Патч-зажим измерения емкости и Са 2 + Изображений на Одноместный нервных окончаний в сетчатке глаза Ломтики

Резюме

Здесь мы опишем протокол для подготовки агара встраиваемый сетчатки ломтиками, которые подходят для электрофизиологии и Ca 2 + изображения. Этот метод позволяет исследовать ленточного типа синапсов в сетчатке микросхем с использованием прямых патч-зажим записи одного пресинаптических нервных окончаний.

Аннотация

Visual stimuli are detected and conveyed over a wide dynamic range of light intensities and frequency changes by specialized neurons in the vertebrate retina. Two classes of retinal neurons, photoreceptors and bipolar cells, accomplish this by using ribbon-type active zones, which enable sustained and high-throughput neurotransmitter release over long time periods. ON-type mixed bipolar cell (Mb) terminals in the goldfish retina, which depolarize to light stimuli and receive mixed rod and cone photoreceptor input, are suitable for the study of ribbon-type synapses both due to their large size (~10-12 μm diameter) and to their numerous lateral and reciprocal synaptic connections with amacrine cell dendrites. Direct access to Mb bipolar cell terminals in goldfish retinal slices with the patch-clamp technique allows the measurement of presynaptic Ca²⁺ currents, membrane capacitance changes, and reciprocal synaptic feedback inhibition mediated by GABA_A and GABA_C receptors expressed on the terminals. Presynaptic membrane capacitance measurements of exocytosis allow one to study the short-term plasticity of excitatory neurotransmitter release ^14,15. In addition, short-term and long-term plasticity of inhibitory neurotransmitter release from amacrine cells can also be investigated by recordings of reciprocal feedback inhibition arriving at the Mb terminal ²¹. Over short periods of time (e.g. ~10 s), GABAergic reciprocal feedback inhibition from amacrine cells undergoes paired-pulse depression via GABA vesicle pool depletion ¹¹. The synaptic dynamics of retinal microcircuits in the inner plexiform layer of the retina can thus be directly studied.

The brain-slice technique was introduced more than 40 years ago but is still very useful for the investigation of the electrical properties of neurons, both at the single cell soma, single dendrite or axon, and microcircuit synaptic level ¹⁹. Tissues that are too small to be glued directly onto the slicing chamber are often first embedded in agar (or placed onto a filter paper) and then sliced ^{20, 23, 18, 9}. In this video, we employ the pre-embedding agar technique using goldfish retina. Some of the giant bipolar cell terminals in our slices of goldfish retina are axotomized (axon-cut) during the slicing procedure. This allows us to isolate single presynaptic nerve terminal inputs, because recording from axotomized terminals excludes the signals from the soma-dendritic compartment. Alternatively, one can also record from intact Mb bipolar cells, by recording from terminals attached to axons that have not been cut during the slicing procedure. Overall, use of this experimental protocol will aid in studies of retinal synaptic physiology, microcircuit functional analysis, and synaptic transmission at ribbon synapses.

протокол

1. Внешние и внутренние решения

1. Подготовка нарезки решение (низкое содержание кальция) с 10-кратным маточного раствора и добавить MgCl _2, CaCl ₂ и D-глюкозы ежедневно. Окончательный 1x решение состоит из (в мм): 119 NaCl, 2,5 KCl, 3,2 MgCl _2, 0,25 CaCl _2, 12 D-глюкозы, 0,2 L-аскорбиновой кислоты, 12 HEPES. Установить рН до 7,4 (с NaOH), а также настроить осмолярности до 260 мОсм (с помощью H ₂ O и 10-кратным маточного раствора).
2. Отвешивать 3% низкая температура гелеобразования-агара (агарозы типа VII-A, A0701, Sigma; Rieke, 2001) и смешать с нарезки решение. Тепло агара, содержащего решение в микроволновой печи в течение 1-2 минут, или пока он полностью растворяется, и инкубировать агара в водяной бане (30-33 ° C), чтобы предотвратить быстрое затвердевание (гель температуры перехода: 26 ± 2 ° С).
3. Подготовка записи решения (нормальные кальция) с 10-кратным маточного раствора и добавить MgCl _2, CaCl ₂ и D-глюкозы ежедневно. Окончательный 1x последовательный решениеТС (в мм): 100 NaCl, 2,5 KCl, 1 ₂ MgCl, 25 NaHCO _3, 0,2 L-аскорбиновой кислоты, 2,5 ₂ CaCl, 12 D-глюкозы. После восходящей решение в 95% O ₂ / 5% СО ₂ (карбогена) в течение 5-10 минут, установить рН до 7,4 (с NaOH), а также настроить осмолярности до 260 мОсм (с помощью H ₂ O и 10-кратным маточного раствора).
4. Аликвоты (1 мл) внутренних решений пипетки готовятся заранее и хранить в морозильной камере (-20 ° С). Два внутренних решений пипетки, как правило, используются для изоляции биполярные ячейки кальция токов (в мм):
   1. 40 CsCl, 60 Cs-глюконат, 10 тетраэтиламмония (TEA)-Cl, 28 HEPES, 3 Mg-АТФ, 1 Na-ГТФ, и 2 EGTA. Отрегулируйте рН до 7,2 (с CsOH) и осмолярности установлена ​​в 250 мОсм. Такая высокая хлорида внутреннее решение как правило, обеспечивает более низкий последовательное сопротивление записей (лучше напряжение условия зажим) и больших тормозных постсинаптических токов (IPSCs) в ячейке биполярного мембранный потенциал покоя до -60 мВ.
   2. 95 Cs-глюконат, 10 ЧАЙ-Cl, 25 HEPES, 3 Mg-АТФ, 0,5 Na-ГТФ, и 0,5 EGTA. Отрегулируйте рН до 7,2 (с CsOH), и установите осмолярности до 250 мОсм ^22. Такой низкий EGTA внутреннее решение обычно приводит к повышению мембранной емкости изменения вызваны деполяризующего шаг импульсов и таким образом позволяет исследования пузырьков истощения бассейном и краткосрочное депрессии.

2. Патч-зажим электродов пипетки

1. Подготовка толстостенные (1,5 мм наружный диаметр) боросиликатного стекла (1B150F-4; инструменты Всемирного Precision, Sarasota, FL) и тянуть патч пипетки использованием вертикальных съемник (Narishige, PP830, Токио, Япония). Открытого кончика пипетки патч сопротивления в записи решения 7-8 МОм при пипетки заполняют внутреннее решение пипеткой № 1.
2. Пальто патч-пипетки равномерно, от кончика до уровня вала, который достигает пипетки держатель, с помощью стоматологического воска (Cavex, Уэст-Честер, штат Пенсильвания). Это сведет к минимуму емкость пипетки и электрических помех и позволяетболее точные и низким уровнем шума измерения емкости. Низкая емкость пипетки также помогает электронный С-быстро (быстро емкость) компенсации EPC-9 (или EPC-10) усилитель патч зажим.

