Somos gratos ao discussões, orientação e apoio dos drs. Michael Andreeff MD, PhD., E Jared Burks doutorado. do MD Anderson Citometria de Fluxo e Celular Imagem Núcleo Facility. Este trabalho foi apoiado em parte por doações do Instituto Nacional do Câncer (RC1-CA146381, CA-083639, R01NS06994, CA116199 e CA109451 para a FCM. ELS também é apoiado pelo Departamento do Exército de Defesa (BC083397).

Singênico Murino Transplante de Medula Óssea (TMO), aprovado pela protocolos IACUC institucionais (Nota: O sucesso deste protocolo requer a utilização de qualquer tipo de célula marcada (s) como alvo para análise multiespectral, e para facilitar a análise a jusante, pode-se explorar qualquer genética ou rotulagem celular estável. Sugerimos que qualquer célula, tecido ou órgão pode ser aplicado para ser de um modelo de transplante e que o transplante pode conter tantas populações únicas rotulados como a pesquisa considere útil. Além disso, vários sistemas de telefonia celular marcado , tais como aqueles encontrados em ratinhos transgénicos contendo linhagem múltipla de restrição marcado por fluorescência-populações pode ser concebido para eliminar as complicações de transplante para o estudo de certos estados patológicos. <ol><li> Letalmente irradiar ratinhos receptores de BMT com uma única dose de 9,5 Gy, quatro horas antes da reconstituição com medula óssea do dador. (Receptores de BMT GFP deve ser de 6-10 semanas de idade). </li><li> Molhar a pele do rato com etanol 70% antes do clipping e descascando-o de volta para expor os membros posteriores com tesouras cirúrgicas estéreis. Remova toda a perna, incluindo a crista ilíaca na articulação sacro-ilíaca. Descarte a pé, cortando logo acima do tornozelo e, em seguida, remover completamente todos os músculos, ligamentos e excesso de tecido ósseo. Lave medula da crista da tíbia, e fibia ilíaca com uma agulha 23 G, utilizando 2% de FBS em PBS estéril (PBS-2). (Doadores de TMO RFP deve ser sacrificado de acordo com as normas institucionais.) </li><li> Fatia e suavemente esmagar o osso remanescente em fragmentos, usando um bisturi e uma pinça e, em seguida, colocar em tubo de 50 ml com 3 ug / ml de colagenase I por 1 hora a 37 ° C a 300 rpm. </li><li> Top fora do tubo com PBS-2 e recolher o sobrenadante para um novo tubo e combinam com células coradas. Girar para baixo a 250 rpm durante 5 min a 4 ° C. </li><li> Ressuspender as células em PBS-2 e filtra-se através de filtro de 40 nm de células. Neste ponto, as células podem ser marcadas por fluorest ativado celular (FACS), se alguém quiser manipular populações específicas para o TMO. </li><li> Ressuspender 2 x 10 6 células por 100 mL PBS, por mouse. Use 29 G agulha para injetar sistemicamente em ratos GFP destinatário irradiados por cauda ou retro-orbital veia-bisel-side-up. Injetar um mouse com 100 mL PBS apenas como controle de enxerto. Use uma lâmpada de aquecimento para dilatar os vasos antes da injecção e usar um sistema de retenção de injecção na veia da cauda após a injecção. Tenha gaze estéril disponíveis para aplicar uma leve pressão para a injeção de pós cauda. </li><li> Três semanas após a BMT, recolha de sangue retro-orbital e analisar por citometria de fluxo, para confirmar a presença de células circulantes para GFP e a ausência de células circulantes RFP. O mouse de controle terão morrido neste momento. </li></ol> 2. Tumor Enxerto De acordo com as Diretrizes Institucionais IACUC <ol><li> Grow ID8 células tumorais murinas ovário in vitro antes da injecção in vivo (1 x 10 6 cvaras por mouse). Dia de injecção, Tripsinizar as células, lava-se com PBS e ressuspender em PBS a 1 x 10 6 células por 100 ul. </li><li> Injetar células tumorais na cavidade intaperitoneal do mouse, agulha deve estar virado bisel-up. Esterilizar vista injeção com álcool 70%. Injetar no canto inferior esquerdo ou no quadrante inferior direito do abdômen (cranial e ligeiramente medial ao conjunto inferior dos mamilos abdominal de rato fêmea), evitar bater os órgãos. Contenha rato, agarrando pelo pescoço e segurando a cauda com o dedo mindinho ou anel. Os ratos podem ser anestesiados com isoflurano para este procedimento. </li><li> Sacrificar os ratos quando os sinais de pega do tumor, como ligeiro inchaço abdominal, são aparentes. Isso ocorrerá mais de 4-12 semanas. </li><li> Ressecção de tumores da cavidade IP. Os tumores dentro da cavidade será parecido com nódulos brancos sobre e ao redor da superfície dos órgãos. Com um bisturi, remove o tumor e coloque em um tubo / frasco de formol a 10% por 24 horas de fixação. Histológica preparação pode ser externalizadas a principal patologia / histologia se reagentes e materiais não estão prontamente disponíveis para inclusão em parafina e preparação da lâmina. Tecido Seção em 5-8 mM fatias em lâminas de vidro para procedimentos de coloração subseqüentes. </li></ol> 3. Multi-parâmetro Immunofluorescent Coloração <ol><li> Preparar lâminas de controlo única cor para cada sonda fluorescente utilizado no experimento. Neste cenário, as quatro cores são usadas. Portanto, quatro slides para cada cor individual, bem como um slide para o controle de ruído de fundo e, finalmente, um slide para a combinação coloração completa. (Total de lâminas = 6) Todas as lâminas serão processados ​​de lado a lado de um modo idêntico para minimizar a variação experimental. </li><li> Asse secções de parafina, a 56 ° C durante 1 hora. </li><li> Lavagem das lâminas 3x 10 min em xileno. </li><li> Lavar 2x 5 min 100% de etanol. </li><li> Lavar 1x 3 min 95% de etanol </li><li> Lavar 1x etanol min90 2%. </li><li> Lavar 1x etanol min70 2%. </li><li&gt; Wash 1x 2 min em água. Lentamente mergulhe o suporte de coloração dentro e fora da água 10x. </li><li> Durante a última série de lavagem, tampão citrato de sódio pré-ferver por 2 minutos (no microondas). (Pode substituir com tampão de tris-EDTA, dependendo dos anticorpos em uso) </li><li> Ferver as lâminas durante 20 minutos em tampão de citrato de sódio (10% em micro-ondas de energia ou de uma panela de pressão). Se tampão ferver, desligue microondas e deixe descansar. </li><li> Remover da fonte de calor e deixar os slides descansar por 30 min no tampão citrato de sódio para esfriar. </li><li> Lavar as lâminas em água por 5 min. </li><li> Mark em torno de secções de tumor com Pap Pen e colocar 2% BSA / 1% FBS ácido maleico tampão de bloqueio por 1 hora. Prepare os slides individualmente, para não deixá-los secar durante esta etapa. </li><li> Preparar anticorpos primários a diluição óptima em tampão de bloqueio. (Se os anticorpos em uso são de espécies diferentes (ou IgG-cadeia variação