This work was supported by Interdisciplinary Centre for Clinical Research IZKF Aachen (junior research group to E.A.L.) within the faculty of Medicine at RWTH Aachen University. We are grateful Dr. Rusu and Ashley Christina Vourakis for critical review of the manuscript and Mrs. Roya Soltan for the professional help with immunohistochemistry staining.

참고 : 본 논문에서는 실험을 저지 독일어와 유럽 동물 관리 지침에 따라 수행된다. 동물은 교수 R. Tolba 박사 A. Teubner (동물 복지 담당관)의 감독하에, 실험 동물 과학 연구소, Universiy 병원 아헨, 독일의 동물 시설에서 사육된다. 1. 동물 관리 <ol><li> 음식과 전문 수의학 제어 및 치료에 대한 적절한 액세스를 보장, 전문 치료실에서 쥐를 유지합니다. 동물이 이동하거나 외부에서 구입하는 경우, 절차를 진행하기 전에 한 주간의 숙박 시설을 확보하시기 바랍니다. </li></ol> 2. 삽관 <ol><li> , 8-10 주 된 남성 C57BL / 6 야생형 마우스를 마취 100 ㎎ / ㎏ 케타민 10 ㎎ / ㎏ 자일 라진의 복강 내 주사를 사용하여 25~27g. 발가락 핀치 반사에 의한 마취의 수준을 모니터링합니다. 절차를 수행하는 동안 건조를 방지하기 위해 눈에 수의사 연고를 놓습니다. </li><l난&gt; 교육 기관의 동물 관리 지침에 따라, 수술 절차를 시작하기 전에 buprenophine 0.1 ㎎ / ㎏ 체중 피하와 통증 치료를 관리 할 수​​ 있습니다. </li><li> 멸균 물질 및기구를 사용하여 수술하는 동안 감염을 피하기 위해 무균 상태의 유지를 확신시킨다. </li><li> 가열 수술 테이블에 앙와위에서 마취 마우스를 놓습니다. 작은 면도칼을 사용하여 복부 목 영역과 흉부의 왼쪽 절반 모두에서 머리를 제거하고 절개하기 전에 70 % 알코올로 소독. <ol><li> 목의 중앙에 수술 가위를 사용하여 0.5 cm의 작은 중간 절개를 수행합니다. 피부 아래에, 살균 곡선 집게로 2 지방 기관을 통해 이동하여 피복 근육의 투명도를 통해 실체 현미경 아래에있는 기관을 시각화. </li></ol></li><li> 실체 현미경 (그림 1A)를 사용하여 구두로보기 아래 기관에 삽관 정맥을 소개합니다. 죽 금속 정맥을 구별투명한 조직을 우. 그리고 어느 순간 (그림 1B)의 운전 중, 위치 및 위치를 확인합니다. </li><li> 작은 동물 인공 호흡기에 정맥을 연결하고 환기 설정있어서를 조정 가이드 라인 (100 ~ 150 μL와 분당 100 ~ 150 사이의 호흡 속도 사이의 호흡량)를 제조하고 있습니다. </li></ol> 3. 심근 경색 유도 <ol><li> xyphoid 왼쪽 axila 라인 사이의 중간에 피부 절개 미만의 0.5 cm를 수행한다. 하부 리브에서 근육 층을 분리 집게를 사용한다. </li><li> 흉강 (17)를 개방 할 때까지 작은 가위를 사용하여 리브 사이에 작은 절개를 수행한다. 만성 경색의 경우, 4 번째 늑간 공간 (그림 1D)에서, 5 번째 늑간 공간 (그림 1C) 및 / 또는 허혈 / 재관류 모델에서 절개를 수행합니다 쉽게 접근 번호의 2 번째와 아래에서 3 일 </suP&gt; 늑간 공간, 각각). </li><li> 흉강을 엽니과 마음을 시각화하기 위해 절개로 견인기를 놓습니다. </li><li> 조심스럽게 과도한 섬유화 과정을 방지하기 위해 심낭을 제거합니다. </li><li> 깊은 위치 빛 붉은 혈관으로 좌측 하행 관상 동맥 (LAD)를 시각화. LAD이 가시화 할 수없는 경우, 재현성을 높이기 위해 일부 참조 점을 고려한다. <ol><li> 만성적 경색증 모델의 경우,도 1c에 도시 된 바와 같이 참조로 정맥을 갖는 (귓바퀴와 정점 사이) 심장의 복부 측면의 중간에 배치 합자. 전층 전후방 경색을 얻었다 0/7 실크 봉합사를 이용하여 동맥의 두 가지를 결합한다. 