O apoio financeiro para VECT-HORUS é reconhecido a partir do Fonds Único Interministerial (projeto FUI / MEDUL) e VECT-HORUS eo laboratório UMR7259 da Agence Nationale de la Recherche (ANR, TIMPAD, VECtoBrain, VEC2Brain, ADHOC e PREVENTAD projetos colaborativos) . O laboratório UMR7259 reconhece também o apoio financeiro do CNRS e de Aix-Marseille Université.

1. Produção de Rato Os astrócitos Para cada preparação de utilizar 10 ratos Wistar neonatais de ambos os sexos. <ol><li> Sacrificar os ratos, cortando cabeças com um par de tesouras e transferi-los imediatamente em uma placa de Petri seca sob uma capela de fluxo laminar. Remover o cérebro do crânio, sem o cerebelo e transferi-los imediatamente numa placa de Petri contendo tampão de dissecção gelado: HBSS suplementado com 1% de albumina de soro bovino (de baixo nível de endotoxinas BSA), penicilina 100 unidades / ml e estreptomicina 100 ug / ml. </li><li> Cortar os cérebros em metade, para separar os dois hemisférios cerebrais e transferi-los para uma placa de Petri limpa com tampão de dissecção em gelo. Corte o nervo óptico e remover as meninges sob microscópio estereoscópico. </li><li> Lavar as peças corticais extensivamente em 50 ml de tampão de dissecção gelado. </li><li> Coloque os pedaços de corticais a partir de 3 cérebros em um tubo Falcon de 15 ml e dissociar pipetando cima e para baixo um golpe de Estadole de vezes com uma pipeta descartável de 10 ml equipado com uma ponta de azul em 6 ml de tripsina a 0,05% - EDTA a 0,02% durante 5 min a 37 ° C. </li><li> Adicionar 24 ml de DMEM suplementado com FBS a 10% e os seguintes antibióticos, penicilina 100 unidades / ml e estreptomicina 100 ug / ml, uma mídia chamado meio de células da glia (MGC) e centrifugar a 300 xg durante 5 min à temperatura ambiente. Lotes FBS foram selecionados e validados para o crescimento e sobrevivência de cutures astrócitos. </li><li> Ressuspender o sedimento contendo as células dissociadas em 10 ml MGC e placa em uns 75 cm 2 t-se o frasco (T75). Troca da mídia no dia seguinte para remover os restos celulares e DNA. Substituir o meio de cultura duas vezes por semana. </li><li> Após 1 semana de proliferação, agitar suavemente as células da glia com um agitador orbital a 60 rpm durante 24 horas a 37 ° C no MGC. Se o T75 não pode ser colocado em uma incubadora com 5% de CO 2/95% de ar a 37 ° C, atmosfera húmida, suplementar os meios com HEPES a 5 mM. Lave as células duas vezes com retirar as células microgliais não aderentes. </li><li> Três semanas após a sementeira, lavar as células duas vezes com DPBS sem cálcio e magnésio. Adicionar 3 ml de tripsina quente 0,05%-EDTA a 0,02%, incubar a 37 ° C e esperar até que a camada de células é disperso (geralmente 5 min). Inibir a actividade da tripsina por adição de 10 ml de MGC, transferir a suspensão de células para um tubo Falcon de 15 ml e centrifugar a 120 xg durante 8 minutos. </li><li> Ressuspender o sedimento astrócitos em 90% FBS - 10% DMSO, transferi-los para criotubos (2 x 10 6 células por cryovial) e loja em nitrogênio líquido. </li></ol> 2. Isolamento de rato Microvasos Cérebro Nossos procedimentos experimentais foram aprovados pelo Comitê da Faculdade de Medicina de Marselha de Ética e em conformidade com os regulamentos nacionais e europeus (directiva da UE N. º 86/609). Foram feitos todos os esforços para minimizar o sofrimento dos animais e reduzir o número de animais utilizados. <ol><li> Para cada preparação e para uma experimental utilizador, usar 3 cinco semanas de idade os ratos Wistar. </li><li> Segunda-feira da primeira semana, dois frascos T75 preparar o revestimento com colagénio de tipo IV e a fibronectina, tanto a 1 ug / cm 2 em cultura água estéril (10 ml por T75). Permitir a aderir a 37 ° C até microvasos semeadura. </li><li> Quarta-feira da primeira semana, a eutanásia os ratos sob um fluxo crescente de CO 2 para induzir sonolência, perda de postura e respiração interrupção, seguida por uma luxação cervical. Pulverizar as cabeças com etanol 70%. Corte as cabeças com um par de tesouras e transferi-los para uma placa de Petri, seco, sob uma câmara de fluxo laminar. </li><li> Remover o cérebro do crânio, sem o cerebelo e os nervos ópticos, em seguida, transferi-los para uma placa de Petri arrefecida em gelo e encheu-se com tampão de dissecção gelado (HBSS suplementado com BSA a 1%, penicilina 100 unidades / ml e estreptomicina 100 ug / ml) . </li><li> Corte o cérebro ao meio para separar os dois hemisférios cerebrais e mesencéfalo separada da deebrain. Transfira os forebrains em uma placa de Petri limpa no gelo com tampão de dissecação. </li><li> Pegue um par de hemisférios de uma nova placa de Petri com tampão dissecção fria para remover cuidadosamente as meninges dos forebrains sob um microscópio estereoscópico com N ° 5 fórceps curvos. Em seguida, limpar o interior do cérebro para remover o acolchoado de mielina e obter uma concha de córtex. Estes passos não deve demorar mais do que 2 horas para a preservação do tecido e célula de sobrevivência. </li><li> Dissociar o córtex do cérebro em 3 6 ml de tampão de dissecção gelado em 7 ml de um homogeneizador Dounce de 10 movimentos abaixo e acima com cada um dos dois pilões de folgas diferentes, 71 mM, seguido por 20 um. </li><li> Dividir a suspensão para obter o equivalente de um córtex em 1 ml de um tubo Falcon de 50 ml e centrifugar a 1000 g durante 5 min à temperatura ambiente. Desprezar o sobrenadante. </li><li> Digerir a suspensão a partir de um córtex com 1 ml de uma solução enzimática contendo uma mistura de colagenase / dispase (60 ug / ml I11; 0,3 U / ml), ADNase tipo I (35 ug / ml - 20 K unidades / ml) e gentamicina (50 ug / ml) num agitador durante 30 minutos a 37 ° C. </li><li> Misture a 1 ml de uma digest córtex com 10 ml de 25% de BSA / HBSS 1X e separado por centrifugação de densidade dependente de 3.600 xg durante 15 min à temperatura ambiente. Transferir cuidadosamente o disco superior (mielina e parênquima cerebral) e o sobrenadante para um tubo Falcon de 50 ml limpos e repetir a centrifugação. Manter o sedimento resultante contendo os microvasos cerebrais, a 4 ° C. </li><li> Cuidadosamente descarte do disco superior e o sobrenadante. Ressuspender ambos os sedimentos resultantes contendo os microvasos cerebrais com 1 ml de HBSS frio 1X e transferir para um tubo Falcon de 50 ml limpo. </li><li> Lave os microvasos por adição de 20 ml de HBSS frio 1X e centrifugar a 1000 g durante 5 min. Desprezar o sobrenadante. </li><li> Além disso digerir os microvasos a partir de um córtex com 1 ml da mesma solução enzimática, tal como descrito na etapa 2.9, durante uma hora a 37 ° C em um shAker. </li><li> Em seguida, misturar os microvasos digeridos de cada um dos três córtices em um tubo e ainda separar-se em dois tubos Falcon de 50 ml para se obter os microvasos extraídos a partir do equivalente de uma vez e meia (1,5) córtex por tubo. Adicionar 30 ml de tampão de dissecção gelado e centrifugação a 1000 xg durante 5 min à temperatura ambiente. </li><li> Ressuspender o sedimento de microvasos em 10 ml de DMEM/F12 suplementado com 20% de plasma pobre em plaquetas bovino soro derivado, o factor de crescimento de fibroblastos básico (bFGF, 2 ng / ml), heparina (100 ug / ml), gentamicina (50 ug / ml) e HEPES (2,5 mM), chamado meio de células endoteliais (ECM) suplementado com puromicina a 4 ug / ml. </li><li> Pegue os dois frascos T75 revestidos da incubadora, aspirar o excesso de revestimento e placa microvasos de cada tubo em um frasco T75 (microvasos extraídos de 1,5 córtex por frasco T75). </li></ol> 3. Purificação e Proliferação de RBEC Primocultures <ol><li> Purificação: quarta-feira a sexta-feira, adicionar puromycin a 4 ug / ml para o meio de cultura. Troca da mídia na quinta-feira. Na sexta-feira, lavar as células e adicionar puromycin a 2 mg / ml, até segunda-feira. </li><li> Proliferação: na segunda-feira da segunda semana, lavar as células e adicionar insulina, transferrina e suplemento de selenito de sódio ao meio de cultura até as culturas chegar a 90% de confluência na quarta-feira da segunda semana. </li></ol> . 4 Diferenciação: Configurar o modelo in vitro BBB <ol><li> Segunda-feira da segunda semana, prepare filtros (polietileno, 12 poços, dos poros de tamanho 1,0 mm) através do revestimento com uma mistura de colágeno tipo IV e fibronectina tanto no 0.5μg/cm 2 em água cultura estéril (500 mL de mistura no compartimento superior e 1,5 ml de água estéril de cultura no compartimento inferior). Permitir a aderir a 37 ° C até RBEC semeadura. </li><li> Segunda-feira da segunda semana, cinco dias antes do estabelecimento da co-cultura, descongelar os astrócitos de criotubos a 37 ° C e transferêncianum Falcon de 15 ml com 10 ml MGC. Centrifugar a suspensão a 120 xg durante 8 minutos à temperatura ambiente. </li><li> Ressuspender o sedimento em astrócitos MGC e placa a uma densidade de 30 x 10 3 culas por cm 2 em placas de 12 poços. </li><li> Quarta-feira da segunda semana, imediatamente antes de dissociação com tripsina RBEC, lavar duas vezes o filtro pré-revestido com meio DMEM/F12. Pré-encher as câmaras com ECM: 1,5 ml no compartimento inferior e 0,5 ml no compartimento superior. </li><li> Quarta-feira da segunda semana, lavar duas vezes o RBEC com DPBS sem cálcio e magnésio. Adicionar 4 ml de tripsina quente 0,05% - EDTA a 0,02% a 37 ° C por frasco T75 durante exactamente 30 segundos. Em seguida, remover 3,5 ml de solução de tripsina e observar ao microscópio. Quando a camada de células começa a separar a partir da matriz, ajuda-los batendo suavemente a ponta do frasco T75 até que todas as células estão a flutuar. </li><li> Adicionar 9 ml de ECM por frasco T75 e transferir para um tubo Falcon de 15 ml. Muito dissociar suavemente o celularsuspensão por pipetagem para cima e para baixo, 4 vezes com uma pipeta de 10 mL, equipado com uma ponta amarela (evitar a produção de bolhas na solução). Contar as células em suspensão (a aproximadamente 3 x 10 6 cells/T75) e a placa imediatamente em filtros de pré-revestido e pré-cheios a uma elevada densidade (160 x 10 3 células / filtro, portanto, aproximadamente 18 filters/T75) (Figura 8 ). O dia seguinte (quinta-feira), mudar o meio de duas vezes o compartimento superior para remover os detritos celulares. </li><li> Quinta-feira da segunda semana, um dia antes do estabelecimento do processo de co-cultura, substituir o meio de cultura dos astrócitos por 1,5 ml de meio de diferenciação (ECM com hidrocortisona em 500 nM), que pode ser suplementado com 1/3 de meio condicionado a partir do compartimento basal de um co-cultura anterior (3 dias de contacto entre as células endoteliais e astrócitos). </li><li> Sexta-feira da segunda semana é definido como o dia 0 de diferenciação; substituir o meio de cultura a partir da Conta filtrosining o RBEC com a mídia diferenciação. Transferir os filtros RBEC nas cavidades que contêm os astrócitos. Sob estas condições, em modelos in vitro e diferenciar expressam proteínas relacionadas com a junção dentro de 3 dias. </li><li> Os modelos de manter sua diferenciação ideal durante mais de 3 dias, entre segunda e quarta-feira da terceira semana. </li></ol>

