니다. 대부분의 단백질은 일관성을 반환합니다두 가지 방법 중 하나의 결과 (즉, 삼중 실험에 대한 용융 온도의 표준 오차가 낮다). 이것은 보통 속속들이 곡선 펼쳐진 단백질의 정확한 형상과 관련된이며 경험적으로 각각의 경우에 가장 좋은 방법을 결정하는 것이 필요하다. 유도체 모델이 사용되는 경우, 이는 다수의 용융 사건을 고려하는 것도 중요하다. 일부 데이터는 분명히 여러 변이 증거를 보여주고, 이러한 경우에 이러한 결과는 여러 용융 이벤트가 모델링되는 경우 쉽게 해석 될 가능성이있다. 이 프로토콜의 문맥에서, 리간드의 첨가는 단백질이 반대 (가장 열적으로 깨지기 서브 도메인을 안정화하여, 예를 들어) 하나의 트랜지션에 복수의 용융 전이를 갖는으로부터 전환하거나, 발생할 수있는 경우가 종종있다. 따라서 우리는 원시 데이터가 사용하기 가장 좋은되는 방법 고려하기 전에 함께 조사하는 것을 옹호한다. m 다음개별 융점의 odelling, 상기 문제는 프로토콜 섹션에 제시된 모델이 피팅에서 발생할 수있다. 그것은 이러한 분석은 종종 관측 데이터와 모델 사이의 차이를 강조 신중, 대수 스케일을 사용하여 해리 상수 방정식 착용감을 조사하는 것이 필수적이다 (예를 .g.,도 3). 수득 된 결과는 일반적으로 견고 반면, 해석에주의 데이터에서 더 나은 결과를 추출 할 수있는 기회 및 가장 의미를 제공한다. 이러한 데이터에 의해 제기 된 특정 문제가 DSF에, 협동성을 보여 단백질, 또는 여러 이벤트 바인딩에 배치해야 해석이다. 우리는 지금까지, 오직 다중 특이 적 결합 이벤트 (예 WcbM, 크기 배제 크로마토 그래피에 다량 체의 역할을 가장 상동 26 다량 체이며 단백질, 및 [데이터를하지 않은 것으로 예상된다 단백질이 현상을 관찰참조]). 그것은 전혀 분명 DSF 변성에서 관찰 된 음의 협동성이 효소가 궁극적으로 부정적인 협동성을 보여 나타냅니다 것이 아니다 : 오히려,이 방법의 넓은 범위를 사용하여보다 철저하게 탐구해야합니다 복잡한 결합의 표시 일 수있다. 이 단백질의 더 광범위한 연구가 흥미로운 효과를 식별 할 가능성이 있다는 점은 우리에게 시사 않습니다. 이 방법을 사용하여 해리 상수에 대해 주어진 값은 일반적으로 등온 적정 열량계, 표면 플라즈몬 공명 등의 다른 방법에 의해 제공되는 것과 동일한 순서로한다. 그러나, 관찰 된 절대 값이 이러한 방법을 사용하여 관측보다 높은 경우이다. 이것은 적어도 부분적으로 해리 상수가 리간드와 단백질의 용융 온도에서 관찰된다는 사실의 결과이다. 이 K d를 생리적 온도에서보다 일반적으로 높다. dissociation은 정수 방정식에 의한 반응의 온도와 관련이 : <img alt="식 (1)" src="/files/ftp_upload/51809/51809eq1.jpg" /> [1] <img alt="식 (2)" src="/files/ftp_upload/51809/51809eq2.jpg" /> [2] (c의 θ가 표준 기준 농도이고, Δ는 G 반응의 깁스 자유 에너지 변화이다 R, R은 몰 기체 상수이고, Δ H는 반응 엔탈피 변화이고, Δ S는 반응 엔트로피 변화 .) 이 방법의 측정 범위의 해리 상수와 반응은 일반적으로 부정적인 Δ r에 G를 가질 것이고, 그래서 식에 온도 상승의 효과는 [1] 해리 상수를 증가시키는 것이다. 모두 깁스 자유 에너지를 구성하는 Δ H와 Δ S 기간은 (식 [2]) 그리고 온도 아르즉 종속 27 및 해리 상수에 영향이 온도 의존성의 크기 및 부호에 의존 할 것이며, 반드시 상호 작용에 의존한다. 따라서,이 방법에 의해 결정 해리 상수가 RT에서 작동 방법에 의해 결정된 것보다 종종 더 큰 것을 예상하지 못한 것이다. 온도 의존성은 또한, 물론, 생리 온도보다 낮은 온도에서 해리 상수를 제공하는 경향이 많은 다른 방법의주의이다. 이 ITC 달리 표시 방법임을 DSF 방법의 또 다른주의 할 것이다. (SYPRO 오렌지) 이용 형광 라벨은 소수성이며, 따라서 일부 경우에 단백질 소수성 리간드의 결합과 경쟁 할 수있다. 따라서, 어떤 경우에는, 수득 해리 상수 인위적으로 인해 라벨 경쟁 발생 될 가능성이있다. 그러나, 다양한 리간드의 비교 (중 주 사용DSF)는, 친 화성 차이에 의해 화합물의 순위에 영향을 미칠 정도로 충분히 크지 않을 수있다. 이러한 방법의 잠재적 인 단점은 달성 될 수있는 검출 한계이다. 원칙적으로, 정확하게 단백질의 농도가 50 % 이하이며,이 범위 내의 값이 모호한 경우에도 정밀도가 될 가능성이 K의 D의 값을 측정 할 수이어야한다. 이 범위의 끝의 검출 한계는 단백질 및 염료의 농도를 감소시킴으로써 약간 연장 할 수있는 동안, 기기의 감도는 단백질 농도에서 추가 감소를 방지한다. 마찬가지로, 감도의 상단부는 리간드의 용해도에 의해 결정된다. K d를위한 수학적 강력한 추정치를 획득하기 위해서는 대략 것으로 리간드 농도를 필요 리간드 - 결합 형태로 존재하는 단백질의 90 %의 데이터를 얻기 위해 가장 중요한LY 열 번 K d를 (더 협동성 없다고 가정). 검출 한계는 따라서 반드시 중요한 버퍼 리간드의 용해도가 10 분의 1이 될 것이다. 이 방법의 검출 한계는 일반적으로 단백질과 리간드에 따라, 1 ㎜ 내지 1 μM 내지 100 범위 일 것이라는 것을 의미한다. 결론적으로, 시차 주사 fluorimetry 단백질의 넓은 범위에 적용 가능한 다용도 기술이다. 여기에 제시된 방법을 사용하여, 신속하고 저렴하게 다른 리간드에 대한 단백질의 친화도를 결정하는 것이 가능하다. 특히 작은 실험실에서, 단백질 정제 및 안정화 응용 프로그램 metagenomes에서 효소의 기능 또는 특이성을 해명하기위한 큰 잠재력을 가지고 있으며, 신약 개발에서.

