JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Модификация клеточных мембран красных кровяных телец (эритроцитов) с сверхразветвленных полиглицерина (HPG) представлены. Измененные эритроциты были характерны водной двухфазной разделов, осмотическая хрупкость и дополнения опосредованный лизис. Камуфляж поверхностных белков и антигенов оценивали с помощью проточной цитометрии и Micro System Typing (МТС) карты крови фенотипа.

Аннотация

Красные клетки крови (эритроциты) переливание имеет жизненно важное значение для лечения ряда острых и хронических медицинских проблем, таких как талассемия и серповидно-клеточная анемия 1-3. В связи с наличием множества антигенов на поверхности эритроцитов (~ 308 известными антигенами 4), пациентов в хронической терапии переливания крови развиваются аллоантител в связи с матчем мисс незначительных антигенов на переливание эритроцитов 4, 5. Прививка гидрофильные полимеры, такие как полиэтилен гликоля (PEG) и сверхразветвленных полиглицерина (HPG) образует исключения слой на мембране эритроцитов, что препятствует взаимодействию антител с поверхностными антигенами, не влияя на прохождение малых молекул, таких как кислород, глюкоза и ионы 3. В настоящее время ни один метод не доступен для генерации универсальных красных клеток крови донора отчасти из-за сложной проблемы, связанной с наличием большого количества антигенов (белков и углеводов основе) на поверхности эритроцитов и DРАЗВИТИЯ таких методов позволит существенно повысить безопасность переливания, а также значительно улучшить доступность и использование БС. В этом докладе, эксперименты, которые используются для разработки антигена эритроцитов охраняемой функциональной мембраной прививки HPG и их характеристика представлены. HPGs высоко биосовместимые полимеры компактная 6, 7, и ожидается, что находится внутри клетки гликокаликса, которая окружает липидную мембрану 8, 9 и маски РБК поверхностных антигенов 10, 11.

протокол

А. сверхразветвленных Модификация полиглицеридов (SS-HPG)

  1. Место лиофилизированный HPG 60 кДа (0,5 г, 0,0083 ммоль) в колбу с круглым дном и просушить в течение ночи под вакуумом при 90 ° C.
  2. Охладите колбу до комнатной температуры, и распустить сушеные HPG в безводном пиридине (3 мл).
  3. Для функционализации примерно восемь гидроксильных групп на HPG с карбоксильными группами, добавить каталитическое количество диметиламинопиридина (одна капля 5 мг / мл раствора в пиридине) к HPG решение. К этой смеси добавляют янтарный ангидрид, (0,0067 г, 0,0664 ммоль) растворяли в 0,5 мл пиридина по каплям в течение 10 мин. Смесь перемешивают в течение ночи при комнатной температуре в атмосфере аргона.
  4. Осадок смеси в 40 мл холодного ацетона (4 ° C) в 50 мл центрифужные пробирки и центрифугируют использованием Beckman J2-MC центрифуге при 27000 х г в течение 15 мин. Слейте супернатант, и удалить остатки ацетона путем промывки аргона при комнатной температуре.
  5. Для активации карбоксильнойл групп с сукцинимидил сукцинат (SS) групп, растворяться карбоксильных функциональных групп HPG в 3 мл безводного DMF. Добавить N-гидроксисукцинимид (0,0077 г, 0,0664 ммоль) и N, N-диизопропилкарбодиимид (0,0084 г, 0,0664 ммоль), HPG решения и размешать смесь на ночь при комнатной температуре в атмосфере аргона.
  6. Очищают SS-HPG путем осаждения в холодном ацетоне.
  7. Удалите остатки ацетона путем промывки аргона.
  8. Определить чистоту изменение HPG и степень карбоксильных и SS функционализации протона (1 H) - ЯМР-анализа.

