Este trabalho foi financiado pela National Science Foundation, Grant # IOS-1025627 e pelo Instituto Nacional de Saúde sob concessão # 1R21NS078582-01 a JAW

Este protocolo utiliza duas configurações (Figura 1) para adquirir quatro leituras diferentes recolhidos de moscas submetidos a uma infecção bacteriana. Estas saídas incluem 1) sono / vigília comportamento, 2) O resultado da sobrevivência, 3) a carga bacteriana em tempo real, e 4) em tempo real a medição de actividade de NFkB repórter in vivo. Em combinação com as ferramentas genéticas que estão disponíveis em Drosophila, estas medições fornecem uma visão mecanicista para a ligação molecular entre a função imunológica e no comportamento. 1. Atividade medida Locomotor e do sono nas moscas <ol><li> A configuração utilizada para medir a atividade locomotora e dormir em moscas, que inclui o sistema de monitoramento de atividade de Drosophila (DAM2, Trikinetics), incubadoras, quarto escuro, ea preparação de animais experimentais e tubos de atividade, tem sido descrito anteriormente 6. A mesma abordagem é usada aqui, com algumas pequenas modificações. <ol class="lalpha"><li&gt; A iluminação da incubadora é controlada pela incubadora si. Portanto, é importante para sincronizar o ajuste de tempo entre computador e incubadoras. </li><li> Tubos de actividade são limpos para reutilização por ebulição numa placa quente, em água desionizada. Uma pequena quantidade de detergente é adicionado para a primeira fervura, os tubos são bem enxaguados e fervido duas vezes mais. Se fio é utilizado para ligar o tubo, os tubos da actividade utilizados (contendo comida, cera de mosca, e os fios) pode ser limpo sem remoção prévia dos fios. </li></ol></li><li> Antes de se iniciar um ensaio, as culturas contendo lugar de pupa tardia encenado moscas em incubadoras de três a quatro dias para se adaptar a iluminação experimental e outras condições ambientais. Light: condições escuras ou constante têm sido comumente usado para medir o comportamento do sono. Neste exemplo, as moscas são aclimatadas à luz constante para eliminar a influência do relógio circadiano sobre a resposta imune e comportamento 2,7,8. Tal como descrito na Figura 1A </strong&gt;, a carga moscas 1-4 dias de idade para a actividade DAM2 Trikinetics monitores como descrito 6, e registo durante um mínimo de três dias antes da infecção. </li></ol> 2. Moscas infectar com uma cepa patogênica de bactérias <ol><li> O protocolo aqui descrito é específico para o S. marcescens, que são fáceis de cultivar e manter. Protocolos para a armazenagem a longo prazo e as condições de cultura para outras espécies de bactérias podem variar. S. marcescens são armazenados em glicerol a 15-50% à temperatura de -80 ° C. Para preparar para a armazenagem a longo prazo, misturar 2 volumes de cultura bacteriana durante a noite (DO600 = 0,5 - 1,0) para 1 volume de glicerol a 50% autoclavada em tubos de microcentrífuga de 1,5 ml. Isto irá resultar numa concentração final de glicerol de 17%. Armazenar os tubos a -80 ° C. Para preparar um curto prazo na utilização de fonte de bactérias, raspar o material congelado com uma ponta de pipeta estéril de 200 ul e realizar uma sequência de três vias numa placa de agar LB. Incubar a placa durante a noite a 37 &amp; dpor exemplo, C para obter colónias isoladas. Armazenar a placa a 4 ° C. Um dia antes da infecção programada, escolher uma única colónia da placa de agar LB com um ponta de pipeta estéril de 200 uL e submergir a ponta para um tubo de cultura que contém 5 ml de meio LB. Bactérias crescem durante a noite, ou até 16 horas dentro de um agitador de incubador a 37 ° C e 250 rpm até que ele atinja a fase de crescimento exponencial. Medir a concentração com um espectrofotômetro a OD 600. A concentração desta fase varia de 0,5 a 1. Se a concentração for demasiado elevada, a subcultura das bactérias e crescem durante mais várias horas, para obter uma concentração óptima. Execute o procedimento perto de uma fonte de chama. Algumas estirpes bacterianas foram concebidas para a resistência aos antibióticos e são cultivadas e seleccionadas para antibiótico apropriado adicionado ao meio. S. marcescens (ATCC # 8100) não são resistentes a antibióticos e por isso são cultivadas em meio estéril, sem antibiótico. Para verificar técnica estéril, fazer um simulado culture sem bactérias, como controlo. A solução para infectar moscas contém bactérias (diluído para 0,1 OD = 600) e coloração de alimentos a 1% (Brilliant Blue FCF) em PBS. Prepara-se uma solução de controlo de injecção por adição de quantidade equivalente de meio LB utilizado em solução infecção e corante alimentar azul a 1% em PBS. Armazenar as soluções em gelo. </li><li> Prepare agulhas de vidro para injetar as moscas. Puxe capilares de vidro (od = 1 mm, id = milímetros 0,58, WPI) para uma ponta fina usando um extrator micropipeta (Narishige). Sob um microscópio de dissecação, utilizar uma pinça fina para quebrar a ponta da agulha de modo que a abertura é grande o suficiente para encher com o líquido de injecção através da aplicação de sucção com uma seringa, mas suficientemente pequena para minimizar os danos para a mosca durante o processo de injecção. Depois de romper a ponta, o tamanho da ponta deve ser cerca de 40-50 ^ m. A agulha de vidro é ligada a uma seringa de plástico de 3 cc, com uma extensão de tubagem. O fluxo de meio de injecção é controlado manualmente a aplicação de pressão positiva ou sução com a seringa. Evitar a contaminação do tubo de borracha com o fluido de injecção, como o aparelho de seringa é utilizado tanto para a infecção e as injecções de controlo. </li><li> Anestesiar moscas, colocando-os em um bloco de CO 2. CO 2 é passado através de um recipiente selado de água para humedecer a almofada e para reduzir a electricidade estática, o que pode complicar a manipulação de moscas sobre a almofada. Injectar moscas picando a agulha de vidro na região acima do escutelo do tórax dorsal. A passagem do meio de injeção na mosca é verificada pela coloração de alimento - as moscas ficam azuis como os spreads corante alimentar através do sistema. A dose de bactérias que as moscas recebem podem ser quantificados como descrito na Seção 3, abaixo. Alguns projetos experimentais incluir um grupo controle que recebe lesão asséptica injetando moscas com coloração PBS e comida, mas sem bactérias. </li></ol> 3. Determinar a carga bacteriana Uma abordagem para evaluating a resposta imune contra a infecção bacteriana é determinar a infecção bacteriana pós carga. D. melanogaster é um excelente modelo para determinar este parâmetro, porque a mosca inteira pode ser homogeneizado para estimar o número total de bactérias dentro de um indivíduo. A lógica por trás deste protocolo é de que, quando cultivadas em meio sólido tal como caldo de Luria (LB) agar em placas de Petri (placa LB), uma única bactéria forma uma colónia visível distinguíveis. Portanto, por homogeneização moscas infectadas em meio líquido LB, gerando uma série de diluições do homogeneizado, e espalhando o homogeneizado diluído em placas de LB, o número de células bacterianas que infectam uma mosca pode ser determinada. Um grupo de controlo de moscas injectadas com PBS e corante alimentar, mas sem bactérias deve ser usada para verificar se a infecção não foi contaminada com outras espécies bacterianas. Não deve haver colónias na placa de agar LB nesta condição. <ol><li> Autoclavar todos os materiais que irão ser utilizados para estaprocedimento antes de realizar o passo de homogeneização real. Isso inclui 200 dicas Pipetar cortadas com tesoura, mídia LB, e pilões utilizados para a homogeneização. Preparar as placas vertendo meio LB / agar autoclavada em 10 centímetros placas de Petri estéreis, pelo menos, 1 dia antes da homogeneização moscas. </li><li> Anestesiar moscas e recolher em 1,5 ml tubos de microcentrífuga e tubos armazenar em gelo. </li><li> Realizar a homogeneização perto de uma chama para evitar a contaminação. A homogeneização de controlo contendo moscas sem infecção é recomendada em especial quando se utiliza uma estirpe bacteriana tal como S. marcescens, que não são resistentes a antibióticos. Homogeneizar um mínimo de 2 grupos de 10 moscas cada condição experimental por. O número de moscas utilizadas