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Resumo

Neste vídeo, demonstramos o procedimento de ativação CD40-e expansão de células B murino de esplenócitos de camundongos C57BL / 6, que pode ser usado como um modelo de células apresentadoras de antígenos (APC) para estudar a indução de imunidade.

Resumo

A investigação sobre células B CD40 mostrou que melhora a sua capacidade de ativação apresentação de antígenos. Quando estimuladas com interleucina-4 e CD40 ligante (CD40L), células B humano pode ser expandido sem dificuldades a partir de pequenas quantidades de sangue periférico dentro de 14 dias para grandes quantidades de altamente pura CD40 células-B (> 10

Protocolo

O protocolo para a geração de células CD40 de murino ativado B (mCD40B) de esplenócitos é dividido em duas partes: Parte A demonstra a preparação do ligante CD40 de murino (CD40L) expressando células HeLa (tmuCD40L HeLa), que será utilizado como placa obrigado células alimentadoras. Parte B descreve a real cultura CD40-B murinos.

A. Preparação de células alimentadoras (tmuCD40L HeLa)

O HeLa tmuCD40L é uma linha de células epiteliais humanas aderente, que nunca deve tornar-se completamente confluentes. As células são, portanto, dividido por duas vezes por semana. Cultura há mais de seis semanas não é recomendado.

  1. Remova o meio de idade a partir da cultura primária com uma pipeta estéril e lavar as células com 10 mL de PBS 1x. Aspirar o PBS após a lavagem.
  2. Adicionar 4 mL de 1x Tripsina / EDTA em um frasco de 75 cm 2 por 10-15 minutos a 37 ° C. Use tocando suave para retirar as células.
  3. Adicionar 10 mL de meio de tipo selvagem e giratória suavemente para parar a digestão com tripsina.
  4. Transferir a suspensão de células em um tubo de 50 mL com uma pipeta estéril e girar a células para baixo a 265 xg por 7 minutos.
  5. Remover o sobrenadante e ressuspender o pellet celular em 10 mL de meio de tipo selvagem. Conte o número de células de uma alíquota da suspensão de células e preparar três tubos de 50 mL com o número adequado de células:
    1. 2,5 x 10 6 células para subcultura
    2. 0,4 x 10 6 células / poço de irradiação utilizadas para a cultura de células murinas CD40-B
    3. restante para congelar (se necessário).
  6. Spin the células para baixo a 265 xg por 7 minutos.
  7. Remover o sobrenadante.
    1. Para subcultura: ressuspender 2,5 x 10 6 células em 10 mL de médio seleção em um frasco de 75 centímetros de cultura de células 2 (densidade celular de 2,5 x 10 5 células / mL) e incubar as células a 37 ° C com 5% de CO 2. Dividir as células duas vezes por semana.
    2. Para a cultura de células murinas CD40-B: Você precisa de 2,4 x 10 6 células para uma placa de 6 poços. Ressuspender as células HeLa em meio tmuCD40L tipo selvagem, a uma densidade de 0,2 x 10 6 células / mL e irradiar-los em 78 Gy. Placa de 2 mL da suspensão de células em cada poço e incube-os a 37 ° C com 5% de CO 2. Utilize este placas preparado para a estimulação de células B, quando as células HeLa são tmuCD40L aderente (pelo menos 4 horas: verificar a aderência do uso do microscópio, não espere mais de 24 h para iniciar a estimulação de células B). (Continue com B.)

B. murino CD40-cultura de células B

I. Elaboração de esplenócitos para CD40-estimulação (dia 0):

Por favor note: antes de continuar determinar que as células de alimentação são aderentes. Sempre adicionar novas soluções de murino imediatamente interleucina-4, β-mercaptoetanol e ciclosporina A para o meio de crescimento antes do uso.

  1. Dissecar baço de camundongos C57BL / 6 (haplótipo H-2b) e lavá-la duas vezes em 10-20 mL DMEM suplementado com Gentamicina [15μg/mL], transferindo-o com uma ponta de pipeta 10 ml de um tubo para outro. Evitar a transferência de contaminantes (por exemplo, o cabelo) do mouse. Mince baço por passagem através de um filtro de células (100μm) e enxaguar com outra peneira de 10 mL de meio. Spin down esplenócitos a 265 xg por 7 min em temperatura ambiente, ressuspender-los em 7ml muCD40-B médio de células, e os linfócitos separado por centrifugação Ficoll densidade. Para fazê-lo células da camada em 5 mL Mouse-Pancoll (pré-aquecido em temperatura ambiente) em um tubo de 15 ml e centrifugar a 450 xg por 30 min sem freio à temperatura ambiente.
  2. Empate fora de a maioria da camada superior, deixando intacta a camada de linfócitos na interface. Transferência de camada de linfócitos a um tubo de 50 mL frescos, lave uma vez com 30mL DMEM com Gentamicina [15μg/mL] para baixo, girando a 265 xg por 7 min para remover outras células. Descartar o sobrenadante e ressuspender as células em 10 mL de mCD40-B médio de lavar roupa. Determinar o número de células em uma alíquota da suspensão de células. Determine o número de células por contagem uma alíquota da suspensão de células.
  3. Spin para baixo a quantidade necessária de células em 265 xg por 7 minutos. Para uma placa de 6 poços 5 x 10 6 células / poço são necessários, portanto, 30 x 10 6 células por placa.
  4. Remover o sobrenadante e ressuspender os linfócitos em 1,25 x 10 6 células / mL em mCD40-B meio de cultura fresco suplementado com 1 U / mL de IL-4 como fator de crescimento, 100 mM β-mercaptoetanol e 0,63 mcg / mL A ciclosporina para prevenir conseqüência de células-T (concentrações indicados referem-se a um meio de cultura mL!).
  5. Retire o sobrenadante da placa de 6 poços de pré-incubados com células HeLa tmuCD40L.
  6. Delicadamente adicionar 4 mL da suspensão de linfócitos (1,25 x 10 6 células / mL) a cada poço da placa de 6 poços.
  7. Incubar a placa a 37 ° C com 5% de CO 2.
  8. No dia 3 reculture as células (Continue com II.1.).

II. Subcultura de células mCD40B (dia 3 e, em seguida, duas vezes por semana):

  1. Colheita aglomerado de células mCD40B por vigorosamente pipetando para cima e para baixo com uma pipeta de 10 mL e piscina-los em um tubo de 50 mL.
  2. Girar em 265 xg por 7 minutos e substituir completamente o sobrenadante com mCD40-B médio de lavar roupa. Contando a quantidade de células de uma alíquota, gire a células para baixo a 265 xg por 7 minutos. Ressuspender as células em mCD40B mCD40-B meio de cultura a uma concentração de 0,75 x 10 6 células / mL.
  3. Adicionar novas soluções de murino interleucina-4 em uma concentração de 1 U / mL, 100 Mercaptoethanol β-M e 0,63 mcg / mL ciclosporina A ao meio.
  4. Remover o sobrenadante de uma placa de 6 poços de pré-incubados com células irradiadas tmuCD40L HeLa.
  5. Delicadamente adicionar 4 mL da suspensão de células mCD40B (0,75 x 10 6 células / mL) a cada poço da placa de 6 poços.
  6. Incubar as placas a 37 ° C com 5% de CO 2.
  7. Novamente subcultura as células a cada 3-4 dias para acabar com alta pureza murino células CD40-B ativadas após um total de 14 dias.

C. Resolução de problemas: O que se CD40-B células não crescem?

  1. Você tem verificado para CD40 ligante expressão de células de alimentação?
  2. São a placa-bound células alimentadoras usado para a estimulação com mais de 24 horas?
  3. Existe uma contaminação com micoplasma?
  4. Foi a solução interleucina-4 utilizada para a suplementação recém descongeladas e que teve a atividade biológico adequado?
  5. Foi β-mercaptoetanol e ciclosporina A adicionado na concentração correta?

figure-protocol-7223
Figura 1a.

figure-protocol-7353
Figura 1b.

figure-protocol-7483
Figura 1d.

figure-protocol-7613
Figura 2.

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Discussão

Modificações deste protocolo são possíveis, especialmente quanto à origem do estímulo-CD40 e do tipo de estirpe do rato utilizado, rendendo também na geração eficiente de células CD40 de murino B ativadas. Ahmadi et al. têm mostrado resultados semelhantes para fibroblastos de rato transfectadas com murino CD40 ligante. Nesta apresentação contexto de xeno-antígeno pode ser excluída com certeza, mas estudos intensivos em matéria de segurança e toxicidade in vivo não deu sinais de inflamação ou...

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Divulgações

Os experimentos foram realizados em conformidade com as diretrizes nacionais e europeus de manter laboratório animal. Referindo-se a lei alemã de bem-estar dos animais, os animais foram controlados regularmente pelas autoridades competentes.

Agradecimentos

Pedimos gentilmente agradecer ao Dr. Clemens Wendtner para fornecer tmuCD40-Ligand-linha celular HeLa.

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Materiais

A. Preparação de Media:

NameCompanyCatalog NumberComments
Alimentador celular médio do tipo selvagem Alimentador meio de seleção de célula
Reagente Concentração Reagente Concentração
RPMI 1640 RPMI 1640
L-Glutamina 300 mcg / mL L-Glutamina 300 mcg / mL
FBS 10% FBS 10%
HEPES 10 mM HEPES 10 mM
Gentamicina 15 mcg / mL Gentamicina 15 mcg / mL
Higromicina B 0,2 mg / mL
mCD40-B médio de lavar mCD40-B meio de cultura
Reagente Concentração Reagente Concentração
D-MEM
D-MEM
L-Glutamina 580 mcg / mL L-Glutamina 580 mcg / mL
Glicose 4,5 mg / mL Glicose 4,5 mg / mL
HEPES 10 mM HEPES 10 mM
Gentamicina 15 mcg / mL Gentamicina 15 mcg / mL


MEM 0,1 mM (1x)


FBS 10%

B. Diversos Reagentes:

Reagente Companhia Despacho n.
RPMI 1640 Invitrogen Gibco REF 21875
D-MEM Invitrogen Gibco REF 41965
Dulbeccos PBS (10x) PAA Cat Não H15-011
Gencin Selecione Delta Arte Sem 7395800
FBS LONZA Cat Não DE14-802C
Tampão HEPES PAA Cat Não S11-001
MEM NEAA Invitrogen Gibco REF 11140
Higromicina B PAA Cat Não P02-015
Recombinante murino Interleucina-4 Immunotools Cat Não 12340045
Ciclosporina A Novartis Cat Não NDC 0078-0109-01
Tripsina / EDTA (10x) Invitrogen Gibco REF 15400-054

Fontes C. Diversos:

Reagente Companhia Despacho n.
Pipeta estéril dicas Sarstedt
6-bem placa NUNC Não Cat 140675
50mL tubo cônico BD Falcon ™ Não Cat 352070
Frasco de cultura de tecidos Sarstedt Cat Não 83.1813.002

Referências

  1. Schultze, J. L. CD40-activated human B cells: an alternative source of highly efficient antigen presenting cells to generate autologous antigen-specific T cells for adoptive immunotherapy. J Clin Invest. 100 (11), 2757-2765 (1997).
  2. Wiesner, M. Conditional immortalization of human B cells by CD40 ligation. PLoS ONE. 3, e1464-e1464 (2008).
  3. Kondo, E. Efficient generation of antigen-specific cytotoxic T cells using retrovirally transduced CD40-activated B cells. J Immunol. 169 (4), 2164-2171 (2002).
  4. Liebig, T. M., Fiedler, A., Zoghi, S., Shimabukuro-Vornhagen, A., Bergwelt-Baildon, M. S. Generation of human CD40-activated B cells. J Vis Exp. 32, (2009).
  5. von Bergwelt-Baildon, M. CD40-activated B cells express full lymph node homing triad and induce T-cell chemotaxis: potential as cellular adjuvants. Blood. 107 (7), 2786-2789 (2006).
  6. Lapointe, R., Bellemare-Pelletier, A., Housseau, F., Thibodeau, J., Hwu, P. CD40-stimulated B lymphocytes pulsed with tumor antigens are effective antigen-presenting cells that can generate specific T cells. Cancer Res. 63 (11), 2836-2843 (2003).
  7. Ahmadi, T., Flies, A., Efebera, Y., Sherr, D. H. CD40 Ligand-activated, antigen-specific B cells are comparable to mature dendritic cells in presenting protein antigens and major histocompatibility complex class I- and class II-binding peptides. Immunology. 124 (1), 129-140 (2008).
  8. Bergwelt-Baildon, M. S. von Human primary and memory cytotoxic T lymphocyte responses are efficiently induced by means of CD40-activated B cells as antigen-presenting cells: potential for clinical application. Blood. 99 (9), 3319-3325 (2002).
  9. Kondo, E. CD40-activated B cells can be generated in high number and purity in cancer patients: analysis of immunogenicity and homing potential. Clin Exp Immunol. 155 (2), 249-256 (2009).
  10. Schultze, J. L., Grabbe, S., von Bergwelt-Baildon, M. S. DCs and CD40-activated B cells: current and future avenues to cellular cancer immunotherapy. Trends Immunol. 25 (12), 659-664 (2004).
  11. Mayr, C. Chromosomal translocations are associated with poor prognosis in chronic lymphocytic leukemia. Blood. 107 (2), 742-751 (2006).
  12. Mason, N. J. RNA-loaded CD40-activated B cells stimulate antigen-specific T-cell responses in dogs with spontaneous lymphoma. Gene Ther. 15 (13), 955-965 (2008).

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