B. Всего для сбора крови и разъединении красных кровяных телец (эритроцитов)

  1. Сбор цельной крови (40% Гематокрит, 3 мл) с согласия здоровых человеческих доноров в трубку Vacutainer цитрата.
  2. Центрифуга цитрат трубы в 1000 х г в течение 4 мин.
  3. Удалить супернатант, который содержит плазму и тромбоциты, и пальто промежуточных Баффи, которая содержит лейкоциты и plateleTS помощью пипетки Пастера.
  4. Передача эритроцитарной массы (80% гематокрита, 1,2 мл) в 12 мл центрифужные пробирки Falcon, и добавить PBS буфера (8 мл, рН = 8,0), чтобы вымыть эритроцитов.
  5. Смешать эритроцитов обращением для получения равномерного распределения клеток.
  6. Центрифуга трубки сокола в 1000 мкг в течение 4 минут и удалить супернатант.
  7. Вымойте эритроцитов с PBS еще два раза, повторив шаги 5 и 6.
  8. Место упакован-БС (100 мкл) в 1,6 мл трубки Эппендорф, и добавить буфера PBS (300 мкл, рН = 8,0) для получения 20% Гематокрит эритроцитов.

C. HPG Прививка в эритроцитах

  1. Сразу же после осаждения изменение HPG в ацетоне в шаге A6, место SS-HPG (150 мг) в стеклянном флаконе (1 драм) и растворить его в буфере PBS (300 мкл, рН = 8,0).
  2. Добавить SS-HPG раствор полимера в 20% Гематокрит промывают БС для получения конечного объема 400 мкл и SS-HPG концентрации, которая колеблется от 0,5 мм до 3 мм. Например, чтобы подготовить эритроциты обрабатывают 0,5 мМ SS-HPG, удалить 36 мкл PBS из промытого РБК и поместите 36 мкл СС-HPG раствора полимера.
  3. Vortex подвеска мягко и поместить Эппендорфа на орбитальном шейкере при комнатной температуре в течение 1 часа.
  4. Центрифуга Eppendorf трубы при 1000 мкг в течение 4 мин, и пипетки из супернатанта.
  5. Добавить 1 мл PBS, чтобы вымыть эритроцитов, центрифуги и удалите супернатант.
  6. Добавить 1 мл физиологического раствора и промыть эритроциты два раза в шаге 5.
  7. Добавить 300 мкл физиологического раствора до 100 мкл эритроцитарной массы (80% Гематокрит) до конечной концентрации 20% гематокрита.

D. Характеристика HPG изменения эритроцитов

I. Дополнение опосредованный лизис

  1. Сбор около 8 мл цельной крови здоровых доноров человека в BD Vacutainer стеклянной трубки сыворотки, и позволяет крови свертываться при комнатной температуре в течение 30 мин.
  2. Центрифуги трубы при 2000 мкг в течение 10 мин и собирают около 3 мл сыворотки.
  3. Один миллилитр Серум была помещена в водяную баню при температуре 60 ° С в течение 30 мин для подготовки тепла инактивированной сыворотки.
  4. Добавить 60 мкл свежей сыворотки или тепла инактивированной сыворотки в трубку Eppendorf, содержащие 60 мкл 20% Гематокрит HPG измененные эритроциты или немодифицированных эритроцитов.
  5. Инкубируйте эритроцитов в течение 1 часа при 37 ° C.
  6. Для определения количества гемоглобина в клеточной суспензии, место 5,9 мкл 20% гематокрита HPG изменения эритроцитов или немодифицированных клеток в трех экземплярах в 96-луночный планшет. Добавить 294 мкл реагента Драбкин (в реагент, который используется для определения количества гемоглобина spectrophotomerically). Смешать клеток с реагентом Драбкин в пипетированием и выходит. Измеряют поглощение гемоглобином cyanoderivative при 540 нм с использованием SPECTRA MAX 190 ридер.
  7. Для определения количества гемоглобина в супернатант, центрифугируют клетки при 13000 х г в течение 1 мин. Место 50 мкл супернатанта в трех экземплярах в 96-луночный планшет. Добавить 250 мкл реагента в Драбкин. Mix клеток с реагентом Драбкин вс помощью пипетки и выходит. Измеряют поглощение гемоглобином cyanoderivative при 540 нм с использованием SPECTRA MAX 190 ридер.
  8. Определить количество лизированных клеток по отношению гемоглобина в надосадочной жидкости (шаг 7) и общего гемоглобина в образце (шаг 6) 8, 11, 12.