모든 단백질은 다른 큰 거대 분자에 대한 간단한 이온에서 다른 분자의 다양한 범위로, 다양한 친화력으로 결합됩니다. 많은 경우에, 단백질 (예를 들면, 키나아제 ATP에 대한 결합) 정상 기능의 일부로서 작은 분자에 결합 파트너. 다른 상호 작용에 관련되지 않은 기능 일 수 있지만, 공구 (결정화 성공을 개선, 또는 용액 중의 단백질을 유지하는데 도움이 단백질을 안정화 예, 소분자)로서 실험적으로 유용있다; 억제제로서 작용 등의 효소 활성을 조절할 수있는 활성 부위 단백질의 알로 스테 릭 사이트에 결합하는 작은 분자 동안. 파트너 분자 단백질의 친화도를 결정하는데 이용 될 수있는 기술의 다양한 종류가있다. 등온 적정 열량계 하나는 반응에 풍부한 정보를 제공 널리 라벨 무료이며, &quot;금 표준&quot;으로 간주하고, 기회를 제한했다실험 rtifacts. 그러나, 계측 및 실험 장치의 자동화 감도 최근의 개선에도 불구하고, 그것은 여전히​​ 단백질 요건의 관점에서 비교적 고가 기껏 중저 처리량을 갖고, 및 중등도의 상호 작용에 가장 적합 높은 친화도 (100 μM의 K d를 10 nm의) 2. 이러한 표면 플라즈몬 공명 또는 이중층 간섭계 3 제안 높은 처리량 및 감도를 얻을 수있는 등의 다른 라벨없는 방법 (100)의 낮은 다 작은 분자를 검출한다. 그러나, 이러한 방법에 대한 높은 처리량 악기가 비교적 비싸다, 관련 프로젝트의 연속적인 처리가있을 것입니다 경우에만 정당화하고, 많은 대학 실험실에 접근 할 수 없을 가능성이 있습니다. 시차 주사 fluorimetry (DSF 또는 thermofluor) 먼저 약물 발견을위한 방법으로 2001 4에서 설명되었다. 이 방식 운전 방식에서D는, 단백질은 형광 염료와 함께 배양된다 (초기 나프탈렌 술폰산 염료가 사용되었다), 단백질의 소수성 영역에 결합시 그 형광을 변경한다. 단백질 - 염료 샘플은 가열하고, 열 상승으로 형광 모니터링. 단백질의 전개 및 단백질의 소수성 부분의 노출은, 온도 (도 1a)의 함수로서 형광 특성 패턴을 발생시킨다. 실험은 상업적 정량 PCR 장비에서 소량으로 수행 될 수 있고, 그래서 하나의 실험에서, 샘플의 다수의 동시 (인스트루먼트 모델에 따라 일반적으로 48, 96 또는 384 샘플) 시험 할 수있다. 실험은 일반적으로 시료 (5)의 높은 처리량 분석의 가능성을 제공하고, 시간의 주위에서 수행 될 수있다. 방법론에 대한 추가 개선은 더 나은 분광 특성 6,7와 염료의 채택을 보았다 </SUP&gt;, 일반 데이터 분석 툴, 초기 스크리닝 8,9위한 프로토콜을 제안 하였다. 방법의 적용 범위는 제제 및 단백질 (10)의 저장을위한 최적의 조건을 설정하고 결정화에 11을 돕기 위해 잠재적 결합 파트너를 식별하는 특정의 중심으로 확장되었다. 이 방법의 상대적으로 높은 처리량, 단백질이 상대적으로 낮은 비용 (~ 2 반응 당 μg), 약한 결합 분자를 연구에 적용 특히 학문적 맥락 12-14에서 DSF에게 조각 기반 약물 설계를위한 유용한 도구를 만들었습니다. 단백질 - 리간드 상호 작용을 공부에 DSF의 넓은 응용 프로그램에도 불구하고, 몇몇 연구는 이러한 연구에서 해리 상수의 결정을 설명했다. 그러나 이러한 스파 스 데이터 또는 일부의 경우 전자에 장착해야 많은 매개 변수로, 단백질의 전개를 설명하는 자세한 방정식을 생산하는 경향이있다7,15-17을 stimated. 이러한 방법은 특이한 전환을 표시 긴밀하게 결합 화합물 또는 단백질로, 도전적인 경우에 특히 관련이 있습니다. 그러나 많은 실험실에 대한 이러한 자세한 분석은 일상적인 사용하기에 너무 복잡하다. 그러므로 우리는 서로 다른 시나리오에 대해 대체 치료법을 제시하고, 이러한 서로 다른 단백질 - 리간드 상호 작용의 결과 데이터에 맞추기 위해 사용될 수있는 방법을 보여준다. 우리의 방법은 맞춤형 데이터 분석 소프트웨어를 사용할 수있는 StepOne qPCR의 악기를 사용; 이 데이터 분석을 가속화하는 동안, 다른 기기로부터의 결과는 이전에 발행 된 방법 9를 사용하여 처리 될 수 있고, 동일한 하류 분석이 수행 될 수있다.