por homogenato é determinado pelo experimentador. Alguns grupos utilizaram uma mosca por homogenato, o qual é útil para avaliar a variação na carga bacteriana entre moscas individuais 8, ao passo que outros autores utilizaram 3-10 moscas por homogenatoa comparação entre o genótipo ou condição experimental 9-12. <ol class="lalpha"><li> Adicionar 400 ul de meio LB a cada tubo de microcentrífuga contendo moscas e homogeneizar utilizando um pequeno motor e um pilão (Kontes). </li><li> Usando pontas de pipetas estéreis cortadas, serial diluir a 1:10 homogenado por adição de 20 ul de homogeneizado meio LB / bacteriano a 1,5 ul de tubo de microcentrifugadora contendo 180 ul de meio LB. Cortar as pontas da pipeta impede o bloqueio de detritos mosca e assegura que um volume adequado está a ser transferido. </li><li> Factor de diluição é determinado empiricamente e dependerá do genótipo da mosca, a estirpe bacteriana utilizada, e da condição experimental. Para o tipo selvagem moscas infectadas com S. marcescens, utilizar as diluições de 1:10 ou 1:10 2 3 para moscas homogeneizadas imediatamente após a infecção e, em diluições de 1:10 ou 1:10 4 5 para moscas homogeneizado 24 horas pós-infecção. </li><li> Adicionar 100 ul de LB / média bacteriana a partir do microfonetubos contendo rocentrifuge diluição final e espalhar o meio sobre uma placa de LB usando esferas de vidro (VWR) para assegurar uma distribuição uniforme. </li><li> Descartar as bolas de vidro em 100% de solução de EtOH. Colocar as placas de LB numa incubadora a 37 ° C durante a noite. </li><li> Como etapa opcional, utilizar um sistema de imagem de luz visual para obter uma imagem das placas de LB (FluorChem 8900; Alpha Innotech). Contar o número de colónias ou no prato em si ou a partir da imagem da chapa usando a ferramenta de contar com o software Photoshop (Adobe Photoshop CS3). </li><li> Calcula-se o número de unidades formadoras de colónias por mosca utilizando a fórmula: [n / (N * D * v)] * V, onde n = número de colónias que cresceram na placa de LB, N = o número de moscas agrupados num tubo de microcentrífuga, D = factor de diluição, e v = volume da solução espalhada sobre cada placa; V = volume inicial do homogeneizado. </li></ol></li></ol> 4. Avaliar sono e Duração sobrevivência após infecção <ol><li> Paramoscas que não são colhidas para medir a carga bacteriana, continue monitorando o comportamento por mais 7-10 dias. Duração sobrevivência é influenciada pelo genótipo da mosca, condições ambientais e espécies de bactérias utilizadas para a infecção. </li><li> Depois de ~ 10 dias, terminar o experimento, baixar e processar dados comportamentais como descrito anteriormente 6. Insomniac2 software personalizado, que é baseado em Matlab, é usado para analisar parâmetros do sono. É importante eliminar moscas mortas da análise comportamental. Normalmente, isto restringe a análises para dentro do primeiro dia após a infecção, dependendo do tipo de infecção e do genótipo da mosca. Morte no ensaio é indicado pelo tempo de todas as contagens de actividade atingiu zero. Para facilitar a análise de sobrevivência, Drosonex, software personalizado escrito em Microsoft Visual C + + 6.0, é usada para processar arquivos de dados brutos do sistema DAM Trikinetics. Os relatórios do software como arquivos de Excel, duração sobrevivência de cada mosca (em horas), compila atividade data partir de todos os monitores em uma única planilha, e relata a sobrevivente voa por cento ao longo do tempo, conforme definido pelo usuário. Os arquivos do Excel são projetados para integrar em outros pacotes de software estatísticos para análise posterior. </li></ol> 5. Medir actividade de NFkB durante a infecção usando um ensaio de repórter de luciferase Transgenic kB-luc moscas utilizadas neste ensaio foram gerados como descrito anteriormente em Kuo et al., 2010 2. Resumidamente, o repórter kB-luc contém oito repetições de uma sequência de ligação de NFkB, que foram inseridos em um promotor a montante de um quadro de leitura aberta de luciferase. <ol><li> Ajuste moscas às condições de iluminação experimentais, como descrito na seção 1.2. Neste exemplo, 1-4 dias de idade kB-luc moscas são alojados em frascos contendo 5% de sacarose, 2% de meio de alimento agar e colocadas em luz constante (LL), durante 2 dias, para atingir a mesma idade de outras moscas durante a infecção. </li><li> Prepara-se uma microplaca de 96 poços para as moscas. Cada poço contém 2 camadas de meio de alimento (Figura 2), a camada de topo contém a luciferina, o substrato da luciferase. Adicionar 300 ul de sacarose a 5%, solução de agar a 2% a cada poço e deixa-se solidificar. Em seguida, adicionar uma camada de 50 ul de topo de cada uma das cavidades contendo sacarose a 5%, ágar a 1%, e 2 mM de luciferina (Gold Biotechnology, Inc.). Concentrações de luciferina utilizadas para a actividade repórter de medição em Drosophila têm variado na literatura, e têm sido tão baixas quanto 100 uM 13. A concentração necessária pode ser determinada empiricamente. Entre as camadas de distribuição de alimentos, cobrir a placa com um tecido de malha fina para facilitar a secagem, mantendo a esterilidade. A placa deve ser deixado secar completamente, até uma hora, a fim de evitar que as moscas de ficar presa em forma de gotas de condensação. Porque luciferina é sensível à luz, evite expor as placas à luz mais do que o necessário. </li><li> Aplique uma película adesiva (Superior-Seal-A; Perkin Elmer) a uma placa de micropoços de 96 poços e perfurada com uma agulha fina com uma quantidade de 2 orifícios por poço. Estes buracos não só permitir a troca de ar a cada poço, mas também irá fornecer uma forma de anestesiar moscas em uma base individual. Usando uma lâmina afiada e borda em linha reta, introduzir um corte entre cada coluna. Isto irá proporcionar uma forma fácil de carregar / descarregar as moscas em grupos de 8 de cada vez. Para carregar as moscas para a microplaca, retire os frascos da incubadora e moscas anestesiar sobre uma almofada de CO 2. Carga voa um por um para cada poço, coluna por coluna. Se um voar inadvertidamente ficar preso ao selo adesivo, deixar a voar sozinho como eles são capazes de libertar-se sem intervenção. Voltar a microplaca para a incubadora no LL de 8-24 horas para se ajustar ao novo ambiente e para consumir o substrato luciferina. </li><li> Cultura de bactérias, S. marcescens, e preparar uma solução para a infecção, tal como descrito acima. </li><li> Anestesiar tvoa usando uma ponta de micropipeta ligada a uma baixa pressão de linha de CO 2. Colocar a ponta da micropipeta directamente por cima dos orifícios de ventilação feitas para cada poço. Tomar cuidado para assegurar que a pressão de CO 2 é suficientemente elevada para anestesiar a mosca, mas baixa o suficiente para evitar danos à mosca. Em grupos de oito, cada mosca transferir individualmente para uma almofada de CO 2, e infectar como descrito acima. Após a infecção, o retorno de cada mosca ao seu original e feche bem a microplaca. </li><li> Luminescência medida (TopCount NXT-luminescência e Contador de Cintilação; Perkin-Elmer). O contador de luminescência TopCount contém uma cassete de empilhamento de chapas, o que permite leituras programadas e automatizadas continuamente em incrementos desejadas para qualquer período de tempo (geralmente superior a cinco dias). Este recurso não está disponível em todos os instrumentos, e coleta de dados para experimentos realizados com outros instrumentos podem, portanto, ser menos frequentes. O contador de luminescência é abrigado em um room com uma temperatura controlada e horário de iluminação. Ao carregar as placas para a cassete de empilhamento, empilhar as placas contendo as moscas claras entre placas em branco para garantir que as moscas recebem luz. Luminómetro programa de acordo com as especificações do fabricante para recolher as leituras de hora em hora durante um mínimo de 24 hr. Neste exemplo, os detectores são programados para ler cada poço por 10 seg e expressar o resultado como contagens (em unidades arbitrárias) por segundo. Este valor é a média entre 3 leituras por poço. Exportar os arquivos de dados para uma planilha e realizar uma análise padrão, gráficos os resultados de luminescência. </li></ol>

