The authors have no acknowledgements.

Os seguintes procedimentos estão em conformidade com as normas do Conselho de Revisão Institucional da Universidade Brigham Young (IRB). 1. Prepare os Protocolos de contração NOTA: As seguintes instruções de protocolo são baseados no software Advantage Biodex. Navegar no software e operar o dinamômetro será diferente se forem utilizados diferentes sistemas. <ol><li> Força isocinética Protocolo de Teste <ol><li> Para fazer o protocolo isocinético, software de controle aberto dinamômetro no computador e selecione a guia &quot;Protocolo&quot; e, em seguida, selecione a guia &quot;Record&quot; na barra de ferramentas na parte superior da tela. Selecione &quot;New Protocol&quot; na lista suspensa. </li><li> Na caixa &quot;Tipo de Estudo&quot;, selecione a opção &quot;Test&quot;. </li><li> Selecione os seguintes parâmetros a partir dos menus suspensos: No menu &quot;Mode&quot; selecione isocinética. Sob o &quot;Joint&quot; menu de seleção do joelho. Debaixo de &amp;#34; Pattern &quot;. Menu de selecção de flexão / extensão Selecione contrações concêntricas para ambos os movimentos de flexão e extensão Escolha.&quot; Reps &quot;sob a&quot; End por &quot;menu suspenso. </li><li> No &quot;unilateral&quot; programa guia 1 conjunto de 3 repetições a uma velocidade de 60 ° / s, tanto para a distância e direção contrações. Para fazer isso, digite &quot;1&quot; no campo &quot;# sets&quot; e digite &quot;3&quot; na linha &quot;End por Reps&quot;. Em seguida, digite 60, tanto a &quot;velocidade Away&quot; e &quot;velocidade em direção à&quot; linhas. </li><li> Use 90 ° como o ponto de referência anatômica e definir a faixa de limites de movimento para aproximadamente 10 ° de distância e 110 ° na direcção (0 ° = extensão total, 135 ° = Flexão completa) .Para fazer isso, selecione o botão &quot;set ROM&quot; no lado esquerdo da tela. Calibra-se o braço de alavanca de modo a que 90 ° é paralelo ao chão (como indicado através do indicador de ângulo do braço de alavanca fornecida no ecrã de computador). Em seguida, utilizando 90 ° o re como anatómicaponto de conferência, defina o intervalo de limites de movimento para aproximadamente 10 ° de distância e 110 ° na direcção (0 ° = extensão total, 135 ° = flexão completa). NOTA: As configurações de ângulo conjuntas dadas aqui são os preferidos, no entanto essas configurações devem ser modificadas em uma base caso-a-caso, especialmente quando se trabalha com indivíduos com a deformidade em flexão fixa ou outra limitação. </li><li> Nome do protocolo no campo &quot;Descrição&quot; no canto inferior esquerdo da tela e selecione o botão Salvar na barra de menu superior. </li></ol></li><li> A força isométrica Protocolo de Teste <ol><li> Repita os passos 1.1.1 para começar a fazer o protocolo isométrico. </li><li> Selecione a opção &quot;Test&quot; na caixa &quot;Tipo de Estudo&quot;. </li><li> Selecione os seguintes parâmetros a partir dos menus suspensos: No menu &quot;Mode&quot; selecione &quot;isométrica&quot;. Sob o menu &quot;Joint&quot;, selecione &quot;joelho&quot;. Sob o menu &quot;Padrão&quot;, selecione &quot;flexão / extensão&quot;. Sob o título &quot;Contraction Direction &quot;menu, selecione&quot; ausente &quot;. Em&quot; fim por &quot;menu, selecione&quot; representantes &quot;. </li><li> Programa um teste com um conjunto de 3 contrações isométricas com duração de 5 segundos cada em um ângulo de articulação de 70 °. Para fazer isso, digite &quot;1&quot; no campo &quot;Posições&quot; na aba &quot;unilateral&quot;. Nos termos da posição # 1 coluna, digite &quot;3&quot; na linha &quot;End por Reps&quot;. Na linha &quot;Angle&quot; selecionar &quot;70&quot;. </li><li> Selecione 90 ° como o ponto de referência anatômica e um limite de distância e 70 °. </li><li> Nome do protocolo no campo &quot;Descrição&quot; no canto inferior esquerdo da tela e selecione o botão Salvar na barra de menu superior. </li></ol></li><li> Muscle Danificar excêntrica Protocolo de exercícios <ol><li> Para fazer o protocolo de exercício excêntrico, software de controle aberto dinamômetro no computador e selecione a guia &quot;Protocolo&quot;. Em seguida, selecione a guia &quot;Record&quot; na barra de ferramentas na parte superior da tela. Agora clique em &quot;Novo Protocolo &amp;# 34; na lista suspensa. </li><li> Selecione a opção &quot;exercício&quot; da caixa &quot;Tipo de Estudo&quot;. </li><li> Selecione os seguintes parâmetros a partir dos menus suspensos: No menu &quot;Mode&quot; selecione &quot;isocinético&quot;. Sob o menu &quot;Joint&quot;, selecione &quot;joelho&quot;. Sob o menu &quot;Padrão&quot;, selecione &quot;Extensão / Flexão&quot;. Sob o menu &quot;contração&quot;, selecione &quot;Con / ECC&quot;. </li><li> Na guia &quot;Unilateral&quot;, programa de 10 séries de 10 repetições com velocidades de 180 ° / seg de distância e 120 ° / s em relação com 60 segundos de descanso entre as séries. <ol><li> Digite &quot;10&quot; no campo &quot;# Sets&quot;. </li><li> Na primeira coluna (rotulado # 1), digite &quot;10&quot; na linha rotulada &quot;End por Reps&quot;. Em seguida, digite &quot;180&quot; na próxima linha &quot;velocidade de distância&quot;. Na próxima linha rotulada &quot;velocidade em direção&quot;, digite &quot;120&quot;. Na linha &quot;Binário&quot;, tipo 200 a 600, dependendo da força antecipada dos sem prejuízo. </li><li> Repita o passo 1.3.4.2 para conjuntos # 2 a # 10. </li><li> Tipo 60 no &quot;Resto Tempo em segundos&quot; campo. </li></ol></li><li> Digite 90 ° no campo &quot;Anatomical Referência&quot;. </li><li> Selecione o botão &quot;Set ROM&quot; no lado esquerdo da tela e definir a faixa de limites de movimento a 40 ° de distância e 110 ° na direcção (0 ° = extensão total, 135 ° = flexão completa). Essas configurações fornecem a amplitude de movimento através do qual o sujeito deve oferecer resistência contra o braço do dinamômetro. Como medida de segurança, o banco vai parar de se mover se o sujeito pára proporcionando resistência dentro deste intervalo especificado de movimento. <ol><li> Para definir a amplitude de movimento, selecione o botão &quot;set ROM&quot; no lado esquerdo da tela. Calibra-se o braço de alavanca de modo a que 90 ° é paralelo ao chão (como indicado através do indicador de ângulo do braço de alavanca fornecida no ecrã de computador). Em seguida, usando 90 ° como o ponto de referência anatômica, set a gama de limites de movimento a 40 ° de distância e 110 ° no sentido de (0º = extensão total, 135 ° = flexão completa). NOTA: Essas configurações de ângulo conjuntas são sugestões para um assunto típico saudável. Estes devem ser modificado para atender as habilidades de um indivíduo para outro. </li></ol></li><li> Nome do protocolo no campo &quot;Description&quot; e selecione o botão &quot;Save&quot; na barra de ferramentas superior. </li></ol></li></ol> 2. Medidas de linha de base <ol><li> Medidas dor <ol><li> Fazer uma escala visual analógica, traçando uma linha 100 milímetros horizontalmente em uma página. </li><li> No lado da mão esquerda da linha indicam &quot;nenhuma dor&quot; e no lado da mão direita da linha indicam &quot;dor extrema&quot; (Figura 1). Este método é comumente usado para avaliar-dor muscular tardia 1,10,11. </li><li> Instruir o sujeito a fazer duas squats de peso corporal. Realizar as duas agachamento com straigh braços estendidost para fora na frente da ombros e os pés na largura dos ombros. profundidade adequada é alcançada quando as pernas superiores são paralelos ao chão antes de voltar à posição inicial. </li><li> Peça ao sujeito para indicar a intensidade da dor que ele ou ela se sentiu no quadríceps femoral durante o agachamento, traçando uma linha vertical no local apropriado na escala analógica visual. </li><li> Quantificar o nível do objecto de dor medindo a distância em milímetros a partir do final de não-dor da escala analógica visual para a marca de assunto. </li></ol></li><li> Serum Creatina Kinase CUIDADO: Usar luvas de protecção antes de manusear sangue e dispor de agulhas imediatamente após o uso em um recipiente apropriado como por hospital ou política da universidade. <ol><li> Siga os procedimentos de flebotomia padronizados para retirar sangue da região antecubital do braço do sujeito em condições de jejum para se obter 5 a 6 ml de sangue 12. </li><li> Centrifugar aamostra de sangue a 15 xg durante 15 min a 3 ° C para separar o soro a partir de células de sangue. </li><li> Usando uma pipeta de transferência, transferir a amostra de soro para um tubo de microcentrífuga rotulado de forma adequada para o ponto de tempo e