Michel Khrestchatisky is director of the UMR7259 laboratory, co-founder and scientific counsel of VECT-HORUS biotechnology company.

Nós descrevemos a implementação de um protocolo reprodutível semanal para o isolamento e revestimento de microvasos cerebrais, após purificação e cultura de RBEC e mais criação de co-culturas com astrócitos primários de rato para gerar um modelo in vitro BBB com propriedades características de BBB. Estabelecer com sucesso padronizados em culturas in vitro de BBB exige condições ideais nas várias etapas seqüenciais do processo. O modelo foi (a) optimizada para obter a permeabilidade paracelular menor, o que continua a ser o &quot;Santo Graal&quot; de modelos in vitro de BBB, e (b) validado por efluxo e mecanismos RMT. Produção, purificação e Proliferação de RBEC O maior desafio quando o cultivo RBEC é conseguir a reprodutibilidade entre diferentes culturas. Padronização do protocolo exige ferramentas de alta qualidade para disseção, reagentes de alta qualidade e respeito das datas de validade de reagentes. O experimentador deve ser hábil em micro-dissecção sob microscópio estereoscópico para a remoção rápida de meninges e grandes vasos da superfície do córtex. Uma vez que os cérebros são isolados e mecanicamente dissociados, um dos principais desafios é a digestão enzimática óptima dos microvasos do cérebro isoladas de fresco. O tipo e qualidade das enzimas utilizadas é crítica. Foi utilizada uma mistura de tipo colagenases I e II e dispase em alta concentração, com baixa variabilidade entre lotes. Também importante é a duração da digestão enzimática e da razão entre o peso de concentração de enzima / tecido / volume de digestão. O melhor rendimento de produção microvascular cerebral foi obtido com o equivalente de córtex cerebral de 1 em 1 ml de colagenase / dispase misturar a 60 ug / ml durante as duas digestões, respectivamente, 30 minutos e 1 hora. Também importante é a eliminação de contaminação de célulass (astrócitos e principalmente pericitos). Essas células proliferam a taxa mais elevada do que as células endoteliais e não estabelecem junções apertadas com o último, impedindo, assim, o estabelecimento de uma monocamada de células homogêneas com boa restritividade paracelular. Considerando-se que as células endoteliais do cérebro expressaram níveis muito mais elevados de bombas de efluxo, especialmente P-gp, em comparação com os outros tipos de células encontradas no microvasos, que tolera melhor as concentrações de outro modo tóxicos de drogas do ligando de P-gp, enquanto que as células endoteliais não são eliminados. Tratamento puromicina a 4 ug / ml para os dois primeiros dias foi seguido de mais dois dias de 2 ug / ml para se obter uma boa pureza de células endoteliais. Esta seleção também pode favorecer células endoteliais capilares contra os de vênulas, arteríolas pré-capilares ou microvasos maiores, e levar a monocamadas mais apertados. Além disso, a utilização de soro bovino derivada de plasma pobre é um imperativo para obter culturas puras de células endoteliais 47,48. A-der plasmasoro IVED carece de factor de crescimento derivado de plaquetas (PDGF), o qual é mitogénica para fibroblastos, para as células musculares lisas e, por conseguinte, pericitos. Observou-se que o tratamento de plástico e filtros com uma mistura de colagénio do tipo IV a partir de ratos e de fibronectina humana resulta uma vantagem significativa, com um aumento de 2 vezes do rendimento de proliferação em comparação com o colagénio do tipo I, a partir tradicionalmente recomendada da cauda de rato. Sinais importantes para a proliferação celular são fornecidos pela matriz extracelular, tais como a integrina e o factor de crescimento (bFGF) de activação 49. Concentração do tampão e pH dos meios de cultura têm sido descritos para impactar positivamente em paracelular aperto 50 e observou-se uma melhor reprodutibilidade entre as culturas, com a adição de tampão HEPES a 5 mM. Diferenciação de RBEC: Co-cultura Estabelecimento em Inserir Filtros Uma vez que as células endoteliais do cérebro têm been purificado e proliferaram durante 6 dias, podem ser semeadas em filtros. Plaqueamento de células a uma densidade elevada é importante para se obter uma monocamada perfeito. A densidade de sementeira de 160x10 3 células por 12 filtros de placas assim era necessária e suficiente para se obter uma monocamada confluente de 24 horas após a sementeira. No entanto, o isolamento de células endoteliais de capilares cerebrais primários a partir de seu ambiente é um paradoxo na construção de um modelo de certificação in vitro, pois sabe-se que as células primárias e as células endoteliais capilares do cérebro, nomeadamente, são fortemente regulados pelo ambiente e fatores indutores produzidos pela os diferentes tipos de células vizinhas. Células endoteliais capilares do cérebro cultivadas sozinho rapidamente de-diferenciar e perder alguns marcadores endoteliais cerebrais específicas. Assim, as células endoteliais primárias devem ser usadas em baixa passagem (P1) e re-ligado, pelo menos em parte, com o ambiente através de co-cultura com os astrócitos ou meio condicionado por astrócitos 47,51. Isto éverdadeiro para a diferenciação de astrócitos como as células endoteliais e astrócitos do cérebro estão envolvidas na indução de duas vias. Cultivar RBEC com astrócitos levou a uma forte indução do TJ interendoteliais 52,23. Os mecanismos moleculares de re-indução são ainda desconhecidas, ea pesquisa está em curso em vários laboratórios para identificar os fatores de modulação específicas secretadas pelos astrócitos, o que poderia promover a diferenciação de células endoteliais ideal 53,54. Factores segregados pelas células endoteliais do cérebro, como o factor de inibição de leucemia (LIF) foram mostrados para induzir a diferenciação de astrócitos 55,56. Antes de estabelecimento de co-cultura, os astrócitos foram expostas a meio de diferenciação contendo o glicocorticóide hidrocortisona agonista do receptor, e a co-cultura em meio condicionado. A hidrocortisona é conhecido para melhorar a estanqueidade de células endoteliais cerebrais e é utilizado em modelos de BBB especialmente de rato 57 e do rato 58,59 células endoteliais. A medi condicionadohum é coletado do compartimento inferior da célula / astrócitos sistema de co-cultura endotelial após 3 dias e congelado para uso posterior. O uso de meio de co-cultura condicionado reduziu o tempo de diferenciação de células endoteliais de 3 dias, com a permeabilidade paracelular óptima durante mais 2 dias e também melhorou a reprodutibilidade entre as culturas. Em geral, o protocolo que descreva produz um TEER reprodutível mais de 300 ohm · cm 2 e um coeficiente de permeabilidade paracelular média Pe (LY) de 0,26 ± 0,11 x 10 -3 cm / min, semelhante ao dos melhores modelos baseados em células primárias de BBB 22, 12. O protocolo que descrevemos na presente manuscrito com a modulação proposta de digestão enzimática de microvasos pode ser estendido para as células endoteliais a partir da medula espinal de rato e a partir de 60 ratos cérebro. Caracterização Molecular e Funcional Aléma indução TJ, astrócitos também contribuir para a expressão de transportadores de efluxo tais como a P-gp em células endoteliais do cérebro 61. Nós, de facto mostrar a expressão do transportador de efluxo de P-gp na modelo certificação e que demonstram a polaridade da bomba de efluxo de P-gp localização utilizando abordagens bioquímicas e de actividade de P-gp, utilizando um ensaio funcional. GLT-1 expressão foi detectada na fracção de membrana basal de microvasos, mas não foi detectada em RBEC cultivadas. Nossa hipótese é que GLT-1 foi regulada para baixo em nossa cultura RBEC em comparação com as condições in vivo e, conseqüentemente, não detectável por western blot. O excesso de glutamato é neurotóxica e in vivo, da GLT-1 é responsável por glutamato efluxo do compartimento basal (parênquima) para o compartimento apical (a circulação sanguínea). Em culturas de astrócitos, GLT-1 expressão permanece muito baixo e é induzido pela adição de glutamato no meio de 62,63. Também confIRM a expressão de transportadores de influxo na membrana apical tal como LRP1, LDLR e TfR. Funcionalidade de TfR e LDLR foi demonstrado com a ligação e transporte experimentos de Tf-Cy3 e DiLDL do luminal para o lado abluminal da monocamada como previamente mostrado com um bovino em modelo BBB vitro 64. Curiosamente, tem sido demonstrado que a exigência de lípidos de astrócitos aumenta a expressão de LDLR em células endoteliais dos capilares do cérebro 65,66 confirmar ainda mais a diafonia entre fisiológico astrócitos e as células endoteliais do cérebro, incluindo in vitro. Escolhemos para exemplificar o transporte com as tinturas fluorescentes tais como Cy3 e DII considerando que a análise de fluorescência está disponível na maioria dos laboratórios, e pode ser útil para validar em modelos in vitro de BBB. Contudo, a quantificação da fluorescência é muito menos sensível do que a radioactividade e requer um aumento do número de experiências para obter dados importantes.Idealmente, Tf e LDL são geralmente radioativo (iodo 125) para tais experimentos obrigatório / absorção e transporte. Também mostramos que a monocamada de células endoteliais diferenciadas obtidas com o protocolo proposto responde à inflamação induzida por TNF-α, como revelado pela libertação CCL2 abertura e certificação. CCL2 (MCP-1) e o seu receptor CCR2 estão envolvidos em patologias do SNC tais como esclerose múltipla, encefalomielite auto-imune experimental (EAE), 67, 68 trauma do SNC e são conhecidos como mediadores da migração de leucócitos para o sistema nervoso central sob condições neuroinflamatórias 69,70. Com o protocolo testado, não se pode concluir em uma secreção polarizada de CCL2 porque abertura certificação permite que a concentração CCL2 equilibrar entre os dois (basal) compartimentos superiores (apical) e inferiores. Consequentemente, nós subestimar claramente a quantidade de CCL2 produzido pela RBEC no compartimento apical de 24 hr (Figura 5A). Visão Geral e Limitações do BBB modelos in vitro: Eu n Vivo contra In Vitro e Rodent contra Comparações Humanos Muitas drogas promissoras do SNC que se mostrou eficaz no BBB passagem in vitro falhou em ensaios clínicos, devido à falta de previsibilidade de em modelos in vitro de BBB muitas vezes baseadas em células isoladas de outras espécies que não humano. Ao melhor de nosso conhecimento, os modelos in vitro de BBB são provavelmente mais preditivo quando se trata de estudar os aspectos mecanicistas de redes de proteínas, transdução de sinal, transportadores e receptores. Cada mecanismo, caminho ou alvo a ser estudada in vitro deve ser caracterizada pela sua regulação por estímulos ambientais complementares (outros tipos de células, produtos químicos, proteínas) e combinados para estudos in situ com as mesmas espécies animaisE, quando possível, com microvasos e células endoteliais isoladas de seres humanos, com as restrições e cautela evocado abaixo. In vitro modelos de BBB tem que ser vistos como sistemas autônomos, isolados de regulação do corpo, mas ainda dotado de grandes in vivo propriedades e um potencial para a regulação por estímulos ambientais. N &quot;ideal&quot; modelo in vitro de certificação tem sido proposto ainda 71,72,73 porque as monocamadas de células endoteliais não têm um número de componentes importantes da unidade vascular neuro-glia (NGVU) e são isolados a partir de sangue e de regulação do corpo. A falta de pericitos 74,16 ou 17,18 neurónios ou os diferentes constituintes da matriz extracelular utilizados para o revestimento de plástico ou o meio de cultura e soro utilizado para o crescimento das células em mais comum e mais fácil &quot;efectuadas&quot; in vitro modelos de BBB baseado em endotelial células diferenciadas com astrócitos pode modular a expressão da proteína in comparação com a situação in vivo 75. Estes modelos podem expressar muitos transportadores exibidas in vivo, mas não todos. Em alguns casos, os parâmetros de transporte foram verificadas pela primeira vez em microvasos isolados (mais próximas da situação in vivo em), e, em seguida, estudado em sistemas de cultura de células 76,61. Investigação em biologia molecular permitiu a caracterização da expressão do gene e proteína em microvasos isolados e passagem endoteliais culturas baixas de células da mesma espécie e entre espécies diferentes, na maioria das vezes a partir de pequenos animais, como roedores (ratos e ratos) ou de vaca e porco em comparação com os seres humanos 77,78,75,15. Comparação entre transcriptomic in vivo e em células endoteliais microvasculares cerebrais in vitro mostraram numerosos transcritos de genes que foram diferencialmente expressos e mais frequentemente significativamente regulada negativamente in vitro. Transcrições que codificam transportadores de influxo como TfR e proteins implicados no tráfico de vesículas são principalmente downregulated em células endoteliais cultivadas cérebro, sugerindo uma diminuição geral na endocitose e transporte vesicular em tais células. Manipulação Cultura em termos de pureza (tratamento puromycin) e tratamento com hidrocortisona pode ajudar a restaurar a &quot;in vivo-como&quot; perfil mais a expressão do gene 77. Estudos transcriptomic também revelou diferenças importantes entre as espécies que complicam ainda mais previsões sobre a absorção da droga em humanos com base em roedores em modelos in vitro de BBB 75. Modelos in vitro de BBB que envolvem co-cultura de células endoteliais humanas e astrócitos foram descritas 15. Embora relevante, estes modelos são mais difíceis de implementar em uma base regular como eles exigem acesso regulado ao tecido humano post-mortem e há heterogeneidade na qualidade / propriedades das células endoteliais do cérebro humano, dependendo da idade, doenças, e possivelmente médica tratamentt de doadores. Os esforços têm de ser feitos para desenvolver novos sistemas in vitro que reproduzem melhor a fisiológicas, anatómicas e as características funcionais do in vivo a certificação. Co-culturas envolvendo três tipos de células são altamente restritiva e parecem difíceis de implementar de forma rotineira. Até à data, os modelos in vitro de BBB mais complexos são os modelos in vitro (DIV dinâmicas-BBB), que incluem organização navio semelhante com astrócitos e incluem um fluxo de meio que simula o fluxo sanguíneo 75,79,80,81,82, 83,84,85. Quando as células endoteliais cerebrais são expostos a um fluxo, a tensão de cisalhamento gerada mechanotransducers activa na superfície da célula, que modulam a expressão dos diferentes genes envolvidos na fisiologia da célula endotelial tais como a divisão celular, diferenciação, migração e apoptose 80. In vivo, a tensão de cisalhamento gerado pelo fluxo de sangue é responsável pela paragem da mitose com o contato de células, o que permite o estabelecimento de ummonocamada de células endoteliais nos vasos sanguíneos 80. Análise genômica e proteômica de células normais microvascular cérebro humano endoteliais mostraram o impacto da tensão de cisalhamento em BBB fisiologia endotelial 84. A tensão de cisalhamento é responsável para a sobrevivência da célula, um maior grau de adesão de células endoteliais, indução da bomba de efluxo e melhor polarização dos transportadores 75, a regulação do metabolismo da glicose 75,86, oxidação mediada por enzimas CYP450 75 e a regulação da permeabilidade paracelular através do aumento da expressão de genes que codificam para os elementos de junção intercelular, como ocludina e ZO-1 e, consequentemente, 87,75,80 alta TEER cerca de 1500 - 2000 ohm · cm 2, a mais próxima conhecida in vivo parâmetros 79,80 Na indústria de biotecnologia e farmacêutica, a triagem de rotina de drogas ou até mesmo alto throughput screening (HTS) e os esforços para reduzir a experimentação animal, levoupara o desenvolvimento de linhas de células diferentes a serem utilizadas em substituição da cultura primária de células endoteliais cerebrais, que permanecem mais difícil de definir-se de forma rotineira. Na maioria dos casos, as culturas primárias de células endoteliais cerebrais foram transduzidas com um gene de imortalização (SV40 ou vírus do polioma grande antigénio T ou E1A do adenovírus), ou por transfecção de DNA de plasmídeo ou por uma infecção utilizando vectores retrovirais 88,89,75. Várias linhas de células endoteliais de origem cerebral foram desenvolvidos, tais como o RBE4, GP8/3.9, GPNT, RBEC1, TR-BBBs rBCEC4 ou linhas de células de rato 88,75, a linha de células de rato b.End3 90,75, o PBMEC/C1 - 2 porcino linha celular de 87,75, e a linha celular humana hCMEC/D3 89,75. Outros modelos baseiam-se em células de origem não-cerebral, tais como o rim canino Madin-Darby (MDCK) ou linhas de células Caco2 12,75. Entre as diferentes linhas de células endoteliais cerebrais humanos, o hCMEC/D3 tem sido amplamente citard e melhorada como um modelo de certificação desde a sua criação, em 2005, 91,92. Como culturas primárias, as linhas de células possuem vantagens e limitações. Eles são mais fáceis de lidar do que culturas primárias, têm um tempo de vida prolongado, estão bem caracterizados e de permitir a reprodutibilidade entre experimentos de grande escala. No entanto, as linhas celulares podem perder as funções específicas do tecido, perder regulação ambiental e adquirir um fenótipo molecular bastante diferente de células in vivo 75, 89. Em particular, monocamadas gerados a partir de linhas de células presente aperto reduzido, baixa Teer e variação Perfil do show de transportador 75,89. Assim, experimentos com animais e estudos em células primárias são muitas vezes preferido, apesar de sua complexidade.