3. Подготовка агара встраиваемый сетчатки ломтиками

1. Выберите золотую рыбку (Carassius рыбки; 8-16 см) и поместите в ведро покрыты в темной комнате в течение 30 мин темновой адаптации. После анестезии, эвтаназии седативные золотая рыбка быстрым обезглавливание и дважды pithing спинного мозга и ствола мозга. Затем удалите глаза с изогнутыми ножницами кончик и изогнутым кончиком пинцета. Эти процедуры были одобрены Институциональные уходу и использованию животных комитета (IACUC) в Oregon Health & Science University.
2. Hemisect каждый глаз, сокращая равномерно вокруг передней части глаза ножницами весной (15003-08, Изысканные инструменты науки; инициировать сокращены на прокалывание с ножницами советов), и место наглазники в охлажденном решение ломтик (низкое содержание кальция). Если Несеssary, снимите линзы с помощью пинцета (линзы, как правило, отделяться с передней части глаза). Удалить сетчатки с пигментным эпителием прилагается с помощью пара 45 ° угловой наконечник тонкой щипцы (11251-35, Изысканные инструменты Наука) чистить сетчатку от наглазник, продвигается медленно около 360 °. Север или вырезать зрительного нерва или с тонкой щипцов или весной ножницами. Удалить сетчатки осторожно сочетание тонкой угловой наконечник щипцами и всасывающий применяется с изменение пипетки Пастера или передачи пипетки (большой совет). Используйте пинцет угловой штраф наконечник для удаления оставшейся части пигментного эпителия прилагается к сетчатке. Поверхность очищается и здоровой сетчатки должны появиться темные, гладкие и красного цвета. Для полного удаления всех темных клетках пигментного эпителия темно-адаптация сетчатки в течение 1 часа ^(8, 1992).
3. Лечить изолированной сетчатки с ~ 0,03% (вес / объем; ~ 0,36 мг / мл в 1x часть раствора) гиалуронидазы ^(3; H6254, Sigma) в течение 15-30 мин при комнатнойтемпературы (20-23 ° С) для удаления стекловидного тела. Во время этой инкубации, можно подготовить ледяной срез раствором.
4. Отрежьте прямоугольный кусок сетчатки (~ 2х2 мм, содержащий полную толщину сетчатки) путем удаления с изогнутыми краями небольшой сегмент лезвия бритвы (Personna, обоюдоострый, очищено 70% этанолом и H ₂ O), подключенных к Тело 1 мл пластиковый шприц, и передача части сетчатки в небольшой контейнер, заполненный агар решение (подготовлен в (1.2)). Постарайтесь свести к минимуму количество раствора вокруг сетчатки, как он будет помещен в жидкий агар. Погрузитесь прямо в ледяной срез раствором (подготовлен в (3.3)), чтобы укрепить агар ^{20, 18, ​​9.} Мы используем маленький, ручной работы контейнера. Короче говоря, небольшая, цилиндрической трубы (Fisherbrand, полиэтиленовые флаконы образца 2,5 мл, 03-338-1B) был сокращен с двух сторон и скрепляется парафильмом (ПМ-996, Pechiney пластиковая упаковка) пятна.
5. Вырезать твердого блока агара в 1x1x1 см куб, содержащий прямоугольный кусок сетчатки.
6. Передача блока камеры срез и приклейте ее к поверхности среза пластины. Часть камеры предварительно охлажденные в морозильной камере (-20 ° С). Вырезать блок в 200-250 мкм, толстые ломтики использованием Vibratome слайсер (VT1000S или VT 1200S, Leica) в ледяной решение срез. В общей сложности от 5 до 10 ломтиков может быть получен, которые являются жизнеспособными в течение приблизительно 5 до 6 часов.
7. Трансфер одного из ломтиков для записи камеры. Место сетка из нейлона темы приклеены к П-образные платины кадров ¹⁹ в верхней части среза, и заливать непрерывно (скоростью 1-2 мл в минуту) с записью решения пропускают с 95% О ₂ / 5% СО ₂ (карбогена ).

Поиск и устранение неисправностей:

Если часть сетчатки, встроенные в агар блок отделяется или выходит из агара во время нарезки, можно увеличить ломтик толщиной от 200 мкм до 300 мкм с шагом 20 мкм. Кроме того, старайтесь свести к минимуму количество раствора вокруг сетчатки, как он передается и помещены в жидкий агар, высасывая до дополнительного решения с проката "Kimwipe" бумажный наконечник. Еще один способ избежать этой проблемы, чтобы уменьшить размер сетчатки кусок изначально помещены в агар. Потому что стекловидного тела запрещает агара из полностью присоединения к сетчатке глаза кусок, это может быть необходимо сделать свежий гиалуронидазы или отрегулировать время инкубации (стадия (3.3)).

4. Определение ячейке биполярного синаптических терминала в сетчатке ломтик

1. Позиция сетчатки срез под прямой микроскоп (например BX51WI, Olympus). Мы рассматриваем сетчатки срез с инфракрасным дифференциального интерференционного контраста (IR-DIC) Оптика через 60x воде погружения цель (NA 0,90, Olympus) и ПЗС-камеры (XC-75, Sony). Выход ПЗС-камеры передается на камеру контроллер (C2400, Хамамацу) для повышения контрастности до визуализации на аналоговый Sony 13 "Blacк и белый монитор. Микроскоп установлен на стадии перевода XY, и запись камеры помещается на фиксированные ¹⁴ этап.
2. Найти либо неповрежденной и axotomized (аксон-срез) биполярные ячейки терминалы, которые могут быть идентифицированы по их размер, форму и положение в срезе (рис. 1). Axotomized и неповрежденного терминалов также можно отличить от рассмотрения их емкостной переходного тока раза распада (одной экспонентой в сравнении с двойным экспоненциальным распадов, соответственно) и Са ^{2 +} токов (рис. 2, ^{12, 14, 15).} Mb терминалы расположены в наиболее проксимальных слой sublamina б (ON-слой, прилегающей к ганглия слоя клеток) во внутреннем слое плексиформные из золотой рыбки сетчатки. Mb терминалы, с их скучным поверхности и плоский вид, можно легко отличить от ганглия и перемещенных amacrine РРОС, которые появляются фазы яркий и сферические. Кроме того, края терминалах Mb покрыта высокойплотность синаптических контактов, и, кажется грубым и нерегулярно, по сравнению с гладкой, чистой поверхности ганглиев и amacrine клетки (рис. 1а-в). Axotomized Mb терминалы появляются круглые и вблизи круговой (рис. 1в), в то время нетронутыми терминалы появляются эллиптические и напряжены, часто с ущипнул концом в сторону внутреннего ядерного слоя сетчатки (рис. 1а, б).
3. Поврежденные или нездоровые терминалы часто выглядят опухшими и отображать несколько небольших зернистых структур на поверхности. В некоторых случаях можно получить ГОм печать на эти терминалы, но они, вероятно, вскоре после разрыва взлома. Другие признаки нездоровой терминалы включают полые внешний вид, контрастность и / или яркости идентичны окружающих ломтик, а иногда и расположение на поверхности среза. Это позволяет записывать от здоровых терминалов в глубине среза (преимущество: более целых синаптических схемы), а также вблизи поверхности среза (АДВantage: более быстрый доступ к перфузии препаратов во внешнем растворе; легче уплотнения).

5. Электрофизиологические записей и Са ^{2 +} изображений

1. Использование шприц с 0,2 мкм наконечник (Nalgene), заполните пипетки стеклянные патч с внутренним решением на уровне 1-2 сантиметров от задней части пипетки. После удаления пузырьков воздуха из кончика, безопасной пипеткой в ​​держателе, применять положительным давлением (1,2-1,6 МПа), и переместить его в сторону целевого терминала, используя микроманипулятора (MPC-200, Саттер инструмент). Во время движения кончика вниз через срез, перенести пипеткой в ​​боковом направлении широкие для того, чтобы срез не тянул вместе с наконечником.
2. Перемещение пипетки вокруг терминала для очистки поверхности мембраны. Нажмите на кончик вниз по краю терминал для создания ямочка (абзац), и отпустите положительным давлением. Если уплотнение ГОм не образуется сразу, нанесите небольшое отрицательное давление.
3. После уплотнения ГОм, переключитесь на-клеточной режим записи по EPC-9 патч зажим усилителя и изменении прижимающего потенциала до -60 или -70 мВ. Применение С-быстро (быстро емкость) коррекция, ждать печать по стабилизации между 5-10 ГОм, а затем разрыв мембраны с острыми, нежные всасывающие применяются в рот установить цельноклеточная записи конфигурации. Если цельноклеточная конфигурация была правильно установлена, последовательное сопротивление будет между 14-30 МОм. Входное сопротивление будет 200-500 МОм для интактных терминалов и 1-3 ГОм для axotomized терминалов ^14.
4. Соблюдайте емкостного тока переходных (рис. 2а и 2в), провести различие между неповрежденной и axotomized терминалы биполярных клеток. Неповрежденными и axotomized терминалы Mb иметь емкость базовой оболочки 9-16 пФ пФ и 3-8, соответственно.
5. Применить 200 мс напряжение зажим шаге от -70 до 0 мВ до axotomized терминал Мб. Это позволитпрямого измерения больших (~ 200-600 мкА), изолированных внутрь Са ^{2 +} токов активируются открытием потенциал-зависимые L-типа Ca ^{2 +-каналов} (рис. 2б). Параллельно с этим, каждый в состоянии контролировать емкость скачок вызван экзоцитоза синаптических везикул и быстрое, рН-опосредованного ингибирования Са ^{2 +} ток, который следует экзоцитоза ^15, и ГАМК-реципрокного торможения обратной связи (рис. 3, ^22). Если патчи нетронутыми Mb биполярной ячейке терминал будет результат, как показано на рисунке 2, и 2-й. Никаких заметных Са ^{2 +} токов наблюдаются из-за большой "утечки" тока из-за разрыва спая связи в дендритов биполярных клеток Mb ^1.
6. Изменения мембранного емкость может быть вызвана шаг деполяризации от проведения потенциал -70 мВ до 0 мВ использовании "синус + DC» метод с временным разрешением измерений мембраны емкость ⁶. Мембранные скачки емкости указывают слияние синаптических пузырьков с плазматической мембраной. 2 кГц синусоидального напряжения зажим команды (30 мВ от пика до пика) был добавлен в холдинг потенциал -70 мВ. Тока записи были проанализированы на двух ортогональных углов фазы EPC-9 патч-зажим усилителя программной эмуляции синхронный усилитель (хека, Ламбрехт, Германия). В нетронутыми терминал рис 2d, высокой частоты (2 кГц) синусоидальной пределах стимул мембраны емкость, которая анализируется для терминала окончаний и аксона, которые См базовой емкости ~ 6,8 пФ. Мембраны клеток организма и дендритов биполярных ячейки, таким образом, отфильтровываются высокой частоты напряжения синусоида зажим ^13.
7. Для Ca ^{2 +-изображений} эксперименты, тщательно перемешать внутреннее решение пипетки патч с Ca ^{2 +-чувствительного} флуоресцентного красителя (например, штат Орегон Зеленый 488 BAPTA-1 (100-200 мкМ; O-6806, Invitrogen)) и повторить протокол от 50,1 до 5,5. Это позволит объединить один флуоресценции и электрофизиологические записи. Например, можно изображений Са ^{2 +} переходных связанные с шагом 200 мс от -70 до 0 мВ в небольших придатков telodendria из Mb терминала (рис. 3а, б). Мы интегрировали наши прямой микроскоп Olympus с вращающимся диском лазерной конфокальной микроскопии системы (ХСС-X1, Yokogawa). Конфокальной микроскопии использует 488 нм и 561 нм линии, которые модулируются акустооптического перестраиваемого фильтра. Данные получены с помощью Slidebook программное обеспечение (3i; Интеллектуальные инструменты Imaging). Более подробную информацию о кальция методов визуализации использованием золотой рыбки нейронов сетчатки см. ^{24, 17, 3.}

Поиск и устранение неисправностей:

Если часто не может установить цельноклеточная конфигурации, даже после формирования стабильного уплотнения ГОм, это может быть полезным для уменьшения отрицательного давления используется для прокола терминал мнеmbrane. Он также может быть так, что оптимальное давление всасывания для создания целых клеток конфигурация меняется в зависимости от кривизны мембраны (сомы> терминал). Кроме того, можно использовать Зап протокол (Амплитуда: 400 мВ, продолжительность: 100 мкс), чтобы войти в цельноклеточной конфигурации, либо самостоятельно, либо в сочетании с резким импульсом отрицательного давления. Мы нашли Зап протокол, который будет особенно полезно для взлома при использовании пипетки с ванной сопротивлением свыше 12 МОм.

6. Представитель Результаты

Рисунок 1. Определение Mb биполярные ячейки терминалов в золотую рыбку сетчатки ломтиками. (Ас) IR-DIC изображений терминалов Mb биполярные клетки. Мы можем определить вероятность axotomized (аксон-вырезать) и нетронутыми терминалы в IR-DIC изображение. Axotomized терминала появляется круглый и круглые, как показано на св то время как нетронутыми терминал, скорее всего, появляются эллиптические, как показано на б. Эта классификация может быть подтверждено переходных измерения емкости (см. рисунок 2) или краситель метод заполнения (г - е). Красными стрелками указаны места пересечения между аксонов и аксон терминал для нетронутыми терминалов в а и б. Красной пунктирной линией указано контур терминалы Mb биполярных клеток. (DF). Флуоресценция образы Mb биполярной ячейки терминалы с нетронутыми аксона (г), частично сократить аксонов (е), или полностью удалена аксона (е). Alexa 555 (A20501MP, Invitrogen) флуоресцентный краситель был наполнен внутренним решением, перед записью. Сразу же после патч-зажим записи, сетчатки срез был переведен на 4% (вес / объем) параформальдегида (P6148, Sigma) в фосфатном буферном растворе (70013, GIBCO) и инкубировали в течение 30минута Фрагменты были установлены на предметные стекла SuperFrost (Fisher Scientific) в водной среде с монтажа против выцветания агентов (Biomeda корпорации). Alexa 555 Мб содержащих терминалы биполярных клеток относятся с 555 нм лазера (красный) с помощью 40x воде погружения цели по конфокальной лазерной сканирующей микроскопии (LSM 710, объективом Carl Zeiss). Обратите внимание на наличие небольших придатков telodendria торчащих из аксонов терминалов (синие стрелки). Шкала строке показывают 10 мкм (- е). INL: внутренний ядерный слой, IPL: внутренний слой плексиформные, GCL: ганглиозных клеток слоя.

Рисунок 2. Электрические свойства axotomized и неповрежденного терминалы Mb биполярные клетки. (А, с) переходного тока ответ активируется напряжения зажим шаг гиперполяризации от проведения потенциал -60 мВ до -70 мВ. Ток короткого ответа на -10 мВ напряжение зажим шагможет привести к: 1) один быстрый экспоненциальный затухания тока с высоким входным сопротивлением при -70 мВ (указывает на axotomized терминала; панель), или 2) дважды экспоненциальный спад с низким входным сопротивлением при -70 мВ (указывает на нетронутым терминала; панели с, см. также ^{12, 14, 15).} (Б, г) Са ^{2 +} токи и прыжки мембраны емкость была вызвана шаг деполяризации от -70 до 0 мВ. С временным разрешением измерений мембраны емкость использования 2-кГц синусоиды стимул накладываются на потенциал покоя проведение -70 мВ ^6. След красный усредненное значение емкости точек данных. Обратите внимание, что емкость прыгать на рисунке 2b и 2d одинаковы и равны примерно 200 FF.

Рисунок 3. Прямые измерения Са ^{2 +} визуализация сигналов, экзоцитоз, и тормозные обратной связи в Мб биполярные ячейки терминала. (А) переходные рост концентрации Са ^{2 +} в telodendria из Mb терминал был активирован напряжения зажим шаг деполяризации от -70 до 0 мВ до 200 мс (стрелка). Орегон Зеленый 488 BAPTA-1 (100 мкМ), Ca ^{2 +} индикатор краситель, был включен в патч пипетки. (Б) корреспондент флуоресценции образ Mb telodendria (область интереса указывает красный пунктир). (С) Краткосрочные синаптической депрессии нейромедиатора релиз (экзоцитоз). Са ^{2 +} токов (средняя линия) и мембранные емкости (нижний луч) вызвана пара 20 деполяризаций мс до 0 мВ (верхний луч, 200 мс между импульсов интервал). Стрелка указывает влияние exocytosed протонов на Са ^{2 +,} а также текущие ГАМКергических взаимное подавление обратной связи с соседними клетками amacrine ^{15, 21.} Обратите внимание, что протон-опосредованного ингибирования Са ^{2 +,} а также текущие GABAergic взаимное подавление обратной связи присутствует только в первом деполяризующего ответ, который также имеет емкость прыгать из-за экзоцитоза синаптических везикул.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Критический и трудный шаг в нашем протокол передачи части сетчатки в агар решение (протокол 3.4). Необходимо тщательно удалить стекловидного тела и остаточной решение ломтик от сетчатки части и передать ее без искажений или изгиба. Для того, чтобы достичь этого, мы используем не...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
Название реагента	Компания	Номер по каталогу	Комментарии
Низкая температура гелеобразования-агар	Сигма	A0701	Агарозном типа VII-
Патч пипетки	Инструменты Всемирной Precision	1B150F-4	Толстостенные (1,5 мм наружный диаметр) боросиликатного стекла
Вертикальная съемник	Narishige	PP830
Стоматологический воск	Cavex
Весна ножницы	Инструменты изобразительных наук	15003-08
45 ° угловой наконечник тонкой щипцы	Инструменты изобразительных наук	11251-35
Бритва	Personna		Обоюдоострый, очищено 70% этанолом и H 2 O
Цилиндрические трубки	Fisherbrand	03-338-1B	Полиэтилен образец флаконах 2,5 мл
Гиалуронидаза	Сигма	H6254
Vibratome слайсер	Leica	VT1000S или VT1200S
Вертикальный микроскоп	Олимп	BX51WI
60x воде погружения цель	Олимп	LUMPlanFl	Н. А. 0,90
ПЗС-камера	Sony	XC-75
Камера контроллер	Hamamatsu	C2400
Монитор	Sony		13 "черно-белый монитор
Шприц фильтр	Nalgene		0,2 мкм
Микроманипулятор	Саттер инструмент	MPC-200
Блокировка усилителем	Хека		EPC-9/10 усилители имеют программную эмуляцию
Вращающийся диск лазерной конфокальной микроскопии	Yokogawa	CSU-X1	Живая клетка изображений после патча зажим целом записи ячейки
Slidebook программного обеспечения	Интеллектуальные изображений Инструменты (3i)		Изображениями получения и анализа данных
Параформальдегид	Сигма	P6148
Фосфатный буфер решение	Г. И.BCO	70013
SuperFrost слайдов	Fisher Scientific		Слайд стекла
Анти-выцветания агентов	Biomeda корп.
Конфокальной лазерной сканирующей микроскопии	Carl Zeiss	LSM 710	Изображениями основных тканей
Шпатель	Fisherbrand	21-401-25B
Мануэль вертикальной резки	Narishige	ST-20
Орегон Зеленый BAPTA 488-1	Invitrogen	O-6806	Са 2 + чувствительны флуоресцентного красителя
Alexa Fluor 555 гидразида	Invitrogen	-20501MP	Флуоресцентная краска