ex: IgG1 IgG2a vs da mesma espécie), eles podem ser utilizados em combinação durante quantoingle período de incubação. Se as espécies de anticorpos se sobrepõem, então as incubações devem ser realizadas sequencialmente de minimizar cruzada de anticorpos de reacção.) </li><li> Neste ponto, deixar dois slides com apenas tampão de bloqueio. Estas duas lâminas servirá como controle sem mácula e controle de mancha nuclear. Os outros controles de cor individuais serão incubadas com anticorpos primários individuais. Apenas a corrediça análise terá uma combinação de anticorpos primários. </li><li> Incubar com o anticorpo primário em uma caixa de câmara de humidade, num agitador lento rotativo a 4 ° durante a noite (~ 16-20 h) (Nota: quando se trabalha com 4 + fluoróforos, coloração sequencial ou conjugação directa pode ser necessário para minimizar cruzada de anticorpos de reacção . Sob estas circunstâncias, repetir os passos 1,16-1,21 até todos os anticorpos são aplicadas às lâminas.) </li><li> Lave as lâminas durante 10 min em PBST (2x) suavemente sobre shaker </li><li> Enquanto lavagem vai, prepare AlexaFluor 488, 594 e 647 anticorpos secundários para uma diluição finalde 1:1000 em tampão de bloqueio. (Certifique-se que estes anticorpos e diluições são mantidos a 4 ° C e no escuro em todos os momentos para preservar a fluorescência através de lotes e ao longo do tempo.) </li><li> Sobre as lâminas de controlo de cor individuais, coloque diluições AlexaFluor individuais correspondentes as espécies do anticorpo primário utilizado. Todos os anticorpos secundários serão colocados na corrediça análise. As lâminas de controlo manchadas não coradas eo nucleares permanecerá com tampão de bloqueio ao longo desta etapa. </li><li> Incubar em uma caixa de câmara de humidade (cobertas com folha de alumínio para evitar a exposição à luz) num agitador rotativo lento à TA durante 2 horas. </li><li> Lave as lâminas por 5 min em PBST (2x) suavemente em shaker. Cubra com papel alumínio para proteger da luz. </li><li> Adicionar DAPI (1:10.000) por 1 min para o slide de DAPI eo slide análise. Cubra com papel alumínio para proteger da luz. As outras lâminas podem ser deixadas cobertas nos recipientes de lavagem. </li><li> Lava-se a dois DAPI-incubadasslides em um recipiente separado para o primeiro 5 min de lavagem, para não contaminar os outros slides com DAPI mancha. Para a segunda lavagem de 5 minutos, as lâminas podem ser combinados em PBST (todas as lavagens devem ser realizadas num agitador). Cubra com papel alumínio para proteger da luz. </li><li> Lâminas brevemente mergulho na água antes (1,5 espessura com meios aquosos de montagem para preservar a fluorescência)-escorregar cobertura </li><li> Deixe secar 3 horas no escuro à temperatura ambiente. </li><li> Selar as bordas da lamínula com endurecedor de unhas. (Não use unha polonês como a acetona pode saciar o sinal fluorescente). </li><li> Analisar os slides imediatamente ou armazenar a 4 ° C para análise futura. </li></ol> 4. Imagens multiespectrais <ol><li> Coletar imagens multiespectrais utilizando uma câmera Nuance EX (contendo um filtro sintonizável de cristal líquido) em uma Olympus X-63 microscópio vertical com o software Nuance para a coleta de dados. </li><li> Coletar imagens utilizando uma objectiva de óleo para aumentar a resolução. </li><li> Iniciatival set-up inclui definir a faixa espectral para cada fluoróforo em uso. <ol class="lalpha"><li> Para 4 cores: <ol class="lroman"><li> DAPI: 420-480nm </li><li> AF488: 490-580nm </li><li> AF594: 590-640nm </li><li> AF647: 650-720nm </li></ol></li></ol></li><li> Tomar uma imagem inicial da lâmina análise para obter os tempos de exposição adequados para cada uma das gamas espectrais. </li><li> Criar &quot;biblioteca espectral&quot; que o software utilizado para identificar e separar a relação sinal-ruído dos fluoróforos um do outro e do sinal de fundo. (Nota: Cada fluorocromo deve ter sua própria único slide controle de cor, a fim de montar uma biblioteca espectral de comprimento de onda com curvas apropriadas para assegurar a devida análise do conjunto de dados Exemplo: 3 fluoróforos = 4 lâminas de controlo; 5 fluoróforos = 6 lâminas de controlo.). <ol><li> Imagem do slide unstained primeiro. Este slide será designado dentro do librar espectraly como pano de fundo.&gt; </li><li> Imagem do DAPI somente deslizar segundo. Este slide será usado para designar os núcleos DAPI-manchadas com a ferramenta de &quot;desenhar&quot; e será salvo dentro da biblioteca espectral como DAPI.&gt; </li><li> Imagem a deslizar terceiro AF488-only. Este slide será usado para designar as regiões AF488-coradas com a função &quot;desenhar&quot; e será salvo dentro da biblioteca espectral como AF488.&gt; </li><li> Imagem do AF594 somente deslizar quarta. Este slide será usado para designar as regiões AF594-coradas com a função &quot;desenhar&quot; e será salvo dentro da biblioteca espectral como AF594.&gt; </li><li> Imagem do AF647 somente deslizar quinto. Este slide será usado para designar as regiões AF647-coradas com a função &quot;desenhar&quot; e será salvo dentro da biblioteca espectral como AF647.&gt; </li><li> Após a recolha de cada componente espectral individual,salvar a biblioteca espectral eo protocolo.&gt; </li></ol></li><li> Uma vez que a biblioteca espectral estiver concluída, encontrar regiões de interesse no slide análise no microscópio e recolher / salvar imagens.&gt; </li></ol> 5. Análise Quantitativa de imagens multiespectrais <ol><li> Importar uma variedade representativa de imagens Nuance adquiridos usando InForm Software. </li><li> Abra a biblioteca espectral salvo como dirigido pelo programa </li><li> Identificar regiões de tecido de interesse a ser analisado. (Por exemplo, tecido de tumor contra o tecido adiposo). </li><li> Identificar as células individuais com base em DAPI-mancha. Citoplasma será definido automaticamente com base na forma do núcleo. </li><li> Escolha a intensidade de fluorescência de leitura de escolha para cada parâmetro fluorescente (por exemplo, média, desvio padrão) </li><li> Batch a imagens adquiridas e deixar o processo de software usando o algoritmo proposto. </li><li> Quando o processamento de imagem está terminado, fundiros arquivos de resultados. </li><li> Abra os resultados no Excel (ou qualquer outro pacote de software analítico) e trace duas intensidades fluorescentes uns contra os outros no eixo XY. Cada intensidade de fluorescência é dado por célula. As células positivas dupla aparecerá no quadrante superior direito. O usuário deve definir as intensidades fluorescentes de base. </li></ol>

