자금 지원 선언 없습니다.

설명 된 골격 근육 절차는 애팔 래 치아 주립 대학위원회 (Institutional Review Board)의 지침을 따른다. NOTE : 팀 연산자 (박사 또는 생검 기법에서 숙련 MD), 및 적어도 하나의 구성되지만 이상적으로, 세 개 이상의 기술자. 오퍼레이터는 전도성 및 골격근 생검 절차의 모든 측면을 감독하고있다. 한 기술자 (기술자 # 1) 근육​​ 추출의 모든 측면을 돕는 오퍼레이터 즉시 책임이있다. 이것은 &quot;비 멸균 손&quot;인 및 멸균 주사기로 흡입을 적용 포함되어 있습니다. 둘째 기술자 (기술자 # 2) 주체의 불안을 최소화하기 위해 절차를 수행하는 동안 피사체와 마사지 피사체의 반대 다리와 대화에 종사. 셋째 기술자 (3 기술자 #)는 취급 및 골격근 샘플을 처리 할 책임이있다. 다운 스트림 분석 방법은 얼마나 많은와 T를 지시하는 ional 기술자 골격 근육 샘플을 준비 / 처리를 위해 필요합니다. 1 주제 준비 <ol><li> 수집 준비하고 근육 생검 절차 (표 1)에 지정된 물질을 구성. 오염 제거 및 버그 스트롬 바늘 (외측 및 내측 뉼러 투관침) 및 16 표준 관행에 따라 플런저 살균. </li><li> 피사체 동의서를 검토합니다. 애팔 래 치아 주립 대학에서 사용하는 양식을 참여 할 수있는 동의의 골격 근육 조직 검사 부분은 온라인으로 보충 한에 제공됩니다. <ol><li> 절차의 가능한 위험, 피부 준비, 마취의 응용 프로그램, 일반적인 감각에 초점을 맞춘 근육 생검 절차의 일반적인 측면에 대한 주제로 이야기하십시오. 조심스럽게 양식을 참여 및 연구 설계 및 절차를 이해하는 것을 확인하기 위해 서명하는 동의서를 읽고 주제를 지시합니다. </li></ol></li><li> 의되었는지 확인변동될 알레르기하지 않습니다에 &quot;___ 케인&quot;형 약물 (예를 들어, 리도카인). </li><li> 노출 된 허벅지와 패딩 테이블에 누운 거짓말 주제를 지시합니다. 피사체의 다리 아래에 플라스틱 받침 두 개의 일회용 흡수 underpads를 놓습니다. 따라서 단축 위치에 광근의 lateralis를 배치, 발 뒤꿈치 아래 작은 수건 롤, 같은 무릎이 완전히 확장되었는지 (상승 ~ 1cm)으로 편안하게 다리를 놓습니다. </li><li> 조작자가 생검 사이트 가시화 될 수 있도록 일시적으로 노출 허벅지의 근육을 수축 피사체를 지시하게한다. 주 : 광근 단지 대퇴근 (illiotibial 밴드), 슬개골의 상단과 대전 자부 (7) 사이의 거리의 약 3 분의 1로되어 전방 생검 사이트 lateralis. </li><li> 아래 사항을 운영자 마르크 (~ 0.5 cm) 좋은 점 영구 마커 절개 사이트를 가지고있다. </li><li> 운영자는 pinc에 의해 대략적인 피하 지방의 두께를 결정 했피하 지방을 힝. </li><li> 연산자를 가지고 기술자 비누와 따뜻한 물로 손을 씻고 일회용 장갑을 돈. </li><li> 운영자가 (가위로) 생검 사이트 주위 ~ 지역에서 15cm X 15cm를 머리를 제거해야합니다. 생검 사이트에서 머리를 클리핑 절차를 수행하는 동안 절개에 들어가기에서 닫는 동안 머리를 방지하고, 머리 제거는 테이프 폐쇄 피부 (3.4 참조) 사이의 더 나은 접촉을 허용 : 있습니다. </li><li> 운영자가 면봉으로 영역을 소독이 국소 소독제로 미리 적신 (요오드 / 조개류에 알레르기 과목 포비돈 - 요오드 클로르헥시딘 글루 콘산 등). 중앙에서 시작하여 클리핑 영역의 바깥 가장자리쪽으로 동심원으로 작동합니다. 최소한, 새로운 사전 흠뻑 젖은 면봉으로 두 번 더 할 때마다 반복합니다. </li></ol> 2 생검 절차 <ol><li> 운영자가, 일회용 장갑을 제거 비누와 따뜻한 물로 손을 씻고, 멸균 수술 GL을 돈이무균 기술을 사용하여 oves. </li><li> 기술자 # 1 현재에게 운영자에게 살균 fenestrated 드레이프가 있습니다. 무균 기술을 사용하여 연산자를 가지고 무균 영역을 유지하기 위해 조직 검사 사이트를 통해 드레이프를 놓습니다. </li><li> 기술자 # 1 본보기 유무 연산자 무균 기술을 유지하면서 21 G 바늘 장착 5 ㎖ 주사기. 알코올 면봉으로 리도카인 유리 병의 상단을 청소합니다. <ol><li> 운영자가 바로 리도카인 5 ㎖을 인출하게한다. 주사기에서 21 G 바늘을 제거하고 날카로운 물건 용기에 바늘을 폐기​​합니다. </li><li> 무균 기술을 유지하면서 기술자 # 1 현재에게 1 ½ 인치 25 G 바늘 연산자를 가지고있다. 