Prepare Reagentes
Nota: Todos os PBS contém Ca 2 + e Mg 2 +
- Reagente de detecção
Adicionar 20Hm 7-amino-4-clorometil cumarina, t-BOC-Leucina-metionina amida (BOC-LM-CMAC) a temperatura ambiente PBS. Cada suspensão de células exigirá reagente de detecção 2 ml. - Paraformaldeído 1% (células fixas)
Diluir solução stock 4% paraformaldeído em PBS à temperatura ambiente. Paraformaldeído 1mL alíquota de 1% a cada tubo FACS. Três tubos FACS são necessários para cada condição experimental (ex. 32Dkit, 32Dkit + PD150606, 32Dkit + PD98059 precisará de 9 tubos FACS) - PD150606 (inibidor da calpaína)
Reconstituir PD150606 em DMSO para uma concentração final de 100mM. Proteger este reagente e todas as células tratadas com da luz para a duração do experimento. - PD98059 (MEK1 inibidor)
Reconstituir PD98059 em DMSO para uma concentração final de 50mM.
Prepare Células
- Cultivar células 32Dkit menos 5 x 10 5 a 1 x 10 6 células por ml em Opti-MEM meio suplementado com 5% de soro fetal bovino, WEHI-3 sobrenadante como fonte de IL-3 (ou qualquer outra fonte de IL-3, tais como a proteína recombinante), 0,1% 2-mercaptoetanol e antibióticos.
- Coletar 12 x 10 6 células 32Dkit em três tubos de 15mL Falcon (4 x 10 6 células por tubo).
- Agregar as células a 1000 RPM por 5 minutos a 15 ° C.
- Aspirar o sobrenadante. Ressuspender as células em 2 mL PBS à temperatura ambiente.
- Tratar uma suspensão de células com 50 ìm PD150606. Certifique-se a amostra é protegido da luz, cobrindo o tubo Falcon com papel alumínio. Vortex brevemente, em seguida, incubar por 20-30 minutos em temperatura ambiente no escuro.
- Tratar da suspensão de células em segundo lugar com 20Hm PD98059. Placa de células em um prato de 35 milímetros de cultura de tecidos e incubar por 2 horas a 37 ° C.
Calpaína Ensaio em células fixas
- Enquanto as amostras são incubadas com PD150606, começa o ensaio calpaína nas amostras não tratadas. Comece por adicionar o reagente de detecção de 2 ml para cada suspensão de células. Imediatamente adicionar 1mL da suspensão de células / mistura de reagentes de detecção para os tubos previamente preparado FACS com paraformaldeído 1% (0 ponto tempo minutos).
- Incubar suspensões de células com o reagente de detecção por 5 minutos em temperatura ambiente. Em seguida, adicione 1 mL da suspensão de células para um tubo com 1 mL FACS paraformaldeído 1%.
- Continue a incubar a suspensões de células com a mistura de detecção para um adicional de 5 minutos à temperatura ambiente. Em seguida, adicione 1 mL da suspensão de células para um tubo com 1 mL FACS paraformaldeído 1%.
- Repita ensaio calpaína em células 32Dkit que foram tratados com inibidores.
- Corrigir as células durante a noite no escuro a 4 ° C.
- No dia seguinte, agregar as células a 1800 RPM por 5 minutos a 15 ° C.
- Aspirar o sobrenadante. Ressuspender as células em 750uL PBS. Coloque as células no gelo e manter no escuro.
Aquisição de dados para células fixas
- Analisar as células usando um LSR II (BD Bioscience). Os filtros são definidos para o Xcyte Lightwave (UV) laser, linha de excitação 355nm e potência do laser 25mW, emissão de 405 e 450 nm para substrato e produto, respectivamente. Filtros de banda passante para substrato e produto são 405/20 e 450/50. Filtros de passe longo para substrato e produto são 405 e 450. A tensão PMT foi fixado em 350-375 para o substrato e 325-350 para o produto.
- Set-up um experimento FACSDiva BD com os seguintes parâmetros: dispersão para a frente; dispersão lateral; Indo-1 Blue (log); Indo-1 Violet (log). Na planilha configurar os seguintes gráficos: dispersão frente vs lado gráfico de pontos de dispersão com um portão de células vivas (Figura 1a), Indo-1 histograma Azul, Indo-1 histograma Violet, Indo-1 Blue vs Violet Indo-1 gráfico de pontos.
- Calibrar o II LSR com AlignFlow e AlignFlow mais partículas fluorescentes (Invitrogen). A tensão PMT deve ser ajustada para colocar o pico do histograma talão de fluorescência no mesmo canal antes de cada experimento.
- Começar a adquirir os dados usando as células 32Dkit no ponto de tempo 0 minuto. Ajustar tensões parâmetro como necessário. Adquirir e registrar 10 mil eventos por amostra.
- Repita aquisição para cada amostra, enxaguar a máquina com tampão FACS entre cada tubo.
- Exportar os dados. Garantir LSR II é limpo de acordo com as diretrizes do instituto.
Calpaína Ensaio em células vivas
- Prepare as suspensões de células como acima, sem PD150606. Trazer as amostras para o II LSR e configurar filtros e parâmetros acima. Configure a planilha como acima. Incluir um gráfico de pontos grande mostrando Indo-1 Blue vs tempo. Definir o programa para adquirir o máximo de númerosmero de eventos (sem portão stop).
- Adicionar 50 ìm suspensão de células PD150606 a uma das células 32Dkit. Manter a amostra no escuro e incubar a temperatura ambiente por 20-30 minutos.
- Começar a adquirir dados sobre a suspensão de células 32Dkit sem PD150606. Use uma baixa taxa de fluxo de 200-300 eventos por segundo. Após 30 segundos a 1 minuto retire o tubo da máquina. Adicionar 20Hm BOC-LM-CMAC para as células. Vortex brevemente em seguida, continuar a aquisição dos dados.
- Aquisição de dados por 10-20 minutos ou até os planaltos atividade calpaína.
- Repita os passos 3 e 4 com as células tratadas com 32Dkit PD150606.
- Exportar os dados. Garantir LSR II é limpo de acordo com as diretrizes do instituto.
Calpaína Assay no Complexo Populações (Mixed) Célula
* Esta experiência vai identificar as células 32Dkit em uma suspensão de células colhidas de um baço mouse.
- Colheita do baço de cada rato. Lisar as células vermelhas do sangue com NH 4 Cl por 10 minutos em temperatura ambiente.
- Preparar suspensões única célula em 2 mL de PBS.
- Divida cada suspensão de células em dois. Tratar uma suspensão de células com 50 ìm PD150606 por 20-30 minutos em temperatura ambiente no escuro.
- Proceda como acima para o ensaio calpaína em células Fixo (Passos 1-6)
- Aspirar o sobrenadante. Lavar as células em 500μL de PBS. Aspirar o sobrenadante.
- Ressuspender as células em tampão coloração 200μL com BSA 2%. Incubar por 15 minutos em temperatura ambiente.
- Prepare o anticorpo primário (anti-camundongo FITC CD117). O anticorpo deve ser utilizada na diluição de 1:200 na coloração buffer. Certifique-se o anticorpo é mantido no escuro.
- Adicionar 200μL anticorpo primário para as células. Incubar por 30 minutos em temperatura ambiente no escuro.
- Adicionar 400μL de PBS para aumentar o volume de citometria de fluxo. Coloque as células no gelo e manter no escuro.
- Proceda conforme descrito em adquirir dados para Células Fixo. Adicionar FITC aos parâmetros e incluem um histograma para FITC na planilha.
Análise e Resultados Representante
- Analisar os dados usando programa FlowJo (Treestar). Portão em células vivas com base no perfil de dispersão para a frente e lateral (Figura 1a). Determinar a fluorescência significa para Indo-Azul a partir do portão de células viáveis (Figura 1b).
- a) Para a população mista de células
- uso de fluorescência FITC em parcelas de histogramas e de ponto para identificar a população 32Dkit
- Determinar a fluorescência significa para Indo-Azul da população 32Dkit
- Use Microsoft Excel para o gráfico de fluorescência média (Figura 2a). Calcule a inclinação da linha entre 5 e 10 minutos. Inclinação do gráfico como um gráfico de barras para determinar a atividade calpaína nas células (Figura 2b).

Figura 1a. Determinação de células vivas com base no perfil de dispersão para a frente e lateral.

Figura 1b. Variação média de fluorescência mais de 10 minutos curso de tempo.

Figura 2a gráfico. Representante da fluorescência média.

Figura 2b. Calpaína atividade em células 32Dkit com inibidores.