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	<li>Majde, J. A., Krueger, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Links+between+the+innate+immune+system+and+sleep.">Links between the innate immune system and sleep.</a> J. Allergy Clin. Immunol. 116, 1188-1198 (2005).</li><li>Kuo, T. H., Pike, D. H., Beizaeipour, Z., Williams, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sleep+triggered+by+an+immune+response+in+Drosophila+is+regulated+by+the+circadian+clock+and+requires+the+NFkappaB+Relish.">Sleep triggered by an immune response in Drosophila is regulated by the circadian clock and requires the NFkappaB Relish.</a> BMC Neurosci. 11, 1471-2202 (2010).</li><li>Preston, B. T., Capellini, I., McNamara, P., Barton, R. A., Nunn, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Parasite+resistance+and+the+adaptive+significance+of+sleep.">Parasite resistance and the adaptive significance of sleep.</a> BMC Evol Biol. 9, 7 (2009).</li><li>Imeri, L., Opp, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=How+(and+why)+the+immune+system+makes+us+sleep.">How (and why) the immune system makes us sleep.</a> Nat. Rev. Neurosci. 10, 199-210 (2009).</li><li>Ayres, J. S., Schneider, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Signaling+Protease+Required+for+Melanization+in+Drosophila+Affects+Resistance+and+Tolerance+of+Infections.">A Signaling Protease Required for Melanization in Drosophila Affects Resistance and Tolerance of Infections.</a> PLoS Biol. 6, e305 (2008).</li><li>Chiu, J. C., Low, K. H., Pike, D. H., Yildirim, E., Edery, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assaying+Locomotor+Activity+to+Study+Circadian+Rhythms+and+Sleep+Parameters+in+Drosophila.">Assaying Locomotor Activity to Study Circadian Rhythms and Sleep Parameters in Drosophila.</a> J. Vis. Exp. (43), e2157 (2010).</li><li>Lee, J. E., Edery, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circadian+Regulation+in+the+Ability+of+Drosophila+to+Combat+Pathogenic+Infections.">Circadian Regulation in the Ability of Drosophila to Combat Pathogenic Infections.</a> Curr. Biol. 18, 195-199 (2008).</li><li>Stone, E. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+circadian+clock+protein+timeless+regulates+phagocytosis+of+bacteria+in+Drosophila.">The circadian clock protein timeless regulates phagocytosis of bacteria in Drosophila.</a> PLoS Pathog. 8, e1002445 (2012).</li><li>Hill-Burns, E. M., Clark, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=X-linked+variation+in+immune+response+in+Drosophila+melanogaster.">X-linked variation in immune response in Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 183, 1477-1491 (2009).</li><li>Short, S. M., Lazzaro, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Female+and+male+genetic+contributions+to+post-mating+immune+defence+in+female+Drosophila+melanogaster.">Female and male genetic contributions to post-mating immune defence in female Drosophila melanogaster.</a> Proc. Biol. Sci. 277, 3649-3657 (2010).</li><li>Williams, J. A., Sathyanarayanan, S., Hendricks, J. C., Sehgal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interaction+between+sleep+and+the+immune+response+in+Drosophila:+a+role+for+the+NFkappaB+relish.">Interaction between sleep and the immune response in Drosophila: a role for the NFkappaB relish.</a> Sleep. 30, 389-400 (2007).</li><li>Ramsden, S., Cheung, Y. Y., Seroude, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+analysis+of+the+Drosophila+immune+response+during+aging.">Functional analysis of the Drosophila immune response during aging.</a> Aging Cell. 7, 225-236 (2008).</li><li>Williams, J. A., Su, H. S., Bernards, A., Field, J., Sehgal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+circadian+output+in+Drosophila+mediated+by+neurofibromatosis-1+and+Ras/MAPK.">A circadian output in Drosophila mediated by neurofibromatosis-1 and Ras/MAPK.</a> Science. 293, 2251-2256 (2001).</li><li>Hedengren, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Relish,+a+central+factor+in+the+control+of+humoral+but+not+cellular+immunity+in+Drosophila.">Relish, a central factor in the control of humoral but not cellular immunity in Drosophila.</a> Mol. Cell. 4, 827-837 (1999).</li><li>Leulier, F., Rodriguez, A., Khush, R. S., Abrams, J. M., Lemaitre, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Drosophila+caspase+Dredd+is+required+to+resist+gram-negative+bacterial+infection.">The Drosophila caspase Dredd is required to resist gram-negative bacterial infection.</a> EMBO Rep. 1, 353-358 (2000).</li><li>Wu, L. P., Choe, K. -. M., Lu, Y., Anderson, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+Immunity:+Genes+on+the+Third+Chromosome+Required+for+the+Response+to+Bacterial+Infection.">Drosophila Immunity: Genes on the Third Chromosome Required for the Response to Bacterial Infection.</a> Genetics. 159, 189-199 (2001).</li><li>Dionne, M. S., Ghori, N., Schneider, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+melanogaster+is+a+genetically+tractable+model+host+for+Mycobacterium+marinum.">Drosophila melanogaster is a genetically tractable model host for Mycobacterium marinum.</a> Infect. Immun. 71, 3540-3550 (2003).</li><li>Romeo, Y., Lemaitre, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+immunity:+methods+for+monitoring+the+activity+of+Toll+and+Imd+signaling+pathways.">Drosophila immunity: methods for monitoring the activity of Toll and Imd signaling pathways.</a> Methods Mol. Biol. 415, 379-394 (2008).</li><li>Lu, Y., Wu, L. P., Anderson, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+antibacterial+arm+of+the+Drosophila+innate+immune+response+requires+an+I{kappa}B+kinase.">The antibacterial arm of the Drosophila innate immune response requires an I{kappa}B kinase.</a> Genes Dev. 15, 104-110 (2001).</li><li>Koh, K., Evans, J. M., Hendricks, J. C., Sehgal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Drosophila+model+for+age-associated+changes+in+sleep:wake+cycles.">A Drosophila model for age-associated changes in sleep:wake cycles.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 103, 13843-13847 (2006).</li><li>Bushey, D., Hughes, K. A., Tononi, G., Cirelli, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sleep,+aging,+and+lifespan+in+Drosophila.">Sleep, aging, and lifespan in Drosophila.</a> BMC Neurosci. 11, 1471-2202 (2010).</li><li>Allee, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The social life of animals. , (1938).</li><li>Stanewsky, R., Jamison, C. F., Plautz, J. D., Kay, S. A., Hall, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+circadian-regulated+elements+contribute+to+cycling+period+gene+expression+in+Drosophila.">Multiple circadian-regulated elements contribute to cycling period gene expression in Drosophila.</a> Embo. J. 16, 5006-5018 (1997).</li><li>Levine, J. D., Funes, P., Dowse, H. B., Hall, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Signal+analysis+of+behavioral+and+molecular+cycles.">Signal analysis of behavioral and molecular cycles.</a> BMC Neurosci. 3, 1 (2002).</li><li>Ayres, J. S., Schneider, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+anorexia+in+resistance+and+tolerance+to+infections+in+Drosophila.">The role of anorexia in resistance and tolerance to infections in Drosophila.</a> PLoS Biol. 7, e1000150 (2009).</li><li>Plautz, J. D., Kaneko, M., Hall, J. C., Kay, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Independent+photoreceptive+circadian+clocks+throughout+Drosophila.">Independent photoreceptive circadian clocks throughout Drosophila.</a> Science. 278, 1632-1635 (1997).</li><li>Huber, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sleep+homeostasis+in+Drosophila+melanogaster.">Sleep homeostasis in Drosophila melanogaster.</a> Sleep. 27, 628-639 (2004).</li><li>Zimmerman, J. E., Raizen, D. M., Maycock, M. H., Maislin, G., Pack, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+video+method+to+study+Drosophila+sleep.">A video method to study Drosophila sleep.</a> Sleep. 31, 1587-1598 (2008).</li><li>Toth, L. A., Rehg, J. E., Webster, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strain+differences+in+sleep+and+other+pathophysiological+sequelae+of+influenza+virus+infection+in+naive+and+immunized+mice.">Strain differences in sleep and other pathophysiological sequelae of influenza virus infection in naive and immunized mice.</a> J. Neuroimmunol. 58, 89-99 (1995).</li><li>Hendricks, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rest+in+Drosophila+is+a+sleep-like+state.">Rest in Drosophila is a sleep-like state.</a> Neuron. 25, 129-138 (2000).</li><li>Wu, M. N., Koh, K., Yue, Z., Joiner, W. J., Sehgal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+genetic+screen+for+sleep+and+circadian+mutants+reveals+mechanisms+underlying+regulation+of+sleep+in+Drosophila.">A genetic screen for sleep and circadian mutants reveals mechanisms underlying regulation of sleep in Drosophila.</a> Sleep. 31, 465-472 (2008).</li></ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Este protocolo descreve uma abordagem para investigar como o comportamento, particularmente dormir, está ligada a parâmetros de resposta do sistema imunológico. Estes parâmetros incluem a carga bacteriana, resultado da sobrevivência e actividade de NFkB, como medido por um repórter de luciferase in vivo. Juntos, esses parâmetros fornecem informações sobre o quão bem uma mosca pode lutar contra uma infecção. A carga bacteriana e os resultados de sobrevivência são parâmetros da resposta imune que e...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome de material </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Equipamento </td></tr><tr><td> Incubadoras </td><td> Percival Scientific, Inc. </td><td> I30BLLC8 I36VLC8 </td><td> Qualquer incubadora capaz de executar luz programada / horários de temperatura é adequada. </td></tr><tr><td> Drosophila ATIVIDADE Monitores </td><td> Trikinetics Inc., Waltham, MA </td><td> DAM2 </td><td> Conforme já descrito 6, este sistema requer uma interface de computador, software e outros acessórios. </td></tr><tr><td> Pirex de vidro Tubos </td><td> Trikinetics Inc., Waltham, MA </td><td> PGT-5x65 </td><td></td></tr><tr><td> De cintilação de microplacas e contador de luminescência </td><td>Perkin Elmer </td><td> TopCount NXT 12 detector </td><td> Qualquer leitor de microplacas capaz de detecção de luminescência pode ser utilizado para este tipo de ensaio de repórter. TopCount contém múltiplos detectores e um empilhador automático, que é capaz de ser programado para ler continuamente a partir de múltiplas placas. </td></tr><tr><td> FluorChem 8900 </td><td> Alpha Innotech </td><td></td><td> Imagem de culturas bacterianas é opcional; qualquer sistema de imagem digital com capacidade de luz visual é suficiente. </td></tr><tr><td> Micropipeta Puller </td><td> Tritech Research, Inc. </td><td> Narishige PC-10 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Abastecimento </td></tr><tr><td> Borosilicato capilares de vidro </td><td> Precision Instrument Inc. mundo </td><td> 1B100F-4 </td><td></td></tr><tr><td> Seringa 3 ml </td><td> Fisher Scientific </td><td> BD 305482 </td><td></td></tr><tr><td> Agulhas de seringa </td><td> Fisher Scientific </td><td> BD 305196 </td><td> 18 G - corte da ponta da agulha, para evitar danos na tubagem. </td></tr><tr><td> Tubulação do silicone, id (0,030 &quot;) od (0,065&quot;) Espessura da parede (0,018 &quot;) </td><td> VWR </td><td> 60985-706 </td><td> Utilizado para a fixação de agulhas capilares de vidro para uma seringa </td></tr><tr><td> Torneira de 3 vias </td><td> Empresa americana Pharmaseal </td><td> K75 </td><td></td></tr><tr><td> Kontes Pellet Pilão Motor Cordless </td><td> Fisher Scientific </td><td> K749540-0000 </td><td></td></tr><tr><td> Kontes Pellet Pilão </td><td> Fisher Scientific </td><td> K749521-1590 </td><td></td></tr><tr><td> Bolas de vidro 3 milímetros </td><td> VWR </td><td> 26396-630 </td><td></td></tr><tr><td> Microplate Microlite 1 + </td><td> Thermo Scientific </td><td> 7571 </td><td> Select placas de 96 poços que são apropriados para luminescência - devem ser opacas. </td></tr><tr><td> Topseal-A Microplacas :96-bem </td><td> PerkinElmer </td><td> 6005185 </td><td> Microplaca Press-On Film vedação adesiva </td></tr><tr><td> D-luciferina, sal de potássio </td><td> BioTechnology Gold, Inc. </td><td> LUCNA </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Software </td></tr><tr><td> Insomniac2 </td><td> Disponíveis mediante solicitação aos autores </td><td> personalizado, escrito por Lesley Ashmore, Ph.D. (Westminster College) </td><td> Matlab baseado em software que tem sido utilizada rotineiramente para a análise de sono 2,6,11 </td></tr><tr><td> Drosonex </td><td> Disponíveis mediante solicitação aos autores </td><td> personalizado, escrito por Thomas Coradetti (Software Calçada) </td><td> Um PC MSVC6 programa utilizado para a análise de sobrevivência a partir de arquivos de dados brutos coletados com oTrikinetics sistema </td></tr><tr><td> Photoshop CS3 </td><td> Adobe </td><td></td><td> Útil para a obtenção do número de ufc / placa a partir de imagens digitais (opcional) </td></tr></tbody></table>

quantitative measurement of the immune response and sleep in drosophila

A interacção complexa entre a resposta imune e comportamento hospedeiro tem sido descrito em uma grande variedade de espécies. Excesso de sono, em particular, é conhecida a ocorrência de uma resposta à infecção em mamíferos 1 e recentemente também tem sido descrita em Drosophila melanogaster 2. É geralmente aceite que o sono é benéfico para o hospedeiro durante a infecção, e que é importante para a manutenção de um sistema imunológico robusto 3,4. No entanto, a evidência experimental que suporta esta hipótese é limitada 4, e a função do sono em excesso durante uma resposta imune permanece obscura. Nós usamos uma abordagem multidisciplinar para resolver este problema complexo, e realizaram estudos no sistema modelo simples genética, a mosca da fruta Drosophila melanogaster. Usamos um ensaio padrão para medir o comportamento locomotor e do sono em moscas, e demonstrar como este ensaio é utilizado para medir o comportamento de moscas infected com uma estirpe patogénica de bactérias. Este teste é também útil para monitorizar a duração de sobrevivência em moscas individuais durante uma infecção. Medidas adicionais de função imunitária incluem a capacidade de moscas para limpar uma infecção e à activação de NFkB, um factor de transcrição essencial, que é essencial para a resposta imune inata em Drosophila. Tanto resultado da sobrevivência e depuração bacteriana durante a infecção em conjunto são indicadores de resistência e de tolerância à infecção. Resistência se refere à capacidade de moscas para limpar uma infecção, enquanto que a tolerância é definida como a capacidade do hospedeiro para limitar os danos de uma infecção e, assim, sobrevivem apesar dos níveis elevados de agentes patogénicos no interior do sistema 5. Monitoramento em tempo real da atividade NFkB durante a infecção fornece insights sobre um mecanismo molecular de sobrevivência durante a infecção. O uso de Drosophila nestes ensaios simples facilita as análises genéticas e moleculares do sonoe a resposta imune e como estes dois sistemas complexos são reciprocamente influenciadas.

<ol><li> Infecção promove o sono. Neste exemplo, Canton-S (CS) moscas do tipo selvagem e moscas mutantes desprovidos de um gene NFkB, Relish (Rel E20) 14, foram carregados em dois DAM2 monitores de actividade (n = 32 para cada genótipo) e infectadas, como descrito acima. As moscas foram mantidas em luz constante para eliminar a influência do relógio circadiano no comportamento e infecção 2,7,8. Os mutantes foram isogenized E20 Rel de CS, tal como descrito previamente 11.</s...

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Quantitative Measurement of the Immune Response and Sleep in Drosophila

Para entender uma ligação entre a resposta imune e comportamento, nós descrevemos um método para medir o comportamento locomotor em<em&gt; Drosophila</em&gt; Durante a infecção bacteriana, bem como a capacidade das moscas de montar uma resposta imune pela sobrevivência de monitorização, a carga bacteriana e, em tempo real, a actividade de um regulador chave da imunidade inata, NFkB.

Medição quantitativa da resposta imune e do sono em<em&gt; Drosophila</em

A complex interaction between the immune response and  host behavior has been described in a wide range of species. Excess sleep, in  particular, is known ...

quantitative-measurement-immune-response-sleep

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Quantitative Measurement of the Immune Response and Sleep in Drosophila

15.3K visualizações.  University of Pennsylvania Perelman School of Medicine. Para entender uma ligação entre a resposta imune e comportamento, nós descrevemos um método para medir o comportamento locomotor em Drosophila Durante a infecção bacteriana, bem como a capacidade das moscas de montar uma resposta imune pela sobrevivência de monitorização, a carga bacteriana e, em tempo real, a actividade de um regulador chave da imunidade inata, NFkB.

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Multicolor Flow Cytometry Analyses of Cellular Immune Response in Rhesus Macaques

The rhesus macaque model is currently the best available model for HIV-AIDS with respect to understanding the pathogenesis as well as for the development of vaccines and therapeutics1,2,3. Here, we describe a method for the detailed phenotypic and functional analyses of cellular immune responses, specifically intracellular cytokine production by CD4+ and CD8+ T cells as well as the individual memory subsets. We obtained precise quantitative and qualitative measures for the production of interferon gamma (INF-) and interleukin (IL) -2 in both CD4+ and CD8+ T cells from the rhesus macaque PBMC stimulated with PMA plus ionomycin (PMA+I). The cytokine profiles were different in the different subsets of memory cells. Furthermore, this protocol provided us the sensitivity to demonstrate even minor fractions of antigen specific CD4+ and CD8+ T cell subsets within the PBMC samples from rhesus macaques immunized with an HIV envelope peptide cocktail vaccine developed in our laboratory. The multicolor flow cytometry technique is a powerful tool to precisely identify different populations of T cells 4,5 with cytokine-producing capability6 following non-specific or antigen-specific stimulation 5,7.

We demonstrate the utility of multicolor flow cytometry for detailed phenotypic and functional characterization of total as well as memory subsets of CD4+ and CD8+ T cells in rhesus macaques, the ideal model for HIV/AIDS vaccine studies.

Fluxo multicolor de Citometria de Análises de resposta imune celular em macacos rhesus

The rhesus macaque model is currently the best available model for HIV-AIDS with respect to understanding the pathogenesis as well as for the development ...

Imunologia e Infecção

An Introduction to Parasitic Wasps of Drosophila and the Antiparasite Immune Response

Most known parasitoid wasp species attack the larval or pupal stages of Drosophila. While Trichopria drosophilae infect the pupal stages of the host (Fig. 1A-C), females of the genus Leptopilina (Fig. 1D, 1F, 1G) and Ganaspis (Fig. 1E) attack the larval stages. We use these parasites to study the molecular basis of a biological arms race. Parasitic wasps have tremendous value as biocontrol agents. Most of them carry virulence and other factors that modify host physiology and immunity. Analysis of Drosophila wasps is providing insights into how species-specific interactions shape the genetic structures of natural communities. These studies also serve as a model for understanding the hosts' immune physiology and how coordinated immune reactions are thwarted by this class of parasites.
The larval/pupal cuticle serves as the first line of defense. The wasp ovipositor is a sharp needle-like structure that efficiently delivers eggs into the host hemocoel. Oviposition is followed by a wound healing reaction at the cuticle (Fig. 1C, arrowheads). Some wasps can insert two or more eggs into the same host, although the development of only one egg succeeds. Supernumerary eggs or developing larvae are eliminated by a process that is not yet understood. These wasps are therefore referred to as solitary parasitoids.
Depending on the fly strain and the wasp species, the wasp egg has one of two fates. It is either encapsulated, so that its development is blocked (host emerges; Fig. 2 left); or the wasp egg hatches, develops, molts, and grows into an adult (wasp emerges; Fig. 2 right). L. heterotoma is one of the best-studied species of Drosophila parasitic wasps. It is a "generalist," which means that it can utilize most Drosophila species as hosts1. L. heterotoma and L. victoriae are sister species and they produce virus-like particles that actively interfere with the encapsulation response2. Unlike L. heterotoma, L. boulardi is a specialist parasite and the range of Drosophila species it utilizes is relatively limited1. Strains of L. boulardi also produce virus-like particles3 although they differ significantly in their ability to succeed on D. melanogaster1. Some of these L. boulardi strains are difficult to grow on D. melanogaster1 as the fly host frequently succeeds in encapsulating their eggs. Thus, it is important to have the knowledge of both partners in specific experimental protocols.
In addition to barrier tissues (cuticle, gut and trachea), Drosophila larvae have systemic cellular and humoral immune responses that arise from functions of blood cells and the fat body, respectively. Oviposition by L. boulardi activates both immune arms1,4. Blood cells are found in circulation, in sessile populations under the segmented cuticle, and in the lymph gland. The lymph gland is a small hematopoietic organ on the dorsal side of the larva. Clusters of hematopoietic cells, called lobes, are arranged segmentally in pairs along the dorsal vessel that runs along the anterior-posterior axis of the animal (Fig. 3A). The fat body is a large multifunctional organ (Fig. 3B). It secretes antimicrobial peptides in response to microbial and metazoan infections.
Wasp infection activates immune signaling (Fig. 4)4. At the cellular level, it triggers division and differentiation of blood cells. In self defense, aggregates and capsules develop in the hemocoel of infected animals (Fig. 5)5,6. Activated blood cells migrate toward the wasp egg (or wasp larva) and begin to form a capsule around it (Fig. 5A-F). Some blood cells aggregate to form nodules (Fig. 5G-H). Careful analysis reveals that wasp infection induces the anterior-most lymph gland lobes to disperse at their peripheries (Fig. 6C, D).
We present representative data with Toll signal transduction pathway components Dorsal and Sp&auml;tzle (Figs. 4,5,7), and its target Drosomycin (Fig. 6), to illustrate how specific changes in the lymph gland and hemocoel can be studied after wasp infection. The dissection protocols described here also yield the wasp eggs (or developing stages of wasps) from the host hemolymph (Fig. 8).

An Introduction to Parasitic Wasps of Drosophila and the Antiparasite Immune Response

Parasitoid (parasitic) wasps constitute a major class of natural enemies of many insects including Drosophila melanogaster. We will introduce the techniques to propagate these parasites in Drosophila spp. and demonstrate how to analyze their effects on immune tissues of Drosophila larvae.

Uma Introdução à Vespas parasitas de<em&gt; Drosophila</em&gt; E Resposta Imune a antiparasitários

Most known parasitoid wasp species attack the larval or pupal stages of Drosophila. While Trichopria drosophilae infect the pupal stages of the host (Fig. ...

Quantification of the Respiratory Burst Response as an Indicator of Innate Immune Health in Zebrafish

The phagocyte respiratory burst is part of the innate immune response to pathogen infection and involves the production of reactive oxygen species (ROS). ROS are toxic and function to kill phagocytized microorganisms. In vivo quantification of phagocyte-derived ROS provides information regarding an organism's ability to mount a robust innate immune response. Here we describe a protocol to quantify and compare ROS in whole zebrafish embryos upon chemical induction of the phagocyte respiratory burst. This method makes use of a non-fluorescent compound that becomes fluorescent upon oxidation by ROS. Individual zebrafish embryos are pipetted into the wells of a microplate and incubated in this fluorogenic substrate with or without a chemical inducer of the respiratory burst. Fluorescence in each well is quantified at desired time points using a microplate reader. Fluorescence readings are adjusted to eliminate background fluorescence and then compared using an unpaired t-test. This method allows for comparison of the respiratory burst potential of zebrafish embryos at different developmental stages and in response to experimental manipulations such as protein knockdown, overexpression, or treatment with pharmacological agents. This method can also be used to monitor the respiratory burst response in whole dissected kidneys or cell preparations from kidneys of adult zebrafish and some other fish species. We believe that the relative simplicity and adaptability of this protocol will complement existing protocols and will be of interest to researchers who seek to better understand the innate immune response.