운영자 놓고 주사기 상에 1 ½ 인치 바늘이 주사기에서 공기 방울을 대피. </li></ol></li><li> 절개 사이트에서 기술자 # 1 스프레이 에틸 클로라이드 (~을 피부에 지울 수없는 잉크 마르크 이상 0.5 cm)이 피부에 나타날 때까지 &quot;희게.&quot; <ol><li> 하조작자가 직경 &quot;여과포&quot;2-4밀리미터 생산 리도카인 100 ~ μL와 침투 한 후, 피부 진피에 대략 수평 바늘을 삽입 바늘 대기음 및 없는데. <ol><li> 바늘이 혈관에 배치되어 있지 않은 것을 확인하기 위해 (약간 주사기의 플런저를 철회) 운영자에게 대기음 바늘을 가지고있다. 혈액이 주사기에 나타나면, 바늘을 철회 날카로운 물건 용기에 버리고 2.3에서 다시 시작합니다. </li><li> , 운전자에게 미리 피하 조직에 주사 바늘을 가지고 니들 대기음 후 여과포를 형성하기 위해 리도카인 ~ 1 ml의 조직으로 침투. 물집이 가라되면 근막에 피상적 중지, 수직 절개 부위에 리도카인로드 주사기에 1 ½ 인치 바늘을 삽입합니다. 참고 : 피사체가 (봉침과 유사) 리도카인의 초기 주입시 약간의 순간 쏘는 감각을 느낄 수 있습니다. </li></ol></li><li> 운전 방식 있는지 확인그것은 17 ~ 19 myotoxic 때문에 또는 lidocoine와 근육에 침투하지 않습니다. </li><li> 운영자 흡인에게 바늘을하고 허벅지에서 바늘을 철회하면서 천천히 리도카인의 나머지 4 ㎖의 주사. 주사 부위를 통해 멸균 거즈를 놓고 국소 마취제가 적용되는 동안 피사체가 휴식을 취할 수 있습니다. </li></ol></li><li> 무균 기술을 유지하면서 2 ~ 3 분 후, 운영자 메스를 기술자 # 1 본이있다. <ol><li> 가볍게 영역이 마취되어 있는지 확인하기 위해 메스의 팁 생검 사이트를 조사 연산자를 가지고있다. 필요한 경우, 절개 부위에 리도카인의 또 다른 3 ~ 4 ㎖의 주사 2.4.1.2를 참조하십시오. </li></ol></li><li> 조작자가 대퇴골에 피부와 피하 조직 (~ 잉크 마크 위 2-3mm)를 통해 평행 직선 1 cm 절개를 확인하게한다. <ol><li> 조작자가 근육에 근막 통해 절개 있도록 메스 깊이 삽입하게한다. 각 방향으로 한 번이 작업을 수행<html> . 참고 : 피사체가 근육에 메스 블레이드 상처 경우 깊은 컷 쑤시는듯한 아픔하거나 압력을 느낄 수 있습니다. </li><li> 기술자 # 2를 가지고하는 것은 대화의 주제를 참여 반대 다리를 마사지. </li></ol></li><li> 운영자 장소에게 절개 생검 사이트를 통해 멸균 거즈의 자유 양을하고 출혈을 줄이기 위해 절개에 직접 압력을 적용합니다. <ol><li> 기술자 # 1 일회용 60 ML의 주사기와 30cm 확장 튜브 (그림 1)에 3 방향 금속 꼭지를 연결해야합니다. </li><li> 기술자 # 1 확장 호스의 자유 단부에 테이퍼 플라스틱 호스 연결 관의 한쪽 끝을 연결하고 단단히의 ~ 15-18mm과 200 μL 피펫 팁의 큰 단부에 테이퍼 플라스틱 호스 연결 관의 타단을 삽입 유무 끝은 절단. </li></ol></li></ol>.JPG &quot;폭 =&quot;500 &quot;/&gt; 그림 1 버그 스트롬 바늘. (A) 버그 스트롬 바늘 (5mm)은 (a) 외측 뉼러 및 (b) 내부 투관침 구성되어, 관련 구성 요소는 (c), 플런저 (D) 15-18밀리미터가 잘린 ~ 200 μL 피펫 팁을 포함 (전자) 테이퍼 플라스틱 커넥터, (f)는 3 웨이 금속 꼭지, (g) 30cm 확장 튜브, 및 (H) 일회용 60 ML의 주사기. (B) 버그 스트롬 바늘 (5mm) 및 관련 부품 조립. ( C) 철회 버그 스트롬 바늘 (5mm)의 내부 투관침은 약 1cm는 외부 캐 뉼러의 창을 엽니 다. <ol start="9"><li> 출혈이 가라 앉은 후, 기술자 # 1은 오토 클레이브 멸균 봉지를 열고 무균 기술을 유지하면서, 오퍼레이터 5mm 생검 바늘 및 내측 투관침 (도 1)을 제시한다. <ol><li> 작업자는 바늘 (외측 및 내측 뉼러 투관침)을 조립 한 배향 및 슬라이딩 동작을 확인한다. </li> &lt;/ OL&gt; </li><li> 연산자를 가지고 확실하게 회전하는 내부 투관침을 방지하기 위해 두 손으로 니들 어셈블리 (외부 정맥 및 내부 투관침)을 누르고 있습니다. 기술자 # 1은 단단히 약간 하향 비틀림 모션 생검 바늘의 내 ​​투관침 부의 상부로 잘라 피펫 팁을 삽입했다. 운영자 또는 생검 바늘 만 피펫 팁을 만지지 않는 기술자 # 1을 확인하십시오. </li><li> 조작자가 절개를 통해 조직으로 생검 바늘을 도입하게한다. 생검 바늘의 끝 근막의 절개 (인수 &quot;느낌&quot;)을 찾습니다. 바늘이 근육으로 전진으로 바닥을 향해 아래로 바늘 바로 다음 근막과 각도를지나 바늘을 전진. 참고 : 주제는 근막을 통해 절개 생검 바늘의 끝 위치와 바늘이 근육으로 전진 등 일부 경미한 불편 함 (예를 들어, &quot;깊은 압력&quot;또는 가벼운 경련 감각)가 발생할 수 있습니다. <ol> &lt;리&gt; &quot;편안한&quot;체류 기술자 # 2 지시합니다에게 주제를 가지고 운전자가 근육에 바늘을 진행하는 동안 자신의 허벅지 근육을 수축하지. </li></ol></li><li> 생검 바늘 위치에 오면, 일회용 60 ML의 주사기를 엽니 운영자 신호 기술자 # 1이 있습니다. <ol><li> 기술자 # 1이 빠르게 생검 바늘 내에서 흡입을 만들기 위해 40 ~ 50 CC 마크에 열려 일회용 60 ML의 주사기를 가져 되세요. </li><li> 조작자가 근육 내 외측 투관침의 위치를​​ 유지하면서 외부 캐 뉼러의 창을 열고 밖으로 약 1cm 내측 투관침 당겨있다. 운영자가 신속하게 (클립)를 절단하고 근육 시료를 수집하는 내측 투관침을 닫고있다. 흡입을 해제 운영자 신호 기술자 # 1 되세요. </li><li> 기술자 # 1 흡입을 해제 할 수있는 방에 콕을 열고있다. </li><li> 연산자를 가지고 생검 바늘을 90 ° 회전하고 프로세스를 반복합니다. 필요한 경우, 운전자가 반복 하오(4 탄창 총) 3 배 회전 절차를 t. </li></ol></li><li> 근막이나 피부 끼이지 않도록주의하면서, 허벅지에서 생검 바늘을 제거하는 동안 운전자가 멸균 거즈로 절개 사이트에 직접 반대 압력을 적용해야합니다. 상당한 저항이 느껴지는 경우 내측 투관침에 비틀림 운동을인가하면서, 다시 잘랐다. </li><li> 허벅지로부터 생검 바늘 제거하여, 시각적으로 조직의 적절한 양이 수집되었는지 추정 외측 뉼러의 루멘을 검사하기 위해 운전자가 다시 1cm를 내측 투관침 당겨있다. <ol><li> 작업자 손에게 # 1을 기술자에게 생검 바늘을 가지고있다. 무균 기법은 그 기술자 # 1을 위해 유지하기 만하면 바늘 아니라 운영자 접촉. 기술자 # 1 손에게 # 3를 기술자에게 생검 바늘을 가지고있다. </li></ol></li><li> 기술자 # 3 제거에게 생검 바늘의 조직을 가지고있다. <ol><li> 기술자 # 3 사용에게 플런저 (그림 1) 및 미세 팁 포셉 한 쌍을 가지고모든 근육 조직이 내부 투관침과 바깥 쪽 정맥에서 제거되었는지 확인합니다. </li><li> 기술자 # 3 신속 근조직의 충분한 양이 수집되었는지 확인하고 빙냉 해부 블록에 샘플을 배치하는 시료의 무게를 가지고있다. </li></ol></li><li> 기술자 # 3주의 깊게 근육 샘플에서 볼 결합 조직과 지방을 해부있다. 기술자 # 3은 하류의 분석에 따라 저장을 위해 근육 샘플을 준비했다. 예를 들어, 즉시 cryovial에서 샘플을 배치하고 액체 질소에 동결 스냅 마운트의 RNase 억제제 등으로 cryovial에서 조직 학적, 또는 장소를 동결 </li><li> 필요한 경우 무균 기술을 유지하면서, 제 멸균 생검 바늘 절차를 반복한다. </li></ol> 3 폐쇄 <ol><li> 작업자는 멸균 거즈 10-15 분 동안 얼음 팩 생검 사이트에 직접 압력을 적용하게한다. </li><li> 지혈이 달성되면, 오퍼레이터 사용 알콜 (PR)를 가지고EP 패드는 절개 주변에서 말린 혈액을 제거합니다. </li><li> 기술자 # 1 현재에게 운영자에게 국소 수술 접착제 도포 기의 튜브를 가지고있다. 조작자가 선단 도포 또는 튜브의 상단을 건드리지 않고 수술 접착제 도포의 튜브를 조립하게한다. </li><li> 한편으로 건조 절개 수술 맨 위에 접착제의 단일 층을 도포하는 동안 운전자가 절개 한 손으로 당겨 닫혀있다. 접착제 경화 (~ 90 초) 후, 절개 테이프 closuresperpendicular을 적용합니다. 또한,이 무균 4-0 봉합과 절개를 닫습니다. </li><li> 조작자가 절개 사이트 3-4 2 &quot;× 2&quot;비 멸균 거즈 패드를 배치하여 직접 압력을 적용하고 자기 부착 접착제로 고정 랩이있다. </li><li> 조작자가 구두 피사체 적절한 상처 치료, 정상 및 비정상 반응에 작성 지시 한 다음 1~4일위한 활동 가이드 라인 (온라인 SU 참조 제공 유무pplement 2). </li></ol>