<ol>
	<li>Kidd, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Origins+of+the+tumor+microenvironment:+quantitative+assessment+of+adipose-derived+and+bone+marrow-derived+stroma.">Origins of the tumor microenvironment: quantitative assessment of adipose-derived and bone marrow-derived stroma.</a> PLoS ONE. 7, e30563 (2012).</li><li>Quintavalla, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescently+labeled+mesenchymal+stem+cells+(MSCs)+maintain+multilineage+potential+and+can+be+detected+following+implantation+into+articular+cartilage+defects.">Fluorescently labeled mesenchymal stem cells (MSCs) maintain multilineage potential and can be detected following implantation into articular cartilage defects.</a> Biomaterials. 23, 109-119 (2002).</li><li>Sasaki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mesenchymal+stem+cells+are+recruited+into+wounded+skin+and+contribute+to+wound+repair+by+transdifferentiation+into+multiple+skin+cell+type.">Mesenchymal stem cells are recruited into wounded skin and contribute to wound repair by transdifferentiation into multiple skin cell type.</a> Journal of immunology. 180, 2581-2587 (2008).</li><li>Spaeth, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mesenchymal+stem+cell+transition+to+tumor-associated+fibroblasts+contributes+to+fibrovascular+network+expansion+and+tumor+progression.">Mesenchymal stem cell transition to tumor-associated fibroblasts contributes to fibrovascular network expansion and tumor progression.</a> PLoS ONE. 4, e4992 (2009).</li><li>Wels, J., Kaplan, R. N., Rafii, S., Lyden, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Migratory+neighbors+and+distant+invaders:+Tumor-associated+niche+cells.">Migratory neighbors and distant invaders: Tumor-associated niche cells.</a> Genes and Development. 22, 559-574 (2008).</li><li>Weis, S. M., Cheresh, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tumor+angiogenesis:+molecular+pathways+and+therapeutic+targets.">Tumor angiogenesis: molecular pathways and therapeutic targets.</a> Nat. Med. 17, 1359-1370 (2011).</li><li>Bataille, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiparameter+immunofluorescence+on+paraffin-embedded+tissue+sections.">Multiparameter immunofluorescence on paraffin-embedded tissue sections.</a> Applied immunohistochemistry &amp; molecular morphology : AIMM / official publication of the Society for Applied Immunohistochemistry. 14, 225-228 (1097).</li><li>van Vlierberghe, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Four-color+staining+combining+fluorescence+and+brightfield+microscopy+for+simultaneous+immune+cell+phenotyping+and+localization+in+tumor+tissue+sections.">Four-color staining combining fluorescence and brightfield microscopy for simultaneous immune cell phenotyping and localization in tumor tissue sections.</a> Microscopy research and technique. 67, 15-21 (2005).</li><li>Robertson, D., Savage, K., Reis-Filho, J. S., Isacke, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+immunofluorescence+labelling+of+formalin-fixed+paraffin-embedded+(FFPE)+tissue.">Multiple immunofluorescence labelling of formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) tissue.</a> BMC cell biology. 9, 13 (2008).</li><li>Qiu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracting+a+cellular+hierarchy+from+high-dimensional+cytometry+data+with+SPADE.">Extracting a cellular hierarchy from high-dimensional cytometry data with SPADE.</a> Nat Biotechnol. 29, 886-891 (2011).</li><li>Belizario, J. E., Akamini, P., Wolf, P., Strauss, B., Xavier-Neto, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+routes+for+transgenesis+of+the+mouse.">New routes for transgenesis of the mouse.</a> Journal of applied. 53, 295-315 (2012).</li></ol>

FCM, a CMB, e ELS não têm conflitos e nada a revelar.

Aqui nós descrevemos a aplicação de imagens multiespectrais que descrevemos como interrogatório MIMicc-multiespectral de composições celulares diversificadas, para analisar as da medula óssea componentes estromais derivadas do microambiente do tumor, porém essa metodologia e conceito pode ser aplicado a decifrar outros elementos celulares que compõem um complexo tecidos, tais como os observados durante a cicatrização de feridas ou reacções durante um tecido regenerativo. Nestas experiências que utilizam ra...

Compreender o desenvolvimento e reparação dos tecidos é importante para elucidar participantes componentes celulares na cicatrização de feridas, 2,3 medicina regenerativa, biologia do desenvolvimento e biologia do tumor. Em circunstâncias de reparação, numerosos tipos de células infiltrar o microambiente circundante para ajudar na vascularização, a deposição de ECM, a proliferação e reestruturação de tecidos. Factores celulares e fenótipos podem ser identificados com base em multiparamétrica, marcadores multiplexados que podem identificar a localização, o estado de diferenciação e a interacção entre os componentes celulares dentro do microambiente investigada. Relata-se o desenvolvimento do tumor como um exemplo prototípico para este modelo de transplante multicolor-multicelular seguido de imagens multiespectrais e metodologia desmistura espectral. A progressão tumoral é um processo em várias etapas, que é marcada por várias capacidades adquiridas, que incluem a proliferação aumentada, umaPropriedades ntiapoptotic, invasivos e angiogénicos. 4 O desenvolvimento do tumor é facilitada por células não neoplásicas que são recrutadas para o ambiente circundante para fornecer factores de crescimento, as matrizes estruturais, redes vasculares e de modulação imunitária. 1,5,6 Este microhábitat consiste de células derivadas a partir de tecidos locais, vizinhos, como adiposo e vasos sanguíneos e de fontes distantes, como medula óssea, células derivadas 1. A extensão da incorporação de células não neoplásicas depende da demanda do tumor, o que corresponde geralmente à fase / grau do tumor. Para compreender o papel do microambiente favorável tumor, é preciso entender a origem eo potencial de diferenciação das populações de células não neoplásicas. Este protocolo foi concebido para auxiliar a interpretação da progressão do tumor por meio da visualização de ambas as da medula óssea derivadas de componentes celulares, e o local do tecido derivcélulas ed. Utilizando camundongos fluorescentes expressando gene repórter transgênicos, nós transplantados de medula GFP (proteína verde fluorescente) osso em uma RFP letalmente irradiados (proteína vermelha fluorescente) do mouse. Seguindo o enxerto de medula óssea com êxito, uma linha de células de tumor singeneico é injectado ortotopicamente e deixou-se enxertar por 4-8 semanas. O tumor resultante é excisado do rato e processada para imunofluorescência (IF) de coloração para visualizar os componentes do estroma. Multiplexing IF marcadores é uma técnica comumente usada que envolve otimização significativa 7-9, porém utilizando uma plataforma de imagem / desmistura multiespectral melhora o potencial de combinações de marcadores fluorescentes que possuem sobreposição espectral. Apresentamos aqui uma técnica que chamamos de interrogatório MIMicc-multiespectral de composições celulares multiplexados para manchar e analisar até oito marcadores dentro de uma seção de tumor em um único slide, a fim de analisar as origens celulares, diferenciação celular rualhos e as interações célula-célula de componentes dentro do microambiente do tumor. Este exemplo simplificado tem o potencial para ser expandida a fim de analisar cinco, seis ou mais marcadores, utilizando anticorpos ou expressão fluorescente-driven promotor intracelular. Tabela 1 apresenta potenciais combinações de coloração de anticorpos fluorescentes com espécies adequadas, tomadas em conta.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="always">
		<tbody>
		 <tr>
			<td>Name of the reagent</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalogue number</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>.2 &mu;m filter</td>
			<td >Fisher</td>
			<td>09-740-35A</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>10 ml lure lock </td>
			<td >BD</td>
			<td>309604</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>25 G needle</td>
			<td >Cardinal</td>
			<td>BF305122</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>40nm filter</td>
			<td >BD</td>
			<td>352340</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>50 ml conical tube</td>
			<td >Fisher</td>
			<td>1495949A</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Alexafluor 488-ms1</td>
			<td >invitrogen</td>
			<td>A21121</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Alexafluor 594-Rb</td>
			<td >invitrogen</td>
			<td>A21207</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Alexafluor 647-ch</td>
			<td >Invitrogen</td>
			<td>A21449</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>BSA</td>
			<td >Sigma</td>
			<td>A7906-500G</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Cover slips</td>
			<td >Corning</td>
			<td>2940-243</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>CRI-Nuance</td>
			<td>Caliper Life Sciences</td>
			<td></td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Dapi</td>
			<td >Invitrogen</td>
			<td>D1306</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>DMEM</td>
			<td >CellGro</td>
			<td>10-017-CV</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td >Dharmacon</td>
			<td>4004-DV</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>FBS</td>
			<td >invitrogen</td>
			<td>16000-044</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>GFP-ms1</td>
			<td >Abcam</td>
			<td>ab38689</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Insulin needle</td>
			<td >BD</td>
			<td>329424</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Maleic acid</td>
			<td >Acros</td>
			<td>100-16-7</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Moisture chamber box</td>
			<td >Evergreen</td>
			<td>240-9020-Z10</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Mounting media</td>
			<td >dako</td>
			<td>S3023</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Nail hardener</td>
			<td >Sally Hansen</td>
			<td>2103</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Pap pen</td>
			<td >Abcam</td>
			<td>Ab2601</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Pen/Strep L Glut</td>
			<td >invitrogen</td>
			<td>10378016</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Steril PBS</td>
			<td >invitrogen</td>
			<td>14040-182</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Trypsin</td>
			<td >invitrogen</td>
			<td>252000-56</td>
			<td> </td>
		 </tr>
 <tr>
 	<td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>
 Blocking Buffer	
	<table border="1" fo:keep-together.within-page="always">
 <tbody>
 <tr>
 <td>maleic acid</td>
 <td>14.51 g </td>
 </tr>
 <tr>
 <td>NaCl</td>
 <td>10.95 g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>NaOH pellets (to 7.5pH)</td>
 <td>9+g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Distilled water</td>
 <td>250 ml</td>
 </tr>
 </tbody>
 </table>
	*add 0.2% Tween-20 to 1x solution for blocking buffer with 2%BSA/2%FBS. Stir and filter. 
	Antigen retrieval buffers:
	<table border="1" fo:keep-together.within-page="always">
 <tbody>
 <tr>
 <td colspan="2">Tris-EDTA Buffer (10 mM Tris Base, 1 mM EDTA Solution, 0.05% Tween 20, pH 9.0)</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Tris Base</td>
 <td>1.21 g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>EDTA</td>
 <td>0.37 g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Distilled water</td>
 <td>1000 ml (100 ml to make 10x, 50 ml to make 20x)</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Tween 20</td>
 <td>0.5 ml</td>
 </tr>
 </tbody>
 </table>
	*Store at RT for 3 months or at 4 &deg; C for longer
	<table border="1" fo:keep-together.within-page="always">
 <tbody>
 <tr>
 <td colspan="2">Sodium Citrate Buffer (10 mM Sodium Citrate, 0.05% Tween 20, pH 6.0)</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Tri-sodium citrate (dihydrate)</td>
 <td>2.94 g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Distilled water</td>
 <td>1000 ml</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>HCl (adjust pH to 6.0)</td>
 <td>1N</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Tween 20</td>
 <td>0.5 ml</td>
 </tr>
 </tbody>
 </table>
 </td>
 </tr>
		</tbody>
 </table>

quantitative multispectral analysis following fluorescent tissue transplant for visualization of cell origins, types, and interactions

Com o desejo de compreender as contribuições de múltiplos elementos celulares para o desenvolvimento de um tecido complexo, tais como os numerosos tipos de células que participam na regeneração do tecido, a formação do tumor, ou vasculogénese, concebemos um modelo de multi-colorida de transplante celular de desenvolvimento de tumores em que populações de células provenientes de diferentes camundongos gene repórter coloridas e fluorescentes são transplantadas, enxertados ou injetado e em torno de um tumor em desenvolvimento. Estas células são, então, recrutados coloridas e incorporada no estroma do tumor. Para avaliar quantitativamente derivadas da medula óssea células do estroma tumorais, nós transplantado GFP expressando transgênico medula óssea em todo RFP letalmente irradiados expressando camundongos aprovado pelo IACUC. 0ovarian tumores que foram ortotopicamente injetadas nos ratos transplantados foram excisadas 6-8 semanas pós enxerto e analisadas para o marcador de medula óssea de origem (GFP), bem como marcadores de anticorpos para detectar tumor associadoestroma usando técnicas de imagem multiespectrais. Em seguida, adaptado de uma metodologia que chamamos MIMicc-Multispectral Interrogatório de composições diversificadas celulares, usando desmistura multiespectral de fluoroprobes avaliar quantitativamente qual rotulado célula veio a partir do qual as populações iniciais (com base em rótulos originais de gene repórter), e como a nossa capacidade de unmix 4, 5 , 6 ou mais espectros por slide aumenta, nós adicionamos imunohistoquímica adicional associado com linhagens de células ou de diferenciação para aumentar a precisão. Utilizando o software para detectar sinais multiplexados fluorescente co-localizadas, as populações do estroma tumorais podem ser rastreados, enumeradas e caracterizadas com base na coloração do marcador. 1

Usando uma técnica de imagem multiespectral para analisar tumores enxertados em nosso modelo de camundongo transgênico BMT, somos capazes de discernir os componentes do tumor do estroma, que são de origem medula óssea. O TMO foi confirmada inicial três semanas pós-transplante, por citometria de fluxo (Figura 1). Ortotopicamente injetado tumores ovarianos não marcados seguinte BMT confirmações de enxertia foram excisadas e fixadas em formalina seis semanas após a injeção inicial do tumor. Se?...

Watch this Scientific Journal Video about Quantitative Multispectral Analysis Following Fluorescent Tissue Transplant for Visualization of Cell Origins, Types, and Interactions at JoVE.com

Quantitative Multispectral Analysis Following Fluorescent Tissue Transplant for Visualization of Cell Origins, Types, and Interactions

Massas de tecido complexos, a partir de órgãos de tumores, são compostas de vários elementos celulares. Nós elucidada a contribuição de fenótipos celulares dentro de um tecido utilizando ratinhos transgénicos fluorescentes multi-marcados em combinação com coloração de imunofluorescência multiparamï seguido de separação espectral para decifrar origem celular, bem como características de células com base na expressão da proteína.

Análise Quantitativa Multispectral Após transplante de tecido fluorescente para visualização das Origens celulares, Tipos e Interações

With the desire to understand the contributions of multiple cellular elements to the development of a complex tissue; such as the numerous cell types that ...

quantitative-multispectral-analysis-following-fluorescent-tissue

Research

JoVE Journal

Medicine

9.3K visualizações.  MD Anderson Cancer Center.  Massas de tecido complexos, a partir de órgãos de tumores, são compostas de vários elementos celulares. Nós elucidada a contribuição de fenótipos celulares dentro de um tecido utilizando ratinhos transgénicos fluorescentes multi-marcados em combinação com coloração de imunofluorescência multiparamï seguido de separação espectral para decifrar origem celular, bem como características de células com base na expressão da proteína. 

Vídeo: Quantitative Multispectral Analysis Following Fluorescent Tissue Transplant for Visualization of Cell Origins, Types, and Interactions

Quantitative Visualization and Detection of Skin Cancer Using Dynamic Thermal Imaging

In 2010 approximately 68,720 melanomas will be diagnosed in the US alone, with around 8,650 resulting in death 1. To date, the only effective treatment for melanoma remains surgical excision, therefore, the key to extended survival is early detection 2,3. Considering the large numbers of patients diagnosed every year and the limitations in accessing specialized care quickly, the development of objective in vivo diagnostic instruments to aid the diagnosis is essential. New techniques to detect skin cancer, especially non-invasive diagnostic tools, are being explored in numerous laboratories. Along with the surgical methods, techniques such as digital photography, dermoscopy, multispectral imaging systems (MelaFind), laser-based systems (confocal scanning laser microscopy, laser doppler perfusion imaging, optical coherence tomography), ultrasound, magnetic resonance imaging, are being tested. Each technique offers unique advantages and disadvantages, many of which pose a compromise between effectiveness and accuracy versus ease of use and cost considerations. Details about these techniques and comparisons are available in the literature 4.
Infrared (IR) imaging was shown to be a useful method to diagnose the signs of certain diseases by measuring the local skin temperature. There is a large body of evidence showing that disease or deviation from normal functioning are accompanied by changes of the temperature of the body, which again affect the temperature of the skin 5,6. Accurate data about the temperature of the human body and skin can provide a wealth of information on the processes responsible for heat generation and thermoregulation, in particular the deviation from normal conditions, often caused by disease. However, IR imaging has not been widely recognized in medicine due to the premature use of the technology 7,8 several decades ago, when temperature measurement accuracy and the spatial resolution were inadequate and sophisticated image processing tools were unavailable. This situation changed dramatically in the late 1990s-2000s. Advances in IR instrumentation, implementation of digital image processing algorithms and dynamic IR imaging, which enables scientists to analyze not only the spatial, but also the temporal thermal behavior of the skin 9, allowed breakthroughs in the field.
In our research, we explore the feasibility of IR imaging, combined with theoretical and experimental studies, as a cost effective, non-invasive, in vivo optical measurement technique for tumor detection, with emphasis on the screening and early detection of melanoma 10-13. In this study, we show data obtained in a patient study in which patients that possess a pigmented lesion with a clinical indication for biopsy are selected for imaging. We compared the difference in thermal responses between healthy and malignant tissue and compared our data with biopsy results. We concluded that the increased metabolic activity of the melanoma lesion can be detected by dynamic infrared imaging.

We demonstrated that malignant pigmented lesions with increased metabolic activity generate quantifiable amounts of heat and the measurement of the transient thermal response of the skin to a cooling excitation allows quantitative identification of melanoma and other skin cancers (vs. non-proliferative nevi) at an early stage of the disease.

Visualization quantitativos e Detecção de Câncer de Pele Usando imagens térmicas dinâmico

In 2010 approximately 68,720 melanomas will be diagnosed in the US alone, with around 8,650 resulting in death 1. To date, the only effective treatment ...

Medicina

Improved Visualization of Lung Metastases at Single Cell Resolution in Mice by Combined In-situ Perfusion of Lung Tissue and X-Gal Staining of lacZ-Tagged Tumor Cells

Metastasis is the main cause of death in the majority of cancer types and consequently a main focus in cancer research. However, the detection of micrometastases by radiologic imaging and the success in their therapeutic eradication remain limited.
While animal models have proven to be invaluable tools for cancer research1, the monitoring/visualization of micrometastases remains a challenge and inaccurate evaluation of metastatic spread in preclinical studies potentially leads to disappointing results in clinical trials2. Consequently, there is great interest in refining the methods to finally allow reproducible and reliable detection of metastases down to the single cell level in normal tissue. The main focus therefore is on techniques, which allow the detection of tumor cells in vivo, like micro-computer tomography (micro-CT), positron emission tomography (PET), bioluminescence or fluorescence imaging3,4. We are currently optimizing these techniques for in vivo monitoring of primary tumor growth and metastasis in different osteosarcoma models. Some of these techniques can also be used for ex vivo analysis of metastasis beside classical methods like qPCR5, FACS6 or different types of histological staining. As a benchmark, we have established in the present study the stable transfection or transduction of tumor cells with the lacZ gene encoding the bacterial enzyme &beta;-galactosidase that metabolizes the chromogenic substrate 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-beta-D-galactopyranoside (X-Gal) to an insoluble indigo blue dye7 and allows highly sensitive and selective histochemical blue staining of tumor cells in mouse tissue ex vivo down to the single cell level as shown here. This is a low-cost and not equipment-intensive tool, which allows precise validation of metastasis8 in studies assessing new anticancer therapies9-11. A limiting factor of X-gal staining is the low contrast to e.g. blood-related red staining of well vascularized tissues. In lung tissue this problem can be solved by in-situ lung perfusion, a technique that was recently established by Borsig et al.12 who perfused the lungs of mice under anesthesia to clear them from blood and to fix and embed them in-situ under inflation through the trachea. This method prevents also the collapse of the lung and thereby maintains the morphology of functional lung alveoli, which improves the quality of the tissue for histological analysis. In the present study, we describe a new protocol, which takes advantage of a combination of X-gal staining of lacZ-expressing tumor cells and in-situ perfusion and fixation of lung tissue. This refined protocol allows high-sensitivity detection of single metastatic cells in the lung and enabled us in a recent study to detect "dormant" lung micrometastases in a mouse model13, which was originally described to be non-metastatic14.