그레이 컬러는 봉합사의 위치를 표시하고 (도 1C) 필요하다면 반복 될 수있다. </li><li> 허혈 / 재관류 모델의 경우, LAD의 본체 (그림 1D)를 통해, 귓바퀴에서 합자를 놓습니다. LIG 손해ature는 용기의 무결성을 보호하기 위해 실리콘 튜브 위에 위치한다. 회색 색상은 경색 영역을 표시하고 전체 심장 (그림 1D)에 나타납니다. 허혈 기간 동안 리브에 시간적 봉합사를 놓고 조직의 건조를 방지하기 위해 압축을 이용하여 적셔. 허혈 후 실리콘 튜브를 분리하고 재관류를 시각화 작은 가위로 절단 봉합사. </li></ol></li><li> 절차의 시작 부분에 사용되는 마취제와 진통제가 (2.1 및 2.2 단계) 옆에, 동물의 적절한 편안함을, 또는 기관의 동물 관리 지침을 따르지 수술 중 0.5 % 이소 플루 란을 사용합니다. </li></ol> 4. 봉합 및 복구 <ol><li> 따뜻한 등장 소금 용액을 작성하여 가슴에서 잔류 공기를 제거합니다. </li><li> 3 봉합 0/6 (그림 2A와 2B 참조)와 함께 가슴을 닫습니다. 으로 보장하기 위해 90 °의 각도로 배치 내측 봉합도 2에 도시 된 바와 같이, 리브 폐쇄 ealed (도 2A, B). </li><li> 2 봉합 (그림 2C)와 3-4 봉합 0/6 (그림 2D)로 피부와 근육 층을 닫습니다. 또한 심 초음파 측정을위한 적절한 창을 얻기 위해 별도로 봉합을 수행합니다. </li><li> 인공 호흡기에서 삽관 정맥을 분리하고 자발적인 호흡을 할 수 있습니다. 나중에 식별를 들어, 로컬 시스템 (교육 기관에서 동물 복지 담당자에게 문의)를 사용하여 마우스를 표시합니다. </li><li> 이 깨어 때까지 빨간색 램프 아래 왼쪽에 마우스를 놓으십시오. 충분한 의식을 회복 할 때까지 무인 동물을 두지 마십시오. 완전히 회복 될 때까지 다른 동물의 회사에서 일하기 위해 수술을 한 동물을 허용하지 않습니다. </li><li> 교육 기관의 동물 관리 지침에 따라, 다음 3 일 동안 buprenophine 0.1 mg / kg 체중 피하 통증 치료 관리. </li&gt; </ol> 심근 경색의 5 분석 <ol><li> 구혈률, 분수 단축, 심 박출량과 심장 크기 : 정기적으로 심 초음파 (그림 3A)에 의해 심장 기능을 모니터링 할 수 있습니다. </li><li> 100 밀리그램 / kg 케타민, 10 밀리그램 / kg 자일 라진의 복강 내 주사를 사용하여 동물을 마취. 반사의 부족으로 수술 전에 적절한 마취를 확인합니다. </li><li> 흉강을 열고 광범위하게 멸균 PBS 용액 세척 나머지 혈액에 배치, 마음을 절제. </li><li> 필요한 경우, 흉강에서, 또는 마음의 제거 후 infracted 지역의 부상을 피함으로써 심장에서 직접 혈액을 수집합니다. </li><li> 세척 후, 포화 KCl을 솔루션에 diastola의 마음을 중지 (steril는 PBS에 3M KCl을 여과). 조직 학적 분석을 위해 10 % 포르말린에 마음을 수정하고 단계 5.7를 진행합니다. </li><li> 필요한 경우, 차의 생존 능력을 측정에반스 블루 / 트리 페닐 테트라 졸륨 클로라이드 (TTC) 염색 DIAC 세포. 세척하지 않고, 초기 장소에서 합자를 재 구축 한 후, 대동맥 캐 뉼러를 사용하여 200 μL 1 % 에반스 블루 용액으로 심장을 관류 및 -20 ° C에서 작은 비닐 봉투에 마음을 동결. <ol><li> 2 시간 후, 날카로운 메스를 사용하여 5 횡으로 슬라이드를 수행함으로써 제조 된 바와 같이, 37 ° C에서 TTC 용액 중에서 10-15 분 동안이를 부화. 10 % 포르말린에 10 분 동안 슬라이드를 수정하고 추가 분석을 위해 현미경 슬라이드 사이에 넣어 두 었어요. </li><li> 횡단 단면을 수행하기 위해, 끝의 마음을 위치시킴으로써, 파라핀의 심장 조직을 포함시킵니다. 5 μm의 직렬 섹션을 수행합니다. 처음 20 절을 수집하고 다음 300 μm의 폐기합니다. 승모판 레벨에 도달 할 때까지 부분 프로토콜을 계속 (도 3A, B). 직렬 부분은 떨어져 전체의 마음을 따라 400 μm의를 수집하고 F를 염색 할 수있다또는 정량적 분석. </li></ol></li><li> Gomori의 한 단계 6-8를 염색하여 경색 크기를 측정한다. </li><li> 보통의 면역 조직 염색을 사용하여 시리얼 부분에서 혈관 신생, 콜라겐 내용이나 염증 세포 모집을 분석합니다. </li></ol>

<ol>
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A., Koenen, R. R., Weber, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anti-inflammatory+therapeutic+approaches+to+reduce+acute+atherosclerotic+complications.">Anti-inflammatory therapeutic approaches to reduce acute atherosclerotic complications.</a> Curr Pharm Biotechnol. 13 (1), 37-45 (2012).</li><li>Liehn, E. A., Zernecke, A., Postea, O., Weber, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemokines:+inflammatory+mediators+of+atherosclerosis.">Chemokines: inflammatory mediators of atherosclerosis.</a> Arch Physiol Biochem. 112 (4-5), 229-238 (2006).</li><li>Kolk, M. V. 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The authors have nothing to disclose.

절차를 수행하는 동안, 몇 가지 중요한 점은 주목해야 할이 있습니다 : 삽관, 개방 흉강과 LAD의 합자. 첫 번째 중요한 단계는 experiements 전에 동물의 삽관입니다. 많은 그룹은 기관에 직접 캐 뉼러를 삽입 마우스 및 빛의 소스에 고정하기위한 수직 지지대를 사용하고있다. 이 방법은 불확실성 기관에 정맥의 정확한 삽입 관한 정보를 가지고 있으며, 초보자에 의해 실패에 가장 경향이있다. 작은 절개 전진 뉼러의 위치는 그러므로 기본 속도 감소, 전체 기동시에 제어 될 수있다. 또한, 기관 절개 따라서 합병증을 감소시키고 작동 시간을 단축 능가한다. 다음으로 중요한 단계는 흉강의 개구이다. 중간 흉골 절개술은 동물의 회복을 지연 위험이 높은 기동을 나타냅니다. 2-3 리브 (15)의 절단을 의미 측면 왼쪽 절개 </SUP&gt;, 부족한 복구 및 사망률 증가로 이어집니다. 우리는 최소한의 부담을 제공 갈비뼈 사이의 작은 모델, 이산 절개에 사용됩니다. 동물은 수술 후 매우 신속하게 복구와 현재의 결함이나 방해를 치유하지. 하부 늑골 간 공간 기준점으로서 취해진 다. 이 고려, 만성 허혈 / 재관류 모델의 합자 장소에 적절하고 차별화 된 접근이 심각한 문제를 발생시키지 않습니다. 합자 자체가 가장 중요한 단계를 나타냅니다. 왼쪽 내림차순으로 관상 동맥이 가시화 될 어렵다, 자주보기없이 결합 될 필요가있다. 따라서 일부 해부학 적 기준점 올바른 결찰을 수행하기 위해 의사를 도와 지적된다. 만성적 경색증 모델의 경우, 결찰은 주요 전방 정맥 (도 2b)의 끝보다도 귓바퀴와 정점 사이, 심장의 복부 측면의 중간에 배치된다. 효율 contro 수피해 지역의 회색 색상의 모양을 시각화하여 채워. 경색 영역을 전방 나타나고 후벽을 포함하지 않는 경우, 새로운 봉합사는 봉합사 제의 왼쪽에 배치 될 수있다. LAD의 주요 루트는이 부분을 검출에 심각한 문제를 표시하지 않는 때문에 귓바퀴 (18)에서 항상 볼 수 있습니다합니다. 그러나, 귓바퀴 출혈 주요 위험을 제시하고, 신중하게 처리 될 필요가있다. 절차는 해당 기기의 존재에 의해 제한된다. 작은 동물 인공 호흡기와 적절한 마취 시스템은 비용이 많이 들고 공간의 가스 및 환기 시스템에 연결이 필요합니다. 또한, 동물의 가까운 감독은 프로 시저가 가능한 임상을 감지 한 후 첫 주에 필요하다. 실험 기간 동안 심장 기능을 검사하기 위해, 고해상도 초음파 복잡한 LANGENDORF 관류 시스템, 소형 또는 뇌 실내 카테터 측정이 요구되는, INV높은 비용과 추가로 전문 지식을 olving. 심근 경색 감안 체외에서 이벤트의 복잡도를 재현 가능한 다른 방법이 없다. 관심 지점에 따라, 랑겐 돌프 시스템에서 고립 된 심장의 생체 관류는 다른 자극이나 약물에 반응하여 수축, 심장 기능과 심근 생존 능력에 대한 정보를 제공합니다. 그러나, 혈액 성분과 면역 체계의 모든 간섭을 배제하며, 심근 경색 후 재 형성 및 치유의 장기 연구에 표시되지 않는다. 심근 경색 절차를 수행 한 후, 모든 다른 기능적 분석은 심 실내 압력 측정치, 초음파 (작은 동물 초음파 시스템) 또는 격리 랑겐 돌프 심장 재관류 같이 수행 될 수있다. 또한, 모든 분자 생물학적 분석, GE를 세포, 단백질, mRNA를, 마이크로 RNA를 식별하기 위해 수행 될 수있다NES 또는 심근 경색에 대한 새로운 치료 전략을 개발하는 치료 표적으로 사용될 수있는 다른 바이오 마커.

심근 경색은 선진국에서 사망의 주요 원인 중 하나입니다. 진단 및 치료 방법의 부정 할 수없는 진전에도 불구하고, 심혈관 질환은 여전히​​ 사망의 주요 원인이다. 향상된 수명과 삶 리스크를 감안할 때, 심혈관 질환의 발생의 지속적인 증가는 미래에 예상된다. 따라서, 심혈관 질환의 치료를위한 신규 한 접근법을 확립하고 검증하는 강한 요구가있다. 인간 연구의 내용이 제한 고통, 이러한 연구는 일반적으로 설명하고, 이들 주요 건강 문제에 대한 해결책을 제공 할 수 없게되고, 분자 수준의 메커니즘을 이해하기에 불충분하다. 또한, 기초 연구는 실험실에서 심혈관 질환의 메카니즘을 재현하기 위해 복잡하고 어려움으로 인해 제한되어왔다. 따라서, 심장의 병태 생리에 대한 우리의 지식을 증가혈관 질환, 그것은 동물 모델 1, 2를 확인하는 것이 필수적이다. 그러나, 동물 실험의 많은 원인 필요한 다른 시점에서 심근 경색, 분석 후 치유에 관여하는 분자의 모든 이벤트 캐스케이드의 동정을 행 하였다. 심근 경색은 종종 실험 동물 모델을 이용하여 수행된다. 작은 동물 3-11 심근 경색을 유도하는 큰 동물 모델보다 세포 및 분자 사건을 조사하기 위해 사용되는 가장 적합하고 효율적인 모델이다. 또한, 다른 종은 마우스 (12) 형질 전환 또는 녹아웃 균주의 가용성을 제공합니다. 이 마우스 모델은 13, 14 (스텐트 재 협착에, 죽상 동맥 경화증 등) 심장 혈관 병변을 포함한 다른 질환에 매우 유용하다. 또한, 낮은 임신 기간과 자손들의 수가 많으면 심근 INFA의 분자 메커니즘을 연구하는 가장 매력적인 시스템으로 마우스 모델을 한정rction (12). 그럼에도 불구하고, 쥐의 심장의 크기가 미세 동안 조작의 높은 정밀도를 기대하고있다. 이러한 자격을 갖춘 숙련 된 수술 인력을 교육하는 것은 시간이 많이 소요되는 작업 집약적 인 과정이다. 따라서, 우리는 여기에 같은 마우스의 복잡한 심근 경색 모델을 수행하는 학생이나 기술자 심지어 평균 자격과 공동 작업자를 안내하는 팁과 트릭을 포함하여 상세한 미세 절차를 제시한다. 우선, 삽관은 절개술을 사용하지 않고 짧은 뉼러 의해 수행된다. 흉부 절개 리브 및 / 또는 주변 조직의 손상을 방지, 늑간 지역에 위치해 있습니다. 이 하위 단계는 빠른 회복과 치유 (15)을 보장하기 위해 매우 관련이있다. 여전히 상당한 경색 크기를 유지하면서, 합자 높은 생존율, 만성 허혈 및 허혈 / 재관류 모델을 미분한다. 우리의 경험은 그쪽을 보여줍니다실크 봉합사를 이용하여 t는 극저온 부상 16에 비해 더 높은 재현성을 보장한다. 결론적으로, 여기에 기재된 방법은 작은 동물 모두 만성 허혈 및 허혈 / 재관류 모델에서 적용 가능하다. 이 절차에 제시된 팁과 트릭은 작은 동물 모델에 적용하기에도 부족하거나 평균 자격을 가진 직원을 가능하게하기위한 것입니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="573">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:71px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Stereomicroscope</td>
			<td style="width:71px;">Olympus</td>
			<td style="width:119px;">SZ/X9</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Mouse ventilator</td>
			<td style="width:71px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:119px;">730043</td>
			<td style="width:167px;">Model Minient 845</td>
		</tr>
		<tr height="126">
			<td height="126" style="height:126px;width:216px;">Dual Anesthesia System (Tabletop Version)</td>
			<td style="width:71px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Selfcontained isofluranebased anesthesia unit for use on lab tables, with a compact 8&#34; x 11&#34; footprint.&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Intubation cannula</td>
			<td style="width:71px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:119px;">732737</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Forceps</td>
			<td style="width:71px;">FST, Germany</td>
			<td style="width:119px;">9119700</td>
			<td style="width:167px;">standard tip curved 0.17 mm x 0.1 mm</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Scissors</td>
			<td style="width:71px;">FST, Germany</td>
			<td style="width:119px;">9146011</td>
			<td style="width:167px;">straight</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Vannas scissor</td>
			<td style="width:71px;">Aesculap, Germany</td>
			<td style="width:119px;">OC 498 R</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Retractors</td>
			<td style="width:71px;">FST, Germany</td>
			<td>1820010</td>
			<td>2.5mm wide</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Retractors</td>
			<td style="width:71px;">FST, Germany</td>
			<td>1820011</td>
			<td>5mm wide</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Wire handles</td>
			<td style="width:71px;">FST, Germany</td>
			<td>1820005</td>
			<td>&#160;10cm</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Wire handles</td>
			<td style="width:71px;">FST, Germany</td>
			<td>1820006</td>
			<td>&#160;14cm</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Ketamine 10%</td>
			<td style="width:71px;">CEVA, Germany</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Xylazine 2%</td>
			<td style="width:71px;">Medistar, Germany</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Bepanthene eye and nose cream</td>
			<td style="width:71px;">Bayer, Germany</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="105" rowspan="3" style="height:105px;width:216px;">Silicon tube</td>
			<td rowspan="3" style="width:71px;">IFK Isofluor, Germany</td>
			<td rowspan="3" style="width:119px;">custommade&#160; product</td>
			<td style="width:167px;">diameter 500&#181;m</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:167px;">section thickness 100 &#181;m</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:167px;">polytetrafluorethylene catheter</td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:216px;">PROLENE Suture 6/0&#160;</td>
			<td style="width:71px;">ETHICON</td>
			<td style="width:119px;">8707H</td>
			<td style="width:167px;">polypropylene monofilament suture, unresorbable, needle CC1, 13mm, 3/8 Circle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">7/0 Silk</td>
			<td style="width:71px;">Seraflex</td>
			<td style="width:119px;">IC 1005171Z</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Ultrasound&#160;</td>
			<td style="width:71px;">Vevo, Canada</td>
			<td style="width:119px;">770 Vevo</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

minimal invasive surgical procedure of inducing myocardial infarction in mice

심근 경색은 여전히​​ 지난 수십 년 동안 스텐트 개발 분야에서 상당한 진전에도 불구하고, 서방 국가에서 사망의 주요 원인이 남아있다. 기본 메커니즘의 해명과 새로운 치료 전략의 개발을위한 유효한 동물 모델의 가용성은 필수입니다. 우리가 심근 경색에 대처하기 위해 생체 내 조건 하에서 pathomechanisms 심혈관 질병에 대한 새로운 통찰력을 필요로하기 때문에, 동물 모델의 타당성은 중요한 측면이다. 그러나 동물의 보호는 이러한 맥락에서 매우 적합하다. 따라서, 우리는 높은 재현성과 동물의 생존율을 보장 마우스에서 심근 경색의 최소 침습과 간단한 모델을 확립한다. 따라서,이 모델은 동물 실험의 3R 원칙의 요구 사항 (교체, 정제 및 축소)을 충족하고 cardiov에 대한 치료 전략의 추가 개발에 필요한 과학적 정보를 보장ascular 질환.

심근 경색 절차는 25-30 분 내에 발생하고, 10 %의 사망률을 나타낸다. 수술 후, 마우스는 다음 15 분 이내에 마취에서 회복. 물리적 손상이 운영하는 마우스에 관찰되지 않았다. 복구 프로세스가 염증 단계에서 방해하는 경우에는 이후 만성 심근 경색 후 심장 파열의 위험이 높은 일주이있다. 심장 펌핑 중에 그 크기를 크게 변화시킬 수 있기 때문에 모든 수집 하트 diastola, 예를 들어, 동일한 위치에서 정지 할 수있는 것이 중요하다. 이 포화의 KCl 수용액으로 심장을 관류에 의해 달성 될 수있다. 세포 외 K + 농도 블록들 이온 펌프 증가 심장 활동의 이완기 구속의 결과로, 심장 세포의 막 쉬고 가능성을 감소시킨다. 경색 영역 초음파 분석 (도 3a, 하부 패널)에서 볼 수있다. 비교하여정상 심근은 허혈 영역은 얇고 hypokinetic (그림 3A, 상단 패널)가 나타납니다. 사용하는 모델에 따라 경색 크기는 다를 수 있습니다. 허혈 / 재관류는 얇고 중간 벽을 유도하고 모든 심장 (도 3c)에 걸쳐있는 동안 만성적 경색증 모델은, 정점 (도 3b)의 원형 전층 경색을 유도한다. 경색 크기를 결정하는 많은 방법이있다. 목적은 심장 생존에 직접적인 영향을 분석하는 경우, (18)를 염색 에반스 블루 / TTC는 심근에 변화를 볼 수 있도록, 2 시간 이상 재관류 후에 수행되도록 표시된다. 섹션은 염색 후 즉시 (그림 3B, 가운데 패널)을 분석 할 수 있습니다 또는 2-3일 (그림 3C, 가운데 패널)에 대한 포르말린에 유리 슬라이드 사이에 유지 될 수있다. 파란색 영역은 허혈에 의해 영향을받지 않는 건강한 심근를 나타냅니다. 빨간색 영역은 일 안에 가능한 심근을 나타냅니다전자 허혈성 지역 (위험 심근), 그리고 흰색 영역은 죽은 조직을 나타냅니다. 일반적으로, 경색 크기는 위험 지역으로부터의 퍼센트로서 표현된다. 프로세스 리모델링 후 얻어진 성숙한 흉터 용이 Gomori의 한 단계를 사용하여 염색 immunohistolgy에 의해 측정 될 수있다. 블루 염색 경색과 빨간색 염색 건강한 심실 영역 (그림 3B와 C, 오른쪽 패널) 승모판 막까지 각 레벨에서 첫 번째 섹션에서 결정된다. 인해 다른 레벨 LAD의 결합에 변화를 피하기 위해, 모든 부분에서 경색 고려 총 좌심실 체적 백분율로서 표현된다. 만성적 ​​경색증 모델에서 10-15 %로 허혈 / 재관류 모델 후 15-20%의 경색 부피가 달성 될 수있다. 또한, 만성적 경색증 모델 지기도 팽창을 유도 할 것이다, 허혈 / 재관류 모델에서 관찰되지 않는다 (도 3B 및 C 적합한 올바른T 패널). 등으로 사용할 수 종래 염색 절차 : CD31 혈관을 계시하는데 사용 착색 (빨강,도 4a) 또는 평활근 액틴 염색 근육 섬유 모세포 (녹색,도 4b)을 결정한다. 이중 형광 염색도 심장 근세포의 부재가 더 자동 면역 (도 4C)를 제공하지 않기 때문에, 경색 영역 내에 상이한 타겟 분자를 식별하기 위해 적용 할 수있다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/52197/52197fig1.jpg" /> 그림 1 : 내측 절개 삽관의 캐 뉼러 (A)의 삽입. 조직 (B)의 투명성을 통해 금속 캐 뉼러의 stereomicroscopic 시각화. 기관 반지 (파란색 화살표)과 정맥 (검은 색 화살표)가 지적된다. 만성 경색 개월의 늑간 절개델과 LAD의 합자 (C). 합자는 참조로 (파란색 설계도, 낮은 패널) 정맥의 끝을 복용 (귓바퀴와 정점, 낮은 패널에서 검은 사이의) 마음의 중간에 위치하고 있습니다. 동맥의 두 가지 (하단 패널에 빨간색) 결합되어야한다. 그레이 컬러 경색 영역을 나타내며 이는 심장 (오른쪽 하부 패널)의 하부 절반 부에 나타난다. 허혈 / 재관류 모델의 합자은 실리콘 튜브 (오른쪽) (D)을 통해 LAD의 본체 (하단 패널에 빨간색)을 결합, 귓바퀴에서 이루어집니다. 회색 색상은 전체 심장 (오른쪽 아래 패널)에 존재하는 infracted 영역을 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52197/52197fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/52197/52197fig2.jpg" /> 그림 2 : </str옹&gt; 리브 봉합 실 흉추 중간 봉합 모두 만성 (A)에 90 °의 각도에 위치하는 경우 절개 및 허혈 / 재관류 모델 (B, 왼쪽 패널) 리브 봉합사. 생체 내 이미징 (C, 좌측 패널 ), 근육 봉합 (C, 가운데 패널) 및 피부 봉합 (C, 오른쪽 패널). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52197/52197fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/52197/52197fig3.jpg" /> 그림 3 : 심 초음파 이미지. 정상 (A, 상단 패널) 및 경색 영역 (낮은 패널)의 이미지는, 긴 축에서 취득 (종 방향, 왼쪽 패널) 또는 단축 (가로, 오른쪽 패널)에 .. 경색 만성 합자에 의해 유도(B) 및 재관류 (C) 뒤에 한 열연 허혈. 에반스 블루 / TTC 염색은 관류 (파란색)의 식별 / 비 관류 영역뿐만 아니라 실행 가능한 (적색) / 죽은 (흰색) 심근 (B, C, 중간 패널)를 할 수 있습니다. Gomori의 한 단계 염색 경색 지역 (파란색)의 식별을 허용하고, 일반 지역 (빨간색) (B, C, 오른쪽 패널)에서 그들을 구별합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52197/52197fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/52197/52197fig4.jpg" /> 그림 4 : 다른 염색과이 같은 설명 신 혈관에 CD31 (빨강, 간단한 화살표) 또는 근육 섬유 모세포에 대한 평활근 액틴 (B, G로, infracted 영역에서 수행 할 수 있습니다재 N, 간단한 화살표)뿐만 아니라 이중 염색 (C, CD31 - 레드 / 평활근 액틴 녹색),) 핵 (파란색에 대한 DAPI으로 대조. 근섬유 아세포는 항상 내피 층 (C, 화살표)을 동반 작은 또는 큰 혈관 평활근 세포에서 쉽게 구별 할 수있다. 더블 화살표는 적혈구의 형광도를 가리 킵니다. 규모는 50 μm의 바.

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Minimal Invasive Surgical Procedure of Inducing Myocardial Infarction in Mice

A highly reproducible model for myocardial infarction in mice with minimal invasive manipulations is described. The model can be easily performed, resulting in a high reproducibility and survival rate. Thus, the described model will reduce the number of required animals as requested by the 3R principle (Replacement, Refinement and Reduction).

쥐 심근 경색을 유도 최소 침습 수술

Myocardial infarction still remains the main cause of death in western countries, despite considerable progress in the stent development area in the last ...

minimal-invasive-surgical-procedure-inducing-myocardial-infarction

Research

JoVE Journal

Medicine

27.1K 조회수.  RWTH Aachen University, Germany. A highly reproducible model for myocardial infarction in mice with minimal invasive manipulations is described. The model can be easily performed, resulting in a high reproducibility and survival rate. Thus, the described model will reduce the number of required animals as requested by the 3R principle (Replacement, Refinement and Reduction).

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Acute Myocardial Infarction in Rats

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular diseases. Animal models that mimic human cardiac disease, such as myocardial infarction (MI) and ischemia-reperfusion (IR) that induces heart failure as well as pressure-overload (transverse aortic constriction) that induces cardiac hypertrophy and heart failure (Goldman and Tarnavski), are useful models to study cardiovascular disease. In particular, myocardial ischemia (MI) is a leading cause for cardiovascular morbidity and mortality despite controlling certain risk factors such as arteriosclerosis and treatments via surgical intervention (Thygesen). Furthermore, an acute loss of the myocardium following myocardial ischemia (MI) results in increased loading conditions that induces ventricular remodeling of the infarcted border zone and the remote non-infarcted myocardium. Myocyte apoptosis, necrosis and the resultant increased hemodynamic load activate multiple biochemical intracellular signaling that initiates LV dilatation, hypertrophy, ventricular shape distortion, and collagen scar formation. This pathological remodeling and failure to normalize the increased wall stresses results in progressive dilatation, recruitment of the border zone myocardium into the scar, and eventually deterioration in myocardial contractile function (i.e. heart failure). The progression of LV dysfunction and heart failure in rats is similar to that observed in patients who sustain a large myocardial infarction, survive and subsequently develops heart failure (Goldman). The acute myocardial infarction (AMI) model in rats has been used to mimic human cardiovascular disease; specifically used to study cardiac signaling mechanisms associated with heart failure as well as to assess the contribution of therapeutic strategies for the treatment of heart failure. The method described in this report is the rat model of acute myocardial infarction (AMI). This model is also referred to as an acute ischemic cardiomyopathy or ischemia followed by reperfusion (IR); which is induced by an acute 30-minute period of ischemia by ligation of the left anterior descending artery (LAD) followed by reperfusion of the tissue by releasing the LAD ligation (Vasilyev and McConnell). This protocol will focus on assessment of the infarct size and the area-at-risk (AAR) by Evan's blue dye and triphenyl tetrazolium chloride (TTC) following 4-hours of reperfusion; additional comments toward the evaluation of cardiac function and remodeling by modifying the duration of reperfusion, is also presented. Overall, this AMI rat animal model is useful for studying the consequence of a myocardial infarction on cardiac pathophysiological and physiological function.

The rat model of acute myocardial infarction (AMI) is useful to study the consequence of a MI on cardiac pathophysiological and physiological function.

고양이에서 급성 심근 경색

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

연구

의학

Induction of Myocardial Infarction in Adult Zebrafish Using Cryoinjury

The mammalian heart is incapable of significant regeneration following an acute injury such as myocardial infarction1. By contrast, urodele amphibians and teleost fish retain a remarkable capacity for cardiac regeneration with little or no scarring throughout life2,3. It is not known why only some non-mammalian vertebrates can recreate a complete organ from remnant tissues4,5. To understand the molecular and cellular differences between regenerative responses in different species, we need to use similar approaches for inducing acute injuries.
In mammals, the most frequently used model to study cardiac repair has been acute ischemia after a ligation of the coronary artery or tissue destruction after cryoinjury6,7. The cardiac regeneration in newts and zebrafish has been predominantly studied after a partial resection of the ventricular apex2,3. Recently, several groups have established the cryoinjury technique in adult zebrafish8-10. This method has a great potential because it allows a comparative discussion of the results obtained from the mammalian and non-mammalian species.
Here, we present a method to induce a reproducible disc-shaped infarct of the zebrafish ventricle by cryoinjury. This injury model is based on rapid freezing-thawing tissue, which results in massive cell death of about 20% of cardiomyocytes of the ventricular wall. First, a small incision was made through the chest with iridectomy scissors to access the heart. The ventricular wall was directly frozen by applying for 23-25 seconds a stainless steel cryoprobe precooled in liquid nitrogen. To stop the freezing of the heart, fish water at room temperature was dropped on the tip of the cryoprobe. The procedure is well tolerated by animals, with a survival rate of 95%.
To characterize the regenerative process, the hearts were collected and fixed at different days after cryoinjury. Subsequently, the specimen were embedded for cryosectioning. The slides with sections were processed for histological analysis, in situ hybridization and immunofluorescence. This undertaking enhances our understanding of the factors that are required for the regenerative plasticity in the zebrafish, and provide new insights into the machinery of cardiac regeneration. A conceptual and molecular understanding of heart regeneration in zebrafish will impact both developmental biology and regenerative medicine.

Zebrafish represents a valuable model to study the mechanisms of heart regeneration in vertebrates. Here, we present a protocol for induction of a heart infarct in adult zebrafish using cryoinjury. This method results in massive cell death within 20% of the ventricular wall, similar to that observed in mammalian infarcts.

성인 Zebrafish에서 심근 경색의 유도는 Cryoinjury 사용

The mammalian heart is incapable of significant regeneration following an acute injury such as myocardial infarction1. By contrast, urodele amphibians and ...

MRI and PET in Mouse Models of Myocardial Infarction

Myocardial infarction is one of the leading causes of death in the Western world. The similarity of the mouse heart to the human heart has made it an ideal model for testing novel therapeutic strategies.
In vivo magnetic resonance imaging (MRI) gives excellent views of the heart noninvasively with clear anatomical detail, which can be used for accurate functional assessment. Contrast agents can provide basic measures of tissue viability but these are nonspecific. Positron emission tomography (PET) is a complementary technique that is highly specific for molecular imaging, but lacks the anatomical detail of MRI. Used together, these techniques offer a sensitive, specific and quantitative tool for the assessment of the heart in disease and recovery following treatment.
In this paper we explain how these methods are carried out in mouse models of acute myocardial infarction. The procedures described here were designed for the assessment of putative protective drug treatments. We used MRI to measure systolic function and infarct size with late gadolinium enhancement, and PET with fluorodeoxyglucose (FDG) to assess metabolic function in the infarcted region. The paper focuses on practical aspects such as slice planning, accurate gating, drug delivery, segmentation of images, and multimodal coregistration. The methods presented here achieve good repeatability and accuracy maintaining a high throughput.

We describe how to perform MRI and PET imaging of the mouse heart. The protocol is tailored to assess treatment efficacy in models of myocardial infarction and heart failure.

Myocardial infarction is one of the leading causes of death in the Western world. The similarity of the mouse heart to the human heart has made it an ...

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One important prerequisite is a good understanding of all safety and efficacy aspects obtained in a large animal model that validly reflect the human scenario of myocardial infarction (MI). Pigs are widely used in this regard since their cardiac size, hemodynamics, and coronary anatomy are close to that of humans. Here, we present an effective protocol for using the porcine MI model using a closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. This approach is based on 90 min of myocardial ischemia, inducing large left ventricle infarction of the anterior, septal and inferoseptal walls. Furthermore, we present protocols for various measures of outcome that provide a wide range of information on the heart, such as cardiac systolic and diastolic function, hemodynamics, coronary flow velocity, microvascular resistance, and infarct size. This protocol can be easily tailored to meet study specific requirements for the validation of novel cardioregenerative biologics at different stages (i.e. directly after the acute ischemic insult, in the subacute setting or even in the chronic MI once scar formation has been completed). This model therefore provides a useful translational tool to study MI, subsequent adverse remodeling, and the potential of novel cardioregenerative agents.

This protocol describes the porcine myocardial infarction (MI) model using a 90 min closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. Furthermore, the protocol for several outcome parameters, such as cardiac function, hemodynamics, microvascular resistance, and infarct size, are also presented.

돼지의 심근 경색 및 기능적 결과의 평가

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

Primary Outcome Assessment in a Pig Model of Acute Myocardial Infarction

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are therefore required to confine cardiac damage, promote survival and reduce the disease burden of heart failure. Large animal experiments are an essential part in the translational process from experimental to clinical therapies. To optimize clinical translation, robust and representative outcome measures are mandatory. The present manuscript aims to address this need by describing the assessment of three clinically relevant outcome modalities in a pig acute myocardial infarction (AMI) model: infarct size in relation to area at risk (IS/AAR) staining, 3-dimensional transesophageal echocardiography (TEE) and admittance-based pressure-volume (PV) loops. Infarct size is the main determinant driving the transition from AMI to heart failure and can be quantified by IS/AAR staining. Echocardiography is a reliable and robust tool in the assessment of global and regional cardiac function in clinical cardiology. Here, a method for three-dimensional transesophageal echocardiography (3D-TEE) in pigs is provided. Extensive insight into cardiac performance can be obtained by admittance-based pressure-volume (PV) loops, including intrinsic parameters of myocardial function that are pre- and afterload independent. Combined with a clinically feasible experimental study protocol, these outcome measures provide researchers with essential information to determine whether novel therapeutic strategies could yield promising targets for future testing in clinical studies.

Reliable and accurate outcome assessment is the key for translation of preclinical therapies into clinical treatment. The current paper describes how to assess three clinically relevant primary outcome parameters of cardiac performance and damage in a pig acute myocardial infarction model.

급성 심근 경색의 돼지 모델의 주요 결과 평가

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are ...

Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and regeneration, and to define new targets for therapeutics. For decades, models of complete heart regeneration existed in amphibians and fish, but a mammalian counterpart was not available. The recent discovery of a postnatal window during which mice possess regenerative capabilities has led to the establishment of a mammalian model of cardiac regeneration. A surgical model of mammalian cardiac regeneration in the neonatal mouse is presented herein. Briefly, postnatal day 1 (P1) mice are anesthetized by isoflurane and placed on an ice pad to induce hypothermia. After the chest is opened, and the left anterior descending coronary artery (LAD) is visualized, a suture is placed around the LAD to inflict myocardial ischemia in the left ventricle. The surgical procedure takes 10-15 min. Visualizing the coronary artery is crucial for accurate suture placement and reproducibility. Myocardial infarction and cardiac dysfunction are confirmed by triphenyl-tetrazolium chloride (TTC) staining and echocardiography, respectively. Complete regeneration 21 days post myocardial infarction is verified by histology. This protocol can be used to as a tool to elucidate mechanisms of mammalian cardiac regeneration after myocardial infarction.

This protocol describes a highly reproducible model of cardiac regeneration by surgical induction of myocardial infarction in the left ventricle of postnatal day 1 mice. The method involves induction of hypothermic anesthesia and ligation of the left anterior descending coronary artery.

신생아 쥐의 심근 경색, 심장 재생의 모델

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and ...

Real-time Pressure-volume Analysis of Acute Myocardial Infarction in Mice

Acute myocardial infarction can lead to acute heart failure and cardiogenic shock. The evaluation of hemodynamics is critical for the evaluation of any potential therapeutic approach directed against acute left ventricular (LV) dysfunction. Current imaging modalities (e.g., echocardiography and magnetic resonance imaging) have several limitations since data on LV pressure cannot directly be measured. LV catheterization in mice undergoing coronary artery occlusion could serve as a novel method for a real-time evaluation of LV function.
At the beginning of the procedure, mice were anesthetized followed by endotracheal intubation. For LV catheterization, the right carotid artery was exposed via middle-neck incision. The catheter was introduced and placed into the LV cavity. Left thoracotomy was conducted and the left main coronary artery (LCA) was ligated. To induce reperfusion, the suture was released after 45 min. Pressure-volume data was recorded at all times.
Ligation of the LCA caused a decrease in LV systolic function as evidenced by a 30% reduction in stroke volume, LV ejection fraction (EF), and cardiac output. Maximum dP/dt as a parameter for LV contractility was also significantly reduced and diastolic function was severely impaired (minimum dP/dt -40%). Reperfusion over a period of 20 min did not lead to a complete recovery of LV function.
Real-time pressure-volume analysis served as a valid procedure for monitoring cardiac function during acute myocardial infarction in mice. Maintaining stable anesthesia and a standardized surgical approach was crucial to ensure valid results. As the early phase of acute myocardial infarction is critical for morbidity and mortality, the delineated method could be beneficial for preclinical evaluation of new strategies for cardioprotection.

Acute myocardial infarction in mice induces acute but incompletely characterized changes in left ventricular (LV) function. LV catheterization in mice undergoing coronary artery occlusion serves as a novel method for a real-time evaluation of LV function.

쥐의 급성 심근 경색의 실시간 압력-볼륨 분석

Acute myocardial infarction can lead to acute heart failure and cardiogenic shock. The evaluation of hemodynamics is critical for the evaluation of any ...

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we demonstrate a murine cryoinjury infarct model that generates precise infarct sizes with high reproducibility and replicability. In brief, after intubation and sternotomy of the animal, the heart is lifted from the thorax. The probe of a handheld liquid nitrogen delivery system is applied onto the myocardial wall to induce cryoinjury. Impaired ventricular function and electrical conduction can be monitored with echocardiography or optical mapping. Transmural myocardial remodeling of the infarcted area is characterized by collagen deposition and loss of cardiomyocytes. Compared to other models (e.g., LAD-ligation), this model utilizes a handheld liquid nitrogen delivery system to generate more uniform infarct sizes.

This article demonstrates a model to study cardiac remodeling after myocardial cryoinjury in mice.

마우스에서 심근 경색을 연구하는 극저온 손상 모델

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Semi-Minimal Invasive Method to Induce Myocardial Infarction in Rats and the Assessment of Cardiac Function by an Isolated Working Heart System

Myocardial infarction (MI) remains the main contributor to morbidity and mortality worldwide. Therefore, research on this topic is mandatory. An easily and highly reproducible MI induction procedure is required to obtain further insight and better understanding of the underlying pathological changes. This procedure can also be used to evaluate the effects or potency of new and promising treatments (as drugs or interventions) in acute MI, subsequent remodeling and heart failure (HF). After intubation and pre-operative preparation of the animal, an anesthetic protocol with isoflurane was performed, and the surgical procedure was conducted&#160;quickly. Using a minimally invasive approach, the left anterior descending artery (LAD) was located and occluded by a ligature. The occlusion can be performed acutely for subsequent reperfusion (ischemia/reperfusion injury). Alternatively, the vessel can be ligated permanently to investigate the development of chronic MI, remodeling or HF. Despite common pitfalls, the drop-out rates are minimal. Various treatments such as remote ischemic conditioning can be examined for their cardioprotective potential pre-, peri- and post-operatively. The post-operative recovery was quick as the anesthesia was precisely controlled and the duration of the operation was short. Post-operative analgesia was administered for three days. The minimally invasive procedure reduces the risk of infection and inflammation. Furthermore, it facilitates rapid recovery. The &#8220;working heart&#8221; measurements were performed ex vivo and enabled precise control of preload, afterload and flow. This procedure requires specific equipment and training for adequate performance. This manuscript provides a detailed step-by-step introduction for conducting these measurements.

This article presents an efficient method to perform myocardial ischemia and subsequent chronic reperfusion in rats using a minimally invasive approach. In addition, left ventricular hemodynamic function of rats is assessed by echocardiography and isolated working heart methods.&#160;

쥐의 심근 경색과 격리 된 작업 심장 시스템에 의한 심장 기능 평가를 유도하는 반 최소 침습 적 방법

Myocardial infarction (MI) remains the main contributor to morbidity and mortality worldwide. Therefore, research on this topic is mandatory. An easily ...

A Modified Simple Method for Induction of Myocardial Infarction in Mice

Myocardial infarction (MI) represents one of the leading causes of death. MI models are widely used for investigating the pathomechanisms of post-MI remodeling and evaluation of novel therapeutics. Different methods (e.g., isoproterenol treatment, cryoinjury, coronary artery ligation, etc.) have been used to induce MI. Compared with isoproterenol treatment and cryoinjury, coronary artery ligation may better reflect the ischemic response and chronic remodeling after MI. However, traditional methods for coronary ligation in mice are technically challenging. The current study describes a simple and efficient process for induction of MI in mice with readily available materials. The mouse chest skin was cut open under stable anesthesia. The heart was immediately externalized through the intercostal space after blunt separation of the pectoralis major and pectoralis minor. The left anterior descending branch (LAD) was ligated with a 6-0 suture 3 mm from its origin. Following LAD ligation, staining with 2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride (TTC) indicated successful induction of MI and temporal changes of post-MI scar size. Meanwhile, survival analysis results showed overt mortality within 7 days after MI, mainly due to cardiac rupture. Moreover, post-MI echocardiographic assessment demonstrated successful induction of contractile dysfunction and ventricular remodeling. Once mastered, an MI model can be established in mice within 2-3 min with readily available materials.

Under adequate anesthesia, the mouse heart was externalized through the intercostal space, and myocardial infarction was successfully induced by ligating the left anterior descending artery (LAD) using materials readily available in most laboratories.

생쥐의 심근경색 유도를 위한 수정된 간단한 방법

Myocardial infarction (MI) represents one of the leading causes of death. MI models are widely used for investigating the pathomechanisms of post-MI ...