The innate immune response protects organisms against pathogen infection. A critical component of the innate immune response, the phagocyte respiratory burst, generates reactive oxygen species that kill invading microorganisms. We describe a respiratory burst assay that quantifies reactive oxygen species produced when the innate immune response is chemically induced.

Quantificação da Resposta explosão respiratória como um indicador da imunitário inatas Saúde em Zebrafish

The phagocyte respiratory burst is part of the innate immune response to  pathogen infection and involves the production of reactive oxygen species (ROS). ...

Novel Whole-tissue Quantitative Assay of Nitric Oxide Levels in Drosophila Neuroinflammatory Response

Neuroinflammation is a complex innate immune response vital to the healthy function of the central nervous system (CNS). Under normal conditions, an intricate network of inducers, detectors, and activators rapidly responds to neuron damage, infection or other immune infractions. This inflammation of immune cells is intimately associated with the pathology of neurodegenerative disorders, such as Parkinson&#39;s disease (PD), Alzheimer&#39;s disease and ALS. Under compromised disease states, chronic inflammation, intended to minimize neuron damage, may lead to an over-excitation of the immune cells, ultimately resulting in the exacerbation of disease progression. For example, loss of dopaminergic neurons in the midbrain, a hallmark of PD, is accelerated by the excessive activation of the inflammatory response. Though the cause of PD is largely unknown, exposure to environmental toxins has been implicated in the onset of sporadic cases. The herbicide paraquat, for example, has been shown to induce Parkinsonian-like pathology in several animal models, including Drosophila melanogaster. Here, we have used the conserved innate immune response in Drosophila to develop an assay capable of detecting varying levels of nitric oxide, a cell-signaling molecule critical to the activation of the inflammatory response cascade and targeted neuron death. Using paraquat-induced neuronal damage, we assess the impact of these immune insults on neuroinflammatory stimulation through the use of a novel, quantitative assay. Whole brains are fully extracted from flies either exposed to neurotoxins or of genotypes that elevate susceptibility to neurodegeneration then incubated in cell-culture media. Then, using the principles of the Griess reagent reaction, we are able to detect minor changes in the secretion of nitric oxide into cell-culture media, essentially creating a primary live-tissue model in a simple procedure. The utility of this model is amplified by the robust genetic and molecular complexity of Drosophila melanogaster, and this assay can be modified to be applicable to other Drosophila tissues or even other small, whole-organism inflammation models.

Novel Whole-tissue Quantitative Assay of Nitric Oxide Levels in Drosophila Neuroinflammatory Response

Levels of the inflammatory cell-signaling molecule nitric oxide (NO) are commonly assayed using Griess reagent. In this protocol, we have created a modified Griess assay utilizing live Drosophila brain tissue in order to detect the secretion of NO in a simple, quantifiable and highly repeatable method.

Neuroinflammation is a complex innate immune response vital to the healthy function of the central nervous system (CNS). Under normal conditions, an ...

Using RNA-interference to Investigate the Innate Immune Response in Mouse Macrophages

Macrophages are key phagocytic innate immune cells. When macrophages encounter a pathogen, they produce antimicrobial proteins and compounds to kill the pathogen, produce various cytokines and chemokines to recruit and stimulate other immune cells, and present antigens to stimulate the adaptive immune response. Thus, being able to efficiently manipulate macrophages with techniques such as RNA-interference (RNAi) is critical to our ability to investigate this important innate immune cell. However, macrophages can be technically challenging to transfect and can exhibit inefficient RNAi-induced gene knockdown. In this protocol, we describe methods to efficiently transfect two mouse macrophage cell lines (RAW264.7 and J774A.1) with siRNA using the Amaxa Nucleofector 96-well Shuttle System and describe procedures to maximize the effect of siRNA on gene knockdown. Moreover, the described methods are adapted to work in 96-well format, allowing for medium and high-throughput studies. To demonstrate the utility of this approach, we describe experiments that utilize RNAi to inhibit genes that regulate lipopolysaccharide (LPS)-induced cytokine production.

In this protocol, we describe methods to efficiently transfect murine macrophage cell lines with siRNAs using the Amaxa Nucleofector 96-well Shuttle System, stimulate the macrophages with lipopolysaccharide, and monitor the effects on inflammatory cytokine production.

Usando RNA-interferência para investigar a imunitário inatas de resposta em macrófagos

Macrophages are key phagocytic innate immune cells.  When macrophages encounter a pathogen, they produce antimicrobial proteins and compounds to kill the ...

The Utilization of Oropharyngeal Intratracheal PAMP Administration and Bronchoalveolar Lavage to Evaluate the Host Immune Response in Mice

The host immune response to pathogens is a complex biological process. The majority of in vivo studies classically employed to characterize host-pathogen interactions take advantage of intraperitoneal injections of select bacteria or pathogen associated molecular patterns (PAMPs) in mice. While these techniques have yielded tremendous data associated with infectious disease pathobiology, intraperitoneal injection models are not always appropriate for host-pathogen interaction studies in the lung. Utilizing an acute lung inflammation model in mice, it is possible to conduct a high resolution analysis of the host innate immune response utilizing lipopolysaccharide (LPS). Here, we describe the methods to administer LPS using nonsurgical oropharyngeal intratracheal administration, monitor clinical parameters associated with disease pathogenesis, and utilize bronchoalveolar lavage fluid to evaluate the host immune response. The techniques that are described are widely applicable for studying the host innate immune response to a diverse range of PAMPs and pathogens. Likewise, with minor modifications, these techniques can also be applied in studies evaluating allergic airway inflammation and in pharmacological applications.

The host immune response to pathogen infection is a tightly regulated process. Utilizing a lipopolysaccharide lung exposure model in mice, it is possible to conduct high resolution evaluations of the complex mechanisms associated with disease pathogenesis.

A utilização de orofaringe Intratraqueal Administração PAMP e Lavagem Broncoalveolar para avaliar a resposta imune do hospedeiro em camundongos

The host immune response to pathogens is a complex biological process. The majority of in vivo studies classically employed to characterize host-pathogen ...

