JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

В этой статье мы подробно протокол для измерения кальпаин деятельность в фиксированных и живых клеток методом проточной цитометрии.

Аннотация

Кальпаинов повсеместно внутриклеточный кальций-чувствительным, нейтральных протеаз цистеина

протокол

Подготовка реагентов

Примечание: Все PBS содержит Са 2 + и Mg 2 +

  1. Обнаружение реагент
    Добавить 20 мкм 7-амино-4-хлорметил кумарин, т-ВОС-лейцин-метионин амид (ВОС-LM-КЦР) до комнатной температуры PBS. Каждая ячейка подвески потребует 2 мл реагента обнаружения.
  2. 1% Параформальдегид (Fixed клеток)
    Развести 4% раствора параформальдегида акции при комнатной температуре PBS. Алиготе 1 мл 1% параформальдегида в каждую пробирку СУИМ. Три FACS труб, необходимых для каждого экспериментальных условиях (например, 32Dkit, 32Dkit + PD150606, 32Dkit + PD98059 понадобится 9 FACS труб)
  3. PD150606 (кальпаин ингибитор)
    Развести PD150606 в ДМСО в конечной концентрации 100 мм. Защитить этот реагент и все клетки, обработанные с ним от света на протяжении всего эксперимента.
  4. PD98059 (MEK1 ингибитор)
    Развести PD98059 в ДМСО в конечной концентрации 50 мМ.

Подготовка клетки

  1. Расти 32Dkit клеток на 5 х 10 5 до 1 х 10 6 клеток на мл в Opti-MEM среде с 5% эмбриональной телячьей сыворотки, WEHI-3 супернатант в качестве источника ИЛ-3 (или любой другой источник для ИЛ-3 таких как рекомбинантный белок), 0,1% 2-меркаптоэтанола и антибиотики.
  2. Соберите 12 х 10 6 32Dkit клетки на три 15 мл пробирки Сокол (4 х 10 6 клеток на трубку).
  3. Гранул клеток при 1000 оборотов в минуту в течение 5 минут при 15 ° C.
  4. Аспирируйте супернатант. Ресуспендируют клеток в 2 мл PBS комнатной температуре.
  5. Лечить одну ячейку подвеска с 50 мкм PD150606. Обеспечить образец защищенном от света, покрывая трубки Сокол с алюминиевой фольгой. Vortex кратко, то инкубировать в течение двадцати до тридцати минут при комнатной температуре в темноте.
  6. Лечить второй суспензии клеток с 20 мкм PD98059. Пластина клеток в 35-мм блюдо культуры тканей и инкубировать в течение 2 часов при температуре 37 ° C.

Кальпаин Пробирной в основной клетки

  1. Хотя образцы инкубации с PD150606, начинают кальпаин анализа на необработанных образцах. Начните с добавлением 2 мл реагента обнаружения каждой клеточной суспензии. Сразу же добавить 1 мл клеточной суспензии / смесь реагент для обнаружения ранее подготовленный FACS труб с 1% параформальдегида (0 минут временной точке).
  2. Инкубируйте клеточные суспензии с обнаружением реагента в течение 5 минут при комнатной температуре. Затем добавить 1 мл клеточной суспензии в трубке FACS с 1 мл 1% параформальдегида.
  3. Продолжить инкубации суспензии клеток с обнаружением смеси для дополнительных 5 минут при комнатной температуре. Затем добавить 1 мл клеточной суспензии в трубке FACS с 1 мл 1% параформальдегида.
  4. Повторите кальпаин анализа на 32Dkit клетки, которые были обработаны с ингибиторами.
  5. Fix клетки на ночь в темноте при 4 ° C.
  6. На следующий день гранулах клетки при 1800 оборотов в течение 5 минут при 15 ° C.
  7. Аспирируйте супернатант. Ресуспендируют клеток в 750uL PBS. Место клетки на льду и держать в темноте.

Сбор данных для фиксированной клетки

  1. Анализ клеток с использованием LSR II (BD Bioscience). Фильтры устанавливаются для Lightwave Xcyte (УФ) лазера, линии возбуждения 355nm и мощности лазера 25mW, выброс 405 и 450 нм для субстрата и продукта соответственно. Полосовой фильтр для субстрата и продукта 405/20 и 450/50. Длинные фильтрами для субстрата и продукта являются 405 и 450. Напряжения ФЭУ был установлен на 350-375 для подложки и 325-350 для продукта.
  2. Настройка эксперимента BD FACSDiva со следующими параметрами: прямое рассеяние; стороны разброс; индо-1 Blue (журнал); индо-1 фиолетовый (журнал). На листе созданы следующие графы: вперед по сравнению с разбросом стороны разброс точка участка с ворот на живые клетки (рис. 1а), индо-1 Синяя гистограммы, индо-1 Фиолетовый гистограммы, индо-1 Синяя против индо-1 Фиолетовый точкой сюжета.
  3. Калибровка ЛСР II с AlignFlow и AlignFlow плюс флуоресцентные шарики (Invitrogen). Напряжения ФЭУ должен быть отрегулирован на пике бусинка флуоресценции гистограммы в том же самом канале перед каждым экспериментом.
  4. Начните приобретения данных с использованием 32Dkit клеток в 0 момент времени минуте. Настройка параметров напряжения по мере необходимости. Приобретение и записи 10000 событий в образце.
  5. Повторите приобретение для каждого образца, полоскания машина с FACS буфером между каждую пробирку.
  6. Экспорт данных. Обеспечить ЛСР II очищается в соответствии с руководящими принципами института.

Кальпаин Пробирной в живых клетках

  1. Подготовка клеточные суспензии, как и раньше, без каких-либо PD150606. Принесите образцы ЛСР II и настроить фильтры и параметры, как указано выше. Настройка листа как указано выше. Включите большой участок точка показывает индо-1 Синяя зависимости от времени. Установите программу приобрести максимальное количество цилиндровBER событий (без стоп-ворота).
  2. Добавить 50 мкм PD150606 одной клеточной суспензии из 32Dkit клеток. Держите образца в темноте и инкубировать при комнатной температуре в течение 20-30 минут.
  3. Начните, собирающих данные о 32Dkit суспензии клеток, не PD150606. Используйте низкий расход 200-300 событий в секунду. По истечении 30 секунд до 1 минуты удалить трубку из машины. Добавить 20 мкм ВОС-LM-CMAC к клеткам. Vortex кратко затем продолжить приобретение данных.
  4. Приобретать данных в течение 10-20 минут или до плато деятельности кальпаин.
  5. Повторите шаги 3 и 4 с 32Dkit клетках, обработанных PD150606.
  6. Экспорт данных. Обеспечить ЛСР II очищается в соответствии с руководящими принципами института.

Кальпаин Пробирной в сложных (смешанных) клеточных популяций

* Этот эксперимент будет определять 32Dkit клеток в суспензии клеток найденным мыши селезенки.

  1. Урожай селезенки от каждой мыши. Lyse эритроцитов с NH 4 Cl в течение 10 минут при комнатной температуре.
  2. Подготовка одного клеточные суспензии в 2 мл PBS.
  3. Разделить каждую клеточную суспензию на две части. Лечить 1 клеточной суспензии с 50 мкм PD150606 в течение 20-30 минут при комнатной температуре в темноте.
  4. Выполните выше кальпаин Пробирной в основной клетки (шаги 1-6)
  5. Аспирируйте супернатант. Вымойте клеток в 500 мкл PBS. Аспирируйте супернатант.
  6. Ресуспендируют клеток в 200 мкл буфера окрашивания 2% BSA. Инкубировать 15 минут при комнатной температуре.
  7. Подготовка первичных антител (FITC анти-CD117 мыши). Антитела должны быть использованы в разведении 1:200 в окрашивании буфера. Обеспечить антител остается в темноте.
  8. Добавить 200 мкл первичных антител к клеткам. Инкубировать 30 минут при комнатной температуре в темноте.
  9. Добавить 400μL PBS увеличить объем для проточной цитометрии. Место клетки на льду и держать в темноте.
  10. Следуйте указаниям на сбор данных для фиксированной ячейки. Добавить FITC к параметрам и включают в себя гистограмму для FITC на листе.

Анализ и представитель Результаты

  1. Анализ данных с помощью FlowJo (Treestar). Ворота на живые клетки на основе прямой и боковой разброс профиля (рис. 1а). Определить среднюю флуоресценции для индо-синий с жизнеспособной ворота ячейки (рис. 1b).
  2. а) При смешанной популяцией клеток
    • использование FITC флуоресценции от гистограмм и точка участков для выявления 32Dkit населения
    • Определить среднюю флуоресценции для индо-Синий 32Dkit населения
  3. Использование Microsoft Excel в графе означает флуоресценции (рис. 2а). Рассчитать наклон линии от 5 до 10 минут. График склоне в виде гистограммы, чтобы определить кальпаин активности клеток (рис. 2б).

figure-protocol-8067
На рисунке 1а. Определение живых клеток на основе прямой и боковой разброс профиля.

figure-protocol-8273
На рисунке 1б. Среднее флуоресценции меняться с течением времени курс 10 минуты.

figure-protocol-8476
На рисунке 2а. Представителю график означает флуоресценции.

figure-protocol-8658
На рисунке 2б. Кальпаин деятельности в 32Dkit клеток с ингибиторами.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Деятельности кальпаин в фиксированных и живых клеток 32Dkit была определена в этом видео протокол. Лечение линию клеток с ингибитором кальпаин PD150606 привело к полному торможению кальпаин активности в клетках. Кроме того, лечение ингибиторами MEK1 PD98059 привело к полному торможению кальпаин ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Поддержке грантов от канадского института исследований в области здравоохранения, лейкемии и лимфомы общества Канады и лимфомы Фонд Канады.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
PBS BOC-LM-CMAC 4% paraformaldehydeInvitrogen

Dissolve 4g paraformaldehyde in 100mL PBS. In fume hood, heat sample with stirring until clear.
Let cool then store at 4°C
PD150606InvitrogenUse freshly reconstituted PD150606 for maximal calpain inhibition.
PD98059Cell Signaling Technology
AlignFlow, AlignFlow plus fluorescent beads FACS tubesInvitrogen
LSR IIBD Biosciences
Supernatant of WEHI-3 cells is used as a source of IL-3 in these experiments. Each collection of WEHI-3 supernatant is titrated to determine the optimal concentration used for 32Dkit cell growth.

Ссылки

  1. Goll, D. E., Thompson, V. F., Li, H., Wei, W., Cong, J. The Calpain System. Physiol. Rev. 83, 731-801 (2003).
  2. Niapour, M., Berger, S. A. Flow Cytometric Measurement of Calpain Activity in Living Cells. Cytometry A. 71A, 475-485 (2007).
  3. Leloup, L., Daury, L., Mazéres, G., Cottin, P. Involvement of the ERK/MAP kinase signalling pathway in milli-calpain activation and myogenic cell migration. The International Journal of Biochemistry and Cell Biology. 39, 1177-1189 (2007).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

41

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены