Agradecemos a Inez Puttemans, Marc De Paep, Sara De Pril, Wouter Depuydt, Astrid Hermans, Piet Kayenbergh, Gerrit Meulemans, Christophe Ulens e Stijn Verstraeten para assistência técnica e administrativa.

Todos os procedimentos técnicos foram realizados de acordo com guia do Instituto Nacional de saúde para o cuidado e a utilização de animais de laboratório e a UE Directiva 2010/63/UE e foram aprovados pelo Comitê ético de KU Leuven.
1. general métodos para gravações extracelulares em macacos se comportando acordado
<ol><li>Treine os animais para executar as tarefas visuais e motoras necessárias para resolver sua questão de investigação específicos. Certifique-se de que o animal é capaz de forma flexível, alternar entre tarefas durante a mesma sessão de gravação, a fim de testar o neurônio extensivamente e obter uma melhor compreensão das características de condução a resposta neural (Figura 2-3).<ol>
<li>Treinar o animal em Visually-Guided agarramento (VGG; agarrando 'na luz') para avaliar os componentes visuomotoras da resposta. Nota: independentemente da tarefa escolhida, gradualmente restringir a ingestão de líquidos pelo menos três dias antes do início da fase de treinamento.<ol>
<li>Conter a cabeça do macaco para toda a duração da sessão experimental.</li>
			<li>Nas primeiras sessões, segurar a mão contralateral à câmara de gravação na posição de repouso e ajudar o animal a alcançar e agarrar o objeto, dando recompensa manual após cada tentativa.</li>
			<li>Lugar para voltar a mão do macaco na posição de descanso no final de cada julgamento.</li>
			<li>Todos os vários julgamentos, soltar a mão do macaco e aguarde alguns segundos para observar se o animal inicia o movimento espontaneamente.</li>
			<li>Aplica o manual recompensa sempre que o macaco chega para o objeto.</li>
			<li>Quando a fase atingindo é adquirida corretamente, ajude o animal a levantar (ou puxar) o objeto e recompensa manualmente.</li>
			<li>Como em 1.1.1.4 e 1.1.1.5, lançar mão do macaco e aguarde alguns segundos para observar se o animal inicia o movimento espontaneamente. Recompensar-se sempre que o movimento é realizado corretamente.</li>
			<li>Corrigir o atingindo, mão posição e orientação de pulso quantas vezes for necessário durante o procedimento.</li>
			<li>Repita os passos acima até que o animal executa a sequência automaticamente.</li>
			<li>Carrega a tarefa automática. O animal obtém automaticamente recompensado, quando ele executa os movimentos de alcance e compreensão para um tempo predeterminado.</li>
			<li>Gradualmente aumente o tempo de exploração do objeto.</li>
			<li>Introduza o laser que projeta o ponto de fixação na base do objeto. Adicione então o tracker do olho para monitorar a posição de olho em torno do objeto-para-ser-compreendeu.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Treine o animal em Memory-Guided agarramento (MGG) para investigar o componente motor da resposta, não afetado pelo componente visual do estímulo.<ol>
<li>Segurar a cabeça do macaco.</li>
			<li>Siga os mesmos passos descritos para o VGG, certificando-se de que o animal mantém a fixação do laser durante a tarefa dentro de uma janela definida por via electrónica. Para esta versão da tarefa, a luz se apaga no final do período de fixação.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Treine o macaco na fixação passiva para abordar a resposta visual e seletividade de forma.<ol>
<li>Segurar a cabeça do macaco.</li>
			<li>Apresente os estímulos visuais para o macaco usando um CRT (fixação passiva de estímulos 3D) ou um monitor de LCD (fixação passiva de estímulos 2D).</li>
			<li>Apresente um ponto de fixação no centro da tela, sobreposto os estímulos visuais.</li>
			<li>Recompensar o animal após cada apresentação do estímulo e aumentar gradualmente o período de fixação até atingir os padrões da tarefa.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>Realizar a cirurgia, usando vestidos, cortinas e ferramentas estéril.<ol>
<li>Anestesiar o animal com cetamina (15 mg/kg, por via intramuscular) e cloridrato de medetomidina (0,01-0,04 mL/kg por via intramuscular) e confirmar a anestesia regularmente, verificando a resposta do animal a estímulos, frequência cardíaca, o ritmo respiratório e o sangue pressão.</li>
		<li>Manter a anestesia geral (propofol 10 mg/kg/h por via intravenosa) e administrar oxigênio com um tubo endotraqueal. Use uma pomada lanolim-baseado para evitar ressecamento do olho enquanto sob anestesia.</li>
		<li>Proporcionar analgesia usando 0,5 cc de buprenorfina (0,3 mg/ml por via intravenosa). Em caso de aumento da frequência cardíaca durante a cirurgia, pode ser administrada uma dose extra.</li>
		<li>Implante um post cabeça de MRI compatível com parafusos de cerâmicos e acrílica dental. Realize todas as cirurgias de sobrevivência em condições assépticas rigorosas. Para uma manutenção adequada do campo estéril, use luvas estéreis descartáveis, máscaras e instrumentos esterilizados.</li>
		<li>Guiado por ressonância magnética anatômica (RM; Coordenadas de Horsley-Clark), fazer uma craniotomia acima da área de interesse e a câmara de gravação no crânio do macaco do implante. Use uma câmara de gravação padrão para gravações extracelular única unidade ou um microdrive multielectrode, para a gravação simultânea de vários neurônios.</li>
		<li>Após a cirurgia, descontinuar a administração intravenosa de propofol até espontânea respirando currículos. Não abandone o animal até que ele recuperou a consciência e apresentar o animal no grupo social somente após a completa recuperação.</li>
		<li>Proporcionar analgesia pós-operatória, tal como recomendado pelo veterinário institucional; por exemplo usar Meloxicam (5mg/ml por via intramuscular).</li>
		<li>Espere 6 semanas após a cirurgia antes de iniciar o experimento. Isto permite uma melhor fixação do post principal para o crânio e garantias de que o animal se recuperou totalmente da intervenção.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Localizar a área de gravação usando ressonância magnética (para gravações extracelular de unidade única) e a tomografia computadorizada (CT; para gravações multielectrode).<ol>
<li>Encha de capilares de vidro com uma solução de sulfato de cobre 2% e inseri-los em uma grade de gravação.</li>
		<li>Realizar a ressonância magnética (corte espessura: 0,6 mm).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Monitoramento da atividade neural.<ol>
<li>Uso de microeletrodos de tungstênio com uma impedância de 0,8 – 1 MΩ.</li>
		<li>Inserir o eletrodo através da dura-máter usando um tubo de guia de aço inoxidável de 23G e um microdrive hidráulico.</li>
		<li>Para a discriminação de spike, amplificar e filtrar a atividade neural entre 300 e 5.000 Hz.</li>
		<li>Para gravações de (LFP) potenciais de campo local, amplificar e filtrar o sinal entre 1 e 170 Hz.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Monitorar o sinal de olho<ol>
<li>Ajuste uma câmera infravermelha diante dos olhos do animal para obter uma imagem adequada da pupila e do reflexo corneal.</li>
		<li>Use uma câmera baseada em infravermelho para experimentar a posição de aluno a 500 Hz.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. investigar o objeto seletividade áreas dorsais
<ol><li>Realize a preensão visualmente guiadas (VGG).<ol>
<li>Escolha o direito de agarrar a instalação dependendo do objetivo da pesquisa: carrossel instalação ou configuração de robô (Figura 3).</li>
		<li>Para a instalação do carrossel, execute a tarefa VGG:<ol>
<li>Deixe o macaco Coloque a mão contralateral no hemisfério gravado na posição de descanso na escuridão completa para iniciar a sequência.</li>
			<li>Depois de um tempo variável (intertrial intervalo: 2.000-3.000 ms), aplicar um laser vermelho (ponto de fixação) na base do objeto (distância: 28 cm dos olhos dos macacos). Se o animal mantém seu olhar dentro de uma janela de fixação eletronicamente definida (+ /-2,5 °) para 500 ms, ilumine o objeto de cima com uma fonte de luz.</li>
			<li>Após um atraso variável (300-1500 ms), programar um escurecimento do laser (indicação visual de GO) instruindo o macaco para levantar a mão da posição de repouso e alcançar, agarrar e segurar o objeto para um intervalo variável (tempo de armazenagem: 300-900 ms).</li>