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The authors have no conflicts of interest.

이 동영상은 ASU 인간 성능 연구소에서 사용되는 골격 근육 생검 절차의 단계별 요약을 제공합니다. 작은 수정 사항이 절차는, 지난 13 년 동안 약 1600 근육 조직 검사를 수집하는 데 사용되었다. 근육 생검 샘플은 중요한 연구의 발견으로 이어지는, 스포츠 영양 기초 연구에 중요한 자료를 제공하고 있습니다. 수정 된 버그 스트롬 골격 근육 조직 검사 기법을 수행 할 때주의해...

경피적 또는 &#39;세미 오픈&#39;조직 검사 기술은 인간의 환자와 연구 대상에서 골격 근육 조직 표본을 얻기 위해 사용된다. 뒤 시엔 느 (1,806에서 1,875 사이)은 경피적 생검 일을 통해 생활 과목에서 골격 근육을 얻기 위해 투관침으로 바늘을 구성하는 것이 첫번째로 적립됩니다. 1960 년대에 버그 스트롬은 뒤 시엔 느 2-4에서 기재 한 것과 유사한 경피적 생검 바늘을 도입했다. 20 년 후, 에반스 등. 5 버그 스트롬 바늘의 절단 투관침을 통해 흡입을 적용하여 기술을 수정했습니다. 본 변형 예에서는 5 배 6,7 티슈 3의 수율을 향상시킬 수 있고, 생물 의학 연구와 임상 설정에서 사용된다. 이 기술은 가지고 있으며, 근육 병증의 진단 및 골격 근육의 구조와 기능에 대한 우리의 이해를 지속적으로 육성 해 나갈 것입니다. 경피적 근육 생검 기법이다 straightforward. 제대로 할 때, 무균 기술에 대한 엄격한 준수와 관련된 위험을 최소화합니다. 근육 조직 검사 절차는 연구 프로젝트에 대한 임상 도구로 간주된다. 일부 교육 기관은 근육 조직 검사를 얻기 위해, 직접 의사의 감독으로, 박사 학위와 교수 연구원을 교육 훈련을 받았 다른 기술을 수행하는 보드 인증 의사를 필요로합니다. ASU 조직 검사 팀은 이전에는 성공적으로 십삼년 8-15 중 1600여 근육 생검을 수행하고있다. 이 동영상의 목적은 인체의 측광 근 lateralis에서 골격근 조직 샘플을 얻기 위해 수정 된 버그 스트롬 바늘 경피적 근육 생검 기법 5를 설명한다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="969">
	<tbody>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:439px;">Name of Material / Equipment</td>
			<td style="width:185px;">Company</td>
			<td style="width:141px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:204px;">Comments /&#160; Description</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Bergstr&#246;m biopsy needle, 5 x 100mm</td>
			<td style="width:185px;">Stille Surgical Inc.</td>
			<td>119-29187-50</td>
			<td>1 ea</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Durasorb blue pad</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>22-031-340</td>
			<td>case of 300</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Prep Razor Disposable</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>89760</td>
			<td>1 ea</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Shave Cream</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>92869</td>
			<td>1 can</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Alcohol Swab</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>98721</td>
			<td>box/200</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Povidone-iodine Swabsticks (3 pack)</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>90691</td>
			<td>pack of 50</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Face masks</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>19-039-690</td>
			<td>case of 50</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Sterile Gloves; sz 6.5</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>68128</td>
			<td>box of 50 pairs</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Sterile Gloves; sz 7.0</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>68129</td>
			<td>box of 50 pairs</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Sterile Gloves; sz 8.5</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>68132</td>
			<td>box of 50 pairs</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Fenestrated Towel Drape</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>92712</td>
			<td>case of 50</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Lidocaine (1% HCl, w/o Epi</td>
			<td>Dealmed</td>
			<td>427902</td>
			<td>30cc vial</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Ethyl Chloride spray</td>
			<td>Dealmed</td>
			<td>386020</td>
			<td>3.5 fl. Oz. bottle</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">5 mL syringe w/ 21G needle</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-827-48</td>
			<td>case of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">25G 5/8&#34; needle</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-826AA</td>
			<td>case of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">25G 1 1/2&#34; needle</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-826-49</td>
			<td>case of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Single-Use Scalpels&#160; w/ #11 blade</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>0-8927-5B</td>
			<td>box of 20</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">60 mL Syringe</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>13-689-8</td>
			<td>case of 40</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">~30 inch extension tubing</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-169-7A</td>
			<td>roll of 50ft</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Metal stopcock</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>01-290-38</td>
			<td>each</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Polypropylene tubing connector w/ tapered ends, 3.2 to 5.5 mm</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>15-315-28A</td>
			<td>case of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Yellow pipette tips (1-200 &#181;L)</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>02-681-2</td>
			<td>cut off&#160; ~15-18 mm of the tip</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Topical surgical adhesive</td>
			<td>Medline</td>
			<td>MSC091076</td>
			<td>case of 36 tubes</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Topical surgical adhesive</td>
			<td>Medline</td>
			<td>MSC091076Z</td>
			<td>box of 6 tubes</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Butterfly stitches (adhesive strips) 1/2&#34; x 4&#34; (6 per pack)</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>93050</td>
			<td>box/300</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Bandadge, Strip, 3/4 x 3 in.</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>19-027-202</td>
			<td>pack of 100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Adhesive bandage (5m rolls)</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>19-027-768</td>
			<td>case of 36</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">1&#34; paper surgical tape</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>19-027-761</td>
			<td>case of 12</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Sutures (4-0 reverse cutting, FS2)</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>82926</td>
			<td>box of 36</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">4 x 4 sterile gauze pads</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>66949</td>
			<td>pkg/50</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">2 x 2 non-sterile gauze pads</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>37336</td>
			<td>pkg/200</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">3 x 4 Non-Adherent Pads</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>74389</td>
			<td>bx/100</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Autoclave bags 3.5 x 9</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>40390</td>
			<td>box of 200</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Autoclave bags 5.25 x 10</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>40391</td>
			<td>box of 200</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Autoclave indicator tape</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>31608</td>
			<td>box of 250</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Lab Coats&#8212;small</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>23-900-520A&#160;</td>
			<td>10/pk</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Lab Coats&#8212;medium</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>23-900-520B&#160;</td>
			<td>10/pk</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Lab Coats&#8212;large</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>23-900-520C&#160;</td>
			<td>10/pk</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">Germicidal Disposable Cloth Wipes</td>
			<td>Moore Medical</td>
			<td>62879</td>
			<td>Can/160</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

human skeletal muscle biopsy procedures using the modified bergstr&#246;m technique

경피적 생검 기술은 연구자와 임상의 골격 근육 조직 샘플을 수집 할 수 있습니다. 이 기술은 안전하고 매우 효과적이다. 이 동영상은 인체의 광근의 lateralis에서 골격 근육 조직 샘플을 얻기 위해 수정 된 버그 스트롬 바늘을 사용하여 경피적 생검 기술에 대해 설명합니다. 버그 스트롬 바늘 선단 절삭 블레이드 팁의 측면의 작은 개구 ( &#39;윈도우&#39;)와 내측 투관침과 캐 뉼러 외부로 구성된다. 국소 마취하고 무균 조건 하에서, 니들은 피부, 피하 조직 및 근막에 절개를 통하여 골격근에 진출한다. 다음에, 흡인 내측 투관침에인가되고, 따라서, 절단 또는 골격근 조직 샘플 패스, 외측 투관침은 골격근 조직을 흡인 외측 뉼러의 윈도우로 흡입되고, 다시 당기면, 내측 투관침 빠르게 닫혀 . 주사 바늘을 90 ° 회전(60), 그리고 또 다른 컷이 이루어집니다. 이 과정은 세 번 이상 반복 될 수있다. 이것은 여러 절단 기법은 일반적 건강한 피험자 100-200 밀리그램 이상의 샘플을 생산하고 동안, 직전에 수행 할 수 있으며, 운동이나 다른 간섭의 시합 후의. 절개 사이트의 후 조직 검사 드레싱에 따라, 환자는 일반적으로 바로 일상 생활의 활동을 재개하고 완벽하게 48 ~ 72 시간 이내에 격렬한 신체 활동에 참여할 수 있습니다. 주제는 근막의 절개를 통해 근육의 탈출증의 위험을 줄이기 위해 48 시간 동안 무거운 저항 운동을 피해야한다.

전술 한 바와 같이 근육 생검 절차가 신속하고 지속적으로 골격근 조직 샘플을 수집 할 수 있도록 연구. 건강, 체육 과목에서 전형적인 수율은 3-4 클립 단일 패스에서 200 밀리그램 이상이다. 절차는 절개 준비에 소요되는 대부분이 15 ~ 20 분, 소요. 운동 기반 연구에서 근육 샘플은 종종 복구하는 동안 수집 된 하나 또는 두 개의 샘플, 전후 운동을 가져옵니다. 이 디자인으로, 운동 후에 머리 (반대?...

Watch this Scientific Journal Video about Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified BergstrÃ¶m Technique at JoVE.com

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&amp;#246;m Technique

The purpose of this video is to present the modified Bergstr&#246;m skeletal muscle biopsy technique on human subjects.

수정 된 버그 스트롬 기술을 이용하여 인간의 골격 근육 생검 절차

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly ...

human-skeletal-muscle-biopsy-procedures-using-modified-bergstrm

Research

JoVE Journal

Medicine

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

39.5K 조회수.  Appalacian State University. The purpose of this video is to present the modified Bergström skeletal muscle biopsy technique on human subjects. 

비디오: Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

Myo-mechanical Analysis of Isolated Skeletal Muscle

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for the treatment of muscle disease 1,2,3, quantitative methods are needed that measure force generation and fatigability in treated muscle. We describe a detailed approach to evaluating myo-mechanical properties in freshly explanted hindlimb muscle from the mouse. We describe the atraumatic harvest of mouse extensor digitorum longus muscle, mounting the muscle in a muscle strip myograph (Model 820MS; Danish Myo Technology), and the measurement of maximal twitch and tetanic tension, contraction time, and half-relaxation time, using a square pulse stimulator (Model S48; Grass Technologies). Using these measurements, we demonstrate the calculation of specific twitch and tetanic tension normalized to muscle cross-sectional area, the twitch-to-tetanic tension ratio, the force-frequency relationship curve and the low frequency fatigue curve 4. This analysis provides a method for quantitative comparison between therapeutic interventions in mouse models of muscle disease 1,2,3,5, as well as comparison of the effects of genetic modification on muscle function 6,7,8,9.

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for muscle disease, methods are needed to quantitate force generation and fatigability in treated muscle. We detail an approach to evaluating myo-mechanical properties in explanted mouse hindlimb muscle. This analysis provides a robust approach to quantitating the effects of genetic modification on muscle function, as well as comparison of therapies in mouse models of muscle disease.

절연 골격근의 묘 - 기계 분석

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for the treatment of muscle disease 1,2,3, quantitative methods are needed that measure force ...

연구

의학

Skeletal Muscle Gender Dimorphism from Proteomics

Gross contraction in skeletal muscle is primarily determined by a relatively small number of contractile proteins, however this tissue is also remarkably adaptable to environmental factors1 such as hypertrophy by resistance exercise and atrophy by disuse. It thereby exhibits remodeling and adaptations to stressors (heat, ischemia, heavy metals, etc.)2,3. Damage can occur to muscle by a muscle exerting force while lengthening, the so-called eccentric contraction4. The contractile proteins can be damaged in such exertions and need to be repaired, degraded and/or resynthesized; these functions are not part of the contractile proteins, but of other much less abundant proteins in the cell. To determine what subset of proteins is involved in the amelioration of this type of damage, a global proteome must be established prior to exercise5 and then followed subsequent to the exercise to determine the differential protein expression and thereby highlight candidate proteins in the adaptations to damage and its repair. Furthermore, most studies of skeletal muscle have been conducted on the male of the species and hence may not be representative of female muscle. 
In this article we present a method for extracting proteins reproducibly from male and female muscles, and separating them by two-dimensional gel electrophoresis followed by high resolution digital imaging6. This provides a protocol for spots (and subsequently identified proteins) that show a statistically significant (p &lt; 0.05) two-fold increase or decrease, appear or disappear from the control state. These are then excised, digested with trypsin and separated by high-pressure liquid chromatography coupled to a mass spectrometer (LC/MS) for protein identification (LC/MS/MS)5. This methodology (Figure 1) can be used on many tissues with little to no modification (liver, brain, heart etc.).

A straight-forward set of methods to isolate and determine the identity of the most abundant proteins expressed in skeletal muscle. About 800 spots are discerned on a two-dimensional gel from 10 mg muscle; this allows for the determination of gender-specific protein expression. These methods will give equivalent results in most tissues.

Proteomics에서 골격근 성별 동종 이형

Gross contraction in skeletal muscle is primarily determined by a relatively small number of contractile proteins, however this tissue is also remarkably ...

Skin Punch Biopsy Explant Culture for Derivation of Primary Human Fibroblasts

Tissues and cell lines derived from an individual with disease are ideal sources to study disease-related cellular phenotypes. Patient-derived fibroblasts in this protocol have been successfully used in the derivation of induced pluripotent stem cells to model disease1. Early passages of these fibroblasts can also be used for cell-based functional assays to study specific disease pathways, mechanisms2 and subsequent drug screening approaches. The advantage of the presented protocol over enzymatic procedures are 1) the reproducibility of the technique from small amounts of tissue derived from older patients, e.g. patients affected with Parkinson's disease, 2) the technically simple approach over more challenging methodologies using enzymatic treatments, and 3) the time consideration: this protocol takes 15-20 min and can be performed immediately after biopsy arrival. Enzymatic treatments can take up to 4 hr and have the problems of overdigestion, reduction of cell viability and subsequent attachment of cells when not handled properly. This protocol describes the dissection and preparation of a 4-mm human skin biopsy for derivation of a fibroblast culture and has a very high success rate which is important when dealing with patient-derived tissue samples. In this culture, keratinocytes migrate out of the biopsy tissue within the first week after preparation. Fibroblasts appear 7-10 days after the first outgrowth of keratinocytes. DMEM high glucose media supplemented with 20% FBS favors the growth of fibroblasts over keratinocytes and fibroblasts will overgrow the keratinocytes. After 2 passages keratinocytes have been diluted out resulting in relatively homogenous fibroblast cultures which expresses the fibroblast marker SERPINH1 (HSP-47). Using this approach, 15-20 million fibroblasts can be derived in 4-8 weeks for cell banking. The skin dissection takes about 15-20 min, cells are then monitored once a day under the microscope, and media is changed every 2-3 days after attachment and outgrowth of cells.

The fibroblast explant culture protocol from human skin punch biopsies is a technically robust and simple way to derive skin cells within 4-8 weeks for banking of about 15-20 million cells at a low passage number.

인간의 기본 섬유 아세포의 유도를위한 피부 펀치 생검 절편 문화

Tissues and cell lines derived from an individual with disease are ideal sources to study disease-related cellular phenotypes. Patient-derived fibroblasts ...

Tibial Nerve Transection - A Standardized Model for Denervation-induced Skeletal Muscle Atrophy in Mice

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of denervation-induced skeletal muscle atrophy in rodents. Although originally developed and used extensively in the rat due to its larger size, the tibial nerve in mice is big enough that it can be easily manipulated with either crush or transection, leaving the peroneal and sural nerve branches of the sciatic nerve intact and thereby preserving their target muscles. Thus, this model offers the advantages of inducing less morbidity and impediment of ambulation than the sciatic nerve transection model and also allows investigators to study the physiologic, cellular and molecular biologic mechanisms regulating the process of muscle atrophy in genetically engineered mice. The tibial nerve supplies the gastrocnemius, soleus and plantaris muscles, so its transection permits the study of denervated skeletal muscle composed of fast twitch type II fibers and/or slow twitch type I fibers. Here we demonstrate the tibial nerve transection model in the C57Black6 mouse. We assess the atrophy of the gastrocnemius muscle, as a representative muscle, at 1, 2, and 4 weeks post-denervation by measuring muscle weights and fiber type specific cross-sectional area on paraffin-embedded histologic sections immunostained for fast twitch myosin.

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of skeletal muscle atrophy. The model surgical protocol is described and demonstrated in C57Black6 mice. &#160;

경골 신경 절개 - 마우스의 탈 신경에 의한 골격근의 위축에 대한 표준 모델

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of denervation-induced skeletal muscle atrophy in rodents. ...

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are available to perform mechanistic in vivo studies. While heart transplantation models using a suture technique were first successfully developed in rats, the translation into an equally widespread used murine equivalent was never achieved due the technical complexity of the microsurgical procedure. In contrast, non-suture cuff techniques, also developed initially in rats, were successfully adapted for use in mice1-3. This technique for revascularization involves two major steps I) everting the recipient vessel over a polyethylene cuff; II) pulling the donor vessel over the formerly everted recipient vessel and holding it in place with a circumferential tie. This ensures a continuity of the endothelial layer, short operating time and very high patency rates4.
Using this technique for vascular anastomosis we performed more than 1,000 cervical heart transplants with an overall success rate of 95%. For arterial inflow the common carotid artery and the proximal aortic arch were anastomosed resulting in a retrograde perfusion of the transplanted heart. For venous drainage the pulmonary artery of the graft was anastomosed with the external jugular vein of the recipient5.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

The murine cervical heart transplantation model is well suited for immunological as well as ischemia reperfusion injury studies. We modified the procedure using a non-suture cuff technique and performed more than 1,000 successful transplants with this approach.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

수정 커프 기술을 사용하여 쥐의 자궁 심장 이식 모델

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

High-throughput Flow Cytometry Cell-based Assay to Detect Antibodies to N-Methyl-D-aspartate Receptor or Dopamine-2 Receptor in Human Serum

Over the recent years, antibodies against surface and conformational proteins involved in neurotransmission have been detected in autoimmune CNS diseases in children and adults. These antibodies have been used to guide diagnosis and treatment. Cell-based assays have improved the detection of antibodies in patient serum. They are based on the surface expression of brain antigens on eukaryotic cells, which are then incubated with diluted patient sera followed by fluorochrome-conjugated secondary antibodies. After washing, secondary antibody binding is then analyzed by flow cytometry. Our group has developed a high-throughput flow cytometry live cell-based assay to reliably detect antibodies against specific neurotransmitter receptors. This flow cytometry method is straight forward, quantitative, efficient, and the use of a high-throughput sampler system allows for large patient cohorts to be easily assayed in a short space of time. Additionally, this cell-based assay can be easily adapted to detect antibodies to many different antigenic targets, both from the central nervous system and periphery. Discovering additional novel antibody biomarkers will enable prompt and accurate diagnosis and improve treatment of immune-mediated disorders.

Over the recent years, live cell-based assays have been used successfully to detect antibodies against surface and conformational antigens. Here, we describe a method using high-throughput flow cytometry enabling the analysis of large cohorts of patients. Detection of novel antibodies will improve diagnosis and treatment of immune-mediated disorders.

인간 혈청에있는 N-메틸-D-아스파 라진 산염 수용체 또는 도파민 2 수용체에 대한 항체를 검출하는 높은 처리량 유동 세포 계측법 세포 기반 분석

Over the recent years, antibodies against surface and conformational proteins involved in neurotransmission have been detected in autoimmune CNS diseases ...

Preparation and Respirometric Assessment of Mitochondria Isolated from Skeletal Muscle Tissue Obtained by Percutaneous Needle Biopsy

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining samples of human Vastus lateralis, isolating mitochondria from minimal amounts of skeletal muscle tissue, and plate based respirometric profiling using an extracellular flux (XF) analyzer. Comparison of respirometric profiles obtained using 1.0, 2.5 and 5.0 &#956;g of mitochondria indicate that 1.0 &#956;g is sufficient to measure respiration and that 5.0 &#956;g provides most consistent results based on comparison of standard errors. Western blot analysis of isolated mitochondria for mitochondrial marker COX IV and non-mitochondrial tissue marker GAPDH indicate that there is limited non-mitochondrial contamination using this protocol. The ability to study mitochondrial respirometry in as little as 20 mg of muscle tissue allows users to utilize individual biopsies for multiple study endpoints in clinical research projects.

Methods for biopsy of Vastus lateralis, preparation of purified mitochondria, and respirometric profiling are described. The use of small muscle volume makes this technique suitable for clinical research applications.

경피적 바늘 생검에 의해 획득 골격근 조직에서 고립 된 미토콘드리아의 준비 및 호흡계 평가

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining ...

Human Vastus Lateralis Skeletal Muscle Biopsy Using the Weil-Blakesley Conchotome

Percutaneous muscle biopsy using the Weil-Blakesley conchotome is well established in both clinical and research practice. It is a safe, effective and well tolerated technique. The Weil-Blakesley conchotome has a sharp biting tip with a 4 - 6 mm wide hollow. It is inserted through a 5 - 10 mm skin incision and can be maneuvered for controlled tissue penetration. The tip is opened and closed within the tissue and then rotated through 90 -180&#176; to cut the muscle. The amount of muscle obtained following repeated sampling can vary from 20 mg to 290 mg which can be processed for both histology and molecular studies. The wound needs to be kept dry and vigorous physical activity kept to a minimum for approximately 72 hr although normal levels of activity can restart immediately following the procedure. This procedure is safe and effective when close attention is paid to the selection of subjects, full asepsis and post procedure care. &#160;Both right and left vastus lateralis are suitable for biopsy dependent on participant preference.

Human Vastus Lateralis Skeletal Muscle Biopsy Using the Weil-Blakesley Conchotome

This video demonstrates the technique of percutaneous muscle biopsy of the human vastus lateralis using the Weil-Blakesley conchotome.

사람의<em&gt; 광근의 Lateralis</em&gt; 웨일 - Blakesley Conchotome를 사용하여 골격 근육 생검

Percutaneous muscle biopsy using the Weil-Blakesley conchotome is well established in both clinical and research practice. It is a safe, effective and ...

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo and noninvasively in humans via phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS). However, the approach has not been widely adopted in translational and clinical research, with variations in methodology and limited guidance from the literature. Increased optimization, standardization, and dissemination of methods for in vivo 31PMRS would facilitate the development of targeted therapies to improve OXPHOS capacity and could ultimately favorably impact cardiovascular health. 31PMRS produces a noninvasive, in vivo measure of OXPHOS capacity in human skeletal muscle, as opposed to alternative measures obtained from explanted and potentially altered mitochondria via muscle biopsy. It relies upon only modest additional instrumentation beyond what is already in place on magnetic resonance scanners available for clinical and translational research at most institutions. In this work, we outline a method to measure in vivo skeletal muscle OXPHOS. The technique is demonstrated using a 1.5 Tesla whole-body MR scanner equipped with the suitable hardware and software for 31PMRS, and we explain a simple and robust protocol for in-magnet resistive exercise to rapidly fatigue the quadriceps muscle. Reproducibility and feasibility are demonstrated in volunteers as well as subjects over a wide range of functional capacities.

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

This work demonstrates the feasibility of an in vivo phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS) technique to quantify mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity in human skeletal muscle.

인-31 자기 공명 분광학 : 측정을위한 도구<em&gt; 생체</em인간의 골격 근육에&gt; 미토콘드리아 산화 적 인산화 능력

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo ...

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the availability of the widest range of molecular probes and reagents to perform in vivo as well as in vitro studies. Based on our experience with various murine transplantation models, we developed a heterotopic pancreas transplantation model in mice with the intent to analyze mechanisms underlying severe ischemia reperfusion injury-associated early graft damage. In contrast to previously described techniques using suture techniques, herein we describe a new procedure using a non-suture cuff technique. 
In recent years, we have performed more than 300 pancreas transplantations in mice with an overall success rate of &gt;90%, a success rate never described before in mouse pancreas transplantation. The backbone of this non-suture cuff technique for graft revascularization consists of two major steps: (I) pulling the recipient vessel over a polyethylene/polyamide cuff and fixing it with a circumferential ligature, and (II) placing the donor vessel over the everted recipient vessel and fixing it with a second circumferential ligature. The resultant continuity of the endothelial layer results in less thrombogenic lesions with high patency rates and, finally, high success rates.
In this model, arterial anastomosis is achieved by pulling the abdominal aorta of the donor graft over the everted common carotid artery of the recipient animal. Venous drainage of the graft is achieved by pulling the portal vein of the graft over the everted external jugular vein of the recipient. This manuscript provides details and crucial steps of the organ recovery and organ implantation procedures, which will allow researchers with microsurgical skills to perform the transplantation successfully in their laboratories.

Among abdominal solid organ transplantation, pancreatic grafts are prone to develop severe ischemia reperfusion injury-associated graft damage, leading eventually to early graft loss. This protocol describes a model of murine pancreas transplantation using a non-suture cuff technique, ideally suited for analyzing these early, deleterious damages.