<table><tbody><tr><td>StepOne real time PCR instrument</td><td>Life Technologies</td><td>4376357</td><td>DSF can be performed with many other instruments. The StepOne instrument has very convenient software for data analysis.</td></tr><tr><td>Protein thermal shift software v1.0</td><td>Life Technologies</td><td>4466037</td><td></td></tr><tr><td>MicroAmp Fast optical 48-well plates&amp;nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>4375816</td><td></td></tr><tr><td>Optical sealing tape&amp;nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>4375323</td><td>Bio-rad part no. 223-9444 is an alternative supplier</td></tr><tr><td>U-bottomed 96-well plates</td><td>Fisher</td><td>11521943</td><td></td></tr><tr><td>SYPRO Orange</td><td>Life Technologies</td><td>S6650</td><td>For a smaller volume supplier, use Sigma part no. S5692</td></tr><tr><td>SPSS statistics version 20</td><td>IBM</td><td></td><td>Other statistics packages will provide similar functionality</td></tr><tr><td>GraphPad Prism 6.02</td><td>GraphPad</td><td></td><td>Other statistics packages will provide similar functionality</td></tr><tr><td>Hand applicator (PA1)</td><td>3M</td><td>75-3454-4264-6</td><td></td></tr><tr><td>Hexokinase from Saccharomyces cerevisiae</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H5000</td><td></td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Fisher scientific</td><td>10141520</td><td></td></tr></tbody></table>

determination of protein-ligand interactions using differential scanning fluorimetry