In Vitro Analysis of Myd88-mediated Cellular Immune Response to West Nile Virus Mutant Strain Infection

An attenuated West Nile virus (WNV), a nonstructural (NS) 4B-P38G mutant, induced higher innate cytokine and T cell responses than the wild-type WNV in mice. Recently, myeloid differentiation factor 88 (MyD88) signaling was shown to be important for initial T cell priming and memory T cell development during WNV NS4B-P38G mutant infection. In this study, two flow cytometry-based methods &#8211; an in vitro T cell priming assay and an intracellular cytokine staining (ICS) &#8211; were utilized to assess dendritic cells (DCs) and T cell functions. In the T cell priming assay, cell proliferation was analyzed by flow cytometry following co-culture of DCs from both groups of mice with carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE) - labeled CD4+ T cells of OTII transgenic mice. This approach provided an accurate determination of the percentage of proliferating CD4+ T cells with significantly improved overall sensitivity than the traditional assays with radioactive reagents. A microcentrifuge tube system was used in both cell culture and cytokine staining procedures of the ICS protocol. Compared to the traditional tissue culture plate-based system, this modified procedure was easier to perform at biosafety level (BL) 3 facilities. Moreover, WNV- infected cells were treated with paraformaldehyde in both assays, which enabled further analysis outside BL3 facilities. Overall, these in vitro immunological assays can be used to efficiently assess cell-mediated immune responses during WNV infection.

In Vitro Analysis of Myd88-mediated Cellular Immune Response to West Nile Virus Mutant Strain Infection

Two flow cytometry-based methods &#8211; an in vitro T cell priming assay and intracellular cytokine staining were utilized to measure antigen presenting capacity of dendritic cells and antigen-specific T cell responses to a West Nile virus mutant infection in mice.

In Vitro Análise do mediada por Myd88 Cellular resposta imune a vírus do Nilo Ocidental Mutant Strain Infection

An attenuated West Nile virus (WNV), a nonstructural (NS) 4B-P38G mutant, induced higher innate cytokine and T cell responses than the wild-type WNV in ...

Non-invasive Imaging of the Innate Immune Response in a Zebrafish Larval Model of Streptococcus iniae Infection

The aquatic pathogen, Streptococcus iniae, is responsible for over 100 million dollars in annual losses for the aquaculture industry and is capable of causing systemic disease in both fish and humans. A better understanding of S. iniae disease pathogenesis requires an appropriate model system. The genetic tractability and the optical transparency of the early developmental stages of zebrafish allow for the generation and non-invasive imaging of transgenic lines with fluorescently tagged immune cells. The adaptive immune system is not fully functional until several weeks post fertilization, but zebrafish larvae have a conserved vertebrate innate immune system with both neutrophils and macrophages. Thus, the generation of a larval infection model allows the study of the specific contribution of innate immunity in controlling S. iniae infection.
The site of microinjection will determine whether an infection is systemic or initially localized. Here, we present our protocols for otic vesicle injection of zebrafish aged 2-3 days post fertilization as well as our techniques for fluorescent confocal imaging of infection. A localized infection site allows observation of initial microbe invasion, recruitment of host cells and dissemination of infection. Our findings using the zebrafish larval model of S. iniae infection indicate that zebrafish can be used to examine the differing contributions of host neutrophils and macrophages in localized bacterial infections. In addition, we describe how photolabeling of immune cells can be used to track individual host cell fate during the course of infection.

Non-invasive Imaging of the Innate Immune Response in a Zebrafish Larval Model of Streptococcus iniae Infection

Here, we present a protocol for the generation and imaging of a localized bacterial infection in the zebrafish otic vesicle.

Imagem não invasivo do imunitário inatas Response em um modelo de peixe-zebra larval de<em&gt; Streptococcus iniae</em&gt; Infection

The aquatic pathogen, Streptococcus iniae, is responsible for over 100 million dollars in annual losses for the aquaculture industry and is capable of ...

Qualitative and Quantitative Analysis of the Immune Synapse in the Human System Using Imaging Flow Cytometry

The immune synapse is the area of communication between T cells and antigen-presenting cells (APCs). T cells polarize surface receptors and proteins towards the immune synapse to assure a stable binding and signal exchange. Classical confocal, TIRF, or super-resolution microscopy have been used to study the immune synapse. Since these methods require manual image acquisition and time-consuming quantification, the imaging of rare events is challenging. Here, we describe a workflow that enables the morphological analysis of tens of thousands of cells. Immune synapses are induced between primary human T cells in pan-leukocyte preparations and Staphylococcus aureus enterotoxin B (SEB)-loaded Raji cells as APCs. Image acquisition is performed with imaging flow cytometry, also called In-Flow microscopy, which combines features of a flow cytometer and a fluorescence microscope. A complete gating strategy for identifying T cell/APC couples and analyzing the immune synapses is provided. As this workflow allows the analysis of immune synapses in unpurified pan-leukocyte preparations and hence requires only a small volume of blood (i.e., 1 mL), it can be applied to samples from patients. Importantly, several samples can be prepared, measured, and analyzed in parallel.

Here, we describe a complete workflow for the qualitative and quantitative analysis of immune synapses between primary human T cells and antigen-presenting cells. The method is based on imaging flow cytometry, which allows the acquisition and evaluation of several thousand cell images within a relatively short period of time.

Análise qualitativa e quantitativa de sinapse imunológica no sistema humano usando a imagem latente de citometria de fluxo

The immune synapse is the area of communication between T cells and antigen-presenting cells (APCs). T cells polarize surface receptors and proteins ...

Two-photon Intravital Imaging of Leukocytes During the Immune Response in Lipopolysaccharide-treated Mouse Liver

Sepsis is a type of severe infection that can cause organ failure and tissue damage. Although the mortality and morbidity rates associated with sepsis are extremely high, no direct treatment or organ-related mechanism has been examined in detail in real time. The liver is the key organ that manages toxins and infections in the human body. Herein, we aimed to perform intravital imaging of mouse liver after induction of endotoxemia in order to track the motility of immune cells, such as neutrophils and liver capsular macrophages (LCMs). Accordingly, we designed a novel surgical method for exposure of the liver with minimally invasive surgery. Mice were intraperitoneally injected with lipopolysaccharide (LPS), a common endotoxin. Using our novel surgical approach for exposure and intravital imaging of the mouse liver, we found that neutrophil recruitment in LPS-treated LysM-green fluorescent protein (GFP) mouse liver was increased compared with that in phosphate-buffered saline-treated liver. After LPS treatment, the number of neutrophils increased significantly with time. Additionally, using CX3Cr1-GFP mice, we successfully visualized liver resident macrophages called LCMs. Therefore, to investigate the efficacy of new reagents to control immune mobility in vivo, determining the motility and morphology of neutrophils and LCMs in the liver may allow us to identify therapeutic effect in organ failure and tissue damage caused by leukocytes activation in sepsis.

We established a novel surgical protocol for two-photon imaging of live mice liver with minimal invasion. With this technique, we identified the detailed structure of the liver during lipopolysaccharide-induced endotoxemia. We anticipate that this method may be utilized to determine the effectiveness of various reagents treatment to hepatic leukocyte migration.

Imagem de Intravital dois fotões de leucócitos durante a resposta imune em fígado de rato lipopolissacarídeo-tratados

Sepsis is a type of severe infection that can cause organ failure and tissue damage. Although the mortality and morbidity rates associated with sepsis are ...