sujeito. </li><li> Armazenar a amostra a -80 ° C para uso posterior. </li><li> Ensaiar a amostras de soro para a actividade da creatina quinase, utilizando um kit disponível comercialmente de acordo com o protocolo do fabricante. Alternativamente, as amostras de soro pode ser transportado para um laboratório para diagnóstico médico local para análise. </li></ol></li><li> Preparação Assunto <ol><li> Quarenta e oito horas antes da visita do assunto, instruí-los a evitar exercícios extenuantes ou não acostumados, não-esteróides anti-inflamatórios e álcool. </li><li> Quando o assunto chega, recolher peso, altura, sexo e perna informações dominância antes da instalação. dominância na perna pode ser determinada por pedir o assunto com qual perna que iria escolher para chutar uma bola. </li><li> Ter a subjetividadet aquecer a 50 a 150 W por 10 minutos em uma bicicleta ergométrica antes de realizar os testes de resistência. </li><li> Após o warm-up pergunte o assunto para se sentar na cadeira do dinamômetro. Para ajustar a inclinação, altura, profundidade, reclinar, e a rotação do braço do assento e do eixo para encaixar o assunto. Utilizar o côndilo femoral lateral como uma referência e alinhar o eixo de rotação do joelho com que o braço do eixo de dinamómetro. Ajuste o comprimento do braço do eixo de modo que é apenas proximal ao maléolo medial, e seguro com cinta. Assunto deve ser capaz de plantar flex confortavelmente com gama completa de movimento. </li><li> Deixar espaço suficiente (25 mm) entre o bordo frontal do assento e a parte traseira da perna para permitir a máxima flexão da articulação do joelho sem beliscar ou desconforto. </li><li> Estabilizar assunto com alças de ombro, quadril, tornozelo e coxa. Para isolar os extensores do joelho e evitar envolvimento muscular acessório, é essencial que o assunto ser firmemente estabilizada. </li><li> Tenha o assunto executar3-5 extensão prática manobras / flexão do joelho, gama de monitores de movimento e sinais de desconforto que possam existir antes de iniciar o protocolo de contração, e ajustar conforme necessário. </li><li> Agora que os componentes ajustáveis ​​do banco são devidamente equipado para o assunto, registrar a posição configurações de posição do assento e braço do eixo para a instalação repetível nas visitas subseqüentes. NOTA: É importante que o assunto é seguro e confortável. O banco de rolos é equipado com um botão de parada de emergência, tanto para o sujeito e do operador em caso de uma emergência. </li></ol></li><li> Medição de força <ol><li> Após o assunto está devidamente orientada no banco e o protocolo de teste de força isométrica é carregado, instrua o assunto sobre como realizar o teste. <ol><li> Diga o assunto que ele ou ela será contratante contra o braço de alavanca que vai ficar parado. Diga o assunto para seguir as instruções da tela do computador fazendo 3 contrações com duração de 5 segundos each. </li><li> Diga o assunto para manter o esforço máximo para cada contração. Diga o assunto para respirar durante as contrações. Peça ao indivíduo para cruzar os braços sobre o peito durante o teste. </li><li> Inicie o protocolo isométrica e permitir que o sujeito praticar o teste com esforço submáximo. Este julgamento prática vai familiarizar o sujeito ao teste, bem como fornecer um específico do teste warm-up. Permitir que o sujeito para praticar o teste de 2 a 3 vezes. </li></ol></li><li> Uma vez que o assunto está pronto, iniciar o teste e verbalmente incentivar o assunto para fornecer esforço máximo para cada contração. </li><li> Registro de torque, potência e trabalho. O software também calcula o coeficiente de variação (uma representação estatística da validade do teste baseado em reprodutibilidade de desempenho, valores mais baixos indicam maior reprodutibilidade). Se o coeficiente de variação superior a 15%, repetir o teste. Repita o teste até 4 vezes. Se o sujeito é incapaz de produzir um coeficiente of variação inferior a 15% após 4 tentativas utilizar os dados a partir do conjunto que rendeu o menor coeficiente de valor de variação. </li><li> Permitir que o assunto de dois a três minutos para descansar, e depois carregar o protocolo isocinético para obter dados de força isocinética. </li><li> Após o sujeito é presa no assento, instruir sobre como realizar o ensaio isocinético. <ol><li> Diga o assunto que eles vão estar fazendo três contrações de flexão e extensão contra o braço de alavanca que irá mover a uma taxa fixa. Diga o assunto, o objetivo é contratar com tanta força quanto possível em toda a amplitude de movimento para cada contração. </li><li> Diga-lhes que o braço de alavanca vai parar quando atingem o fim da amplitude de movimento. Peça ao sujeito para cruzar os braços sobre o peito durante o teste. Relembre o assunto para não se prender a respiração durante as contrações NOTA: Embora os dados recolhidos a partir do componente de flexão da contração pode não ser de interesse para o pesquisador, subjECTS que fornecem esforço máximo, tanto para a flexão e extensão manobras tendem a produzir uma melhor consistência vigor durante a manobra de extensão. </li></ol></li><li> Iniciar o teste e verbalmente incentivar o assunto para fornecer esforço máximo. </li><li> Registro de torque, potência e trabalho. O software também calcula o coeficiente de variação (uma representação estatística da validade do teste baseado em reprodutibilidade de desempenho, valores mais baixos indicam maior reprodutibilidade). Se o coeficiente de variação superior a 15%, repetir o teste. <ol><li> Repita o teste até 4 vezes. Se o sujeito é incapaz de produzir um coeficiente de variação inferior a 15% após 4 tentativas, utilizar os dados a partir do conjunto que rendeu o menor coeficiente de valor de variação. </li></ol></li></ol></li></ol> Indução 3. Danos <ol><li> Um a três dias após as medições da linha de base da Parte 2, tem o retorno sujeito para o laboratório para a porção de indução do danoprotocolo </li><li> Tenha o assunto warm-up em uma bicicleta ergométrica durante 10 minutos a 50 a 150 W. </li><li> Após o warm-up, orientar e proteger o indivíduo no dinamômetro usando as configurações de ajuste gravadas na etapa 2.3.7, carregar o músculo danificar protocolo de exercício excêntrico e instruir o assunto sobre como executar corretamente o exercício. <ol><li> Conte o assunto que eles vão contrair contra o braço de alavanca para iniciar o movimento do braço do eixo para cada contracção. Diga o assunto que, como o braço do eixo se move na direção deles a uma taxa fixa, seu objetivo é contratar contra ele com toda a força possível. </li><li> Permitir que o sujeito a agarrar as pegas localizadas em ambos os lados do assento. </li><li> Diga o assunto para respirar durante as contrações; expire durante a fase excêntrica. </li></ol></li><li> Quando o assunto estiver pronto, iniciar o primeiro conjunto de contrações, pressionando o botão start na tela. </li><li> Verbalmente incentivar o assunto para manter ef máximafort para cada contração. </li><li> Siga as instruções na tela que irá orientar o assunto através de 10 séries de 10 repetições com um período de descanso de 1 min entre as séries. </li><li> Uma vez que 10 conjuntos estão concluídas permitir que o sujeito 1 a 5 min para descansar antes de repetir o protocolo. NOTA: O número máximo de conjuntos disponíveis no âmbito do protocolo excêntrico é de 10 no entanto, isso pode variar dependendo do dinamômetro e software usado. O restante fornece o tempo para o operador para recarregar o protocolo, se necessário. </li><li> Repetir o procedimento mais duas vezes para um total de 300 contracções predominantemente excêntricos. </li></ol> Avaliação de Danos 4. Muscle <ol><li> Repetir ambos os testes de força isométrica, como descrito em 2.4, imediatamente após o exercício e prejudicial às 24, 48, 72, e 96 horas depois e isocinética. </li><li> Repetir a medição dor como descrito na parte 2.1 em 24, 48, 72 e 96 horas depois de danificar exercício. Certifique-se de usar uma nova escala visual analógica para cadaavaliação de modo a que o sujeito não pode ver as suas respostas anteriores. </li><li> Repetir a retirada de sangue, conforme descrito na parte 2.2 para o ensaio de cinase de creatina em 48 e 120 horas após o dano de exercício, ou em pontos de tempo ditados pelo protocolo experimental. </li><li> Determinar os dados de creatina-quinase, resistência e dor no eixo dos y de um gráfico em função do tempo no eixo x. </li><li> Observe como essas variáveis ​​desviar-se e voltar aos valores basais nos dias seguintes exercício, indicando danos e reparação, respectivamente. </li></ol>