방법의 넓은 범위는 현재 단백질 사이의 해리 상수를 결정하고 작은 분자 상호 작용에 사용할 수 있습니다. 그러나, 이들의 대부분은 전문 장비에 대한 액세스를 필요로하며, 종종 효과적으로 신뢰성 실험을 구축하고 데이터를 분석하는 지식의 정도를 필요로한다. 시차 주사 fluorimetry은 (DSF) 증가, 중 생리 파트너를 식별하기위한 또는 히트 검색에 작은 분자를 상호 작용하는 단백질의 초기 검사에 대한 강력한 방법으로 사용되고있다. 이 기술은 정량적 PCR에 적합하고, 대부분의 기관 계측 가능하므로 적합한 만 PCR 기계를 필요로하는 이점이있다; 프로토콜의 훌륭한 범위는 이미 사용할 수 있습니다; 상기 방법의 여러 용도에 대한 문헌에서 강한 전례가있다. 과거 작업 DSF 데이터로부터 해리 상수를 산출 여러 수단을 제안하고 있지만, 이러한 수학적 요구하고있다. 여기서 우리는 민주onstrate DSF 실험 데이터로부터 적당한 양의 해리 상수를 추정하기위한 방법. 이러한 데이터는 통상적으로 수거하고, 하루 내에서 분석 될 수있다. 우리는 단순한 결합 이벤트에서 수집 된 데이터에 맞추기 위해 사용될 수있는 방법을 보여 다른 모델과 협력 결합 또는 바인딩 사이트는 독립적 본 곳이다. 마지막으로, 우리는 표준 모델이 적용되지 않는 경우 데이터 분석의 예를 제시한다. 이러한 방법은 상업적으로 이용 가능한 제어 단백질에 수집 된 데이터, 그리고 우리의 연구 프로그램에서이 단백질과 도시되어있다. 전반적으로, 우리의 방법은 연구자가 빠르게 DSF를 사용하여 단백질 - 리간드 상호 작용에 더 통찰력을 확보 할 수있는 간단한 방법을 제공합니다.

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Determination of Protein-ligand Interactions Using Differential Scanning Fluorimetry

Differential scanning fluorimetry is a widely used method for screening libraries of small molecules for interactions with proteins. Here, we present a straightforward method to extend these analyses to provide an estimate of the dissociation constant between a small molecule and its protein partner.

시차 주사 Fluorimetry를 사용하여 단백질 - 리간드 상호 작용의 결정

A wide range of methods are currently available for determining the dissociation constant between a protein and interacting small molecules. However, most ...

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Research

JoVE Journal

Biology

61.5K 조회수.  University of Exeter. Differential scanning fluorimetry is a widely used method for screening libraries of small molecules for interactions with proteins. Here, we present a straightforward method to extend these analyses to provide an estimate of the dissociation constant between a small molecule and its protein partner.

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Fluorescence Anisotropy as a Tool to Study Protein-protein Interactions