Muitos medicamentos desenvolvidos para tratar do Sistema Nervoso Central (SNC) são incapazes de atingir o parênquima cerebral em concentrações terapeuticamente relevantes. A certificação protege o tecido nervoso do cérebro a partir da flutuação da composição do plasma, a partir de agentes patogénicos, e mantém a homeostase do parênquima do cérebro, restringindo o fluxo de não-específico de iões, péptidos, proteínas e até mesmo células para dentro e para fora do cérebro 1. Características de BBB são induzidos e mantidos pela proximidade íntima e cross-talk entre as células endoteliais microvasos cérebro classe especializada e elementos vizinhos da unidade de neuro-glia-vascular (NGVU), tais como os neurônios, células da glia (astrócitos, mais precisamente o final de pés), e pericitos ensheathed na membrana basal, que consiste principalmente de colágeno tipo IV, fibronectina, laminina e proteoglicanos 2,3. Pericitos cobrem aproximadamente 22 - 32% do endotélio ao nível capilar e desempenham um importantepapel na regulação da proliferação endotelial, angiogênese e processos inflamatórios. As células endoteliais formam uma folha contínua que cobre a superfície interna dos vasos capilares. Eles são ligados entre si por TJs, que formam uma estrutura de correia como a região apical, e que contribuem para a célula de polarização. Os astrócitos regulam as propriedades de BBB e são fontes de factores regulatórios importantes, tais como TGF-β, GDNF, bFGF, e IL-6. Os astrócitos deficientes em GFAP com funcionalidade incompleta não são capazes de regular de BBB propriedades 4. Os neurónios não são directamente envolvidas estruturalmente na formação da certificação, mas também regulam aspectos importantes da expressão da proteína e BBB funções 5. Para estudar ainda mais a estrutura, fisiologia e patologia do BBB, modelos in vitro da certificação foram desenvolvidos como ferramentas de pesquisa. As células endoteliais do cérebro foram extraídos a partir de várias espécies para implementar em modelos in vitro de BBB baseadocom baixos passagem principais culturas provenientes de bovinos, suínos 6,7 8,9, 10,11,12 rato, rato 13 e também humano 14,15. Estes modelos são conhecidos para imitar in vivo certificação, especialmente quando co-cultivadas com células gliais de rato ou murina e / ou pericitos, 16,12 e / ou progenitoras derivadas de células de astrócitos neurais 17 e / ou 18 de neurónios. Os modelos &quot;em laboratório&quot; são muitas vezes produzidos a partir de roedores porque eles permitem in vitro / in vivo, ensaios e comparações e / ou o estudo de células endoteliais cerebrais produzidos a partir de modelos transgénicos 19. Recentemente desenvolvido em modelos in vitro de BBB também foram projetados para ajudar a prever a captação cerebral de potenciais SNC drogas candidatos antes de ensaios in vivo 15,20,21,3,6,22,11,23. Modelos in vitro de BBB são normalmente utilizados para comparar o transporte de drogas com: i) conhecido penetração no SNC ou com low permeabilidade através da certificação e sem efeitos centrais, e ii) a aparente Pe de os mesmos medicamentos medidos em modelos animais da mesma espécie. As drogas que facilmente passam a certificação são principalmente lipofílico e atravessar as membranas das células endoteliais do cérebro por mediada por lípidos difusão livre (cafeína, carbamazepina, etc.) As drogas transportadas negativamente, tais como a digoxina, verapamil ou ciclosporina A são activamente extrudido por endoteliais cerebrais transportadores de efluxo tais como a P-gp. No entanto, muitas das moléculas terapêuticas recentemente desenvolvidos são produtos biofarmacêuticos, tais como proteínas recombinantes, siRNAs ou anticorpos monoclonais. A maioria deles não atravesse a certificação devido a: i) a ausência de transportadores específicos, e ii) a camada apertada de células endoteliais, que impedem que as moléculas de alto peso molecular de sofrer passagem paracelular. Com esses limites, as estratégias de &quot;Cavalo de Tróia&quot; foram implementadas usando vetores (anticorpos, peptídeos) contra os receptores conhecidos no BBB, envolveu in mediada pelo receptor de transporte ou transcitose (RMT), tais como o receptor de transferrina (Tf) (TfR), o receptor de insulina (RI), ou os membros do receptor de LDL (LDLR) relacionados com a família de receptores (LDLR, LRP1). Tais receptores têm sido encontrados em isolados capilares cerebrais e na certificação in vivo 24,25. Perfis de transcrição para estes receptores, em particular os da família LDLR, foram analisados ​​e comparados entre as células endoteliais do cérebro e células endoteliais do cérebro em co-cultura com astrócitos ou nos capilares cerebrais logo após sua extração do cérebro 26. Pardridge 24 abriu o campo com o anticorpo OX-26 contra o receptor de transferrina (TfR), seguido de anticorpos contra o receptor de insulina e o receptor do factor de crescimento semelhante à insulina 27,28. Com estes vectores de anticorpos baseada, ArmaGen Technologies desenvolveu um Trojan molecular plataforma cavalo tecnologia certificação para entregar drogas, incluindo proteínas, através da certificação 29. Oliteratura é rica em dados que mostram expressão LRP1 nas células endoteliais do cérebro e do seu papel como um poderoso receptor endocítico / limpador. A análise Western blot sugerido que LRP1 é expresso em fracções enriquecidas em capilares de cérebro de rato e em células endoteliais capilares do cérebro 30. Empresas como a Angiochem alvo LRP1 com vetores de peptídeos derivados de aprotinina que promovem o influxo de drogas eficiente em todo o BBB 31. No entanto, LRP1 também está envolvido no transporte ativo de Aâ e seu efluxo / autorização do parênquima cerebral de sangue 32. Estes dados implicam LRP1 num transporte bidireccional através da certificação de acordo com os seus ligandos. biOasis desenvolve a tecnologia transcendem usando um melanotransferrina proteína para o transporte de produtos biológicos, tais como enzimas lisossomais e anticorpos através da certificação 33 enquanto VECT-horus desenvolve vectores de peptídeos que têm como alvo o LDLR 34. Há dados que sugerem que a PRL e LDLR pode ser utilizado para o transporte de diferent moléculas, tais como enzimas lisossomais 35,36 ou complexos de nanopartículas em todo o BBB 37. O campo de interesse é a entrega da droga para o sistema nervoso central utilizando moléculas de vector e vetorizadas droga-candidatos para o tratamento de doenças do SNC. Em particular, a entrega da droga através da certificação tem de ser considerada no contexto de neuroinflammation, um processo que pode variar na sua extensão, mas que provavelmente é comum a todas as lesões e doenças do SNC, incluindo a encefalite, a esclerose múltipla, a doença de Alzheimer, etc Neuroinflammation está associada com a certificação inflamação e potencialmente com alterações na fisiologia certificação e considerando que a permeabilidade paracelular e transporte intracelular pode ser amplificado em condições patológicas 38,39,40,41,42,43. Por exemplo, o TNF-α, TWEAK, e outras citocinas modular a inflamação, e as experiências com modelos in vitro de BBB demonstraram que podem alterar as propriedades de paracelulares the em monocamada de células endoteliais 38,39,40 e que o TNF-α também conduz a um aumento do transporte transcelular de LDL 41, holotransferrina 42 e 43 da lactoferrina. Nosso objetivo foi desenvolver e caracterizar um otimizado e altamente reprodutível singênico rato modelo BBB usando co-culturas de células endoteliais cerebrais primários e astrócitos. Foram utilizados ratos Wistar cinco semanas de idade e neonatais para a produção de células endoteliais do cérebro e na produção de astrócitos, respectivamente. Um desafio foi estabelecer um protocolo que permite a produção de &quot;semanal reprodutíveis&quot; modelos de BBB. Para alcançar este objetivo, a cada passo do protocolo de produção foi realizada em dias fixos da semana, a partir da produção de microvasos cérebro na quarta-feira da primeira semana. As dissecções foram feitas quase todas as semanas, durante os últimos 3 anos. Para melhorar ainda mais a reprodutibilidade das culturas, um sistema de garantia de qualidade foi estabelecido. Todos Reagents e produtos químicos foram referenciados em um banco de dados (data de entrada, estoque, prazo de validade, etc.) O modelo foi caracterizado a seguir um certo número de critérios, tais como a organização das células endoteliais e pureza, TEER, LY permeabilidade, resposta à exposição a agentes pró-inflamatórios, a expressão qualitativa e quantitativa das proteínas TJ, a funcionalidade de transportadores de efluxo tais como a P-gp, e receptores envolvido na transcitose através da monocamada de células endoteliais, tais como o TfR ou o LDLR.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="666">
	<tbody>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:189px;">Product</td>
			<td style="width:149px;">Company</td>
			<td style="width:153px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:175px;">Comments / expiration term</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:189px;">BSA fraction V low endotoxin</td>
			<td style="width:149px;">PAA</td>
			<td style="width:153px;">K45-011-500g</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="33">
			<td height="33" style="height:33px;width:189px;">Penicillin-Streptomycin</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">15140-122</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="38">
			<td height="38" style="height:39px;width:189px;">0,05% Trypsin-EDTA (1X)</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">25300-054</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="33">
			<td height="33" style="height:33px;width:189px;">DMEM High Glucose</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">61965-026</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;width:189px;">Fetal Bovine Serum</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">10270-098</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C / 1 year</td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">T75 flasks</td>
			<td style="width:149px;">Becton Dickinson Falcon</td>
			<td style="width:153px;">353135</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:43px;width:189px;">HEPES buffer (1 M)</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">15630-056</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C / 1 year</td>
		</tr>
		<tr height="50">
			<td height="50" style="height:51px;width:189px;">Collagene type IV mouse (10 x 1 mg)</td>
			<td style="width:149px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:153px;">356233</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C / 1 month</td>
		</tr>
		<tr height="48">
			<td height="48" style="height:48px;width:189px;">Fibronectin humain plasma (5 mg)</td>
			<td style="width:149px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:153px;">356008</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C / 1 month</td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">Vannas Spring Scissors, straight (9 cm)</td>
			<td style="width:149px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:153px;">91500-09</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">Scissors, straight (9 cm)</td>
			<td style="width:149px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:153px;">14568-09</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">Forceps Dumont #5/45 (11 cm)</td>
			<td style="width:149px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:153px;">11251-35</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">Graefe Forceps, tip width 0,8 mm</td>
			<td style="width:149px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:153px;">11050-10</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">Graefe Forceps, curve tip width 0,8 mm</td>
			<td style="width:149px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:153px;">11051-10</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="50">
			<td height="50" style="height:51px;width:189px;">Collagenases / Dispase mix (2 x 5 mg)</td>
			<td style="width:149px;">Roche Diagnostics</td>
			<td style="width:153px;">05 401 054 001</td>
			<td style="width:175px;">- 20 &#176;C / 3 months</td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:189px;">DNase I (100 mg / 569 KU / mg)</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:153px;">DN25-100 mg</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C / 1 year</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:189px;">Gentamicin (10 mg/mL)</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">15710-049</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C / 1 year</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:189px;">DMEM/F12</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">31331-028</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="49">
			<td height="49" style="height:49px;width:189px;">Bovine serum from platelet poor plasma (500 mL)</td>
			<td style="width:149px;">Clinisciences</td>
			<td style="width:153px;">BT-214-100</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C / 1 year</td>
		</tr>
		<tr height="44">
			<td height="44" style="height:44px;width:189px;">bFGF (10 &#181;g)</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">13256-029</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C / 6 months</td>
		</tr>
		<tr height="49">
			<td height="49" style="height:49px;width:189px;">Heparine Na salt from porcine mucosa Grade I</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:153px;">H3149-100KU</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C / 1 year</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:189px;">Puromycin</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:153px;">P8833-10 mg</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C / 6 months</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:189px;">ITSX</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">51500-056</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C / 1 year</td>
		</tr>
		<tr height="50">
			<td height="50" style="height:51px;width:189px;">Polyethylene hanging cell insert for 12-well plates</td>
			<td style="width:149px;">Millipore</td>
			<td style="width:153px;">PIRP15R48</td>
			<td style="width:175px;">Porosity: 1 &#181;m 
			Surface: 1,1 cm2</td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">Hydrocortisone</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:153px;">H0888-1 g</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C / 1 year</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:189px;">Mouse anti-CD31 / PECAM&#160;</td>
			<td style="width:149px;">Chemicon</td>
			<td style="width:153px;">MAB1393, clone TLD-3A12 (1 mg/mL)</td>
			<td style="width:175px;">1/200 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:43px;width:189px;">Rabbit anti-Von Willebrand</td>
			<td style="width:149px;">Chemicon</td>
			<td style="width:153px;">AB7356</td>
			<td style="width:175px;">1/200 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="48">
			<td height="48" style="height:48px;width:189px;">Mouse anti-Desmine</td>
			<td style="width:149px;">Chemicon</td>
			<td style="width:153px;">MAB3430</td>
			<td style="width:175px;">1/200 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="48">
			<td height="48" style="height:48px;width:189px;">Mouse anti-Vimentine</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen, Zymed</td>
			<td style="width:153px;">08-0052 clone V9, (58 &#181;g/mL)&#160;</td>
			<td style="width:175px;">1/50 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="48">
			<td height="48" style="height:48px;width:189px;">Mouse anti-Claudin-5</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen, Zymed</td>
			<td style="width:153px;">35-2500, (500 &#181;g/mL)</td>
			<td style="width:175px;">1/200 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">Rabbit anti-ZO-1</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen, Zymed</td>
			<td style="width:153px;">61-7300 (250 &#181;g/mL)</td>
			<td style="width:175px;">1/200 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="45">
			<td height="45" style="height:45px;width:189px;">Rabbit anti-Occludine&#160;</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen, Zymed</td>
			<td style="width:153px;">71-1500 (250 &#181;g/mL)</td>
			<td style="width:175px;">1/200 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="72">
			<td height="72" style="height:72px;width:189px;">Alexa fluor 488, 594 conjugated secondary antibodies</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;"></td>
			<td style="width:175px;">1/800</td>
		</tr>
		<tr height="46">
			<td height="46" style="height:47px;width:189px;">Lucifer yellow CH, dilithium salt</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:153px;">L0259</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="33">
			<td height="33" style="height:33px;width:189px;">TNF-a Human</td>
			<td style="width:149px;">PeproTech</td>
			<td style="width:153px;">300-01A</td>
			<td style="width:175px;">&#160;- 20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="48">
			<td height="48" style="height:48px;width:189px;">Rat MCP-1 ELISA Kit</td>
			<td style="width:149px;">PeproTech</td>
			<td style="width:153px;">900-K59</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C / - 20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="49">
			<td height="49" style="height:49px;width:189px;">Mouse anti-P-glycoprotein</td>
			<td style="width:149px;">Covance, Eurogentec</td>
			<td style="width:153px;">SIG-38710-1000, clone C219 (1mg/mL)</td>
			<td style="width:175px;">1/400 - fixation PFA 4% 
			1/200 (western blot)</td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:189px;">Rabbit anti-GLT-1</td>
			<td style="width:149px;">Abcam</td>
			<td style="width:153px;">ab41621</td>
			<td style="width:175px;">1/1000 (western blot)</td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:189px;">Rhodamine 123</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:153px;">83702</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:189px;">Verapamil hydrochloride</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:153px;">V4629</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="52">
			<td height="52" style="height:52px;width:189px;">Cyclosporine A</td>
			<td style="width:149px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:153px;">30024</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="122">
			<td height="122" style="height:123px;width:189px;">Monoclonal anti a2 Macroglobulin Receptor (CD91, LRP1) against b-chain of amino acid 4291-4344 within an EGF repeat</td>
			<td style="width:149px;">American Diagnostica</td>
			<td style="width:153px;">3501 (100 &#181;g/mL)</td>
			<td style="width:175px;">1/5 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:189px;">Mouse anti-LDLR</td>
			<td style="width:149px;">R&#38;D systems</td>
			<td style="width:153px;">AF2255 (200 &#181;g/mL)</td>
			<td style="width:175px;">1/50 - fixation PFA 4%</td>
		</tr>
		<tr height="33">
			<td height="33" style="height:33px;width:189px;">Rat transferrin-Cy3</td>
			<td style="width:149px;">Gentaur</td>
			<td style="width:153px;">JOR160050</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:189px;">DiILDL</td>
			<td style="width:149px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:153px;">L-3482</td>
			<td style="width:175px;">4 &#176;C</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

setting-up an in vitro model of rat blood-brain barrier (bbb): a focus on bbb impermeability and receptor-mediated transport

A barreira hemato-encefálica (BHE) regula especificamente fluxo molecular e celular, entre o sangue e o tecido nervoso. O nosso objectivo foi desenvolver e caracterizar um singeneico de rato altamente reprodutível modelo in vitro da certificação utilizando co-culturas de células endoteliais primárias de cérebro de rato (RBEC) e astrócitos para estudar os receptores envolvidos na transcitose através da monocamada de células endoteliais. Os astrócitos foram isoladas por dissecção mecânica a seguir à digestão de tripsina e foram congeladas para a co-cultura posterior. RBEC foram isoladas a partir de córtices de ratos com 5 semanas de idade. Os cérebros foram limpos de meninges e substância branca, e dissociado mecanicamente após digestão enzimática. Depois disso, o tecido homogeneizado foi centrifugado em albumina de soro de bovino para separar fragmentos de vasos a partir de tecido nervoso. Os fragmentos dos vasos foram submetidos a uma segunda digestão enzimática de células endoteliais livres da sua matriz extracelular. As restantes células contaminantes, tais como pericitos foram fUTRAS eliminado por plaqueamento dos fragmentos dos microvasos em meio contendo puromicina. Eles foram então passadas para filtros de co-cultura com os astrócitos cultivados no fundo dos poços. RBEC expressa altos níveis de junção apertado proteínas (TJ), como occludin, claudin-5 e ZO-1, com uma localização típico nas bordas da célula. A resistência eléctrica transendotelial (TEER) das monocamadas endoteliais cerebrais, o que indica a tensão de TJs atingiu 300 ohm · cm 2, em média. Os coeficientes de permeabilidade endotelial (PE) para lucifer amarelo (LY) foi altamente reprodutível com uma média de 0,26 ± 0,11 x 10 -3 cm / min. Células endoteliais do cérebro organizados em monocamadas expressou o transportador de efluxo glicoproteína-P (P-gp), mostrou um transporte polarizado de rodamina 123, um ligante para a P-gp, e mostrou transporte específico de transferrina-Cy3 e DiILDL através da monocamada de células endoteliais. Em conclusão, nós fornecemos um protocolo para a criação de um in vitroBBB modelo que é altamente reprodutível devido aos métodos de garantia de qualidade, e que é adequado para a pesquisa sobre os transportadores e receptores de BBB.

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Setting-up an In Vitro Model of Rat Blood-brain Barrier BBB: A Focus on BBB Impermeability and Receptor-mediated Transport

O objetivo do presente estudo foi validar a reprodutibilidade de um modelo in vitro BBB envolvendo um singênico rato co-cultura de células endoteliais e astrócitos. A monocamada de células endoteliais apresentaram alta TEER e baixa permeabilidade LY. Expressão de proteínas TJ específicos, foram avaliadas as respostas funcionais a inflamação e a funcionalidade de transportadores e receptores.

Criação de um<em&gt; In Vitro</em&gt; Modelo de Rato barreira hemato-encefálica (BBB): A Focus on BBB impermeabilidade e Transportes Receptor mediada

The blood brain barrier (BBB) specifically regulates molecular and cellular flux between the blood and the nervous tissue. Our aim was to develop and ...

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Setting-up an In Vitro Model of Rat Blood-brain Barrier (BBB): A Focus on BBB Impermeability and Receptor-mediated Transport

42.2K visualizações.  VECT-HORUS SAS.  O objetivo do presente estudo foi validar a reprodutibilidade de um modelo in vitro BBB envolvendo um singênico rato co-cultura de células endoteliais e astrócitos. A monocamada de células endoteliais apresentaram alta TEER e baixa permeabilidade LY. Expressão de proteínas TJ específicos, foram avaliadas as respostas funcionais a inflamação e a funcionalidade de transportadores e receptores. 

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MRI-guided Disruption of the Blood-brain Barrier using Transcranial Focused Ultrasound in a Rat Model

Focused ultrasound (FUS) disruption of the blood-brain barrier (BBB) is an increasingly investigated technique for circumventing the BBB1-5. The BBB is a significant obstacle to pharmaceutical treatments of brain disorders as it limits the passage of molecules from the vasculature into the brain tissue to molecules less than approximately 500 Da in size6. FUS induced BBB disruption (BBBD) is temporary and reversible4 and has an advantage over chemical means of inducing BBBD by being highly localized. FUS induced BBBD provides a means for investigating the effects of a wide range of therapeutic agents on the brain, which would not otherwise be deliverable to the tissue in sufficient concentration. While a wide range of ultrasound parameters have proven successful at disrupting the BBB2,5,7, there are several critical steps in the experimental procedure to ensure successful disruption with accurate targeting. This protocol outlines how to achieve MRI-guided FUS induced BBBD in a rat model, with a focus on the critical animal preparation and microbubble handling steps of the experiment.

Microbubble-mediated focused ultrasound disruption of the blood-brain barrier (BBB) is a promising technique for non-invasive targeted drug delivery in the brain1-3. This protocol outlines the experimental procedure for MRI-guided transcranial BBB disruption in a rat model.

Guiada por MRI rompimento da barreira hemato-encefálica utilizando Ultrassom Focalizado transcraniana em um modelo de rato

Focused ultrasound (FUS) disruption of the blood-brain barrier (BBB) is an increasingly investigated technique for circumventing the BBB1-5. The BBB is a ...

Medicina

Rat Model of Blood-brain Barrier Disruption to Allow Targeted Neurovascular Therapeutics

Endothelial cells with tight junctions along with the basement membrane and astrocyte end feet surround cerebral blood vessels to form the blood-brain barrier1. The barrier selectively excludes molecules from crossing between the blood and the brain based upon their size and charge. This function can impede the delivery of therapeutics for neurological disorders. A number of chemotherapeutic drugs, for example, will not effectively cross the blood-brain barrier to reach tumor cells2. Thus, improving the delivery of drugs across the blood-brain barrier is an area of interest.
The most prevalent methods for enhancing the delivery of drugs to the brain are direct cerebral infusion and blood-brain barrier disruption3. Direct intracerebral infusion guarantees that therapies reach the brain; however, this method has a limited ability to disperse the drug4. Blood-brain barrier disruption (BBBD) allows drugs to flow directly from the circulatory system into the brain and thus more effectively reach dispersed tumor cells. Three methods of barrier disruption include osmotic barrier disruption, pharmacological barrier disruption, and focused ultrasound with microbubbles. Osmotic disruption, pioneered by Neuwelt, uses a hypertonic solution of 25% mannitol that dehydrates the cells of the blood-brain barrier causing them to shrink and disrupt their tight junctions. Barrier disruption can also be accomplished pharmacologically with vasoactive compounds such as histamine5 and bradykinin6. This method, however, is selective primarily for the brain-tumor barrier7. Additionally, RMP-7, an analog of the peptide bradykinin, was found to be inferior when compared head-to-head with osmotic BBBD with 25% mannitol8. Another method, focused ultrasound (FUS) in conjunction with microbubble ultrasound contrast agents, has also been shown to reversibly open the blood-brain barrier9. In comparison to FUS, though, 25% mannitol has a longer history of safety in human patients that makes it a proven tool for translational research10-12.
In order to accomplish BBBD, mannitol must be delivered at a high rate directly into the brain's arterial circulation. In humans, an endovascular catheter is guided to the brain where rapid, direct flow can be accomplished. This protocol models human BBBD as closely as possible. Following a cut-down to the bifurcation of the common carotid artery, a catheter is inserted retrograde into the ECA and used to deliver mannitol directly into the internal carotid artery (ICA) circulation. Propofol and N2O anesthesia are used for their ability to maximize the effectiveness of barrier disruption13. If executed properly, this procedure has the ability to safely, effectively, and reversibly open the blood-brain barrier and improve the delivery of drugs that do not ordinarily reach the brain 8,13,14.

Blood-brain barrier disruption aids the delivery of certain drugs to the brain. Mannitol delivered intra-arterially shrinks cells surrounding blood vessels in order to physically disrupt the barrier.

Modelo de ratos de sangue-cérebro Rompimento de barreira para permitir alvejado Neurovascular Therapeutics

Endothelial cells with tight junctions along with the basement membrane and astrocyte end feet surround cerebral blood vessels to form the blood-brain ...

Stretch in Brain Microvascular Endothelial Cells (cEND) as an In Vitro Traumatic Brain Injury Model of the Blood Brain Barrier

Due to the high mortality incident brought about by traumatic brain injury (TBI), methods that would enable one to better understand the underlying mechanisms involved in it are useful for treatment. There are both in vivo and in vitro methods available for this purpose. In vivo models can mimic actual head injury as it occurs during TBI. However, in vivo techniques may not be exploited for studies at the cell physiology level. Hence, in vitro methods are more advantageous for this purpose since they provide easier access to the cells and the extracellular environment for manipulation.
Our protocol presents an in vitro model of TBI using stretch injury in brain microvascular endothelial cells. It utilizes pressure applied to the cells cultured in flexible-bottomed wells. The pressure applied may easily be controlled and can produce injury that ranges from low to severe. The murine brain microvascular endothelial cells (cEND) generated in our laboratory is a well-suited model for the blood brain barrier (BBB) thus providing an advantage to other systems that employ a similar technique. In addition, due to the simplicity of the method, experimental set-ups are easily duplicated. Thus, this model can be used in studying the cellular and molecular mechanisms involved in TBI at the BBB.

Stretch in Brain Microvascular Endothelial Cells cEND as an In Vitro Traumatic Brain Injury Model of the Blood Brain Barrier

In vitro traumatic brain injury models are being developed to reproduce in vivo brain deformation. Stretch-induced injury has been employed for astrocytes, neurons, glial cells, aortic, and brain endothelial cells. However, our system uses a blood brain barrier (BBB) model that possesses properties constituting a legitimate model of the BBB to establish an in vitro&#160;TBI model.

Estique em células cerebrais endoteliais microvasculares (cEnd) como um<em&gt; In Vitro</em&gt; Modelo de lesão cerebral traumática do cérebro Barreira Hemato

Due to the high mortality incident brought about by traumatic brain injury (TBI), methods that would enable one to better understand the underlying ...

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As such, primary or &#39;neuronal-like&#39; cell culture systems are commonly utilized. While&#160;these systems are relatively easy to work with, and are useful model systems in which various functional outcomes (such as cell death) can be readily quantified, the examined outcomes and pathways in cultured immature neurons (such as excitotoxicity-mediated cell death pathways) are not necessarily the same as those observed in mature brain, or in intact tissue. Therefore, there is the need to develop models in which cellular mechanisms in mature neural tissue can be examined. We have developed an in vitro technique that can be used to investigate a variety of molecular pathways in intact nervous tissue. The technique described herein utilizes rat cortical tissue, but this technique can be adapted to use tissue from a variety of species (such as mouse, rabbit, guinea pig, and chicken) or brain regions (for example, hippocampus, striatum, etc.). Additionally, a variety of stimulations/treatments can be used (for example, excitotoxic, administration of inhibitors, etc.). In conclusion, the brain slice model described herein can be used to examine a variety of molecular mechanisms involved in excitotoxicity-mediated brain injury.

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

We have developed a brain slice model which can be used to examine molecular mechanisms involved in excitotoxicity-mediated brain injury.&#160;This technique generates viable mature brain tissue and reduces animal numbers required for experimentation, whilst keeping the neuronal circuitry, cellular interactions, and postsynaptic compartments partly intact.

Excitotóxico Estimulação do Microslices cérebro como um<em&gt; In vitro</em&gt; Modelo de AVC

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As ...

Oxygen-Glucose Deprivation and Reoxygenation as an In Vitro Ischemia-Reperfusion Injury Model for Studying Blood-Brain Barrier Dysfunction

Ischemia-Reperfusion (IR) injury is known to contribute significantly to the morbidity and mortality associated with ischemic strokes. Ischemic cerebrovascular accidents account for 80% of all strokes. A common cause of IR injury is the rapid inflow of fluids following an acute/chronic occlusion of blood, nutrients, oxygen to the tissue triggering the formation of free radicals.
Ischemic stroke is followed by blood-brain barrier (BBB) dysfunction and vasogenic brain edema. Structurally, tight junctions (TJs) between the endothelial cells play an important role in maintaining the integrity of the blood-brain barrier (BBB). IR injury is an early secondary injury leading to a non-specific, inflammatory response. Oxidative and metabolic stress following inflammation triggers secondary brain damage including BBB permeability and disruption of tight junction (TJ) integrity.
Our protocol presents an in vitro example of oxygen-glucose deprivation and reoxygenation (OGD-R) on rat brain endothelial cell TJ integrity and stress fiber formation. Currently, several experimental in vivo models are used to study the effects of IR injury; however they have several limitations, such as the technical challenges in performing surgeries, gene dependent molecular influences and difficulty in studying mechanistic relationships. However, in vitro models may aid in overcoming many of those limitations. The presented protocol can be used to study the various molecular mechanisms and mechanistic relationships to provide potential therapeutic strategies. However, the results of in vitro studies may differ from standard in vivo studies and should be interpreted with caution.

Oxygen-Glucose Deprivation and Reoxygenation as an In Vitro Ischemia-Reperfusion Injury Model for Studying Blood-Brain Barrier Dysfunction

Ischemia-Reperfusion (IR) injury is associated with a high rate of morbidity and mortality. The goal of the in vitro model of oxygen-glucose deprivation and reoxygenation (OGD-R) described here is to assess the effects of ischemia reperfusion injury on a variety of cells, particularly in blood-brain barrier (BBB) endothelial cells.

Oxigênio-Glucose Privação e reoxigenação como um<em&gt; In Vitro</em&gt; Isquemia e reperfusão Lesão modelo para estudar Disfunção Barreira Hematoencefálica

Ischemia-Reperfusion (IR) injury is known to contribute significantly to the morbidity and mortality associated with ischemic strokes. Ischemic ...

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is also a valuable model system to test, and to evaluate therapeutics and drugs that negate maladaptive remodeling in the vessel. The injury, or barotrauma, in the vessel lumen caused by an inflated balloon via an inserted catheter induces subsequent neointimal growth, often leading to hyperplasia or thickening of the vessel wall that narrows, or obstructs the lumen. The method described here is sufficiently sensitive, and the results can be obtained in relatively short time (2 weeks after the surgery). The efficacy of the drug or therapeutic against the induced-remodeling can be evaluated either by the post-mortem pathological and histomorphological analysis, or by ultrasound sonography in live animals. In addition, this model system has also been used to determine the therapeutic window or the time course of the administered drug. These studies can leadto the development of a better administrative strategy and a better therapeutic outcome. The procedure described here provides a tool for translational studies that bring drug and therapeutic candidates from bench research to clinical applications.

The rat carotid balloon injury model described below allows researchers to evaluate drugs or therapeutics that negate injury-induced arterial hyperplasia. Detailed pre-surgical preparation, surgical procedure, and post-surgical cares of the animal are described.

A Rat carótida Balão Injury modelo para testar Therapeutics remodela Anti-vasculares

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Glaucoma-inducing Procedure in an In Vivo Rat Model and Whole-mount Retina Preparation

Glaucoma is a disease of the central nervous system affecting retinal ganglion cells (RGCs). RGC axons making up the optic nerve carry visual input to the brain for visual perception. Damage to RGCs and their axons leads to vision loss and/or blindness. Although the specific cause of glaucoma is unknown, the primary risk factor for the disease is an elevated intraocular pressure. Glaucoma-inducing procedures in animal models are a valuable tool to researchers studying the mechanism of RGC death. Such information can lead to the development of effective neuroprotective treatments that could aid in the prevention of vision loss. The protocol in this paper describes a method of inducing glaucoma - like conditions in an in vivo rat model where 50 &#181;l of 2 M hypertonic saline is injected into the episcleral venous plexus. Blanching of the vessels indicates successful injection. This procedure causes loss of RGCs to simulate glaucoma. One month following injection, animals are sacrificed and eyes are removed. Next, the cornea, lens, and vitreous are removed to make an eyecup. The retina is then peeled from the back of the eye and pinned onto sylgard dishes using cactus needles. At this point, neurons in the retina can be stained for analysis. Results from this lab show that approximately 25% of RGCs are lost within one month of the procedure when compared to internal controls. This procedure allows for quantitative analysis of retinal ganglion cell death in an in vivo rat glaucoma model.

Glaucoma-inducing Procedure in an In Vivo Rat Model and Whole-mount Retina Preparation

Glaucoma is characterized by damage to retinal ganglion cells. Inducing glaucoma in animal models can provide insight into the study of this disease. Here, we outline a procedure that induces loss of RGCs in an in vivo rat model and demonstrates the preparation of whole-mount retinas for analysis.

Glaucoma de indução de Procedimento em um<em&gt; In Vivo</em&gt; Modelo de Rato e Whole mount-Retina Preparação

Glaucoma is a disease of the central nervous system affecting retinal ganglion cells (RGCs). RGC axons making up the optic nerve carry visual input to the ...

In Vitro Assays to Assess Blood-brain Barrier Mesh-like Vessel Formation and Disruption

Blood-brain barrier (BBB) coverage plays a central role in the homeostasis of the central nervous system (CNS). The BBB is dynamically maintained by astrocytes, pericytes and brain endothelial cells (BECs). Here, we detail methods to assess BBB coverage using single cultures of immortalized human BECs, single cultures of primary mouse BECs, and a humanized triple culture model (BECs, astrocytes and pericytes) of the BBB. To highlight the applicability of the assays to disease states, we describe the effect of oligomeric amyloid-&#946; (oA&#946;), which is an important contributor to Alzheimer&#39;s disease (AD) progression, on BBB coverage. Further, we utilize the epidermal growth factor (EGF) to illuminate the drug screening potential of the techniques. Our results show that single and triple cultured BECs form meshwork-like structures under basal conditions, and that oA&#946; disrupts this cell meshwork formation and degenerates the preformed mesh structures, but EGF blocks this disruption. Thus, the techniques described are important for dissecting fundamental and disease-relevant processes that modulate BBB coverage.

In Vitro Assays to Assess Blood-brain Barrier Mesh-like Vessel Formation and Disruption

Maintaining blood-brain barrier coverage is key for the homeostasis of the central nervous system. This protocol describes in vitro techniques to delineate the fundamental and pathological processes that modulate blood-brain barrier coverage.

Ensaios In Vitro para Avaliar Formação e Perturbação de Embarque de Barreira de Sangue-Cérebro

Blood-brain barrier (BBB) coverage plays a central role in the homeostasis of the central nervous system (CNS). The BBB is dynamically maintained by ...

Improved Method for the Establishment of an In Vitro Blood-Brain Barrier Model Based on Porcine Brain Endothelial Cells

The aim of this protocol presents an optimized procedure for the purification and cultivation of pBECs and to establish in vitro blood-brain barrier (BBB) models based on pBECs in mono-culture (MC), MC with astrocyte-conditioned medium (ACM), and non-contact co-culture (NCC) with astrocytes of porcine or rat origin. pBECs were isolated and cultured from fragments of capillaries from the brain cortices of domestic pigs 5-6 months old. These fragments were purified by careful removal of meninges, isolation and homogenization of grey matter, filtration, enzymatic digestion, and centrifugation. To further eliminate contaminating cells, the capillary fragments were cultured with puromycin-containing medium. When 60-95% confluent, pBECs growing from the capillary fragments were passaged to permeable membrane filter inserts and established in the models. To increase barrier tightness and BBB characteristic phenotype of pBECs, the cells were treated with the following differentiation factors: membrane permeant 8-CPT-cAMP (here abbreviated cAMP), hydrocortisone, and a phosphodiesterase inhibitor, RO-20-1724 (RO). The procedure was carried out over a period of 9-11 days, and when establishing the NCC model, the astrocytes were cultured 2-8 weeks in advance. Adherence to the described procedures in the protocol has allowed the establishment of endothelial layers with highly restricted paracellular permeability, with the NCC model showing an average transendothelial electrical resistance (TEER) of 1249 &#177; 80 &#937; cm2, and paracellular permeability (Papp) for Lucifer Yellow of 0.90 10-6 &#177; 0.13 10-6 cm sec-1 (mean &#177; SEM, n=55). Further evaluation of this pBEC phenotype showed good expression of the tight junctional proteins claudin 5, ZO-1, occludin and adherens junction protein p120 catenin. The model presented can be used for a range of studies of the BBB in health and disease and, with the highly restrictive paracellular permeability, this model is suitable for studies of transport and intracellular trafficking.

Improved Method for the Establishment of an In Vitro Blood-Brain Barrier Model Based on Porcine Brain Endothelial Cells

The aim of the protocol is to present an optimized procedure for the establishment of an in vitro blood-brain barrier (BBB) model based on primary porcine brain endothelial cells (pBECs). The model shows high reproducibility, high tightness, and is suitable for studies of transport and intracellular trafficking in drug discovery.

Melhor método para o estabelecimento de uma In Vitro barreira hemato - encefálica modelo baseado em células endoteliais do cérebro de suínos

The aim of this protocol presents an optimized procedure for the purification and cultivation of pBECs and to establish in vitro blood-brain barrier (BBB) ...

Endothelial Cell Transcytosis Assay as an In Vitro Model to Evaluate Inner Blood-Retinal Barrier Permeability

Dysfunction of the blood-retinal barrier (BRB) contributes to the pathophysiology of several vascular eye diseases, often resulting in retinal edema and subsequent vision loss. The inner blood-retinal barrier (iBRB) is mainly composed of retinal vascular endothelium with low permeability under physiological conditions. This feature of low permeability is tightly regulated and maintained by low rates of paracellular transport between adjacent retinal microvascular endothelial cells, as well as transcellular transport (transcytosis) through them. The assessment of retinal transcellular barrier permeability may provide fundamental insights into iBRB integrity in health and disease. In this study, we describe an endothelial cell (EC) transcytosis assay, as an in vitro model for evaluating iBRB permeability, using human retinal microvascular endothelial cells (HRMECs). This assay assesses the ability of HRMECs to transport transferrin and horseradish peroxidase (HRP) in receptor- and caveolae-mediated transcellular transport processes, respectively. Fully confluent HRMECs cultured on porous membrane were incubated with fluorescent-tagged transferrin (clathrin-dependent transcytosis) or HRP (caveolae-mediated transcytosis) to measure the levels of transferrin or HRP transferred to the bottom chamber, indicative of transcytosis levels across the EC monolayer. Wnt signaling, a known pathway regulating iBRB, was modulated to demonstrate the caveolae-mediated HRP-based transcytosis assay method. The EC transcytosis assay described here may provide a useful tool for investigating the molecular regulators of EC permeability and iBRB integrity in vascular pathologies and for screening drug delivery systems.

Endothelial Cell Transcytosis Assay as an In Vitro Model to Evaluate Inner Blood-Retinal Barrier Permeability

This protocol illustrates an in vitro endothelial cell transcytosis assay as a model to evaluate inner blood-retinal barrier permeability by measuring the ability of human retinal microvascular endothelial cells to transport horseradish peroxidase across cells in caveolae-mediated transcellular transport processes.

Ensaio de Transcitose de Células Endoteliais como Modelo In Vitro para Avaliar a Permeabilidade da Barreira Interna Sangue-Retina

Dysfunction of the blood-retinal barrier (BRB) contributes to the pathophysiology of several vascular eye diseases, often resulting in retinal edema and ...