Improved Visualization of Lung Metastases at Single Cell Resolution in Mice by Combined In-situ Perfusion of Lung Tissue and X-Gal Staining of lacZ-Tagged Tumor Cells

The novel protocol reported in the present study allows selective detection of lung metastases at single cell resolution in mice by combined in-situ lung perfusion and fixation and X-Gal staining of lacZ-tagged tumor cells.

Visualização melhorada de metástases pulmonares em Resolução única célula em Ratos por Combinado<em&gt; In-situ</em&gt; Perfusão do tecido pulmonar e X-Gal coloração de<em&gt; LacZ</em&gt;-Tagged Células Tumorais

Metastasis is the main cause of death in the majority of cancer types and consequently a main focus in cancer research. However, the detection of ...

Isolation of Cardiomyocyte Nuclei from Post-mortem Tissue

Identification of cardiomyocyte nuclei has been challenging in tissue sections as most strategies rely only on cytoplasmic marker proteins1. Rare events in cardiac myocytes such as proliferation and apoptosis require an accurate identification of cardiac myocyte nuclei to analyze cellular renewal in homeostasis and in pathological conditions2. Here, we provide a method to isolate cardiomyocyte nuclei from post mortem tissue by density sedimentation and immunolabeling with antibodies against pericentriolar material 1 (PCM-1) and subsequent flow cytometry sorting. This strategy allows a high throughput analysis and isolation with the advantage of working equally well on fresh tissue and frozen archival material. This makes it possible to study material already collected in biobanks. This technique is applicable and tested in a wide range of species and suitable for multiple downstream applications such as carbon-14 dating3, cell-cycle analysis4, visualization of thymidine analogues (e.g. BrdU and IdU)4, transcriptome and epigenetic analysis.

Cardiac nuclei are isolated via density sedimentation and immunolabeled with antibodies against pericentriolar material 1 (PCM-1) to identify and sort cardiomyocyte nuclei by flow cytometry.

Isolamento dos núcleos dos cardiomiócitos a partir de Post-mortem de tecidos

Identification of cardiomyocyte nuclei has been challenging in tissue sections as most strategies rely only on cytoplasmic marker proteins1. Rare events ...

Quantitative Analysis of Chromatin Proteomes in Disease

In the nucleus reside the proteomes whose functions are most intimately linked with gene regulation. Adult mammalian cardiomyocyte nuclei are unique due to the high percentage of binucleated cells,1 the predominantly heterochromatic state of the DNA, and the non-dividing nature of the cardiomyocyte which renders adult nuclei in a permanent state of interphase.2 Transcriptional regulation during development and disease have been well studied in this organ,3-5 but what remains relatively unexplored is the role played by the nuclear proteins responsible for DNA packaging and expression, and how these proteins control changes in transcriptional programs that occur during disease.6 In the developed world, heart disease is the number one cause of mortality for both men and women.7 Insight on how nuclear proteins cooperate to regulate the progression of this disease is critical for advancing the current treatment options.
Mass spectrometry is the ideal tool for addressing these questions as it allows for an unbiased annotation of the nuclear proteome and relative quantification for how the abundance of these proteins changes with disease. While there have been several proteomic studies for mammalian nuclear protein complexes,8-13 until recently14 there has been only one study examining the cardiac nuclear proteome, and it considered the entire nucleus, rather than exploring the proteome at the level of nuclear sub compartments.15 In large part, this shortage of work is due to the difficulty of isolating cardiac nuclei. Cardiac nuclei occur within a rigid and dense actin-myosin apparatus to which they are connected via multiple extensions from the endoplasmic reticulum, to the extent that myocyte contraction alters their overall shape.16 Additionally, cardiomyocytes are 40% mitochondria by volume17 which necessitates enrichment of the nucleus apart from the other organelles. Here we describe a protocol for cardiac nuclear enrichment and further fractionation into biologically-relevant compartments. Furthermore, we detail methods for label-free quantitative mass spectrometric dissection of these fractions-techniques amenable to in vivo experimentation in various animal models and organ systems where metabolic labeling is not feasible.

Advances in mass spectrometry have allowed the high throughput analysis of protein expression and modification in a host of tissues. Combined with subcellular fractionation and disease models, quantitative mass spectrometry and bioinformatics can reveal new properties in biological systems. The method described herein analyzes chromatin-associated proteins in the setting of heart disease and is readily applicable to other in vivo models of human disease.

Análise quantitativa de proteomas cromatina na Doença

In the nucleus reside the proteomes whose functions are most intimately linked with gene regulation. Adult mammalian cardiomyocyte nuclei are unique due ...

Murine Heterotopic Heart Transplant Technique

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become proficient in and utilize this technique, it is now widely used by many laboratories around the world. A significant refinement to the original technique was developed and reported in 2001 by Niimi. Described here are the techniques that have evolved over more than a decade in the hands of three surgeons (Plenter, Grazia, Pietra) in our center. These techniques are now being passed on to a younger generation of surgeons and researchers.
Based largely on the Niimi experience, the procedures used have evolved in the fine details - details which we will endeavor to relate here in such a way that others may be able to use this very useful model. Like Niimi, we have found that a video aid to learning is a priceless resource for the beginner.

The manuscript describes the steps required to perform the heterotopic heart transplant in the mouse.

Técnica de transplante heterotópico Murino Coração

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become ...

Multi-electrode Array Recordings of Human Epileptic Postoperative Cortical Tissue

Epilepsy, affecting about 1% of the population, comprises a group of neurological disorders characterized by the periodic occurrence of seizures, which disrupt normal brain function. Despite treatment with currently available antiepileptic drugs targeting neuronal functions, one third of patients with epilepsy are pharmacoresistant. In this condition, surgical resection of the brain area generating seizures remains the only alternative treatment. Studying human epileptic tissues has contributed to understand new epileptogenic mechanisms during the last 10 years. Indeed, these tissues generate spontaneous interictal epileptic discharges as well as pharmacologically-induced ictal events which can be recorded with classical electrophysiology techniques. Remarkably, multi-electrode arrays (MEAs), which are microfabricated devices embedding an array of spatially arranged microelectrodes, provide the unique opportunity to simultaneously stimulate and record field potentials, as well as action potentials of multiple neurons from different areas of the tissue. Thus MEAs recordings offer an excellent approach to study the spatio-temporal patterns of spontaneous interictal and evoked seizure-like events and the mechanisms underlying seizure onset and propagation. Here we describe how to prepare human cortical slices from surgically resected tissue and to record with MEAs interictal and ictal-like events ex vivo.