<ol>
	<li>Deyhle, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Skeletal+Muscle+Inflammation+Following+Repeated+Bouts+of+Lengthening+Contractions+in+Humans.">Skeletal Muscle Inflammation Following Repeated Bouts of Lengthening Contractions in Humans.</a> Front. Physiol. 6, 424 (2015).</li><li>Hyldahl, R. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+matrix+remodeling+and+its+contribution+to+protective+adaptation+following+lengthening+contractions+in+human+muscle.">Extracellular matrix remodeling and its contribution to protective adaptation following lengthening contractions in human muscle.</a> FASEB J. 29 (7), 2894-2904 (2015).</li><li>Hyldahl, R. D., Olson, T., Welling, T., Groscost, L., Parcell, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Satellite+cell+activity+is+differentially+affected+by+contraction+mode+in+human+muscle+following+a+work-matched+bout+of+exercise.">Satellite cell activity is differentially affected by contraction mode in human muscle following a work-matched bout of exercise.</a> Front. Physiol. 5, 485 (2014).</li><li>Clarkson, P. M., Kearns, A. K., Rouzier, P., Rubin, R., Thompson, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Serum+creatine+kinase+levels+and+renal+function+measures+in+exertional+muscle+damage.">Serum creatine kinase levels and renal function measures in exertional muscle damage.</a> Med. Sci. Sports Exerc. 38 (4), 623-627 (2006).</li><li>Clarkson, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exertional+rhabdomyolysis+and+acute+renal+failure+in+marathon+runners.">Exertional rhabdomyolysis and acute renal failure in marathon runners.</a> Sports Med. 37 (4-5), 361-363 (2007).</li><li>Seedat, Y. K., Aboo, N., Naicker, S., Parsoo, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+renal+failure+in+the+&amp;#34;Comrades+Marathon&amp;#34+runners.">Acute renal failure in the &amp;#34;Comrades Marathon&amp;#34 runners.</a> Ren. Fail. 11 (4), 209-212 (1989).</li><li>Landau, M. E., Kenney, K., Deuster, P., Campbell, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exertional+rhabdomyolysis:+a+clinical+review+with+a+focus+on+genetic+influences.">Exertional rhabdomyolysis: a clinical review with a focus on genetic influences.</a> J. Clin. Neuromuscul. Dis. 13 (3), 122-136 (2012).</li><li>Warren, G. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+CC+chemokines+in+skeletal+muscle+functional+restoration+after+injury.">Role of CC chemokines in skeletal muscle functional restoration after injury.</a> Am. J. Physiol. Cell Physiol. 286 (5), C1031-C1036 (2004).</li><li>Zhang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD8+T+cells+are+involved+in+skeletal+muscle+regeneration+through+facilitating+MCP-1+secretion+and+Gr1(high)+macrophage+infiltration.">CD8 T cells are involved in skeletal muscle regeneration through facilitating MCP-1 secretion and Gr1(high) macrophage infiltration.</a> J. Immunol. 193 (10), 5149-5160 (2014).</li><li>Cermak, N. M., Noseworthy, M. D., Bourgeois, J. M., Tarnopolsky, M. A., Gibala, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diffusion+tensor+MRI+to+assess+skeletal+muscle+disruption+following+eccentric+exercise.">Diffusion tensor MRI to assess skeletal muscle disruption following eccentric exercise.</a> Muscle Nerve. 46 (1), 42-50 (2012).</li><li>Chen, Y. W., Hubal, M. J., Hoffman, E. P., Thompson, P. D., Clarkson, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+responses+of+human+muscle+to+eccentric+exercise.">Molecular responses of human muscle to eccentric exercise.</a> J. Appl. Physiol. 95 (6), 2485-2494 (2003).</li><li>Stasinger, S. K., Di Lorenzo, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Phlebotomy Textbook. , 188-203 (2011).</li><li>Hubal, M. J., Chen, T. C., Thompson, P. D., Clarkson, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inflammatory+gene+changes+associated+with+the+repeated-bout+effect.">Inflammatory gene changes associated with the repeated-bout effect.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 294 (5), R1628-R1637 (2008).</li><li>Stupka, N., Tarnopolsky, M. A., Yardley, N. J., Phillips, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+adaptation+to+repeated+eccentric+exercise-induced+muscle+damage.">Cellular adaptation to repeated eccentric exercise-induced muscle damage.</a> J. Appl. Physiol. 91 (4), 1669-1678 (2001).</li><li>Smith, L. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+serum+cytokines+after+repeated+bouts+of+downhill+running.">Changes in serum cytokines after repeated bouts of downhill running.</a> Appl. Physiol. Nutr. Metab. 32 (2), 233-240 (2007).</li><li>Marqueste, T., Giannesini, B., Fur, Y. L., Cozzone, P. J., Bendahan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+MRI+analysis+of+T2+changes+associated+with+single+and+repeated+bouts+of+downhill+running+leading+to+eccentric-induced+muscle+damage.">Comparative MRI analysis of T2 changes associated with single and repeated bouts of downhill running leading to eccentric-induced muscle damage.</a> J. Appl. Physiol. 105 (1), 299-307 (2008).</li><li>Crameri, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myofibre+damage+in+human+skeletal+muscle:+effects+of+electrical+stimulation+versus+voluntary+contraction.">Myofibre damage in human skeletal muscle: effects of electrical stimulation versus voluntary contraction.</a> J. Physiol. 583 (Pt 1), 365-380 (2007).</li><li>Yu, J. G., Malm, C., Thornell, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eccentric+contractions+leading+to+DOMS+do+not+cause+loss+of+desmin+nor+fibre+necrosis+in+human+muscle.">Eccentric contractions leading to DOMS do not cause loss of desmin nor fibre necrosis in human muscle.</a> Histochem. Cell Biol. 118 (1), 29-34 (2002).</li><li>Jamurtas, A. Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+between+leg+and+arm+eccentric+exercises+of+the+same+relative+intensity+on+indices+of+muscle+damage.">Comparison between leg and arm eccentric exercises of the same relative intensity on indices of muscle damage.</a> Eur. J. Appl. Physiol. 95 (2-3), 179-185 (2005).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Vários passos são fundamentais para a obtenção dos resultados desejados do presente protocolo. Em primeiro lugar, os indivíduos devem ser adequadamente familiarizado com os protocolos contração, particularmente as medições de força. Certifique-se de que o sujeito entende exatamente o que eles são esperados para fazer e dar-lhes uma oportunidade de praticar os testes de resistência antes da coleta de dados. Indivíduos que não estejam adequadamente familiarizados com estes procedimentos podem mostrar uma cur...