Protein-protein interactions play an essential role in the function of a living organism. Once an interaction has been identified and validated it is necessary to characterize it at the structural and mechanistic level. Several biochemical and biophysical methods exist for such purpose. Among them, fluorescence anisotropy is a powerful technique particularly used when the fluorescence intensity of a fluorophore-labeled protein remains constant upon protein-protein interaction. In this technique, a fluorophore-labeled protein is excited with vertically polarized light of an appropriate wavelength that selectively excites a subset of the fluorophores according to their relative orientation with the incoming beam. The resulting emission also has a directionality whose relationship in the vertical and horizontal planes defines anisotropy (r) as follows: r=(IVV-IVH)/(IVV+2IVH), where IVV and IVH are the fluorescence intensities of the vertical and horizontal components, respectively. Fluorescence anisotropy is sensitive to the rotational diffusion of a fluorophore, namely the apparent molecular size of a fluorophore attached to a protein, which is altered upon protein-protein interaction. In the present text, the use of fluorescence anisotropy as a tool to study protein-protein interactions was exemplified to address the binding between the protein mutated in the Shwachman-Diamond Syndrome (SBDS) and the Elongation factor like-1 GTPase (EFL1). Conventionally, labeling of a protein with a fluorophore is carried out on the thiol groups (cysteine) or in the amino groups (the N-terminal amine or lysine) of the protein. However, SBDS possesses several cysteines and lysines that did not allow site directed labeling of it. As an alternative technique, the dye 4&#39;,5&#39;-bis(1,3,2 dithioarsolan-2-yl) fluorescein was used to specifically label a tetracysteine motif, Cys-Cys-Pro-Gly-Cys-Cys, genetically engineered in the C-terminus of the recombinant SBDS protein. Fitting of the experimental data provided quantitative and mechanistic information on the binding mode between these proteins.

Protein interactions are at the heart of a cell&#39;s function. Calorimetric and spectroscopic techniques are commonly used to characterize them. Here we describe fluorescence anisotropy as a tool to study the interaction between the protein mutated in the Shwachman-Diamond Syndrome (SBDS) and the Elongation factor-like 1 GTPase (EFL1).

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Differential Scanning Calorimetry &#8212; A Method for Assessing the Thermal Stability and Conformation of Protein Antigen

Differential scanning calorimetry (DSC) is an analytical technique that measures the molar heat capacity of samples as a function of temperature. In the case of protein samples, DSC profiles provide information about thermal stability, and to some extent serves as a structural &#8220;fingerprint&#8221; that can be used to assess structural conformation. It is performed using a differential scanning calorimeter that measures the thermal transition temperature (melting temperature; Tm) and the energy required to disrupt the interactions stabilizing the tertiary structure (enthalpy; &#8710;H) of proteins. Comparisons are made between formulations as well as production lots, and differences in derived values indicate differences in thermal stability and structural conformation. Data illustrating the use of DSC in an industrial setting for stability studies as well as monitoring key manufacturing steps are provided as proof of the effectiveness of this protocol. In comparison to other methods for assessing the thermal stability of protein conformations, DSC is cost-effective, requires few sample preparation steps, and also provides a complete thermodynamic profile of the protein unfolding process.

Differential scanning calorimetry measures the thermal transition temperature(s) and total heat energy required to denature a protein. Results obtained are used to assess the thermal stability of protein antigens in vaccine formulations.

시차 주사 열량 - 단백질 항원의 열 안정성과 형태를 평가하기위한 방법

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Measuring Biomolecular DSC Profiles with Thermolabile Ligands to Rapidly Characterize Folding and Binding Interactions

Differential scanning calorimetry (DSC) is a powerful technique for quantifying thermodynamic parameters governing biomolecular folding and binding interactions. This information is critical in the design of new pharmaceutical compounds. However, many pharmaceutically relevant ligands are chemically unstable at the high temperatures used in DSC analyses. Thus, measuring binding interactions is challenging because the concentrations of ligands and thermally-converted products are constantly changing within the calorimeter cell. Here, we present a protocol using thermolabile ligands and DSC for rapidly obtaining thermodynamic and kinetic information on the folding, binding, and ligand conversion processes. We have applied our method to the DNA aptamer MN4 that binds to the thermolabile ligand cocaine. Using a new global fitting analysis that accounts for thermolabile ligand conversion, the complete set of folding and binding parameters are obtained from a pair of DSC experiments. In addition, we show that the rate constant for thermolabile ligand conversion may be obtained with only one supplementary DSC dataset. The guidelines for identifying and analyzing data from several more complicated scenarios are presented, including irreversible aggregation of the biomolecule, slow folding, slow binding, and rapid depletion of the thermolabile ligand.

We present a protocol for rapid characterization of biomolecular folding and binding interactions with thermolabile ligands using differential scanning calorimetry.

바이오 DSC 프로필 Thermolabile Ligands 빠르게 폴딩 및 바인딩 상호 작용의 특성을 측정

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Phase Contrast and Differential Interference Contrast (DIC) Microscopy

Phase-contrast microscopy is often used to produce contrast for transparent, non light-absorbing, biological specimens. The technique was discovered by Zernike, in 1942, who received the Nobel prize for his achievement. DIC microscopy, introduced in the late 1960s, has been popular in biomedical research because it highlights edges of specimen structural detail, provides high-resolution optical sections of thick specimens including tissue cells, eggs, and embryos and does not suffer from the  phase halos  typical of phase-contrast images. This protocol highlights the principles and practical applications of these microscopy techniques.

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Phase-contrast microscopy is often used to produce contrast for transparent, non light-absorbing, biological specimens. The technique was discovered by ...

생물학

A Rapid and Quantitative Fluorimetric Method for Protein-Targeting Small Molecule Drug Screening

We demonstrate a new drug screening method for determining the binding affinity of small drug molecules to a target protein by forming fluorescent gold nanoclusters (Au NCs) within the drug-loaded protein, based on the differential fluorescence signal emitted by the Au NCs. Albumin proteins such as human serum albumin (HSA) and bovine serum albumin (BSA) are selected as the model proteins. Four small molecular drugs (e.g., ibuprofen, warfarin, phenytoin, and sulfanilamide) of different binding affinities to the albumin proteins are tested. It was found that the formation rate of fluorescent Au NCs inside the drug loaded albumin protein under denaturing conditions (i.e., 60 &#176;C or in the presence of urea) is slower than that formed in the pristine protein (without drugs). Moreover, the fluorescent intensity of the as-formed NCs is found to be inversely correlated to the binding affinities of these drugs to the albumin proteins. Particularly, the higher the drug-protein binding affinity, the slower the rate of Au NCs formation, and thus a lower fluorescence intensity of the resultant Au NCs is observed. The fluorescence intensity of the resultant Au NCs therefore provides a simple measure of the relative binding strength of different drugs tested. This method is also extendable to measure the specific drug-protein binding constant (KD) by simply varying the drug content preloaded in the protein at a fixed protein concentration. The measured results match well with the values obtained using other prestige but more complicated methods.

A protocol for small molecular drug screening based on in-situ synthesis of ultrasmall fluorescent gold nanoclusters (Au NCs) using drug-loaded protein as template is presented. This method is simple to determine the binding affinity of drugs to a target protein by a visible fluorescent signal emitted from the protein-templated Au NCs.

단백질 표적 소분자 약물 검사를위한 신속하고 정량적적인 형광 방법

We demonstrate a new drug screening method for determining the binding affinity of small drug molecules to a target protein by forming fluorescent gold ...

생체공학

Microvolume Protein Concentration Determination using the NanoDrop 2000c Spectrophotometer

Traditional spectrophotometry requires placing samples into cuvettes or capillaries. This is often impractical due to the limited sample volumes often used for protein analysis. The Thermo Scientific NanoDrop 2000c Spectrophotometer solves this issue with an innovative sample retention system that holds microvolume samples between two measurement surfaces using the surface tension properties of liquids, enabling the quantification of samples in volumes as low as 0.5-2 &mu;L. The elimination of cuvettes or capillaries allows real time changes in path length, which reduces the measurement time while greatly increasing the dynamic range of protein concentrations that can be measured. The need for dilutions is also eliminated, and preparations for sample quantification are relatively easy as the measurement surfaces can be simply wiped with laboratory wipe. This video article presents modifications to traditional protein concentration determination methods for quantification of microvolume amounts of protein using A280 absorbance readings or the BCA colorimetric assay.

Microvolume samples are quantified by a spectrophotometer system that uses natural surface tension to retain samples without the use of cuvettes or capillaries. The dynamic range of protein concentrations and speed by which they can be measured are greatly increased with this method.

NanoDrop 2000c 분광을 사용 Microvolume 단백질 농도 결정

Traditional spectrophotometry requires placing samples into cuvettes or capillaries. This is often impractical due to the limited sample volumes often ...

Nano-Differential Scanning Fluorimetry for Screening in Fragment-based Lead Discovery

Thermal shift assays (TSAs) examine how the melting temperature (Tm) of a target protein changes in response to changes in its environment (e.g., buffer composition). The utility of TSA, and specifically of nano-Differential Scanning Fluorimetry (nano-DSF), has been established over the years, both for finding conditions that help stabilize a specific protein and for looking at ligand binding by monitoring changes in the apparent Tm. This paper presents an efficient screening of the Diamond-SGC-iNEXT Poised (DSi-Poised) fragment library (768 compounds) by the use of nano-DSF, monitoring Tm to identify potential fragment binding. The prerequisites regarding protein quality and concentration for performing nano-DSF experiments are briefly outlined followed by a step-by-step protocol that uses a nano-liter robotic dispenser commonly used in structural biology laboratories for preparing the required samples in 96-well plates. The protocol describes how the reagent mixtures are transferred to the capillaries needed for nano-DSF measurements. In addition, this paper provides protocols to measure thermal denaturation (monitoring intrinsic tryptophan fluorescence) and aggregation (monitoring light back-scattering) and the subsequent steps for data transfer and analysis. Finally, screening experiments with three different protein targets are discussed to illustrate the use of this procedure in the context of lead discovery campaigns. The overall principle of the method described can be easily transferred to other fragment libraries or adapted to other instruments.

Monitoring changes in the melting temperature of a target protein (i.e., thermal shift assay, TSA) is an efficient method for screening fragment libraries of a few hundred compounds. We present a TSA protocol implementing robotics-assisted nano-Differential Scanning Fluorimetry (nano-DSF) for monitoring intrinsic tryptophan fluorescence and light back-scattering for fragment screening.

단편 기반 리드 디스커버리에서 스크리닝을 위한 나노 차분 스캔 형광

Thermal shift assays (TSAs) examine how the melting temperature (Tm) of a target protein changes in response to changes in its environment (e.g., buffer ...

형광을 이용한 화합물 단백질 결합의 고감도 검출

Detection of CD40 Protein-Umbelliferone Interaction via Differential Scanning Fluorescence

The investigation of interactions between different molecules is a crucial aspect of understanding disease pathogenesis and screening for drug targets. Umbelliferone, an active ingredient in Tibetan medicine Vicatia thibetica, exhibits an immunomodulatory effect with an unknown mechanism. The CD40 protein is a key target in the immune response. Therefore, this study employs the principle of differential scanning fluorescence technology to analyze the interactions between CD40 protein and umbelliferone using fluorescent enzyme markers. Initially, the stability of the protein fluorescent orange dye was experimentally verified, and the optimal dilution ratio of 1:500 was determined. Subsequently, it was observed that the temperature melting (Tm) value of CD40 protein tended to decrease with an increase in concentration. Interestingly, the interaction between CD40 protein and umbelliferone was found to enhance the thermal stability of CD40 protein. This study represents the first attempt to detect the binding potential of small molecule compounds and proteins using fluorescence microplates and fluorescent dyes. The technique is characterized by high sensitivity and accuracy, promising advancements in the fields of protein stability, protein structure, and protein-ligand interactions, thus facilitating further research and exploration.

저자 스포트라이트: 접근성 및 효율성 향상을 위한 PCR 방법 간소화

This protocol describes a unique method for detecting the binding between compounds and protein molecules, offering the advantages of minimal protein sample loss and high data accuracy.

Differential Scanning Fluorescence를 통한 CD40 단백질-Umbelliferone 상호작용 검출

The investigation of interactions between different molecules is a crucial aspect of understanding disease pathogenesis and screening for drug targets. ...

시차 주사 Fluorimetry를 사용하여 단백질 - 리간드 상호 작용의 결정

요약

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단백질 - 단백질 상호 작용을 연구하는 도구로 형광 이방성

시차 주사 열량 - 단백질 항원의 열 안정성과 형태를 평가하기위한 방법

바이오 DSC 프로필 Thermolabile Ligands 빠르게 폴딩 및 바인딩 상호 작용의 특성을 측정

단계 대비 및 차등 간섭 대비 (DIC) 현미경

단백질 표적 소분자 약물 검사를위한 신속하고 정량적적인 형광 방법

NanoDrop 2000c 분광을 사용 Microvolume 단백질 농도 결정

단편 기반 리드 디스커버리에서 스크리닝을 위한 나노 차분 스캔 형광

Differential Scanning Fluorescence를 통한 CD40 단백질-Umbelliferone 상호작용 검출

Differential Scanning Fluorescence를 통한 CD40 단백질-Umbelliferone 상호작용 검출

Differential Scanning Fluorescence를 통한 CD40 단백질-Umbelliferone 상호작용 검출