O escopo de nossa pesquisa é a caracterização espectral de órgãos e tecidos fisiológicos e doentes em pacientes, bem como modelos animais. Usando imagens hiperespectrais, esperamos poder avaliar tecidos de forma confiável, estabelecer essa tecnologia como um novo pilar de diagnóstico na medicina e fechar as lacunas de diagnóstico existentes. Os desafios experimentais atuais para a caracterização espectral de órgãos torácicos foram a necessidade de superfícies de órgãos expostos e os artefatos de movimento durante o processo de revestimento devido à ventilação mecânica, ambos puderam ser resolvidos com sucesso com esta nova técnica.
Vamos nos concentrar ainda na caracterização espectral de órgãos e na transferência de dados espectrais entre diferentes espécies. Isso nos permitirá abstrair os insights obtidos de modelos animais e aplicá-los aos humanos para o benefício do paciente. Para começar, dobre as cânulas em um ângulo de 135 graus, a um centímetro da ponta.
Usando uma trava luer, conecte as cânulas a tubos de perfusão de plástico. Em seguida, coloque uma almofada de aquecimento na placa de aço do aparelho de exposição cirúrgica para suporte térmico. Prepare os ganchos de preparação cirúrgica com tubos de plástico acoplados e pinças cirúrgicas contra mosquitos para posteriormente aplicar tensão ao tecido para exposição cirúrgica.
Em seguida, encurte e chanfre cateteres intravenosos de diferentes tamanhos. Insira um fio-guia de um conjunto de cateterismo arterial no cateter mais adequado para o tamanho do animal para a técnica de Seldinger durante a intubação. Depois de anestesiar o rato, faça uma pinça no dedo do pé para verificar a profundidade da anestesia.
Em seguida, aplique pomada oftálmica nos olhos do animal. Administre analgesia adicional antes da toracotomia com uma injeção subcutânea de carprofeno. Use uma máscara neonatal transnasal para oferecer 100% de inalação de oxigênio ao animal para saturar sua circulação com oxigênio.
Após cinco minutos, substitua a máscara neonatal por uma bolsa de ventilação neonatal construída com uma seringa de plástico macho luer lock tip. Forneça oxigênio e transborde com a ponta da seringa posicionada próxima à ponta nasal do animal. Em seguida, faça uma incisão na pele toracocervical mediana do comprimento necessário e use ganchos de preparação cirúrgica para expor o local da cirurgia.
Em seguida, usando uma tesoura fina, faça a dissecção romba através da fáscia cervical. Exponha o músculo esternocleidomastóideo e infra-hioidal. Após dissecar a membrana lateral esquerda, lateralize o músculo infra-hióideo mediano para a direita.
Empregue grampos overholt para realizar a dissecção romba em direção à traqueia e tunelar a traqueia. Em seguida, com a alça do vaso de silicone, estilingue a traqueia e fixe a traqueia distal com uma tipoia dupla usando uma sutura de polifilamento para posterior fixação da cânula endotraqueal. Usando um alicate atraumático, estenda a traqueia caudalmente.
Em seguida, usando uma tesoura, faça uma incisão parcial da traqueia em 180 graus de circunferência. Agora, insira um fio-guia Seldinger com uma extremidade flexível na traqueia e guie o cateter intravenoso modificado de tamanho apropriado para a traqueia. Em seguida, remova o fio de Seldinger e conecte a ponta luer lock do cateter traqueal à bolsa de ventilação modificada.
Em seguida, inicie a ventilação pulmonar protetora manual com alta frequência e baixo volume corrente. Prenda a sutura de travamento previamente colocada com um nó deslizante para evitar vazamento de ar e remoção acidental do cateter. Em seguida, usando uma tesoura de material rombudo e estável, inicie a toracotomia mediana a partir do xifóide e continue cranialmente através do esterno.
Pause a ventilação brevemente ao avançar a tesoura subesternalmente e ao cortar para evitar trauma pulmonar. Remova os ganchos de preparação cirúrgica da pele e insira-os no tórax para obter mais exposição. Utilize ganchos de preparação cirúrgica para obter exposição torácica e remover membranas serosas mediastinais.
A saturação de oxigênio nunca caiu abaixo de 92% e todos os ratos sobreviveram aos 20 minutos necessários para as medições experimentais.