The overall goal of this procedure is to induce exertional damage to the quadriceps femoris muscles using voluntary lengthening (eccentric) contractions in human subjects.
Contraction-induced skeletal muscle damage is a common consequence of exercise that is marked by delayed onset muscle soreness1, transient strength loss, and elevated muscle-specific enzymes in the blood2. Exertional muscle damage is most pronounced following exercise to which the subject is unaccustomed, particularly when eccentric contractions are involved3. Exertional muscle damage is typically benign. Soreness subsides, and both serum proteins and strength typically return to pre-damage levels within a few days to weeks after the damaging insult. In extreme cases, exertional muscle damage can lead to a life-threatening syndrome know as rhabdomyolysis. However, exertional muscle damage is usually insufficient to cause clinical rhabdomyolysis in healthy individuals4 in the absence of compounding factors including heat stress, dehydration5, infection6 or rare genetic predispositions7. 
Contraction-induced muscle damage is typically less severe than toxin-induced or freezing-induced injury, methods often used in rodent studies8,9. Yet, contraction-induced injury provides a useful method to study the muscle damage response with notable advantages. First, it is a safe and ethical method for use with human subjects1-3. Thus, interspecies translation of the results is not needed as data can be obtained directly from human subjects. Moreover, translating data obtained from rodent studies is very difficult given that the severity of injury seen in the rodent injury models exceeds the level of damage that would be ethical to induce in human subjects. Second, contraction-induced damage is commonly experienced and a natural process of exercise. Therefore, this mode of damage induction is useful for studying muscle damage in the context of exercise, adaptation to exercise as well as overt muscle injury. Here we describe a safe and reliable method to induce and evaluate skeletal muscle damage using lengthening contractions in humans.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="924">
	<tbody>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:216px;">Biodex Dynomometer</td>
			<td style="width:167px;">Biodex Medical Systems</td>
			<td style="width:119px;">850-000</td>
			<td style="width:423px;">Other models are available and should produce similar results</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Creatine Kinase kit</td>
			<td style="width:167px;">Sigma-Aldrich&#160;</td>
			<td>MAK116</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Serum Vacutainers</td>
			<td style="width:167px;">BD Bioscience</td>
			<td style="width:119px;">367812</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Winged safety push button blood collection set</td>
			<td style="width:167px;">BD Bioscience</td>
			<td style="width:119px;">367338</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cryogenic vials</td>
			<td style="width:167px;">Sigma-Aldrich&#160;</td>
			<td style="width:119px;">V5007</td>
			<td>We use the 2mL vials to store serum aliquots</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