II. Камуфляж крупных и мелких антигенов с помощью карт МТС

  1. Место 50 мкл HPG изменение РБК (10% гематокрита) в трубку Eppendorf, центрифуги при 1000 х г в течение 1 мин, и удалите супернатант.
  2. Добавить 110 мкл разбавителя МТС в осадок клеток и однородной суспензии клеток с помощью пипетки и выходит.
  3. Добавить 11 мкл суспензии клеток в каждой мини-колонки гель. Старайтесь не прикасаться к геля в процессе добавления.
  4. Найдите МТС карты в держатель карты центрифуги и центрифугируют при 156 х г в течение 6 мин.
  5. Охрана поверхностных антигенов определяется из расположения РБК в мини-колонки гель, основанный на производствеГ описания.

III. Водные два измерения фазы раздела

  1. Подготовка Декстран 500 кДа / PEG 8 кДа двухфазного разделения системы, состоящей из (5% декстран 500k, 4% ПЭГ-8К, 150 мМ NaCl, 10 мМ фосфат) в соответствии с 13.
  2. Центрифуга при 433 мкг в течение 10 мин при комнатной температуре, чтобы получить два системных этапа (декстран в нижней).
  3. Отделить два этапа тщательно.
  4. Алиготе 1,0 мл верхней фазы ПЭГ в меченых трубку (с вогнутым дном), добавить 20 мкл 20% гематокрита HPG изменения эритроцитов, клеток и перемешать осторожно стряхивая.
  5. Добавить 0,5 мл верхней фазы, которые содержат клетки до 0,5 мл нижней фазы, и смешивать системе осторожно стряхивая.
  6. Положите трубку на скамейке запасных ~ 2 мин для системы отделить и определить расположение клеток в системе. Локализация эритроцитов (в верхней фазе PEG, в нижней фазе декстран или в обоих) есть функция от степени модификации и молекулярныхвес HPG.

IV. Осмотическое измерения хрупкости

  1. Подготовка NaCl решений с концентрацией в диапазоне от 0 до 0,9 (в / о)%.
  2. Место 0,4 мл NaCl решений в 1,5 мл пробирок Эппендорф.
  3. Добавить 20 мкл эритроцитов (20% гематокрита) в растворы NaCl.
  4. Mix клетки тщательно инверсии и разместить их на водяной бане при температуре 37 ° С в течение 30 мин.
  5. Приостановить клетки тщательно инверсии. Принимать по 50 мкл суспензии эритроцитов и добавить его в 1 мл реагента Драбкин, в помещают в кювету. Смешать клеток с реагентом Драбкин в пипетированием и выходит. Измеряют поглощение гемоглобином cyanoderivative при 540 нм с использованием BECKMAN COULTER DU 730 UV / VIS читателя.
  6. Для определения количества гемоглобина в супернатант, центрифугируют клетки при 1000 х г в течение 1 мин. Добавить 200 мкл супернатанта в 1 мл реагента Драбкин в кювет. Смешать клеток с реагентом Драбкин в пипетированием и выходит. Измеряют поглощение hemoglОБИН cyanoderivative при 540 нм с использованием BECKMAN COULTER DU 730 UV / VIS читателя.
  7. Подсчитайте количество клеток лизируется в различных раствором хлорида натрия с отношением количества гемоглобина в надосадочной (шаг 6) на общую сумму гемоглобина в клеточной суспензии (шаг 5).

В. проточной цитометрии измерения - защита резус-D (РЖС) антигена

  1. Добавьте 5 мкл управления или HPG измененные эритроциты (20% гематокрита) в трех экземплярах в PBS буфере с добавлением 0,5% BSA в общем объеме 25 мкл.
  2. Добавить 25 мкл FITC моноклональными анти-резус-D (РЖС) приобретены у Quotient Biodiagnostics (штат Пенсильвания, США).
  3. Выдержите смесь в течение 30 мин при 37 ° С на водяной бане.
  4. Вымойте смеси с 1,5 мл PBS буфера в два раза. Центрифуга при 1000 мкг в течение 1 мин, чтобы удалить супернатант.
  5. Приостановить эритроцитов в 1 мл физиологического раствора, и передать суспензии в 4 мл потока BD трубки проточной цитометрии.
  6. Анализ использования FACSCanto II FloW цитометр, приобретая 5000 событий на ворота РБК контроля, а также использовать весь событий для анализа.

VI. Проточной цитометрии измерений - Экспрессия CD47

  1. Добавить 1,54 мкл управления или HPG измененные эритроциты (20% гематокрита) в трех экземплярах в PBS буфере с добавлением 0,5% BSA в общем объеме 44 мкл.
  2. Добавить 6 мкл фикоэритрин (PE), меченного мышиного анти-CD47 человека приобрести BD Biosciences (Нью-Джерси, США).
  3. Выдержите смесь в течение 30 мин при 37 ° С на водяной бане.
  4. Вымойте смеси с 1,5 мл PBS буфера два раза. Центрифуга при 1000 мкг в течение 1 мин, чтобы удалить супернатант.
  5. Приостановить эритроцитов в 1 мл солевого, и пройти через 26 G 5/8 иглу, чтобы минимизировать клетки слипания.
  6. Передача суспензии в 4 мл потока BD трубки проточной цитометрии.
  7. Анализ использования FACSCanto II проточной цитометрии, приобретая 10000 событий на ворота РБК управления.

Результаты

Камуфляж резус-D антигена CD47 и РБК поверхности белка количественно с помощью проточной цитометрии с использованием флуоресцентных меченых моноклональных антител, а также представитель результат приведен на рисунке 1. В случае HPG-привитые эритроцитов (серый), интенсивность си?...

Обсуждение

Универсальный эритроциты донора имеют большой потенциал в повышении доступности и безопасности крови для переливания крови терапии. Эритроциты также считают перспективным для доставки лекарств транспортных средств в связи с их долгого обращения и присущие биосовместимость 14, 15.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Это исследование было профинансировано канадский Услуги крови (КОС) и канадского Института Здоровья наук (CIHR) Фонда Партнерство исследований. Авторы благодарят LMB макромолекулы концентратор на UBC Центр исследований крови для использования их научно-исследовательских учреждений. Инфраструктуры при поддержке Канады основа для инноваций (CFI) и Майкл Смит Фонд исследований в области здравоохранения (MSFHR). Р. Chapanian является получателем (CIHR / CBS) докторской стипендии в переливании науки и получателем MSFHR исследований стажером сообщение докторских стипендий. JN Kizhakkedathu является получателем MSFHR Карьера премии Академии следователь.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Глицидол Sigma Aldrich (ON, Канада)
Триметилолпропана Fluka (ON, Канада)
Калий метилата Sigma Aldrich (ON, Канада)
Безводный пиридин Sigma Aldrich (ON, Канада)
4-диметиламинопиридин Sigma Aldrich (ON, Канада)
Ангидрида янтарной кислоты Sigma Aldrich (ON, Канада)
Ацетон Fisher Scientific (ON, Канада)
Безводный диметилформамид Sigma Aldrich (ON, Канада)
N-гидроксисукцинимида Sigma Aldrich (ON, Канада)
N, N-диизопропилкарбодиимид Sigma Aldrich (ON, Канада)
МТС карт Micro Typing System (МТС) карты (Флорида, США)
Декстран 500 кДа Pharmacia Fine Chemicals (Швеция)
PEG 8 кДа Sigma Aldrich (ON, Канада)
FITC моноклональными анти-резус-D (RHD) Фактор Biodiagnostics (Пенсильвания, США)
PE моноклональных анти-CD47 BD Biosciences (Нью-Джерси, США)
Драбкин Реактив Sigma Aldrich (ON, Канада)
Таблица. Химических веществ и реагентов, используемых для прививки HPG полимеров мембраны эритроцитов и их анализ.

Ссылки

  1. Bradley, A. J., Murad, K. L., Regan, K. L., Scott, M. D. Biophysical consequences of linker chemistry and polymer size on stealth erythrocytes: size does matter. Biochim. Biophys. Acta. 1561 (2), 147-158 (2002).
  2. Murad, K. T., Mahany, K. L., Brugnara, C., Kuypers, F. A., Eaton, J. W., Scott, M. D. Structural and functional consequences of antigenic modulation of red blood cells with methoxypoly(ethylene glycol. Blood. 93 (6), 2121-2127 (1999).
  3. Scott, M. D., Murad, K. L., Koumpouras, F., Talbot, M., Eaton, J. W. Chemical camouflage of antigenic determinants: Stealth erythrocytes. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94 (14), 7566-7571 (1997).
  4. Daniels, G., Reid, M. E. Blood groups: the past 50 years. Transfusion. 50 (2), 281-289 (2010).
  5. Murad, K. L., Gosselin, E. J., Eaton, J. W., Scott, M. D. Stealth cells: Prevention of major histocompatibility complex class II-mediated T-cell activation by cell surface modification. Blood. 94 (6), 2135-2141 (1999).
  6. Kainthan, R. K., Hester, S. R., Levin, E., Devine, D. V., Brooks, D. E. In vitro biological evaluation of high molecular weight hyperbranched polyglycerols. Biomaterials. 28 (31), 4581-4590 (2007).
  7. Kainthan, R. K., Janzen, J., Levin, E., Devine, D. V., Brooks, D. E. Biocompatibility testing of branched and linear polyglycidol. Biomacromolecules. 7 (3), 703-709 (2006).
  8. Chapanian, R., Constantinescu, I., Brooks, D. E., Scott, M. D., Kizhakkedathu, J. N. In vivo circulation, clearance, and biodistribution of polyglycerol grafted functional red blood cells. Biomaterials. 33 (10), 3047-3057 (2012).
  9. Chapanian, R., Constantinescu, I., Rossi, N. A. A., Medvedev, N., Brooks, D. E., Scott, M. D., Kizhakkedathu, J. N. Influence of polymer architecture on antigens Camouflage, CD47 protection and complement mediated lysis of surface grafted red blood cells. Biomaterials. 33 (31), 7871-7883 (2012).
  10. Rossi, N. A. A., Constantinescu, I., Brooks, D. E., Scott, M. D., Kizhakkedathu, J. N. Enhanced cell surface polymer grafting in concentrated and nonreactive aqueous polymer solutions. J. Am. Chem. Soc. 132 (10), 3423-3430 (2010).
  11. Rossi, N. A. A., Constantinescu, I., Kainthan, R. K., Brooks, D. E., Scott, M. D., Kizhakkedathu, J. N. Red blood cell membrane grafting of multi-functional hyperbranched polyglycerols. Biomaterials. 31 (14), 4167-4178 (2010).
  12. Muzykantov, V. R., Smirnov, M. D., Domogatsky, S. P. Hemolytic complement activity assay in microtitration plates. J. App. Biochem. 7 (3), 223-227 (1985).
  13. Walter, H., Brooks, D. E., Fisher, D. . Partitioning in aqueous two-phase systems: theory, methods, uses, and applications to biotechnology. , (1985).
  14. Rossi, L., Serafini, S., Pierige, F., Antonelli, A., Cerasi, A., Franternale, A., et al. Erythrocyte-based drug delivery. Expert Opin. Drug Deliv. 2 (2), 311-322 (2005).
  15. Walter, H., Krob, E. J., Brooks, D. E. Membrane surface properties other than charge involved in cell separation by partition in polymer, aqueous 2-phase systems. Biochemistry. 15 (14), 2959-2964 (1976).
  16. Muzykantov, V. R., Murciano, J. C., Taylor, R. P., Atochina, E. N., Herraez, A. Regulation of the complement-mediated elimination of red blood cells modified with biotin and streptavidin. Anal Biochem. 241 (1), 109-119 (1996).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

71

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены