저자는이 프로토콜의 최적화를 위해 텍사스 MD 앤더슨 암 센터의 대학에서 의학 및 과학의 로잘린 프랭클린 대학의 레이놀즈 랩의 모든 구성원, 그리고 첸 동 연구소에 감사의 말씀을 전합니다. 이 작품은 국립 보건원 (K22AI104941)에서 JMR에 부여에 의해 지원되었다.

모든 실험 절차는 의학 및 과학의 로잘린 프랭클린 대학 환경 보건과 안전의 사무실에 의해 승인 된 프로토콜을 사용하여 수행됩니다. 이 프로토콜에 사용 (NCI에서 구입) C57BL / 6 마​​우스는 무균 상태에서 보관하고, 모든 동물 실험은 의학의 로잘린 프랭클린 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인 된 프로토콜을 사용하여 수행 하였다 과학. 악기, 소모품 및 시약 1. 준비 <ol><li> 항 CD3 및 안티 CD28와 코트 48 웰 또는 24 웰 플레이트 (표 1) 멸균 PBS, 커버 및 파라 필름으로 포장 증발과 오염을 방지하고 T 전날 C O를 4에서 O / N을 배양하기 세포 격리. 37 O C.에서 또는 코트 우물 1 시간 로 0.5-1 ml의 1μg / ㎖에서 항 CD3, 항 CD28 모두 코팅함으로써 TH0, TH1,은 Th2 및 iTreg 조건을 수행탈 볼륨 (48 웰 플레이트). Th17를 들어, 우리는 일반적으로 코트 항 CD3 1 ㎍ / ㎖의에서 ml의 항 CD28 2 ㎍ /에서. 참고 : 우리는 더 높은 항 CD3 농도가 Th17 생성을위한 최적의 상태에서 더 낮은 항 CD3 농도가 TH1,은 Th2 및 iTreg 생성을위한 최적의 것으로 나타났습니다. 따라서, 항 CD3, 항 CD28 농도는 적정 개별 실험실 (표 2)에 대해 최적화되어야한다. </li><li> 오토 클레이브 또는 소독제 용액 해부 도구 (가위와 집게) 세트를 소독. 튜브 또는 70 % 에탄올을 포함하는 작은 비커 해부 도구 사이의 빠른 멸균 필요할 것이다. 마지막으로, 70 % 에탄올을 함유하는 스프레이 병 해부 전에 마우스의 표면을 살균 필요할 것이다. </li><li> 알루미늄 호일의 평면 스티로폼 조각 또는 코르크를 포장하여 절개면을 준비합니다. 해부 핀이나 바늘 장소에서 동물을 고정하는 데 사용됩니다. </li><li> TI의 수집을 위해 요리 또는 접시를 준비ssues. 풀링 조직의 경우, 3ml를가 포함 된 별도의 60mm 요리 멸균 PBS + 비장과 림프절 조직에 대한 FBS (PBS +)이 충분 1 %. 개인 마우스의 유지 조직을 분리하는 경우, 우물의 원하는 번호에 PBS +의 24 웰 플레이트 포함하여 1ml를 준비합니다. </li><li> 사용하기 전에 세포 배양 및 사전 따뜻한 대한 완전한 RPMI 미디어를 준비합니다 (표 1). 참고 : 우리는 일상적으로 RPMI를 사용하지만 이러한 IMDM과 DMEM와 같은 다른 미디어가 동일한 효과 또는 실험실과 실험에 따라 우수한 될 수있다. </li><li> 나일론의 사각형 살균 120 μm의 공경 압력솥 메쉬 컷 × 2 cm (표 1). </li><li> 선택 : CD4 + 세포 농축, 프리 러닝 따뜻한 autoMACS으로 선별 시스템 고속 자성 세포를 사용하여 기계의 손상을 방지하기 위해 37 O C 물욕 버퍼를 세정하는 경우. </li><li> 참고 : 농축이 분류 수율을 높이고 시간을 정렬 감소하는 것이 좋습니다. </li><li> 모든제조 단계는 해부 제외한 멸균 조직 배양 후드에서 수행되어야한다. </li></ol> 마우스에서 림프절과 비장 2. 분리 <ol><li> 제도적 승인 기술을 사용하여 동물의 필요 매수를 안락사. 때문에 남성에 비해 나이브 T 세포와 하체 지방의 높은 비율에 이상 마우스에 C57BL / 6 암컷 마우스, 연령 5-10 WKS을 사용합니다. 주 : 수컷 마우스 유래의 세포를 시험관 내에서 유사하게 수행하고, 상기 프로토콜 단계는 동일하게 유지. 5-10 주령 된 암컷 마우스는, 일반적으로 마우스 당 3-6 × 106 나이브 CD4 + T 세포를 수득한다. 그러나 마우스 사용하여 다른 균주 수율 및 성능에 영향을 미칠 수 있습니다. 예컨대, C57BL / 6 마​​우스의 세포 Balb.c 생쥐에서 세포의 Th2 세포를 생성하기위한 더 좋은 반면 Th1 세포를 생성하기위한 더 낫다. </li><li> 사지 동물의 확산 및도 1에 도시 된 바와 같이 장소에 고정. 오랫동안 피부를 잘라조심 itudinally 턱 항문에서 동안하지 깊은 조직에 구멍을합니다. </li><li> 확산은 집게로 피부를 열고도 1에 도시 된 바와 같이 림프절에 쉽게 접근 할 수있게하는 장소에서 피부를 고정. </li><li> 도 1에 도시 된 위치에서 액세스 림프절 수확. 포셉 쌍 림프절 잡는 포셉 다른 쌍의 조직을 분리하여 쉽게 제거 할 수있다. 컬렉션 접시에 조직을 배치합니다. </li><li> 도 1에 도시 된 위치에서 비장을 수확.이 경우, 복막 조심 절삭 비장에 액세스하는데 필요하다. 컬렉션 접시에 조직을 배치합니다. </li><li> 더 많은 조직이 수확 될 경우 절차를 반복합니다. 그렇지 않으면 다음 단계로 진행합니다. 이 시점에서, 정렬 후 T 세포의 도금 할 때까지 얼음 상에 남아있는 모든 단계를 수행한다. </li></ol> 3. 조직 처리 및 CD4 + 심화<ol><li> 작은 백혈구 사망을 초래할 수있다 적혈구 용해를 필요로하지 않는 림프절 세포 제제 등의 수율을 높이기 위해 다른 요리의 림프절과 비장을 처리합니다. 따라서, 다음 단계가 별도로 정렬 라벨링 전에 조합 하였다 비장 및 림프절 개체군 처리 방법을 설명한다. </li><li> PBS + 3 ㎖를 포함하는 새로운 60mm 접시에 수집 요리와 장소에서 조직 (비장 또는 풀링 림프절)를 제거합니다. 멸균 집게를 사용하여 조직을 통해 메쉬 멸균 나일론의 사각형을 배치합니다. </li><li> 주사기 플런저의 엄지 손가락 쪽 (3-10 ml)에 타고 부드럽게 메시에 대한 조직을 분쇄. 거의 조직의 모든 현탁액에 가야한다. 또한, 두 개의 멸균 된 프로스트 슬라이드 사이에 조직을 배치하고 현탁액에 고요. </li><li> 서스펜션 최대 피펫 몇 번 아래로 남아있는 수용성 덩어리를 분쇄 할 수 있습니다. 의 입구에 나일론 메쉬의 새로운 사각형 조각을 배치15ml의 원뿔형 튜브 및 잔여 파편을 제거하기 통해 현탁액을 필터. </li><li> 반복하여 림프절과 비장 조직에 대해 2-4 단계를 반복합니다. </li><li> 현탁액을 15 ㎖ 튜브로 여과 한 후 PBS +와 튜브의 나머지를 채우고 몇 번 반전. C. O 4에서 5 분 동안 475 XG에 세포를 원심 분리기 </li><li> 비장 세포의 경우, 다음의 원심 분리 상층 액을 흡인 및 적혈구를 용해시키기 위해 1 분 동안 비장 당 빙냉 1X ACK 용액 1 ㎖에서 세포 펠렛을 재현 탁. 그 다음, ACK의 상부에 PBS + 10를 가하여 튜브를 반전 및 원심 XG 475 4 O C.에서 5 분간 </li><li> 림프절 세포, PBS + 2 ㎖에 재현 탁하고 상등액을 흡인. 원하는 경우 이들 ACK들은 용해 및 세척 단계 이후에 비장 세포와 결합 될 수있다. </li><li> PBS +의 또 다른 10ml에 비장 세포의 원심 분리에 resuspend 후에 뜨는을 대기음. 이 시점에서 림프절 정지가 될 수 있습니다비장 현탁액 위에 dded 티슈 풀링 정렬에 필요한 경우. C. O 4에서 5 분 동안 475 XG 다시 튜브를 원심 </li><li> 세포 펠렛은 이제 CD4 농축을 위해 준비 될 수있다. 이 단계를 수행하지 않을 경우, 정렬 준비 단계로 진행합니다. </li><li> 고속 자기 세포 선별 시스템을 사용하여 CD4를 들어 농축, CD4 구슬 세포 펠렛을 재현 탁. 일반적으로 PBS + 85 μL에 희석 구슬의 15 μl를 1 마우스에서 조직에 라벨을 사용한다. 필요에 따라, 비드 혼합물의 부피 진입로 펠렛을 재현 탁하고, 4 ℃에서 15 내지 30 O 분간 부화 </li><li> , PBS + 10 mL로 세포를 씻어 O 4 ℃에서 5 분 동안 475 XG 다시 파편, 및 원심 분리기를 제거하기 위해 15 ㎖의 새로운 튜브에 나일론 통해 현탁액 합격 </li><li> 마우스 당 PBS의 + 100 ㎕의 펠렛을 재현 탁하고 고속 자기 세포 분류 시스템에 긍정적 인 선택으로 진행합니다. 수동 분리 시스템, F를 사용하면농축 제조업체의 지침을 ollow. 대안 적으로, FACS 완충액에서 재현 탁 샘플 : PBS를 1mM EDTA (PH = 8), 1 % BSA, 멸균 여과로. </li><li> 긍정적 인 부분을 제거하고 PBS + 10ml의 다시 씻는다. 풍부한 CD4 + 분율은 지금 정렬에 표시 할 준비가되어 있습니다. </li></ol> 4. 정렬 나이브 CD4 + T 세포 <ol><li> PBS는 CD62L, CD44, CD25, CD4 및 대항 함유 형광 항체 +를 세포 펠렛 레이블. 표 1에 열거 된 항체를 사용하는 경우, 각각의 희석 물이 제공된다. 염색의 경우, 항체 칵테일 100 ㎕의 부피는 한 마우스에서 조직 당 사용된다. </li><li> 항체 칵테일 펠렛을 재현 탁하고 어두운 4 O C에서 15 ~ 30 분 동안 품어. </li><li> 4 O ℃에서 PBS + 10ml의 원심 분리기 475 XG 5 분으로 세포를 씻으 </li><li> 다시 다른 나일론 필터 또는 셀 스트레이너 캡을 통해 혼합물 전달남은 파편을 이동합니다. 셀 소터에 대한 호환되는 튜브로 표지 된 세포를 피펫. 얼음에 세포를 유지하고 정렬 될 때까지 빛으로부터 보호. </li><li> 셀 소터에 수집 호환 튜브의 하단에 전체 RPMI 미디어 또는 FBS의 1-2ml을 피펫 팅에 의해 수집 튜브를 준비합니다. </li><li> 정렬 CD4 + CD25과 순진한 CD4 + T 세포 - CD62L + CD44 - 인구 (그림 2). 전체 RPMI 매체와 수집 된 세포를 씻으 전술 한 바와 같이 원심 분리기. </li><li> 완전 RPMI에서 펠렛을 재현 탁 순진한 세포를 계산하고, 1 × 10 6 세포 / ml로 농도를 조절합니다. </li></ol> 5. 체외 분화 설정 <ol><li> 항 CD3 및 안티 CD28 코팅 된 플레이트의 우물을 기음과 멸균 PBS (NO FBS) 1ml를 잘 각을 씻는다. 48- 웰 플레이트, RP 0.5 × 106 세포 / 웰에서 0.5 ml의 판형MI. 24 웰 플레이트, 문화 1 × 10 6 세포 RPMI의 / 웰에 1.0 ml의하십시오. </li><li> 이러한 약물로서 인자의 영향을 테스트하기 전에 중 어느 적절한 웰에 물질을 추가하거나, 실험에 따라 분화 처리 후의 경우. 다음에, 따라서 사이토 카인 및 차단 항체로 배양 배지를 보충. TH0 : 30 U / ㎖ 된 hIL-2. TH1 : 15 NG / ㎖ rmIL-12, 30 U / ㎖ 된 hIL-2, 5000 및 NG / ㎖ 11B11.Th2 : 10 NG / ㎖ rmIL-4, 30 U / ㎖ 된 hIL-2, 2000 NG 37.51 수용성 ㎖ /, 5000 NG / ㎖ XMG1.2. iTreg : 15 NG / ㎖ hTGFβ, 30 U / ㎖ 된 hIL-2, 5000 NG / ㎖ XMG1.2, 5000 NG / ㎖ 11B11. Th17 : 20 NG / ㎖ rmIL-6, 3 NG / ㎖ hTGFβ, 5000 NG / ㎖ XMG1.2, 5000 NG / ㎖ 11B11. 주의 : 위에서 제시된 조건은 분화 실험 (대표 결과 부)의 끝에서 측정 한 사이토 카인 생성을 최대화하기위한 최적 인 것으로 밝혀졌다. 그러나 각 개개의 실험실 조건 (표 2에 최적화되어야 </stroNG&gt;). 또한, 판 - 결합 된 항 - CD28 이외에 수용성 항 CD28의 첨가가 우리 실험실에서의 Th2 사이토 카인의 생산을 강화하는 것으로하지만, 다른 T 세포의 서브 세트들에 영향을주지되었습니다 </li><li> 종래 유전자 발현 및 사이토 카인 생성의 분석 4-5 d 내지 5 % CO 2와 37 ℃로 플레이트를 인큐베이션. 대안 적으로, 확산 및 최종 수율을 향상시키기 위해 신선한 매체와 함께 1 × 106 세포 / ml로 조정 한 후 2 일 TCR 자극으로부터 세포를 제거하고, 새로운 웰 (비 코팅)에 접시. 이 경우, 편광 신선한 시토 킨 및 항체가 필요하지 않지만이 IL-10 U / ㎖의 TH0, TH1,은 Th2 및 iTreg 새로운 배양 배지에 첨가되어야한다. </li></ol> 분화 6. 분석 <ol><li> 유동 세포 계측법에 의한 사이토 카인 분석을 위해, / ㎖ 또는 1 μg의 이오 노마 이신 (예로서 brefeldin 골지체 억제제의 존재 하에서 4-6 시간 동안 항 CD3 / ㎖ 표 ng를 10ng / ㎖ PMA 및 1000으로 각 웰을 restimulate1). 세포 내 사이토 카인 염색법 실험에 따라 (그림 3)을 수행합니다. 주 : 얼룩 비 혈통 특정 사이토킨 또는 (도시되지 않음) IL-4 및 IFNγ와 같은 전사 인자, 음성 대조군으로서 분화 효율의 지표로서 각 조건 Th17 배양 용 (도 3). 또한, Tregs의 상호 개발과 같은 Th17 문화에 대한 얼룩은 Foxp3는 TGFβ의 추가로 발생할 수 있습니다. </li><li> 단백질 정량, 사이토 카인 특정 ELISA (그림 3)에 의해 각 웰과 분석의 상층 액을 수집합니다. 테스트되는 요인 대조 시료에 비해 증식 영향을 미쳤다 우려가있는 경우, 세포는, 세정 수, 정규화 계산하고 ELISA 분석을 위해 상등액을 수집하기 전에 24 시간 동안 항 CD3 1 ㎍ / ㎖로 재 자극. L 될 수 있다는 조건 IL-4, 세탁 restimulating 필요한은 Th2로부터는 IL-4를 제거하는 경우 시금초기 분화 문화 eftover. </li><li> 실시간 PCR에 의한 유전자 발현 분석을 위해 수확 세포는 잠복기 후에, 세척 정상화 및 항 CD3 1 ㎍ / ml의 수확의 mRNA에 앞서 (도 3)으로 2-6 시간 동안 다시 자극한다. </li></ol>

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M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Toll-like+receptor+2+signaling+in+CD4(+)+T+lymphocytes+promotes+T+helper+17+responses+and+regulates+the+pathogenesis+of+autoimmune+disease.">Toll-like receptor 2 signaling in CD4(+) T lymphocytes promotes T helper 17 responses and regulates the pathogenesis of autoimmune disease.</a> Immunity. 32 (5), 692-702 (2010).</li><li>Wu, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+pathogenic+TH17+cells+by+inducible+salt-sensing+kinase+SGK1.">Induction of pathogenic TH17 cells by inducible salt-sensing kinase SGK1.</a> Nature. 496 (7446), 513-517 (2013).</li><li>Ghoreschi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+pathogenic+T(H)17+cells+in+the+absence+of+TGF-beta+signalling.">Generation of pathogenic T(H)17 cells in the absence of TGF-beta signalling.</a> Nature. 467 (7318), 967-971 (2010).</li><li>Veldhoen, M., Hocking, R. J., Atkins, C. J., Locksley, R. M., Stockinger, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TGFbeta+in+the+context+of+an+inflammatory+cytokine+milieu+supports+de+novo+differentiation+of+IL-17-producing+T+cells.">TGFbeta in the context of an inflammatory cytokine milieu supports de novo differentiation of IL-17-producing T cells.</a> Immunity. 24 (2), 179-189 (2006).</li><li>Avni, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=T(H)+cell+differentiation+is+accompanied+by+dynamic+changes+in+histone+acetylation+of+cytokine+genes.">T(H) cell differentiation is accompanied by dynamic changes in histone acetylation of cytokine genes.</a> Nat Immunol. 3 (7), 643-651 (2002).</li><li>Matheu, M. P., Cahalan, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+CD4++T+cells+from+mouse+lymph+nodes+using+Miltenyi+MACS+purification.">Isolation of CD4+ T cells from mouse lymph nodes using Miltenyi MACS purification.</a> J Vis Exp. (9), (2007).</li><li>Bedoya, S. K., Wilson, T. D., Collins, E. L., Lau, K., Larkin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+th17+differentiation+of+naive+CD4+T+lymphocytes.">Isolation and th17 differentiation of naive CD4 T lymphocytes.</a> J Vis Exp. (79), e50765 (2013).</li></ol>

저자는 더 경쟁 재정적 이익을 선언하지 않습니다.

비장은 순진한 목 세포를 포함하는 동안, 림프절이 인구의 비율이 훨씬 높다. 제대로이 프로토콜에 림프절을 식별하고 제거하지 않으면 순진한 세포의 수율이 열악 발생합니다. 이것은 더 많은 지방 조직이 나이가 마우스 또는 수컷 마우스에서 특히 어려울 수 있습니다. 동물의 사지와 피부의 그림 1, 적절한 고정 및 피닝 (pinning)에 나타낸 바와 같이 접근 외부 림프절 쉽게 시각화 수 ...

별개의 계통 ​​또는 CD4 + T 도우미의 부분 집합의 개념 (목) 세포는 20 세기 한 후반 이후 주변왔다. 세포 증식 및 세포 목 이펙터로 최종 분화의 여러 라운드에서 공동 자극 신호 결과의 존재 동족 항원의 인식. 이 과정에서 생성되는 토륨 셀의 유형이 활성화 중에 본 사이토킨 환경에 의존한다. 우선, 토륨 나이브 T 세포는 세포 수용체 (TCR) 활성화, 보조 자극 CD28 결찰 및 사이토 카인이 다음과 같은 별개의 신호 계통에 편광 생각되었다. 1 형 헬퍼 세포 (TH1)는 사이토킨 IFNγ 그들의 이펙터 생산뿐만 아니라 분화 과정 중에 3,4- IL-12 시그널링 그들의 요건을 특징으로한다. 결국 차별화 된 Th1 세포가 가장 특유 B를 특징으로하는 유전 적 프로파일이 발견되었다Y TH1 유전 적 프로그램 (5)의 마스터 조절기 간주되는 T 상자 가족의 전사 인자의 발현, Tbx21 (T-내기). 또한, IL-12뿐만 아니라 IFNγ로는 T-내기 식 6, 7을 홍보 할 수 있습니다. 면역 응답하여, Th1 세포는 세포 내 병원체뿐만 아니라자가 면역 염증 강한 프로모터 대 숙주 방어에 중요하다. 대조적으로, 2 형 헬퍼 세포 (은 Th2)은 그 개발 IL-4 및 IL-4, IL-5 포함한 효과기 사이토킨, 및 IL-13을 요구, B 세포 반응을 구동하기위한 중요하고 알레르기 8 병원성, 9. Th1 세포와 마찬가지로,은 Th2 세포가 자신의 마스터의 전사 조절을 표현하는 것으로하고, GATA-3 10,11 불린다. 흥미롭게도, 편광 사이토 카인의 존재 및 특정 목 혈통의 생성은 특정 토륨 서브셋 동안 재 면역 우성 될 수 있음을 시사 2,12 등의 개발 반목sponse. TH1 Th2에 계통의 식별 이후, 추가 작업은 최근 모낭 도우미 (TFH), (TH9) IL-9-생산 및 IL-22 생산 (Th22) (포함 T 헬퍼 세포의 더욱 부분 집합을 보여 주었다 ) 13에서 검토. 체외 분화 실험의 목적을 위해,이 프로토콜은 조절 T 세포 (TREG) 및 IL-17을 생산하는 CD4 + T 세포 (Th17)를 지칭 단에 두 개의 추가 서브 세트들을 토륨 초점을 맞출 것이다. CD25 + T 조절 세포는 흉선에서 자연적 (nTreg)가 발생할 수있다; 순진 목 세포는 (14, 15에서 검토) 주변의 규제가 될 (iTreg)을 유도 할 수있다. Tregs 두 가지 유형의 특성 전사 인자가, 용해성 항염 매개체 생산, IL-2 소모 및 셀 접촉 의존적 메커니즘 (14,15)을 포함하는 그들의 이펙터 억제 메카니즘에 중요 forkhead 상자 P3 (Foxp3를)를라고 표현한다. Foxp의 부족심각한, 다기관자가 면역 질환에서 3 식 결과는 면역 조절 장애, polyendocrinopathy, 장 질환이라, 염증을 해결하고 자기에 주변 내성을 조절하는이 목 부분 집합의 중요한 역할을 보여주는 X-연결 증후군 (IPEX)는 16 항원. 시험 관내에서, 순진한 CD4 + T 헬퍼 세포는 Foxp3의를 상향 조절하고 IL-2와 14, 15을 TGF-β가 함께 자극에 TREG 프로그램에 최선을 다하고된다. (17, 18에서 검토) 만 사이토 카인 생성을 고려할 때, 특히 CD4 + T 세포 계통 상당한 가소성 중등도가있을 수있다. 그러나, 체외 분화 프로토콜의 목적을 위해, 우리는 고유 혈통 각 서브셋을 논의한다. 최근, IL-17 사이토 카인을 생산 Th17 세포의 서브 세트는자가 면역 염증 19-21 중 특히 병원성 염증성 기능 고유 혈통로 확인되었다. Th17 세포 고유의 전사 인자를 발현, 유전자 Th17 프로그램 (22)을 좌표로 불리는 관련 레티노이드 고아 수용체 감마 t (RORγt). TGFβ는 RORγt의 유도를 통해 Th17 계보의 생성에 중요합니다. 그러나, TGFβ 신호의 효과는 (12에서 검토) IL-6와 Th17 synergizing에 약속을 유도하는 것으로 여겨진다. 또한 연구는 다른 긍정적 인 IL-1β를 포함, Th17 약속을 조절할 수있는 신호 증가 나트륨 및 TLR의 다양한 23 ~ 26 신호 것으로 나타났습니다. 다른보고는 생체 내에서 병원성 Th17 세포가 실제로 TGFβ 신호 우회 것들 대신 분화 27 IL-1, IL-6, IL-23의 조합에 의존한다고 제안했다. 따라서, Th17 세포 신호 전달 경로의 다양한로부터 유도 될 수있다; Th17 계통에 대한 약속이 프로토콜의 목적을 위해, 일반적으로 사용되는 (TGFβ 및 IL-6) 통로표시됩니다. 모든 이펙터 계통에 대한 설명 분화 프로토콜은 실험의 전 과정에 걸쳐 TCR와 CD28에 대한 자극으로 고정 된 항체에 의존한다. 그러나, 다른 보여준 그 항원 제시 세포가 28 또는 가교 항 CD3 및 햄스터 항체와 항 CD28 항체 이일 29은 다양한 토륨 서브 세트의 생성을 유도하는 매우 효과적인 수단과 TCR 활성화. 여기에 제시된 프로토콜은 Th17 세포 31 차 림프 기관 (30)로부터 쥐의 CD4 + T 세포를 분리하고 생성 이전에보고 된 방법에 작성합니다. 하나의 주요 차이점은이 프로토콜은 림프 조직으로부터 나이브 CD4 + T 세포를 분리하는 셀 소터의 사용에 의존한다는 것이다. 그러나 많은 기업들이 이제 요구 사항 F를 우회 할 수있다, 순진한 CD4 + T 세포에 대한 풍요롭게 빠른 분리 키트를 제공또는 정렬 실험에 따라. 방법과이 프로토콜에서 제시 시약은 우리가 일상적으로 사용하고 가장 효과가 무엇을 발견한다. 그러나, 대체 시약 및 방법은 아래에 제시된 많은 단계를 위해 존재한다는 것을 명심하고 자신의 목적을 위해 최선을 작동합니다 어떤 결정하기 위해 개별 실험실에 달려있다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Complete RPMI:</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Warm in a 37 oC water bath before use</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI 1640 Media</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>11875119</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 % FBS</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>26140-079</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1000X 2-mercaptoethanol</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>21985023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100X Pen/Strep</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>15140122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100X L-glutamine</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>25030081</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>120 micron nylon mesh</td>
			<td>Amazon</td>
			<td>CMN-0120-10YD</td>
			<td>Cut into 2 cm2 squares and autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alternative: 100 micron cell strainers</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>08-771-19</td>
			<td>Alternative to cutting nylon mesh</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>autoMACS running buffer</td>
			<td>Miltenyi</td>
			<td>130-091-221</td>
			<td>Warm in a 37 oC water bath before use</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>autoMACS rinsing solution</td>
			<td>Miltenyi</td>
			<td>130-091-222</td>
			<td>Warm in a 37 oC water bath before use</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CD4 beads</td>
			<td>Miltenyi</td>
			<td>130-049-201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACK lysis buffer</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>A10492-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cytokines:</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human (h) IL-2</td>
			<td>Peprotech</td>
			<td>200-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recombinant mouse (rm) IL-4</td>
			<td>Peprotech</td>
			<td>214-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rmIL-6</td>
			<td>R &#38; D Systems</td>
			<td>406-ML-025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rmIL-12</td>
			<td>Peprotech</td>
			<td>210-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hTGFb</td>
			<td>R &#38; D Systems</td>
			<td>240-B-010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antibodies:</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2C11 (anti-CD3)</td>
			<td>BioXcell</td>
			<td>BE0001-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>37.51 (anti-CD28)</td>
			<td>BioXcell</td>
			<td>BE0015-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>11B11 (anti-IL-4)</td>
			<td>BioXcell</td>
			<td>BE0045</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>XMG1.2 (anti-IFNg)</td>
			<td>BioXcell</td>
			<td>BE0055</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-CD62L-FITC</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>104406</td>
			<td>Use at 1:100</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-CD25-PE</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>102008</td>
			<td>Use at 1:400</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-CD4-PerCP</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>100434</td>
			<td>Use at 1:1000</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-CD44-APC</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>103012</td>
			<td>Use at 1:500</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phorbol&#160; 12-myristate 13 acetate (PMA)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P-8139</td>
			<td>Prepare a stock at 0.1 mg/ml in DMSO and freeze aliquots at -20 oC</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ionomycin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I-0634</td>
			<td>Prepare a stock at 0.5 mg/ml in DMSO and freeze aliquots at -20 oC</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Brefeldin A</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>00-4506-51</td>
			<td>Use at 1:1000</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

mouse na&#239;ve cd4+ t cell isolation and in vitro differentiation into t cell subsets

Antigen inexperienced (na&#239;ve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition of cognate antigen presented on MHC class II. The cytokine signals present in the environment at the time of TCR activation are a major factor in determining the effector fate of a na&#239;ve CD4+ T cell. Although the cytokine environment during na&#239;ve T cell activation may be complex and involve both redundant and opposing signals in vivo, the addition of various cytokine combinations during naive CD4+ T cell activation in vitro can readily promote the establishment of effector T helper lineages with hallmark cytokine and transcription factor expression. Such differentiation experiments are commonly used as a first step for the evaluation of targets believed to promote or inhibit the development of certain CD4+ T helper subsets. The addition of mediators, such as signaling agonists, antagonists, or other cytokines, during the differentiation process can also be used to study the influence of a particular target on T cell differentiation. Here, we describe a basic protocol for the isolation of na&#239;ve T cells from mouse and the subsequent steps necessary for polarizing na&#239;ve cells to various T helper effector lineages in vitro.

토륨 조건에 따라 달라질 수 분화 분석 시점은 T 세포 수용체 활성화의 강도뿐만 아니라 테스트되는. 분화 2-3 일 후, 세포를 T 세포 증식의 범위를 결정하기 위해 광학 현미경에 의해 시각화 될 수있다. 세포의 광범위한 확산과 응집을 전시 웰스 가장 가능성이 가능성이 문화 4 일 후에 미디어를 배출합니다, 외인성 IL-2, 같은 TH1과은 Th2 등의 추가에 의존하는 일 4. 분화 조건에서 분석을위한 준비가 ...

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Mouse Na&amp;#239;ve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets

Na&#239;ve CD4+ T cells polarize to various subsets depending on the environment at the time of activation. The differentiation of na&#239;ve CD4+ T cells to various effector subsets can be achieved in vitro through the addition of T cell receptor stimuli and specific cytokine signals.

마우스 나이브 CD4<sup&gt; +</sup&gt; T 세포의 분리 및<em&gt; 시험관</em&gt; T 세포 하위 집합으로 차별화

Antigen inexperienced (na&#239;ve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition ...

mouse-nave-cd4-t-cell-isolation-vitro-differentiation-into-t-cell

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Mouse Na&#239;ve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets

51.3K 조회수.  Rosalind Franklin University of Medicine and Science. Naïve CD4+ T cells polarize to various subsets depending on the environment at the time of activation. The differentiation of naïve CD4+ T cells to various effector subsets can be achieved in vitro through the addition of T cell receptor stimuli and specific cytokine signals. 

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Retroviral Transduction of T-cell Receptors in Mouse T-cells

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen presenting cells (APCs)1. This recognition leads to the activation of T-cells and a series of functional outcomes (e.g. cytokine production, killing of the target cells). Understanding the functional role of TCRs is critical to harness the power of the immune system to treat a variety of immunology related diseases (e.g. cancer or autoimmunity).
It is convenient to study TCRs in mouse models, which can be accomplished in several ways. Making TCR transgenic mouse models is costly and time-consuming and currently there are only a limited number of them available2-4. Alternatively, mice with antigen-specific T-cells can be generated by bone marrow chimera. This method also takes several weeks and requires expertise5. Retroviral transduction of TCRs into in vitro activated mouse T-cells is a quick and relatively easy method to obtain T-cells of desired peptide-MHC specificity. Antigen-specific T-cells can be generated in one week and used in any downstream applications. Studying transduced T-cells also has direct application to human immunotherapy, as adoptive transfer of human T-cells transduced with antigen-specific TCRs is an emerging strategy for cancer treatment6.
Here we present a protocol to retrovirally transduce TCRs into in vitro activated mouse T-cells. Both human and mouse TCR genes can be used. Retroviruses carrying specific TCR genes are generated and used to infect mouse T-cells activated with anti-CD3 and anti-CD28 antibodies. After in vitro expansion, transduced T-cells are analyzed by flow cytometry.

We present a protocol to produce antigen-specific mouse T-cells using retroviral transduction

마우스 T - 세포에서 T - 세포 수용체의 Retroviral 전달

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen ...

연구

면역학 및 감염병학

Isolation of Precursor B-cell Subsets from Umbilical Cord Blood

Umbilical cord blood is highly enriched for hematopoietic progenitor cells at different lineage commitment stages. We have developed a protocol for isolating precursor B-cells at four different stages of differentiation. Because genes are expressed and epigenetic modifications occur in a tissue specific manner, it is vital to discriminate between tissues and cell types in order to be able to identify alterations in the genome and the epigenome that may lead to the development of disease. This method can be adapted to any type of cell present in umbilical cord blood at any stage of differentiation.	
This method comprises 4 main steps. First, mononuclear cells are separated by density centrifugation. Second, B-cells are enriched using biotin conjugated antibodies that recognize and remove non B-cells from the mononuclear cells. Third the B-cells are fluorescently labeled with cell surface protein antibodies specific to individual stages of B-cell development. Finally, the fluorescently labeled cells are sorted and individual populations are recovered. The recovered cells are of sufficient quantity and quality to be utilized in downstream nucleic acid assays.

Here we describe a protocol for isolating subsets of precursor B-cells from umbilical cord blood. A sufficient quantity and quality of nucleic acids may be extracted from the cells and used in subsequent assays utilizing DNA or RNA.

탯줄 혈액에서 전구체 B-세포 하위 집합의 절연

Umbilical cord blood is highly enriched for hematopoietic progenitor cells at different lineage commitment stages. We have developed a protocol for ...

Adenoviral Transduction of Naive CD4 T Cells to Study Treg Differentiation

Regulatory T cells (Tregs) are essential to provide immune tolerance to self as well as to certain foreign antigens. Tregs can be generated from naive CD4 T cells in vitro with TCR- and co-stimulation in the presence of TGF&beta; and IL-2. This bears enormous potential for future therapies, however, the molecules and signaling pathways that control differentiation are largely unknown.
Primary T cells can be manipulated through ectopic gene expression, but common methods fail to target the most important naive state of the T cell prior to primary antigen recognition. Here, we provide a protocol to express ectopic genes in naive CD4 T cells in vitro before inducing Treg differentiation. It applies transduction with the replication-deficient adenovirus and explains its generation and production. The adenovirus can take up large inserts (up to 7 kb) and can be equipped with promoters to achieve high and transient overexpression in T cells. It effectively transduces naive mouse T cells if they express a transgenic Coxsackie adenovirus receptor (CAR). Importantly, after infection the T cells remain naive (CD44low, CD62Lhigh) and resting (CD25-, CD69-) and can be activated and differentiated into Tregs similar to non-infected cells. Thus, this method enables manipulation of CD4 T cell differentiation from its very beginning. It ensures that ectopic gene expression is already in place when early signaling events of the initial TCR stimulation induces cellular changes that eventually lead into Treg differentiation.

Adenoviral gene transfer into naive CD4 T cells with transgenic expression of the Coxsackie adenovirus receptor enables the molecular analysis of regulatory T cell differentiation in vitro.

나이브 CD4의 아데노 바이러스 형질은 Treg의 분화를 연구하는 세포를 T

Regulatory T cells (Tregs) are essential to provide immune tolerance to self as well as to certain foreign antigens. Tregs can be generated from naive CD4 ...

Isolation and Th17 Differentiation of Na&iuml;ve CD4 T Lymphocytes

Th17 cells are a distinct subset of T cells that have been found to produce interleukin 17 (IL-17), and differ in function from the other T cell subsets including Th1, Th2, and regulatory T cells. Th17 cells have emerged as a central culprit in overzealous inflammatory immune responses associated with many autoimmune disorders. In this method we purify T lymphocytes from the spleen and lymph nodes of C57BL/6 mice, and stimulate purified CD4+ T cells under control and Th17-inducing environments. The Th17-inducing environment includes stimulation in the presence of anti-CD3 and anti-CD28 antibodies, IL-6, and TGF-&#946;. After incubation for at least 72 hours and for up to five days at 37 &#176;C, cells are subsequently analyzed for the capability to produce IL-17 through flow cytometry, qPCR, and ELISAs. Th17 differentiated CD4+CD25- T cells can be utilized to further elucidate the role that Th17 cells play in the onset and progression of autoimmunity and host defense. Moreover, Th17 differentiation of CD4+CD25- lymphocytes from distinct murine knockout/disease models can contribute to our understanding of cell fate plasticity.

Isolation and Th17 Differentiation of Na&amp;#239;ve CD4 T Lymphocytes

With effector functions distinct from other T cell subsets, Th17 cells have been centrally implicated in inflammatory autoimmunity. This in vitro Th17 differentiation protocol provides a means to determine whether na&#239;ve CD4+ T lymphocytes can differentiate into Th17 cells, and to further examine their role in autoimmunity and host response.

분리 및 나이브 CD4 T 림프구의 TH17 분화

Th17 cells are a distinct subset of T cells that have been found to produce interleukin 17 (IL-17), and differ in function from the other T cell subsets ...

In Vitro Assay to Evaluate the Impact of Immunoregulatory Pathways on HIV-specific CD4 T Cell Effector Function

T cell exhaustion is a major factor in failed pathogen clearance during chronic viral infections. Immunoregulatory pathways, such as PD-1 and IL-10, are upregulated upon this ongoing antigen exposure and contribute to loss of proliferation, reduced cytolytic function, and impaired cytokine production by CD4 and CD8 T cells. In the murine model of LCMV infection, administration of blocking antibodies against these two pathways augmented T cell responses. However, there is currently no in vitro assay to measure the impact of such blockade on cytokine secretion in cells from human samples. Our protocol and experimental approach enable us to accurately and efficiently quantify the restoration of cytokine production by HIV-specific CD4 T cells from HIV infected subjects.
Here, we depict an in vitro experimental design that enables measurements of cytokine secretion by HIV-specific CD4 T cells and their impact on other cell subsets. CD8 T cells were depleted from whole blood and remaining PBMCs were isolated via Ficoll separation method. CD8-depleted PBMCs were then incubated with blocking antibodies against PD-L1 and/or IL-10R&#945; and, after stimulation with an HIV-1 Gag peptide pool, cells were incubated at 37 &#176;C, 5% CO2. After 48 hr, supernatant was collected for cytokine analysis by beads arrays and cell pellets were collected for either phenotypic analysis using flow cytometry or transcriptional analysis using qRT-PCR. For more detailed analysis, different cell populations were obtained by selective subset depletion from PBMCs or by sorting using flow cytometry before being assessed in the same assays. These methods provide a highly sensitive and specific approach to determine the modulation of cytokine production by antigen-specific T-helper cells and to determine functional interactions between different populations of immune cells.

In Vitro Assay to Evaluate the Impact of Immunoregulatory Pathways on HIV-specific CD4 T Cell Effector Function

We developed an in vitro assay to investigate the role of immunoregulatory pathways in the regulation of cytokine secretion by HIV-specific CD4 T cells.

시험 관내 분석에서 HIV 특정 CD4 T 세포의 이펙터 기능에 면역 경로의 영향을 평가하기

T cell exhaustion is a major factor in failed pathogen clearance during chronic viral infections. Immunoregulatory pathways, such as PD-1 and IL-10, are ...

Isolation and Ex Vivo Culture of V&#948;1+CD4+&#947;&#948; T Cells, an Extrathymic &#945;&#946;T-cell Progenitor

The thymus, the primary organ for the generation of &#945;&#946; T cells and backbone of the adaptive immune system in vertebrates, has long been considered as the only source of &#945;&#946;T cells. Yet, thymic involution begins early in life leading to a drastically reduced output of na&#239;ve &#945;&#946;T cells into the periphery. Nevertheless, even centenarians can build immunity against newly acquired pathogens. Recent research suggests extrathymic &#945;&#946;T cell development, however our understanding of pathways that may compensate for thymic loss of function are still rudimental. &#947;&#948; T cells are innate lymphocytes that constitute the main T-cell subset in the tissues. We recently ascribed a so far unappreciated outstanding function to a &#947;&#948; T cell subset by showing that the scarce entity of CD4+ V&#948;1+&#947;&#948; T cells can transdifferentiate into &#945;&#946;T cells in inflammatory conditions. Here, we provide the protocol for the isolation of this progenitor from peripheral blood and its subsequent cultivation. V&#948;1 cells are positively enriched from PBMCs of healthy human donors using magnetic beads, followed by a second step wherein we target the scarce fraction of CD4+ cells with a further magnetic labeling technique. The magnetic force of the second labeling exceeds the one of the first magnetic label, and thus allows the efficient, quantitative and specific positive isolation of the population of interest. We then introduce the technique and culture condition required for cloning and efficiently expanding the cells and for identification of the generated clones by FACS analysis. Thus, we provide a detailed protocol for the purification, culture and ex vivo expansion of CD4+ V&#948;1+&#947;&#948; T cells. This knowledge is prerequisite for studies that relate to this &#945;&#946;T cell progenitor`s biology and for those who aim to identify the molecular triggers that are involved in its transdifferentiation.

Isolation and Ex Vivo Culture of V&amp;#948;1+CD4+&amp;#947;&amp;#948; T Cells, an Extrathymic &amp;#945;&amp;#946;T-cell Progenitor

Here, we provide an optimized protocol for the isolation and cloning of the scarce T-cell entity of peripheral V&#948;1+CD4+ T cells that is, as we showed recently, an extrathymic &#945;&#946; T-cell progenitor. This technique allows to quantitatively isolate, clone and efficiently expand these cells in ex vivo culture.

분리 및<em&gt; 전의 VIVO</emVδ1의&gt; 문화<sup&gt; +</sup&gt; CD4<sup&gt; +</sup&gt; γδ T 세포, Extrathymic αβT 세포 선조

The thymus, the primary organ for the generation of &#945;&#946; T cells and backbone of the adaptive immune system in vertebrates, has long been ...

Imaging CD4 T Cell Interstitial Migration in the Inflamed Dermis

The ability of CD4 T cells to carry out effector functions is dependent upon the rapid and efficient migration of these cells in inflamed peripheral tissues through an as-yet undefined mechanism. The application of multiphoton microscopy to the study of the immune system provides a tool to measure the dynamics of immune responses within intact tissues. Here we present a protocol for non-invasive intravital multiphoton imaging of CD4 T cells in the inflamed mouse ear dermis. Use of a custom imaging platform and a venous catheter allows for the visualization of CD4 T cell dynamics in the dermal interstitium, with the ability to interrogate these cells in real-time via the addition of blocking antibodies to key molecular components involved in motility. This system provides advantages over both in vitro models and surgically invasive imaging procedures. Understanding the pathways used by CD4 T cells for motility may ultimately provide insight into the basic function of CD4 T cells as well as the pathogenesis of both autoimmune diseases and pathology from chronic infections.

The mechanisms that govern the interstitial motility of CD4 effector T cells at sites of inflammation are relatively unknown. We present a non-invasive approach to visualize and manipulate in vitro-primed CD4 T cells in the inflamed ear dermis, allowing for study of the dynamic behavior of these cells in situ.

염증이 진피의 이미징 CD4 T 세포 간질 마이그레이션

The ability of CD4 T cells to carry out effector functions is dependent upon the rapid and efficient migration of these cells in inflamed peripheral ...

In Vitro Differentiation of Human CD4+FOXP3+ Induced Regulatory T Cells (iTregs) from Na&#239;ve CD4+ T Cells Using a TGF-&#946;-containing Protocol

Regulatory T cells (Tregs) are an integral part of peripheral tolerance, suppressing immune reactions against self-structures and thus preventing autoimmune diseases. Clinical approaches to adoptively transfer Tregs, or to deplete Tregs in cancer, are underway with promising first outcomes. 
Because the number of naturally occurring Tregs (nTregs) is very limited, studying certain Treg features using in vitro induced Tregs (iTregs) can be advantageous. To date, the best although not absolutely specific protein marker to delineate Tregs is the transcription factor FOXP3. Despite the importance of Tregs including non-redundant roles of peripherally induced Tregs, the protocols to generate iTregs are currently controversial, particularly for human cells. This protocol therefore describes the in vitro differentiation of human CD4+FOXP3+ iTregs from human na&#239;ve T cells using a range of Treg-inducing factors (TGF-&#946; plus IL-2 only, or their combination with retinoic acid, rapamycin or butyrate) in parallel. It also describes the phenotyping of these cells by flow cytometry and qRT-PCR. 
These protocols result in reproducible expression of FOXP3 and other Treg signature genes and enable the study of general FOXP3-regulatory mechanisms as well as protocol-specific effects to delineate the impact of certain factors. iTregs can be utilized to study various phenotypic aspects as well as molecular mechanisms of Treg induction. Detailed molecular studies are facilitated by relatively large cell numbers that can be obtained. 
A limitation for the application of iTregs is the relative instability of FOXP3 expression in these cells compared to nTregs. iTregs generated by these protocols can also be used for functional assays such as studying their suppressive function, in which iTregs induced by TGF-&#946; plus retinoic acid and rapamycin display superior suppressive activity. However, the suppressive capacity of iTregs can differ from nTregs and the use of appropriate controls is crucial.

&lt;em&gt;In Vitro&lt;/em&gt; Differentiation of Human CD4&lt;sup&gt;+&lt;/sup&gt;FOXP3&lt;sup&gt;+&lt;/sup&gt; Induced Regulatory T Cells (iTregs) from Na&amp;#239;ve CD4&lt;sup&gt;+&lt;/sup&gt; T Cells Using a TGF-&amp;#946;-containing Protocol

This protocol describes the reproducible generation and phenotyping of human induced regulatory T cells (iTregs) from na&#239;ve CD4+ T cells in vitro. Different protocols for FOXP3 induction allow for the study of specific iTreg phenotypes obtained with respective protocols.

TGF-β 함유 프로토콜을 사용하여 나이브 CD4 + T 세포에서 인간의 CD4 + Foxp3의 + 유도 규제 T 세포 (iTregs)의 체외 분화

Regulatory T cells (Tregs) are an integral part of peripheral tolerance, suppressing immune reactions against self-structures and thus preventing ...

An In Vivo Mouse Model to Measure Na&#239;ve CD4 T Cell Activation, Proliferation and Th1 Differentiation Induced by Bone Marrow-derived Dendritic Cells

Quantification of na&#239;ve CD4 T cell activation, proliferation, and differentiation to T helper 1 (Th1) cells is a useful way to assess the role played by T cells in an immune response. This protocol describes the in vitro differentiation of bone marrow (BM) progenitors to obtain granulocyte macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) derived-dendritic cells (DCs). The protocol also describes the adoptive transfer of ovalbumin peptide (OVAp)-loaded GM-CSF-derived DCs and na&#239;ve CD4 T cells from OTII transgenic mice in order to analyze the in vivo activation, proliferation, and Th1 differentiation of the transferred CD4 T cells. This protocol circumvents the limitation of purely in vivo methods imposed by the inability to specifically manipulate or select the studied cell population. Moreover, this protocol allows studies in an in vivo environment, thus avoiding alterations to functional factors that may occur in vitro and including the influence of cell types and other factors only found in intact organs. The protocol is a useful tool for generating changes in DCs and T cells that modify adaptive immune responses, potentially providing important results to understand the origin or development of numerous immune associated diseases.

An &lt;em&gt;In Vivo&lt;/em&gt; Mouse Model to Measure Na&amp;#239;ve CD4 T Cell Activation, Proliferation and Th1 Differentiation Induced by Bone Marrow-derived Dendritic Cells

Here, we present a protocol for the in vivo determination of na&#239;ve CD4 T cell (T cell) activation, proliferation, and Th1 differentiation induced by GM-CSF bone marrow (BM)-derived dendritic cells (DCs). In addition, this protocol describes BM and T-cell isolation, DC generation, and DC and T-cell adoptive transfer.

Vivo에서 마우스 모델을 측정 순진한 CD4 T 세포 활성화, 확산 및 골 수 유래 수지상 세포에 의해 유도 된 Th1 차별화

Quantification of na&#239;ve CD4 T cell activation, proliferation, and differentiation to T helper 1 (Th1) cells is a useful way to assess the role played ...

Determination of Regulatory T Cell Subsets in Murine Thymus, Pancreatic Draining Lymph Node and Spleen Using Flow Cytometry

Our immune system consists of a number and variety of immune cells including regulatory T cells (Treg) cells. Treg cells can be divided into two subsets, thymic derived Treg (tTreg) cells and peripherally induced Treg (pTreg) cells. They are present in different organs of our body and can be distinguished by specific markers, such as Helios and Neuropilin 1. It has been reported that tTreg cells are functionally more suppressive than pTreg cells. Therefore, it is important to determine the proportion of both tTreg and pTreg cells when investigating heterogeneous cell populations. Herein, we collected thymic glands, pancreatic draining lymph nodes and spleens from normoglycemic non-obese diabetic mice to distinguish tTreg cells from pTreg cells using flow cytometry. We manually prepared single cell suspensions from these organs. Fluorochrome conjugated surface CD4, CD8, CD25, and Neuropilin 1 antibodies were used to stain the cells. They were kept in the fridge overnight. On the next day, the cells were stained with fluorochrome conjugated intracellular Foxp3 and Helios antibodies. These markers were used to characterize the two subsets of Treg cells. This protocol demonstrates a simple but practical way to prepare single cells from murine thymus, pancreatic draining lymph node and spleen and use them for subsequent flow cytometric analysis.

Herein, we present a protocol to prepare single cells from murine thymus, pancreatic draining lymph node and spleen to further study these cells using flow cytometry. In addition, this protocol was used for determining the subsets of regulatory T cells using flow cytometry.

Murine Thymus, 림프절, 비장 Cytometry 사용 하 여 배출 췌 장 하위 집합 규제 T 세포의 결정

Our immune system consists of a number and variety of immune cells including regulatory T cells (Treg) cells. Treg cells can be divided into two subsets, ...