			<li>Sempre que o animal realiza toda a sequência corretamente, recompensá-lo com uma gota de suco.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Use uma sequência semelhante de tarefa para a instalação do robô.<ol>
<li>Quanto à configuração do carrossel, deixe o macaco Coloque a mão contralateral no hemisfério gravado na posição de descanso na escuridão completa para iniciar a sequência.</li>
			<li>Depois de um tempo variável (intertrial intervalo: 2.000-3.000 ms), acender o LED (ponto de fixação) do objeto (de dentro; distância: 28 cm dos olhos dos macacos). Novamente, se o animal mantém seu olhar dentro de uma janela de fixação eletronicamente definida (+ /-2,5 °) para 500 ms, ilumine o objeto de dentro com uma fonte de luz branca.</li>
			<li>Após um atraso variável (300-1500 ms), desligar o LED (indicação visual de GO), instruindo o macaco para levantar a mão da posição de repouso e alcançar, agarrar e segurar o objeto para um intervalo variável (tempo de armazenagem: 300-900 ms).</li>
			<li>Sempre que o animal realiza toda a sequência corretamente, recompensá-lo com uma gota de suco.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Durante a tarefa, quantificar o desempenho do macaco, com especial atenção para o calendário. Medida tanto que o tempo decorrido entre o sinal de ir e o início do movimento da mão (tempo de reação) e entre o início do movimento e o elevador do objeto (tempo de agarrar).</li>
	</ol></li>
	<li>Realizar a preensão guiada por memória (MGG; 'Agarrando no escuro'). Use a tarefa MGG para determinar se os neurônios estão visuomotoras ou motor-dominante. Nota: A sequência é semelhante ao descrito para o VGG, mas o objeto é aproveitado na escuridão total.<ol>
<li>Idêntica à tarefa de VGG, deixe o macaco Coloque a mão contralateral no hemisfério gravado na posição de descanso na escuridão completa para iniciar a sequência.</li>
		<li>Depois de um tempo variável (intertrial intervalo: 2.000-3.000 ms), aplicar um laser/LED vermelho (ponto de fixação) para indicar o ponto de fixação (na base do objeto para configuração do carrossel, no centro do objeto para configuração do robô; distância: 28 cm dos olhos dos macacos) . Se o animal mantém seu olhar dentro de uma janela de fixação eletronicamente definida (+ /-2,5 °) para 500 ms, ilumine o objecto.</li>
		<li>Depois de um tempo fixo (400 ms), desligue a luz.</li>
		<li>Após um atraso variável período (1500-300 ms), seguindo a luz deslocamento, dim/interruptor no ponto de fixação (ir CUE) para instruir o macaco para levantar a mão e alcance, alcance e mantenha o objeto (tempo de armazenagem: 300-900 ms).</li>
		<li>Sempre que o animal realiza toda a sequência corretamente, dá uma gota de suco como recompensa.</li>
	</ol></li>
	<li>Execute a fixação passiva. Quanto a tarefa VGG, escolha a configuração mais adequada (instalação carrossel ou robô) dependendo do objetivo da pesquisa. Nota: Duas tarefas diferentes fixação passiva podem ser realizadas: fixação passiva de objetos do mundo real (usando os objetos-para-ser-compreendeu as configurações de carrossel e robô) e fixação passiva de imagens 3D/2D de objetos.<ol>
<li>Execute a fixação passiva de objetos do mundo real.<ol>
<li>Apresente o ponto de fixação (laser vermelho para o carrossel de configuração projetada na base do objeto e LED vermelho na configuração do robô).</li>
			<li>Se o animal mantém seu olhar dentro de uma janela de fixação eletronicamente definida (+ /-2,5 °) para 500 ms, ilumine o objeto para 2.000 ms.</li>
			<li>Se o animal mantém seu olhar dentro da janela para 1.000 ms, recompensá-lo com uma gota de suco.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Execute a fixação passiva de imagens 3D/2D de objetos.<ol>
<li>Apresentar todos os estímulos visuais em um fundo preto (luminância de 8 cd/m2) usar um monitor (resolução de 1.280 x 1.024 pixels) equipado com um rápido decaimento P46-fósforo e operado a 120 Hz (distância de visualização: 86 cm).</li>
			<li>Nos testes de 3D, apresente os estímulos estereoscopicamente, alternando as imagens do olho direito e esquerdo em um display (monitor CRT), em combinação com dois obturadores ferroelétrica cristal líquido. Localizar estes obturadores diante dos olhos do macaco, operar a 60 Hz e sincronizar com o retrace vertical do monitor.</li>
			<li>Inicie o julgamento, apresentando uma pequena praça no centro da tela (ponto de fixação; 0,2 ° × 0,2 °). Se a posição do olho permanece dentro de uma definido eletronicamente 1° quadrado janela (muito menor do que para objetos do mundo real) pelo menos 500 ms, apresente o estímulo visual na tela, para um tempo total de 500 ms.</li>
			<li>Quando o macaco mantém uma fixação estável até o deslocamento de estímulo, recompensá-lo com uma gota de suco.</li>
			<li>Para um estudo adequado de seletividade de forma, execute uma completa bateria de testes com imagens em 2D durante a tarefa de fixação passiva, na sequência a seguir.</li>
			<li>Execute um teste de pesquisa. Testar a seletividade visual da célula usando um amplo conjunto de imagens (imagens de superfície; Figura 4A), incluindo as fotos do objeto que é entendido no VGG. Por esta e todas as tarefas visuais subsequentes, compare a imagem evocando a resposta mais forte (denominada 'imagem preferida') para uma segunda imagem para que o neurônio está respondendo fracamente (denominada ' imagem for'). Se o neurônio sob estudo também responde às imagens de objetos, procure componentes de estímulo, dirigindo a capacidade de resposta da célula (ensaios de contorno, teste de campo receptivo e redução).</li>
			<li>Execute um teste de contorno. As imagens de superfície original de objetos reais (imagens 2D ou 3D que contém a textura, sombreamento e perspectiva), obter versões progressivamente simplificadas, da mesma forma estímulo (silhuetas e contornos; Figura 4B). Colete pelo menos 10 ensaios por condição a fim de determinar se o neurônio prefere a superfície original, a silhueta ou o contorno da forma original.</li>
			<li>Execute um teste de campo receptivo (RF). Para mapear o RF de um neurônio, apresentar as imagens de objetos em diferentes posições em um display (neste experimento, 35 posições; tamanho do estímulo de 3°), abrangendo o campo visual central19,20. Para coletar bastante repetições de estímulo em todas as posições possíveis em um tempo razoável, reduzir a duração do estímulo (estímulos piscados; duração do estímulo: 300 ms, intertrial intervalo: 300 ms).</li>
			<li>Execute um teste de redução. Execute um teste de redução com contorno dos fragmentos apresentados no centro de RF para identificar o recurso mínimo de forma eficaz (MESF). Gera o conjunto de estímulos no Photoshop, recorte o contorno de cada uma das formas de contorno originais ao longo dos eixos principais (Figura 3B). Projetar a MESF como o fragmento de forma menor, evocando uma resposta que seja pelo menos 70% da resposta contorno intacta e não significativamente menor do que aquela resposta8.</li>
			<li>Para uma melhor estimativa da posição de dependência (o efeito da posição do estímulo na seletividade do fragmento), fazer dois testes diferentes. Execute um teste de redução com os fragmentos localizados na posição ocupada com a forma de contorno original. Execute um teste de redução com os fragmentos para o centro de massa da forma.</li>
			<li>Nesta fase, execute um novo mapeamento de RF usando o MESF.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol>