We here describe how to perform multi-electrode array recordings of human epileptic cortical tissue. Epileptic tissue resection, slice preparation and multi-electrode array recordings of interictal and ictal events are demonstrated in detail.

Multieletrodos Recordings Matriz de Human epiléptica pós-operatória Cortical Tissue

Epilepsy, affecting about 1% of the population, comprises a group of neurological disorders characterized by the periodic occurrence of seizures, which ...

Murine Kidney Transplant Technique

The first mouse kidney transplant technique was published in 19731 by the Russell laboratory. Although it took some years for other labs to become proficient in and utilize this technique, it is now widely used by many laboratories around the world. A significant refinement to the original technique using the donor aorta to form the arterial anastomosis instead of the renal artery was developed and reported in 1993 by Kalina and Mottram 2 with a further advancement coming from the same laboratory in 1999 3. While one can become proficient in this model, a search of the literature reveals that many labs still experience a high proportion of graft loss due to arterial thrombosis. We describe here a technique that was devised in our laboratory that vastly reduces the arterial thrombus reported by others 4,5. This is achieved by forming a heel-and-toe cuff of the donor infra-renal aorta that facilitates a larger anastomosis and straighter blood flow into the kidney.

The goal of this manuscript is to describe the steps required to perform a kidney transplant in a mouse, paying particular attention to the details of the arterial anastomosis.

Rim murino técnica de transplante

The first mouse kidney transplant technique was published in 19731 by the Russell laboratory. Although it took some years for other labs to become ...

Vein Interposition Model: A Suitable Model to Study Bypass Graft Patency

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. Research models for bypass graft failure are essential for a better understanding of pathobiological and pathophysiological processes during graft patency loss. Large animal models, such as pigs or sheep, resemble human anatomical structures but require special facilities and equipment. This video describes a rat vein interposition model to investigate vein graft patency loss. Rats are inexpensive and easy to handle. Compared to mouse models, the convenient size of rats permits better operability and enables a sufficient amount of material to be obtained for further diverse analysis. In brief, the inferior epigastric vein of a donor rat is harvested and used to replace a segment of the femoral artery. Anastomosis is conducted via single stitches and sealed with fibrin glue. Graft patency can be monitored non-invasively using duplex sonography. Myointimal hyperplasia, which is the main cause for graft patency loss, develops progressively over time and can be calculated from histological cross sections.

This video demonstrates a model to study the development of myointimal hyperplasia after venous interposition surgery in rats.

Veia Interposição Modelo: Um modelo adequado para estudar Bypass Graft Perviedade

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. ...

Quantitative Visualization of Leukocyte Infiltrate in a Murine Model of Fulminant Myocarditis by Light Sheet Microscopy

Light-sheet fluorescence microscopy (LSFM), in combination with chemical clearing protocols, has become the gold standard for analyzing fluorescently labelled structures in large biological specimens, and is down to cellular resolution. Meanwhile, the constant refinement of underlying protocols and the enhanced availability of specialized commercial systems enable us to investigate the microstructure of whole mouse organs and even allow for the characterization of cellular behavior in various live-cell imaging approaches. Here, we describe a protocol for the spatial whole-mount visualization and quantification of the CD45+ leukocyte population in inflamed mouse hearts. The method employs a transgenic mouse strain (CD11c.DTR)that has recently been shown to serve as a robust, inducible model for the study of the development of fulminant fatal myocarditis, characterized by lethal cardiac arrhythmias. This protocol includes myocarditis induction, intravital antibody-mediated cell staining, organ preparation, and LSFM with subsequent computer-assisted image post-processing. Although presented as a highly-adapted method for our particular scientific question, the protocol represents the blueprint of an easily adjustable system that can also target completely different fluorescent structures in other organs and even in other species.

Here, we describe a light-sheet microscopy approach to visualize the cardiac CD45+ leukocyte infiltrate in a murine model of aseptic fulminant myocarditis, which is induced by the intratracheal diphtheria toxin treatment of CD11c.DTR mice.

Visualização Quantitativa de Infiltrado de Leucócitos em um Modelo Murino de Miocardite Fulminante por Microscopia de Folha de Luz

Light-sheet fluorescence microscopy (LSFM), in combination with chemical clearing protocols, has become the gold standard for analyzing fluorescently ...

Balloon-based Injury to Induce Myointimal Hyperplasia in the Mouse Abdominal Aorta

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine balloon denudation model, which is comparable with established vessel injury models in large animals. The aorta denudation model with balloon catheters mimics the clinical setting and leads to comparable pathobiological and physiological changes. Briefly, after performing a horizontal incision in the aorta abdominalis, a balloon catheter will be inserted into the vessel, inflated, and introduced retrogradely. Inflation of the balloon will lead to intima injury and overdistension of the vessel. After removing the catheter, the aortic incision will be closed with single stiches. The model shown in this article is reproducible, easy to perform, and can be established quickly and reliably. It is especially suitable for evaluating expensive experimental therapeutic agents, which can be applied in an economical fashion. By using different knockout-mouse strains, the impact of different genes on MH development can be assessed.

This article demonstrates a murine model to study the development of myointimal hyperplasia (MH) after aortic balloon injury.

Lesão baseada no balão para induzir a hiperplasia Myointimal da Aorta Abdominal de Mouse

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine ...