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Neste Artigo

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Resumo

O método de cultura de órgãos do tipo Trowell tem sido usado para desvendar redes de sinalização complexas que governam o desenvolvimento dentário e, mais recentemente, para estudar a regulação envolvida nas células-tronco do incisivo de camundongos em crescimento contínuo. Modelos animais fluorescentes-repórteres e métodos de imagem ao vivo facilitam análises aprofundadas de células-tronco dentárias e seu microambiente de nicho específico.

Resumo

O desenvolvimento, a função e a regeneração dos órgãos dependem das células-tronco, que residem em espaços anatômicos discretos chamados nichos de células-tronco. O incisivo de camundongo em crescimento contínuo fornece um excelente modelo para estudar células-tronco específicas de tecidos. As células-tronco específicas do tecido epitelial do incisivo estão localizadas na extremidade proximal do dente em um nicho chamado alça cervical. Eles fornecem um influxo contínuo de células para contrabalançar a abrasão constante da ponta auto-afiada do dente. Apresenta-se aqui um protocolo detalhado para o isolamento e cultura da extremidade proximal do incisivo de camundongo que abriga células-tronco e seu nicho. Este é um protocolo de cultura de órgãos do tipo Trowell modificado que permite a cultura in vitro de pedaços de tecido (explantes), bem como as fatias de tecido espesso na interface líquido/ar em um filtro suportado por uma grade metálica. O protocolo de cultura de órgãos descrito aqui permite manipulações teciduais inviáveis in vivo e, quando combinado com o uso de um repórter fluorescente, fornece uma plataforma para a identificação e rastreamento de populações de células discretas em tecidos vivos ao longo do tempo, incluindo células-tronco. Várias moléculas reguladoras e compostos farmacológicos podem ser testados neste sistema quanto ao seu efeito sobre as células-tronco e seus nichos. Isso, em última análise, fornece uma ferramenta valiosa para estudar a regulação e a manutenção das células-tronco.

Introdução

Os incisivos de camundongos crescem continuamente devido à preservação ao longo da vida das células-tronco (SC) que suportam a produção incessante de componentes dentários. Estes incluem SCs epiteliais, que geram ameloblastos produtores de esmalte, e células-tronco mesenquimais (MSCs), que geram odontoblastos produtores de dentina, entre outras células1. Os SCs epiteliais nos incisivos de crescimento contínuo foram inicialmente identificados como células de retenção de rótulo2,3 e, desde então, demonstraram expressar uma série de genes de caule bem conhecidos, incluindo Sox2

Protocolo

Este protocolo envolve o uso de animais e todos os procedimentos foram aprovados pelos Comitês de Ética sobre o Uso e Cuidado de Animais e o Animal Facility da Universidade de Helsinque.

1. Preparação do prato de cultura de órgãos

  1. Realizar todos os procedimentos em um exaustor de fluxo laminar. Limpe as superfícies de trabalho com etanol a 70% e utilize instrumentos e soluções de vidro autoclavado. Esterilize tesouras e outros equipamentos de metal em um esterilizador de contas de vidro.
  2. Preparar filtros normalmente armazenados em etanol a 70%, lavando-os três vezes em 1x PBS para retirada do etanol (

Resultados

Os SCs epiteliais residem em um nicho denominado alça cervical, que se localiza na extremidade proximal do incisivo (Figura 3A). As alças cervicais são estruturas morfologicamente distintas compostas de epitélio interno e externo do esmalte que envolvem o retículo estrelado, um núcleo de células epiteliais frouxamente dispostas (Figura 3B,C). Existem duas alças cervicais em cada incisivo (Figura 3A), mas ape.......

Discussão

A cultura de órgãos in vitro tem sido amplamente utilizada para estudar o potencial indutivo e as interações epitelial-mesenquimais que governam o crescimento e a morfogênese dos órgãos. O laboratório Thesleff demonstrou como adaptar a modificação de Saxén da cultura de órgãos do tipo Trowell e usá-la para estudar o desenvolvimento dentário14. As condições reprodutíveis e os avanços nos repórteres fluorescentes tornaram este um método útil para monitorar a morfogêne.......

Divulgações

Os autores declaram não haver conflitos de interesse.

Agradecimentos

Este estudo foi apoiado pela Fundação Jane e Aatos Erkko.

....

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
1-mL plastic syringes
Disposable 20/26 gauge hypodermic needlesTerumo
DMEMGibco61965-026
Dulbecco's Phosphate-Buffered SalineGibco14287
Extra Fine Bonn ScissorsF.S.T.14084-08
F-12Gibco31765-027
FBS South American (CE)LifeTechn.10270106divide in aliquotes, store at -20°C
Glass bead sterilizer, Steri 250 Seconds-SterilizerSimon Keller Ltd4AJ-6285884
GlutaMAX-1 (200 mM L-alanyl-L-glutamine dipeptide)Gibco35050-038
Isopore Polycarb.Filters, 0,1 um 25-mm diameterMerckMilliporeVCTP02500Store in 70% ethanol at room temperature.
L-Ascobic AcidSigmaA4544-25gdiluted 100 mg/ml in MilliQ, filter strerilized and divided in 20μl aliquotes, store at dark, -20°C
Low melting agaroseTopVisionR0801
Metal gridsCommercially available, or self-made from stainless-steel mesh (corrosion resistant, size of mesh 0.7 mm). Cut approximately 30 mm diameter disk and bend the edges to give 3 mm height. Use nails to make holes.
Micro forcepsMedicon07.60.03
ParaformaldehydeSigma-Aldrich
Penicillin-Streptomycin (10,000U/ml) sol.Gibco15140-148
Petri dishes, Soda-Lime glassDWK Life Sciences9170442
Petridish 35 mm, with ventDuran237554008
Petridish 90 mm, no vent classicThermo Fisher101RT/C
Small scissors

Referências

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