	<li>Gallese, V., Fadiga, L., Fogassi, L., Rizzolatti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Action+recognition+in+the+premotor+cortex.">Action recognition in the premotor cortex.</a> Brain. 119 (2), 593-609 (1996).</li><li>Fogassi, L., Gallese, V., Buccino, G., Craighero, L., Fadiga, L., Rizzolatti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+mechanism+for+the+visual+guidance+of+hand+grasping+movements+in+the+monkey:+a+reversible+inactivation+study.">Cortical mechanism for the visual guidance of hand grasping movements in the monkey: a reversible inactivation study.</a> Brain. 124 (3), 571-586 (2001).</li><li>Rizzolatti, G., Camarda, R., Fogassi, L., Gentilucci, M., Luppino, G., Matelli, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+organization+of+inferior+area+6+in+the+macaque+monkey.+II.+Area+F5+and+the+control+of+distal+movements.">Functional organization of inferior area 6 in the macaque monkey. II. Area F5 and the control of distal movements.</a> Exp. Brain Res. 71 (3), 491-507 (1988).</li><li>Mishkin, M., Ungerleider, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contribution+of+striate+inputs+to+the+visuospatial+functions+of+parieto-preoccipital+cortex+in+monkeys.">Contribution of striate inputs to the visuospatial functions of parieto-preoccipital cortex in monkeys.</a> Behav. Brain Res. 6 (1), 57-77 (1982).</li><li>Goodale, M. A., Milner, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Separate+visual+pathways+for+perception+and+action.">Separate visual pathways for perception and action.</a> Trends Neurosci. 15 (1), 20-25 (1992).</li><li>Baumann, M. A., Fluet, M. C., Scherberger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Context-specific+grasp+movement+representation+in+the+macaque+anterior+intraparietal+area.">Context-specific grasp movement representation in the macaque anterior intraparietal area.</a> J. Neurosci. 29 (20), 6436-6438 (2009).</li><li>Murata, A., Gallese, V., Luppino, G., Kaseda, M., Sakata, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selectivity+for+the+shape,+size,+and+orientation+of+objects+for+grasping+neurons+of+monkey+parietal+area+AIP.">Selectivity for the shape, size, and orientation of objects for grasping neurons of monkey parietal area AIP.</a> J. Neurophysiol. 83 (5), 2580-2601 (2000).</li><li>Romero, M. C., Pani, P., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coding+of+shape+features+in+the+macaque+anterior+intraparietal+area.">Coding of shape features in the macaque anterior intraparietal area.</a> J. Neurosci. 34 (11), 4006-4021 (2014).</li><li>Sakata, H., Taira, M., Kusonoki, M., Murata, A., Tanaka, Y., Tsutsui, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+coding+of+3D+features+of+objects+for+hand+action+in+the+parietal+cortex+of+the+monkey.">Neural coding of 3D features of objects for hand action in the parietal cortex of the monkey.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 353 (1373), 1363-1373 (1998).</li><li>Taira, M., Mine, S., Georgopoulos, A. P., Murata, A., Sakata, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Parietal+cortex+neurons+of+the+monkey+related+to+the+visual+guidance+of+the+hand+movement.">Parietal cortex neurons of the monkey related to the visual guidance of the hand movement.</a> Exp Brain Res. 83 (1), 29-36 (1990).</li><li>Janssen, P., Scherberger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visual+guidance+in+control+of+grasping.">Visual guidance in control of grasping.</a> Annu. Rev. Neurosci. 8 (38), 69-86 (2015).</li><li>Theys, T., Pani, P., van Loon, J., Goffin, J., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selectivity+for+three-dimensional+contours+and+surfaces+in+the+anterior+intraparietal+area.">Selectivity for three-dimensional contours and surfaces in the anterior intraparietal area.</a> J. Neurophysiol. 107 (3), 995-1008 (2012).</li><li>Goffin, J., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-dimensional+shape+coding+in+grasping+circuits:+a+comparison+between+the+anterior+intraparietal+area+and+ventral+premotor+area+F5a.">Three-dimensional shape coding in grasping circuits: a comparison between the anterior intraparietal area and ventral premotor area F5a.</a> J. Cogn. Neurosci. 25 (3), 352-364 (2013).</li><li>Raos, V., Umilt&#225;, M. A., Murata, A., Fogassi, L., Gallese, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+properties+of+grasping-related+neurons+in+the+ventral+premotor+area+F5+of+the+macaque+monkey.">Functional properties of grasping-related neurons in the ventral premotor area F5 of the macaque monkey.</a> J. Neurophysiol. 95 (2), 709-729 (2006).</li><li>Umilta, M. A., Brochier, T., Spinks, R. L., Lemon, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simultaneous+recording+of+macaque+premotor+and+primary+motor+cortex+neuronal+populations+reveals+different+functional+contributions+to+visuomotor+grasp.">Simultaneous recording of macaque premotor and primary motor cortex neuronal populations reveals different functional contributions to visuomotor grasp.</a> J. Neurophysiol. 98 (1), 488-501 (2007).</li><li>Denys, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+processing+of+visual+shape+in+the+cerebral+cortex+of+human+and+nonhuman+primates:+a+functional+magnetic+resonance+imaging+study.">The processing of visual shape in the cerebral cortex of human and nonhuman primates: a functional magnetic resonance imaging study.</a> J. Neurosci. 24 (10), 2551-2565 (2004).</li><li>Theys, T., Pani, P., van Loon, J., Goffin, J., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selectivity+for+three-dimensional+shape+and+grasping-related+activity+in+the+macaque+ventral+premotor+cortex.">Selectivity for three-dimensional shape and grasping-related activity in the macaque ventral premotor cortex.</a> J.Neurosci. 32 (35), 12038-12050 (2012).</li><li>Nelissen, K., Luppino, G., Vanduffel, W., Rizzolatti, G., Orban, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Observing+others:+multiple+action+representation+in+the+frontal+lobe.">Observing others: multiple action representation in the frontal lobe.</a> Science. 310 (5746), 332-336 (2005).</li><li>Janssen, P., Srivastava, S., Ombelet, S., Orban, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coding+of+shape+and+position+in+macaque+lateral+intraparietal+area.">Coding of shape and position in macaque lateral intraparietal area.</a> J. Neurosci. 28 (26), 6679-6690 (2008).</li><li>Romero, M. C., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Receptive+field+properties+of+neurons+in+the+macaque+anterior+intraparietal+area.">Receptive field properties of neurons in the macaque anterior intraparietal area.</a> J. Neurophysiol. 115 (3), 1542-1555 (2016).</li><li>Decramer, T., Premereur, E., Theys, T., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multi-electrode+recordings+in+the+macaque+frontal+cortex+reveal+common+processing+of+eye-,+arm-+and+hand+movements.+Program+No.+495.15/GG14.">Multi-electrode recordings in the macaque frontal cortex reveal common processing of eye-, arm- and hand movements. Program No. 495.15/GG14.</a> Neuroscience Meeting Planner. , (2017).</li><li>Pani, P., Theys, T., Romero, M. C., Janssen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Grasping+execution+and+grasping+observation+activity+of+single+neurons+in+macaque+anterior+intraparietal+area.">Grasping execution and grasping observation activity of single neurons in macaque anterior intraparietal area.</a> J. Cogn. Neurosci. 26 (10), 2342-2355 (2014).</li><li>Turriziani, P., Smirni, D., Oliveri, M., Semenza, C., Cipolotti, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+the+prefrontal+cortex+in+familiarity+and+recollection+processes+during+verbal+and+non-verbal+recognition+memory.">The role of the prefrontal cortex in familiarity and recollection processes during verbal and non-verbal recognition memory.</a> Neuroimage. 52 (1), 469-480 (2008).</li><li>Tsao, D. Y., Schweers, N., Moeller, S., Freiwald, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patches+of+faces-selective+cortex+in+the+macaque+frontal+lobe.">Patches of faces-selective cortex in the macaque frontal lobe.</a> Nat. Neurosci. 11 (8), 877-879 (2008).</li></ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Uma abordagem abrangente para o estudo do fluxo dorsal requer uma cuidadosa seleção de tarefas comportamentais e testes visuais: visuais e preensão paradigmas podem ser empregadas ou combinados ou separadamente, dependendo das propriedades específicas da região.
Neste artigo, nós fornecemos os exemplos da atividade neural gravado em AIP e F5p em resposta a um subconjunto de tarefas visuais e motoras, mas respostas muito semelhantes podem ser observadas em outras áreas frontais como áre...

Primatas humanos e não humanos compartilham a capacidade de realizar ações complexas motor, incluindo o objeto agarrando. Para com êxito executar essas tarefas, nosso cérebro precisa para completar a transformação das propriedades do objeto intrínseco em comandos de motor. Essa transformação depende de uma sofisticada rede de áreas corticais dorsais localizado no parietal e ventral cortéx pré-motor1,2,3 (Figura 1).
De estudos de lesão em macacos e humanos4,5, sabemos que o fluxo visual dorsal - originárias do córtex visual primário e direcionada para o córtex parietal posterior - está envolvido na visão espacial e o planejamento do motor ações. No entanto, a maioria das áreas de fluxo dorsal não é dedicada a um único tipo de processamento. Por exemplo, a área intraparietal anterior (AIP), dentre as áreas de estágio final no fluxo dorsal visual, contém uma variedade de neurônios que disparam não só durante a preensão de7,6,8, mas também durante o visual inspeção do objeto7,8,9,10.
Semelhante ao AIP, neurônios na área F5, localizado no córtex cortéx ventral (PMv), também respondem durante a fixação visual e o objeto agarrando, que é provável que seja importante para a transformação da informação visual em ações motor11. A porção anterior da região (subsector F5a) contém neurônios responder seletivamente a tridimensional (3D, disparidade definida) imagens de12,13, enquanto o subsector localizado da convexidade (F5c) contém neurônios caracteriza-se pelo espelho propriedades1,3, disparando tanto quando um animal realiza ou observa uma ação. Finalmente, a região posterior do F5 (F5p) é um campo relacionado a mão, com uma alta proporção de visuomotoras neurônios responsivos à observação tanto e preensão de objetos 3D14,15. Ao lado de F5, área 45B, localizado no ramo inferior do sulco arqueado, também podem estar envolvidos em forma processamento16,17 e18de preensão.
Testes de seletividade de objeto no córtex frontal e parietal é um desafio, porque é difícil determinar o que caracteriza estes neurônios respondem e quais são os campos receptivos destes neurônios. Por exemplo, se um neurônio responde a uma placa, mas não para um cone, cuja característica desses objetos está dirigindo esta seletividade: o contorno 2D, a estrutura 3D, a orientação em profundidade ou uma combinação de muitas características diferentes? Para determinar as características do objeto de crítica para os neurônios que respondem durante a fixação do objeto e de agarramento, é necessário empregar vários testes visuais usando versões reduzidas das mesmas imagens e imagens de objetos.
Uma fração considerável dos neurônios no AIP e F5 não só responde à apresentação visual de um objeto, mas também quando o animal apreende este objeto no escuro (ou seja, na ausência de informação visual). Tais neurônios podem não responder a uma imagem de um objeto que não pode ser aproveitada. Daí, visuais e motor componentes da resposta estão intimamente ligados, que torna difícil investigar a representação do objeto neuronal nestas regiões. Desde que os neurônios visuomotoras somente podem ser testados com objetos do mundo real, precisamos de um sistema flexível para apresentar diferentes objetos em diferentes posições no campo visual e às diferentes orientações se queremos determinar quais recursos são importantes para estes neurônios. Este último só pode ser alcançado por meio de um robô capaz de apresentar objetos diferentes em locais diferentes no espaço visual.
Este artigo pretende fornecer um guia experimental para pesquisadores interessados no estudo dos neurônios parieto-frontal. Nas seções seguintes, nós forneceremos o protocolo geral utilizado em nosso laboratório para a análise das respostas de preensão e visual objeto em macacos acordado (Macaca mulatta).

<table><tbody><tr><td>Grasping robot</td><td>GIBAS Universal Robots</td><td>UR-6-85-5-A</td><td>Robot arm equipped with a gripper</td></tr><tr><td>Carousel motor</td><td>Siboni</td><td>RD066/&amp;dagger;20 MV6, 35x23 F02</td><td>Motor to be implemented in a custom-made vertical carousel. It allows the rotation of the carousel.</td></tr><tr><td>Eye tracker</td><td>SR Research</td><td>EyeLink II</td><td>Infrared camera system sampling at 500 Hz</td></tr><tr><td>Filter</td><td>Wavetek Rockland</td><td>852</td><td>Electronic filters perform a variety of signal-processing functions with the purpose of removing a signal&#039;s unwanted frequency components.</td></tr><tr><td>Preamplifier</td><td>BAK ELECTRONICS, INC.</td><td>A-1</td><td>The Model A-1 allows to reduce input capacity and noise pickup and allows to test impedance for metal micro-electrodes</td></tr><tr><td>Electrodes</td><td>FHC</td><td>UEWLEESE*N4G</td><td>Metal microelectrodes (* = Impedance, to be chosen by the researcher)</td></tr><tr><td>CRT monitor</td><td>Vision Research Graphics</td><td>M21L-67S01</td><td>The CRT monitor is equipped with a fast-decay P46-phosphor operating at 120 Hz</td></tr><tr><td>Ferroelectric liquid crystal shutters</td><td>Display Tech</td><td>FLC Shutter Panel; LV2500P-OEM</td><td>The shutters operate at 60 Hz in front of the monkeys and are synchronized to the vertical retrace of the monitor</td></tr></tbody></table>

investigating object representations in the macaque dorsal visual stream using single-unit recordings

Estudos anteriores mostraram que os neurônios em áreas parieto-frontal do cérebro do macaco podem ser altamente seletivos para objetos do mundo real, superfícies curvas definidas pelo disparidade e imagens de objetos do mundo real (com e sem disparidade) em uma maneira similar como descrito no fluxo ventral visual. Além disso, áreas parieto-frontal são acreditadas para converter informações de objeto visual em saídas de motor adequadas, tais como o pré-moldar da mão durante a preensão. Para melhor caracterizar a seletividade de objeto na rede cortical envolvida nas transformações visuomotoras, nós fornecemos uma bateria de testes destinados a analisar a seletividade de objeto visual de neurônios em regiões parieto-frontal.

Figura 5 parcelas as respostas de um neurônio exemplo gravado de área F5p testado com quatro objetos: duas diferentes formas - uma esfera e uma placa-mostrada em dois tamanhos diferentes (6 e 3 cm). Este neurônio particular respondeu não só à esfera grande (estímulo ideal; painel esquerdo superior), mas também para o prato grande (painel inferior esquerdo). Em comparação, a resposta para os objetos menores era mais fraca (superior e inferior direito...

Watch this Scientific Journal Video about Investigating Object Representations in the Macaque Dorsal Visual Stream Using Single-unit Recordings at JoVE.com

Investigating Object Representations in the Macaque Dorsal Visual Stream Using Single-unit Recordings

É apresentado um protocolo detalhado para analisar a seletividade de objeto de parieto-frontal neurônios envolvidos nas transformações visuomotoras.

Investigar as representações do objeto no fluxo Dorsal de Visual de Macaque usando gravações unitárias

Previous studies have shown that neurons in parieto-frontal areas of the macaque brain can be highly selective for real-world objects, disparity-defined ...

investigating-object-representations-macaque-dorsal-visual-stream

Research

JoVE Journal

Neuroscience

8.3K visualizações.  Katholieke Universiteit Leuven. É apresentado um protocolo detalhado para analisar a seletividade de objeto de parieto-frontal neurônios envolvidos nas transformações visuomotoras.

Vídeo: Investigating Object Representations in the Macaque Dorsal Visual Stream Using Single-unit Recordings

Single-unit In vivo Recordings from the Optic Chiasm of Rat

Information about the visual world is transmitted to the brain in sequences of action potentials in retinal ganglion cell axons that make up the optic nerve. In vivo recordings of ganglion cell spike trains in several animal models have revealed much of what is known about how the early visual system processes and encodes visual information. However, such recordings have been rare in one of the most common animal models, the rat, possibly owing to difficulty in detecting spikes fired by small diameter axons. The many retinal disease models involving rats motivate a need for characterizing the functional properties of ganglion cells without disturbing the eye, as with intraocular or in vitro recordings. Here, we demonstrate a method for recording ganglion cell spike trains from the optic chiasm of the anesthetized rat. We first show how to fabricate tungsten-in-glass electrodes that can pick up electrical activity from single ganglion cell axons in rat. The electrodes outperform all commercial ones that we have tried. We then illustrate our custom-designed stereotaxic system for in vivo visual neurophysiology experiments and our procedures for animal preparation and reliable and stable electrode placement in the optic chiasm.

Single-unit In vivo Recordings from the Optic Chiasm of Rat

Retinal ganglion cells transmit visual information from the eye to the brain with sequences of action potentials. Here, we demonstrate how to record the action potentials of single ganglion cells in vivo from anesthetized rats.

Única unidade de In vivo Gravações do quiasma óptico de rato

Information about the visual world is transmitted to the brain in sequences of action potentials in retinal ganglion cell axons that make up the optic ...

Neurociência

Automated Visual Cognitive Tasks for Recording Neural Activity Using a Floor Projection Maze

Neuropsychological tasks used in primates to investigate mechanisms of learning and memory are typically visually guided cognitive tasks. We have developed visual cognitive tasks for rats using the Floor Projection Maze1,2&#160;that are optimized for visual abilities of rats permitting stronger comparisons of experimental findings with other species.
In order to investigate neural correlates of learning and memory, we have integrated electrophysiological recordings into fully automated cognitive tasks on the Floor Projection Maze1,2. Behavioral software interfaced with an animal tracking system allows monitoring of the animal's behavior with precise control of image presentation and reward contingencies for better trained animals. Integration with an in vivo electrophysiological recording system enables examination of behavioral correlates of neural activity at selected epochs of a given cognitive task.
We describe protocols for a model system that combines automated visual presentation of information to rodents and intracranial reward with electrophysiological approaches. Our model system offers a sophisticated set of tools as a framework for other cognitive tasks to better isolate and identify specific mechanisms contributing to particular cognitive processes.

We describe protocols for training rats for chronic electrophysiological recordings in fully automated cognitive tasks on a Floor Projection Maze.

Tarefas cognitivas Visuais automatizadas para gravação Atividade Neural Usando uma projeção Piso Labirinto

Neuropsychological tasks used in primates to investigate mechanisms of learning and memory are typically visually guided cognitive tasks. We have ...

Comportamento

Simultaneous Whole-cell Recordings from Photoreceptors and Second-order Neurons in an Amphibian Retinal Slice Preparation

One of the central tasks in retinal neuroscience is to understand the circuitry of retinal neurons and how those connections are responsible for shaping the signals transmitted to the brain. Photons are detected in the retina by rod and cone photoreceptors, which convert that energy into an electrical signal, transmitting it to other retinal neurons, where it is processed and communicated to central targets in the brain via the optic nerve. Important early insights into retinal circuitry and visual processing came from the histological studies of Cajal1,2 and, later, from electrophysiological recordings of the spiking activity of retinal ganglion cells - the output cells of the retina3,4.
A detailed understanding of visual processing in the retina requires an understanding of the signaling at each step in the pathway from photoreceptor to retinal ganglion cell. However, many retinal cell types are buried deep in the tissue and therefore relatively inaccessible for electrophysiological recording. This limitation can be overcome by working with vertical slices, in which cells residing within each of the retinal layers are clearly visible and accessible for electrophysiological recording.
Here, we describe a method for making vertical sections of retinas from larval tiger salamanders (Ambystoma tigrinum). While this preparation was originally developed for recordings with sharp microelectrodes5,6, we describe a method for dual whole-cell voltage clamp recordings from photoreceptors and second-order horizontal and bipolar cells in which we manipulate the photoreceptor's membrane potential while simultaneously recording post-synaptic responses in horizontal or bipolar cells. The photoreceptors of the tiger salamander are considerably larger than those of mammalian species, making this an ideal preparation in which to undertake this technically challenging experimental approach. These experiments are described with an eye toward probing the signaling properties of the synaptic ribbon - a specialized synaptic structure found in a only a handful of neurons, including rod and cone photoreceptors, that is well suited for maintaining a high rate of tonic neurotransmitter release7,8 - and how it contributes to the unique signaling properties of this first retinal synapse.

We describe the preparation of thin retinal slices from aquatic tiger salamanders (Ambystoma tigrinum) and explain how we use these slices to study synaptic processing in the retina by obtaining dual whole-cell voltage clamp recordings from photoreceptors and second-order horizontal and bipolar cells.

Gravações Whole-cell simultâneas de fotorreceptores e os neurônios de segunda ordem em um anfíbio Retinal Slice Preparação

One of the central tasks in retinal neuroscience  is to understand the circuitry of retinal neurons and how those connections are  responsible for shaping ...

Recording Single Neurons' Action Potentials from Freely Moving Pigeons Across Three Stages of Learning

While the subject of learning has attracted immense interest from both behavioral and neural scientists, only relatively few investigators have observed single-neuron activity while animals are acquiring an operantly conditioned response, or when that response is extinguished. But even in these cases, observation periods usually encompass only a single stage of learning, i.e. acquisition or extinction, but not both (exceptions include protocols employing reversal learning; see Bingman&#160;et al.1 for an example). However, acquisition and extinction entail different learning mechanisms and are therefore expected to be accompanied by different types and/or loci of neural plasticity.
Accordingly, we developed a behavioral paradigm which institutes three stages of learning in a single behavioral session and which is well suited for the simultaneous recording of single neurons&#39; action potentials. Animals are trained on a single-interval forced choice task which requires mapping each of two possible choice responses to the presentation of different novel visual stimuli (acquisition). After having reached a predefined performance criterion, one of the two choice responses is no longer reinforced (extinction). Following a certain decrement in performance level, correct responses are reinforced again (reacquisition). By using a new set of stimuli in every session, animals can undergo the acquisition-extinction-reacquisition process repeatedly. Because all three stages of learning occur in a single behavioral session, the paradigm is ideal for the simultaneous observation of the spiking output of multiple single neurons. We use pigeons as model systems, but the task can easily be adapted to any other species capable of conditioned discrimination learning.

Learning new stimulus-response associations engages a wide range of neural processes which are ultimately reflected in changing spike output of individual neurons. Here we describe a behavioral protocol allowing for the continuous registration of single-neuron activity while animals acquire, extinguish, and reacquire a conditioned response within a single experimental session.

Registro do potencial de ação simples Neurônios &#39;de livremente mover Pombos em três estágios da aprendizagem

While the subject of learning has attracted immense interest from both behavioral and neural scientists, only relatively few investigators have observed ...

Simultaneous Long-term Recordings at Two Neuronal Processing Stages in Behaving Honeybees

In both mammals and insects neuronal information is processed in different higher and lower order brain centers. These centers are coupled via convergent and divergent anatomical connections including feed forward and feedback wiring. Furthermore, information of the same origin is partially sent via parallel pathways to different and sometimes into the same brain areas. To understand the evolutionary benefits as well as the computational advantages of these wiring strategies and especially their temporal dependencies on each other, it is necessary to have simultaneous access to single neurons of different tracts or neuropiles in the same preparation at high temporal resolution. Here we concentrate on honeybees by demonstrating a unique extracellular long term access to record multi unit activity at two subsequent neuropiles1, the antennal lobe (AL), the first olfactory processing stage and the mushroom body (MB), a higher order integration center involved in learning and memory formation, or two parallel neuronal tracts2 connecting the AL with the MB.&#160;The latter was chosen as an example and will be described in full. In the supporting video the construction and permanent insertion of flexible multi&#160;channel wire electrodes is demonstrated. Pairwise differential amplification of the micro&#160;wire electrode channels drastically reduces the noise and verifies that the source of the signal is closely related to the position of the electrode tip. The mechanical flexibility of the used wire electrodes allows stable invasive long&#160;term recordings over many hours up to days, which is a clear advantage compared to conventional extra&#160;and intracellular in vivo recording techniques.

Simultaneous extracellular long term recordings from two different brain neuropiles or two different anatomical tracts were established in honeybees. These recordings allow the investigation of temporal aspects of neuronal processing across different brain areas at the single neuron as well as at the ensemble level in a behaving animal.

Gravações simultâneas de longo prazo em dois estágios de processamento neuronal em comportar abelhas

In both mammals and insects neuronal information is processed in different higher and lower order brain centers. These centers are coupled via convergent ...

Convection Enhanced Delivery of Optogenetic Adeno-associated Viral Vector to the Cortex of Rhesus Macaque Under Guidance of Online MRI Images

In non-human primate (NHP) optogenetics, infecting large cortical areas with viral vectors is often a difficult and time-consuming task. Here, we demonstrate the use of magnetic resonance (MR)-guided convection enhanced delivery (CED) of optogenetic viral vectors into primary somatosensory (S1) and motor (M1) cortices of macaques to obtain efficient, widespread cortical expression of light-sensitive ion channels. Adeno-associated viral (AAV) vectors encoding the red-shifted opsin C1V1 fused to yellow fluorescent protein (EYFP) were injected into the cortex of rhesus macaques under MR-guided CED. Three months post-infusion, epifluorescent imaging confirmed large regions of optogenetic expression (&#62;130 mm2) in M1 and S1 in two macaques. Furthermore, we were able to record reliable light-evoked electrophysiology responses from the expressing areas using micro-electrocorticographic arrays. Later histological analysis and immunostaining against the reporter revealed widespread and dense optogenetic expression in M1 and S1 corresponding to the distribution indicated by epifluorescent imaging. This technique enables us to obtain expression across large areas of the cortex within a shorter period of time with minimal damage compared to the traditional techniques and can be an optimal approach for optogenetic viral delivery in large animals such as NHPs. This approach demonstrates great potential for network-level manipulation of neural circuits with cell-type specificity in animal models evolutionarily close to humans.&#160;

Here, we demonstrate magnetic resonance (MR)-guided convection enhanced delivery (CED) of viral vectors into the cortex as an efficient and simplified approach for achieving optogenetic expression across large cortical areas in the macaque brain.

A convecção aumentou a entrega do vetor viral adeno-associado Optogenetic ao córtice de Rhesus macaque a orientação de imagens em linha de MRI

In non-human primate (NHP) optogenetics, infecting large cortical areas with viral vectors is often a difficult and time-consuming task. Here, we ...

Desenvolvimento de um estágio de eletrodo X-Y para registro neural preciso em saguis

Electrophysiology of Laminar Cortical Activity in the Common Marmoset

The marmoset monkey provides an ideal model for examining laminar cortical circuits due to its smooth cortical surface, which facilitates recordings with linear arrays. The marmoset has recently grown in popularity due to its similar neural functional organization to other primates and its technical advantages for recording and imaging. However, neurophysiology in this model poses some unique challenges due to the small size and lack of gyri as anatomical landmarks. Using custom-built micro-drives, researchers can manipulate linear array placement to sub-millimeter precision and reliably record at the same retinotopically targeted location across recording days. This protocol describes the step-by-step construction of the micro-drive positioning system and the neurophysiological recording technique with silicon linear electrode arrays. With precise control of electrode placement across recording sessions, researchers can easily traverse the cortex to identify areas of interest based on their retinotopic organization and the tuning properties of the recorded neurons. Further, using this laminar array electrode system, it is possible to apply a current source density analysis (CSD) to determine the recording depth of individual neurons. This protocol also demonstrates examples of laminar recordings, including spike waveforms isolated in Kilosort, which span multiple channels on the arrays.

Autor em destaque: Otimizando sistemas de microacionamento para posicionamento preciso de eletrodos no sagui

Custom-built micro-drives enable the sub-millimeter targeting of cortical recording sites with linear silicon arrays.

Eletrofisiologia da Atividade Cortical Laminar no Sagui-comum

The marmoset monkey provides an ideal model for examining laminar cortical circuits due to its smooth cortical surface, which facilitates recordings with ...

<meta charset="utf8"></head><body>Mapeamento da atividade neuronal no desenvolvimento do córtex sensorial de camundongos

In Vivo Visualization of Spontaneous Activity in Neonatal Mouse Sensory Cortex at a Single-Neuron Resolution

The mammalian brain undergoes dynamic developmental changes at both the cellular and circuit levels throughout prenatal and postnatal periods. Following the discovery of numerous genes contributing to these developmental changes, it is now known that neuronal activity also substantially modulates these processes. In the developing cerebral cortex, neurons exhibit synchronized activity patterns that are specialized to each primary sensory area. These patterns markedly differ from those observed in the mature cortex, emphasizing their role in regulating area-specific developmental processes. Deficiencies in neuronal activity during development can lead to various brain diseases. These findings highlight the need to examine the regulatory mechanisms underlying activity patterns in neuronal development. This paper summarizes a series of protocols to visualize primary sensory areas and neuronal activity in neonatal mice, to image the activity of individual neurons within the cortical subfields using two-photon microscopy in vivo, and to analyze subfield-related activity correlations. We show representative results of patchwork-like synchronous activity within individual barrels in the somatosensory cortex. We also discuss various potential applications and some limitations of this protocol.

<meta charset="utf8"></head><body>Autor em destaque: decifrando a formação de circuitos neurais a partir de microscopia de dois fótons e imagens de neurônios únicos

Primary sensory areas in the neocortex exhibit unique spontaneous activities during development. This article describes how to visualize individual neuron activities and primary sensory areas to analyze area-specific synchronous activities in neonatal mice in vivo.

Visualização in vivo da atividade espontânea no córtex sensorial de camundongos neonatais com resolução de neurônio único

The mammalian brain undergoes dynamic developmental changes at both the cellular and circuit levels throughout prenatal and postnatal periods. Following ...

Investigar as representações do objeto no fluxo Dorsal de Visual de Macaque usando gravações unitárias

Resumo

Explore mais vídeos

Única unidade de In vivo Gravações do quiasma óptico de rato

Tarefas cognitivas Visuais automatizadas para gravação Atividade Neural Usando uma projeção Piso Labirinto

Gravações Whole-cell simultâneas de fotorreceptores e os neurônios de segunda ordem em um anfíbio Retinal Slice Preparação

Registro do potencial de ação simples Neurônios 'de livremente mover Pombos em três estágios da aprendizagem

Gravações simultâneas de longo prazo em dois estágios de processamento neuronal em comportar abelhas

A convecção aumentou a entrega do vetor viral adeno-associado Optogenetic ao córtice de Rhesus macaque a orientação de imagens em linha de MRI

Eletrofisiologia da Atividade Cortical Laminar no Sagui-comum

Eletrofisiologia da Atividade Cortical Laminar no Sagui-comum

Eletrofisiologia da Atividade Cortical Laminar no Sagui-comum

Visualização in vivo da atividade espontânea no córtex sensorial de camundongos neonatais com resolução de neurônio único