induction and assessment of exertional skeletal muscle damage in humans

lesão muscular induzida pela contração via (alongamento) contrações voluntárias excêntricos oferece um excelente modelo para o estudo de adaptação e recuperação muscular em seres humanos. Aqui discutimos a concepção de um protocolo de exercício excêntrico para induzir a danos nos músculos do quadríceps, marcadas por mudanças na força, dor, e os níveis de creatina quinase plasmática. Este método é simples, ético e amplamente aplicáveis, uma vez que é realizada em participantes humanos e elimina a interespécies tradução dos resultados. Indivíduos executam 300 contrações excêntricas máximas dos músculos extensores do joelho a uma velocidade de 120 ° / s em um dinamômetro isocinético. A extensão dos danos é mensurável através de medidas isocinéticos e isométricos relativamente não-invasivas de perda de força, dor, e os níveis de creatina quinase plasmática ao longo de vários dias após o exercício. Portanto, a sua aplicação pode ser direcionado para populações específicas, na tentativa de identificar mecanismos para o músculoadaptação e regeneração.

Utilizando os métodos aqui apresentados, dor de linha de base, a atividade da creatina quinase sérica e força medições (isométrica e isocinética) foram tiradas em 7 homens jovens destreinados. No dia seguinte, os indivíduos foram submetidos músculo danificar protocolo de contração excêntrica descrito acima. Para fornecer índices de lesão muscular, acompanhar as avaliações de força, dor e atividade da creatina quinase sérica foram feitas. A força foi medido imediatament...

Watch this Scientific Journal Video about Induction and Assessment of Exertional Skeletal Muscle Damage in Humans at JoVE.com

Induction and Assessment of Exertional Skeletal Muscle Damage in Humans

This article describes a safe and reliable method to induce and quantify exertional skeletal muscle damage in human subjects.

Indução e Avaliação da Exertional lesão muscular esquelético em humanos

Contraction-induced muscle damage via voluntary eccentric (lengthening) contractions offers an excellent model for studying muscle adaptation and recovery ...

induction-assessment-exertional-skeletal-muscle-damage

Research

JoVE Journal

Medicine

7.4K visualizações.  Brigham Young University. This article describes a safe and reliable method to induce and quantify exertional skeletal muscle damage in human subjects.

Vídeo: Induction and Assessment of Exertional Skeletal Muscle Damage in Humans

Myo-mechanical Analysis of Isolated Skeletal Muscle

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for the treatment of muscle disease 1,2,3, quantitative methods are needed that measure force generation and fatigability in treated muscle. We describe a detailed approach to evaluating myo-mechanical properties in freshly explanted hindlimb muscle from the mouse. We describe the atraumatic harvest of mouse extensor digitorum longus muscle, mounting the muscle in a muscle strip myograph (Model 820MS; Danish Myo Technology), and the measurement of maximal twitch and tetanic tension, contraction time, and half-relaxation time, using a square pulse stimulator (Model S48; Grass Technologies). Using these measurements, we demonstrate the calculation of specific twitch and tetanic tension normalized to muscle cross-sectional area, the twitch-to-tetanic tension ratio, the force-frequency relationship curve and the low frequency fatigue curve 4. This analysis provides a method for quantitative comparison between therapeutic interventions in mouse models of muscle disease 1,2,3,5, as well as comparison of the effects of genetic modification on muscle function 6,7,8,9.

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for muscle disease, methods are needed to quantitate force generation and fatigability in treated muscle. We detail an approach to evaluating myo-mechanical properties in explanted mouse hindlimb muscle. This analysis provides a robust approach to quantitating the effects of genetic modification on muscle function, as well as comparison of therapies in mouse models of muscle disease.

Myo-mecânico Análise do músculo esquelético isolado

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for the treatment of muscle disease 1,2,3, quantitative methods are needed that measure force ...

Medicina

Skeletal Muscle Gender Dimorphism from Proteomics

Gross contraction in skeletal muscle is primarily determined by a relatively small number of contractile proteins, however this tissue is also remarkably adaptable to environmental factors1 such as hypertrophy by resistance exercise and atrophy by disuse. It thereby exhibits remodeling and adaptations to stressors (heat, ischemia, heavy metals, etc.)2,3. Damage can occur to muscle by a muscle exerting force while lengthening, the so-called eccentric contraction4. The contractile proteins can be damaged in such exertions and need to be repaired, degraded and/or resynthesized; these functions are not part of the contractile proteins, but of other much less abundant proteins in the cell. To determine what subset of proteins is involved in the amelioration of this type of damage, a global proteome must be established prior to exercise5 and then followed subsequent to the exercise to determine the differential protein expression and thereby highlight candidate proteins in the adaptations to damage and its repair. Furthermore, most studies of skeletal muscle have been conducted on the male of the species and hence may not be representative of female muscle. 
In this article we present a method for extracting proteins reproducibly from male and female muscles, and separating them by two-dimensional gel electrophoresis followed by high resolution digital imaging6. This provides a protocol for spots (and subsequently identified proteins) that show a statistically significant (p &lt; 0.05) two-fold increase or decrease, appear or disappear from the control state. These are then excised, digested with trypsin and separated by high-pressure liquid chromatography coupled to a mass spectrometer (LC/MS) for protein identification (LC/MS/MS)5. This methodology (Figure 1) can be used on many tissues with little to no modification (liver, brain, heart etc.).

A straight-forward set of methods to isolate and determine the identity of the most abundant proteins expressed in skeletal muscle. About 800 spots are discerned on a two-dimensional gel from 10 mg muscle; this allows for the determination of gender-specific protein expression. These methods will give equivalent results in most tissues.

Dimorfismo Sexo músculo esquelético de Proteomics

Gross contraction in skeletal muscle is primarily determined by a relatively small number of contractile proteins, however this tissue is also remarkably ...

Assessment of Right Ventricular Structure and Function in Mouse Model of Pulmonary Artery Constriction by Transthoracic Echocardiography

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, the RV is significantly affected in pulmonary diseases such as pulmonary artery hypertension (PAH). In addition, the RV is remarkably sensitive to cardiac pathologies, including left ventricular (LV) dysfunction, valvular disease or RV infarction4. To understand the role of RV in the pathogenesis of cardiac diseases, a reliable and noninvasive method to access the RV structurally and functionally is essential.
A noninvasive trans-thoracic echocardiography (TTE) based methodology was established and validated for monitoring dynamic changes in RV structure and function in adult mice. To impose RV stress, we employed a surgical model of pulmonary artery constriction (PAC) and measured the RV response over a 7-day period using a high-frequency ultrasound microimaging system. Sham operated mice were used as controls. Images were acquired in lightly anesthetized mice at baseline (before surgery), day 0 (immediately post-surgery), day 3, and day 7 (post-surgery). Data was analyzed offline using software.
Several acoustic windows (B, M, and Color Doppler modes), which can be consistently obtained in mice, allowed for reliable and reproducible measurement of RV structure (including RV wall thickness, end-diastolic&#160;and end-systolic dimensions), and function (fractional area change, fractional shortening, PA peak velocity, and peak pressure gradient) in normal mice and following PAC.
Using this method, the pressure-gradient resulting from PAC was accurately measured in real-time using Color Doppler mode and was comparable to direct pressure measurements performed with a Millar high-fidelity microtip catheter. Taken together, these data demonstrate that RV measurements obtained from various complimentary views using echocardiography are reliable, reproducible and can provide insights regarding RV structure and function. This method will enable a better understanding of the role of RV cardiac dysfunction.

Right ventricle (RV) dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease, yet limited methodologies are available for its evaluation. Recent advances in ultrasound imaging provide a noninvasive and accurate option for longitudinal RV study. Herein, we detail a step-by-step echocardiographic method using a murine model of RV pressure overload.

Avaliação da Estrutura e Função do Ventrículo Direito em modelo de camundongo Pulmonary Artery constrição por Ecocardiografia transtorácica

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, ...

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly effective. This video describes the percutaneous biopsy technique using a modified Bergstr&#246;m needle to obtain skeletal muscle tissue samples from the vastus lateralis of human subjects. The Bergstr&#246;m needle consists of an outer cannula with a small opening (&#8216;window&#8217;) at the side of the tip and an inner trocar with a cutting blade at the distal end. Under local anesthesia and aseptic conditions, the needle is advanced into the skeletal muscle through an incision in the skin, subcutaneous tissue, and fascia. Next, suction is applied to the inner trocar, the outer trocar is pulled back, skeletal muscle tissue is drawn into the window of the outer cannula by the suction, and the inner trocar is rapidly closed, thus cutting or clipping the skeletal muscle tissue sample. The needle is rotated 90&#176;&#160;and another cut is made. This process may be repeated three more times. This multiple cutting technique typically produces a sample of 100-200 mg or more in healthy subjects and can be done immediately before, during, and after a bout of exercise or other intervention. Following post-biopsy dressing of the incision site, subjects typically resume their activities of daily living right away and can fully participate in vigorous physical activity within 48-72 hr. Subjects should avoid heavy resistance exercise for 48 hr to reduce the risk of herniation of the muscle through the incision in the fascia.

The purpose of this video is to present the modified Bergstr&#246;m skeletal muscle biopsy technique on human subjects.

Procedimentos de biópsia de músculo esquelético humano, utilizando a técnica Bergström Modificado

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly ...

Preparation and Respirometric Assessment of Mitochondria Isolated from Skeletal Muscle Tissue Obtained by Percutaneous Needle Biopsy

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining samples of human Vastus lateralis, isolating mitochondria from minimal amounts of skeletal muscle tissue, and plate based respirometric profiling using an extracellular flux (XF) analyzer. Comparison of respirometric profiles obtained using 1.0, 2.5 and 5.0 &#956;g of mitochondria indicate that 1.0 &#956;g is sufficient to measure respiration and that 5.0 &#956;g provides most consistent results based on comparison of standard errors. Western blot analysis of isolated mitochondria for mitochondrial marker COX IV and non-mitochondrial tissue marker GAPDH indicate that there is limited non-mitochondrial contamination using this protocol. The ability to study mitochondrial respirometry in as little as 20 mg of muscle tissue allows users to utilize individual biopsies for multiple study endpoints in clinical research projects.

Methods for biopsy of Vastus lateralis, preparation of purified mitochondria, and respirometric profiling are described. The use of small muscle volume makes this technique suitable for clinical research applications.

Preparação e Avaliação respirométrico de mitocôndrias isoladas de tecido muscular esquelético Obtido por meio de agulha de biópsia percutânea

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining ...

Quantitative Magnetic Resonance Imaging of Skeletal Muscle Disease

Quantitative magnetic resonance imaging (qMRI) describes the development and use of MRI to quantify physical, chemical, and/or biological properties of living systems. Neuromuscular diseases often exhibit a temporally varying, spatially heterogeneous, and multi-faceted pathology. The goal of this protocol is to characterize this pathology using qMRI methods. The MRI acquisition protocol begins with localizer images (used to locate the position of the body and tissue of interest within the MRI system), quality control measurements of relevant magnetic field distributions, and structural imaging for general anatomical characterization. The qMRI portion of the protocol includes measurements of the longitudinal and transverse relaxation time constants (T1 and T2, respectively). Also acquired are diffusion-tensor MRI data, in which water diffusivity is measured and used to infer pathological processes such as edema. Quantitative magnetization transfer imaging is used to characterize the relative tissue content of macromolecular and free water protons. Lastly, fat-water MRI methods are used to characterize fibro-adipose tissue replacement of muscle. In addition to describing the data acquisition and analysis procedures, this paper also discusses the potential problems associated with these methods, the analysis and interpretation of the data, MRI safety, and strategies for artifact reduction and protocol optimization.

Neuromuscular diseases often exhibit a temporally varying, spatially heterogeneous, and multi-faceted pathology. The goal of this protocol is to characterize this pathology using non-invasive magnetic resonance imaging methods.

Quantitativa Ressonância Magnética da doença do músculo esquelético

Quantitative magnetic resonance imaging (qMRI) describes the development and use of MRI to quantify physical, chemical, and/or biological properties of ...

Ultrasound Based Assessment of Coronary Artery Flow and Coronary Flow Reserve Using the Pressure Overload Model in Mice

Transthoracic Doppler echocardiography (TTDE) is a clinically useful, noninvasive tool for studying coronary artery flow velocity and coronary flow reserve (CFR) in humans. Reduced CFR is accompanied by marked intramyocardial and pericoronary fibrosis and is used as an indication of the severity of dysfunction. This study explores, step-by-step, the real-time changes measured in the coronary flow velocity, CFR and systolic to diastolic peak velocity (S/D) ratio in the setting of an aortic banding model in mice. By using a Doppler transthoracic imaging technique that yields reproducible and reliable data, the method assesses changes in flow in the septal coronary artery (SCA), for a period of over two weeks in mice, that previously either underwent aortic banding or thoracotomy. 
During imaging, hyperemia in all mice was induced by isoflurane, an anesthetic that increased coronary flow velocity when compared with resting flow. All images were acquired by a single imager. Two ratios, (1) CFR, the ratio between hyperemic and baseline flow velocities, and (2) systolic (S) to diastolic (D) flow were determined, using a proprietary software and by two independent observers. Importantly, the observed changes in coronary flow preceded LV dysfunction as evidenced by normal LV mass and fractional shortening (FS). 
The method was benchmarked against the current gold standard of coronary assessment, histopathology. The latter technique showed clear pathologic changes in the coronary artery in the form of peri-coronary fibrosis that correlated to the flow changes as assessed by echocardiography. 
The study underscores the value of using a non-invasive technique to monitor coronary circulation in mouse hearts. The method minimizes redundant use of research animals and demonstrates that advanced ultrasound-based indices, such as CFR and S/D ratios, can serve as viable diagnostic tools in a variety of investigational protocols including drug studies and the study of genetically modified strains.

Coronary flow reserve (CFR) is useful for assessment of myocardial oxygen demand and evaluation of cardiovascular risk. This study establishes a step-by-step transthoracic Doppler echocardiographic (TTDE) method for longitudinal monitoring of the changes in CFR, as measured from coronary artery in mice, under the experimental pressure overload of aortic banding.

Avaliação ultra-som base de Artéria Coronária Flow e Fluxo Coronariano Reserve Usando o modelo de sobrecarga de pressão no Mice

Transthoracic Doppler echocardiography (TTDE) is a clinically useful, noninvasive tool for studying coronary artery flow velocity and coronary flow ...

Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for myocardial infarction and cardiac complications of thoracic surgery. The ability of certain drugs to precondition the myocardium against ischemia reperfusion injury has led to multiple clinical trials, with little success. The isolated heart model allows acute observation of the functional effects of ischemia reperfusion injury in real time, including the effects of various pharmacological interventions administered at any time-point before or within the ischemia-reperfusion injury window. Since brief periods of ischemia can precondition the heart against ischemic injury, in situ aortic cannulation is performed to allow for functional assessment of non-preconditioned myocardium. A saline filled balloon is placed into the left ventricle to allow for real-time measurement of pressure generation. Ischemic injury is simulated by the cessation of perfusion buffer flow, followed by reperfusion. The duration of both ischemia and reperfusion can be modulated to examine biochemical events at any given time-point. Although the Langendorff isolated heart model does not allow for the consideration of systemic events affecting ischemia and reperfusion, it is an excellent model for the examination of acute functional and biochemical events within the window of ischemia reperfusion injury as well as the effect of pharmacological intervention on cardiac pre- and postconditioning. The goal of this protocol is to demonstrate how to perform in situ aortic cannulation and heart excision followed by ischemia/reperfusion injury in the Langendorff model.

The isolated rat heart is an enduring model for ischemia reperfusion injury. Here, we describe the process of harvesting the beating heart from a rat via in situ aortic cannulation, Langendorff perfusion of the heart, simulated ischemia-reperfusion injury, and infarct staining to confirm the extent of ischemic insult.

Indução e Avaliação de isquemia-reperfusão em Langendorff-perfundidos Rato Corações

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for ...

Human Vastus Lateralis Skeletal Muscle Biopsy Using the Weil-Blakesley Conchotome

Percutaneous muscle biopsy using the Weil-Blakesley conchotome is well established in both clinical and research practice. It is a safe, effective and well tolerated technique. The Weil-Blakesley conchotome has a sharp biting tip with a 4 - 6 mm wide hollow. It is inserted through a 5 - 10 mm skin incision and can be maneuvered for controlled tissue penetration. The tip is opened and closed within the tissue and then rotated through 90 -180&#176; to cut the muscle. The amount of muscle obtained following repeated sampling can vary from 20 mg to 290 mg which can be processed for both histology and molecular studies. The wound needs to be kept dry and vigorous physical activity kept to a minimum for approximately 72 hr although normal levels of activity can restart immediately following the procedure. This procedure is safe and effective when close attention is paid to the selection of subjects, full asepsis and post procedure care. &#160;Both right and left vastus lateralis are suitable for biopsy dependent on participant preference.

Human Vastus Lateralis Skeletal Muscle Biopsy Using the Weil-Blakesley Conchotome

This video demonstrates the technique of percutaneous muscle biopsy of the human vastus lateralis using the Weil-Blakesley conchotome.

Humano<em&gt; vasto lateral</em&gt; Biópsia de músculo esquelético Usando o Weil-Blakesley Conchotome

Percutaneous muscle biopsy using the Weil-Blakesley conchotome is well established in both clinical and research practice. It is a safe, effective and ...

Semi-automated Analysis of Mouse Skeletal Muscle Morphology and Fiber-type Composition

For years, distinctions between skeletal muscle fiber types were best visualized by myosin-ATPase staining. More recently, immunohistochemical staining of myosin heavy chain (MyHC) isoforms has emerged as a finer discriminator of fiber-type. Type I, type IIA, type IIX and type IIB fibers can now be identified with precision based on their MyHC profile; however, manual analysis of these data can be slow and down-right tedious. In this regard, rapid, accurate assessment of fiber-type composition and morphology is a very desirable tool. Here, we present a protocol for state-of-the-art immunohistochemical staining of MyHCs in frozen sections obtained from mouse hindlimb muscle in concert with a novel semi-automated algorithm that accelerates analysis of fiber-type and fiber morphology. As expected, the soleus muscle displayed staining for type I and type IIA fibers, but not for type IIX or type IIB fibers. On the other hand, the tibialis anterior muscle was composed predominantly of type IIX and type IIB fibers, a small fraction of type IIA fibers and little or no type I fibers. Several image transformations were used to generate probability maps for the purpose of measuring different aspects of fiber morphology (i.e., cross-sectional area (CSA), maximal and minimal Feret diameter). The values obtained for these parameters were then compared with manually-obtained values. No significant differences were observed between either mode of analysis with regards to CSA, maximal or minimal Feret diameter (all p &#62; 0.05), indicating the accuracy of our method. Thus, our immunostaining analysis protocol may be applied to the investigation of effects on muscle composition in many models of aging and myopathy.

Immunohistochemical staining of myosin heavy chain isoforms has emerged as the state-of-the-art discriminator of skeletal muscle fiber-type (i.e., type I, type IIA, type IIX, type IIB). Here, we present a staining protocol along with a novel semi-automated algorithm that facilitates rapid assessment of fiber-type and fiber morphology.

Semi automatizados de análise da morfologia do músculo esquelético de rato e composição de fibra-tipo

For years, distinctions between skeletal muscle fiber types were best visualized by myosin-ATPase staining. More recently, immunohistochemical staining of ...