JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

The purpose of this protocol is to demonstrate the principles and techniques for measuring and calculating glomerular filtration rate, urine flow rate, and excretion of sodium and potassium in a rat. This demonstration can be used to provide students with an overall conceptual understanding of how to measure renal function.

Аннотация

Measurements of glomerular filtration rate (GFR), and the fractional excretion of sodium (Na) and potassium (K) are critical in assessing renal function in health and disease. GFR is measured as the steady state renal clearance of inulin which is filtered at the glomerulus, but not secreted or reabsorbed along the nephron. The fractional excretion of Na and K can be determined from the concentration of Na and K in plasma and urine. The renal clearance of inulin can be demonstrated in an anesthetized animal which has catheters in the femoral artery, femoral vein and bladder. The equipment and supplies used for this procedure are those commonly available in a research core facility, and thus makes this procedure a practical means for measuring renal function. The purpose of this video is to demonstrate the procedures required to perform a lab demonstration in which renal function is assessed before and after a diuretic drug. The presented technique can be utilized to assess renal function in rat models of renal disease.

Введение

The most important function of the kidney is the homeostatic regulation of extracellular water and electrolyte content. The kidneys closely regulate extracellular water, sodium (Na) and potassium (K) to maintain normal physiological levels. Disturbances in renal function can result in serious metabolic disorders which can be fatal. The basic renal process occurs in the nephron and begins with the filtration of plasma at the glomerulus and ends with the excretion of urine. Other processes that determine the final concentration of water, Na and K in the urine are secretion and reabsorption within the nephron. Measurements of glomerular filtration rate (GFR) and the fractional excretion of Na and K are critical in assessing renal function in health and disease. The reader is referred to previously published review articles and textbooks for a more thorough discussion of kidney function1-4.

GFR can be measured as the steady state renal clearance of inulin which is filtered at the glomerulus, but not secreted or reabsorbed along the nephron5. While this technique requires anesthesia, surgical preparation, and a terminal experiment, it is considered the gold standard of GFR measurement. Using inulin that is tagged with fluorescein-isothiocyanate (FITC), plasma and urine concentration of FITC-inulin can be easily measured in small volumes and used to calculate GFR during multiple time points of an experiment. The fractional excretion of Na and K can be determined from the concentration of Na and K in plasma and urine.

The conceptual understanding of how to measure renal function can easily be demonstrated in a short lab designed to allow students to actively participate in some aspects of the experiment. This video depicts the pre-lab preparation, the renal function demonstration, and the post-lab evaluation of results. The surgical techniques necessary for making measurements of GFR are demonstrated in an anesthetized rat. In addition, example calculations for GFR, and the fractional excretion of Na and K are shown before and after administration of a diuretic drug.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

До любой процедуры животных, уход за животными институциональная и использование комитет (IACUC) должен утвердить протокол. Этот протокол был одобрен Университет штата Мичиган IACUC.

1. Предварительная подготовка лаборатории FITC-инулин решения

  1. Теплые 20 мл физиологического раствора до 70 ° С и медленно перемешивают в 100 мг FITC-инулин (5 мг / мл FITC-инулин), пока все инулин не растворится.
  2. Холодный раствор до комнатной температуры и добавить 800 мг бычьего сывороточного альбумина (40 мг / мл БСА, лиофилизированный порошок, по существу, глобулина, низкое эндотоксин, ≥98% чистоты электрофорезом в агарозном геле).
  3. Фильтр инулин-BSA решение с фильтровальной бумаги (сорт 1). Поместите отфильтрованного раствора в 20 мл шприц с шприц-фильтр наконечника (0,2 мкм) и накрыть фольгой, чтобы защитить от света.

2. Анестезия и хирургия

  1. Поместите крысу в индукционной камере, заполненной 5% изофлуран для индукции анестезии. Запись Совет директорову вес (250-350 г) и поместить крысу на платформе хирургической нагретого предназначена для поддержания 37 ° С температуру тела в течение всего эксперимента. Аккуратно закрепите крысу на платформу с лабораторным ленты на лапах. Поддержание анестезии с 1-2% изофлуран с медицинской ранга 100% O 2 при скорости воздушного потока 0,8-1,0 л / мин.
  2. Вставьте коническую катетер (внутрисосудистого наконечник OD, 2.7F) в бедренную артерию для кровяного давления и сердечного ритма мониторинга и отбора проб крови.
  3. Вставьте катетер (РЕ-50) в бедренную вену для инулина инфузии. Закрепите катетер окружающие ткани с 5-О плетеные шелковой хирургической нити 6.
  4. Прикрепите артериальный катетер с тензометрическим избыточного давления. Запись кровяное давление и частоту сердечных сокращений с помощью программного обеспечения сбора данных и отображение на экране компьютера в режиме реального времени. Этот метод показал подробно на видео 6.
  5. Expose мочевого пузыря с помощью надлобковой разрез. Вырезать небольшойотверстие в кончике мочевого пузыря и вставить канюлю (РЕ-190) с тепловой вспыхнул наконечник внутри мочевого пузыря для сбора мочи. Закрепите канюли мочевого пузыря с кошелька струн шва.

3. Моча и забор крови

  1. Поместите шприц FITC-инулин в шприцевой насос с расходом набор 1 мл / ч на 100 г массы тела (3 мл / ч для крысы весом 300 г). Прикрепите шприц к бедренной вены катетер. Начните инулина настой и позволяют период уравновешивания 1-2 ч. Держите шприц покрытый фольгой, чтобы защитить от света.
  2. Определить, если скорость потока мочи является стабильным и достаточно для анализа образца (20 мкл / мин) путем сбора мочи в предварительно взвешенную пробирку для сбора в течение 10 мин. Определить объем мочи гравиметрическим с цифровой шкалой. Адекватный объем мочи в течение 10 мин сбора составляет 0,2 мл. Продолжайте собирать образцы мочи до двух последовательных коллекции не указать скорость потока мочи от 20 мкл / мили более.
  3. Образцы предварительно наркотиков
    1. Соберите образец мочи в течение периода 20 мин. Собирают пробы крови (0,5 мл) с артериальным катетером в середине периода сбора мочи. Будьте осторожны, чтобы полностью очистить артериального катетера физиологического раствора перед сбором образца крови в пробирку, содержащую сбора 1 U гепарина. Используйте сбора флаконов с маркировкой объема для облегчения сбора 0,5 мл артериальной крови.
    2. Флеш артериальный катетер с гепарин-физиологический раствор (20 ед / мл), чтобы удалить катетер крови (прибл. 0,1 мл). Длина артериальный катетер должен быть как можно короче, чтобы ограничить объем физиологического раствора гепарин-необходимого для очистки.
      Примечание: Разведенные образцы крови производят неточные расчеты СКФ и фракционной экскреции Na и К.
    3. Подождите 10 мин, и повторить сбор мочи второго предварительного наркотиков и пробы крови.
  4. После сбора двух образцов Предварительная наркотиков, администрировать мочегонным Дрюг, фуросемид (10 мг / кг), через артериальный катетер. Промойте артериальный катетер с гепарином физиологического раствора, чтобы очистить катетер препарата. Позаботьтесь, чтобы предотвратить инъекции воздуха через артериальный катетер. Запишите время на фуросемид инъекции.
  5. Образцы после наркотиков: На каждом из 3 временных точках ниже, собирают мочу в течение периода сбора 10 мин, и пробы крови (0,5 мл) в середине периода сбора мочи.
    1. Для пост-наркотическими образца 1 - собрать пять минут после фуросемида.
    2. Для пост-наркотическими Пример 2 - собрать десять минут после фуросемида.
    3. Для образца Сообщение с наркотиками 3 - собрать пятнадцать минут после фуросемида.
  6. После того как все образцы были собраны, усыпить крысу в соответствии с институциональными процедурами по торакотомии и удаления сердца. Снимите обе почки. Decapsulate (удалить окружающий мембрану) и промокните почки, чтобы удалить лишнюю кровь. Взвесьте почки.

4. Анализ проб

  1. Измерьте все объемы проб мочи гравиметрически с цифровой шкале, и записывать вес.
  2. Центрифуга образцы цельной крови с настольной центрифуге (1800 XG), чтобы отделить плазму. Перевести образцы плазмы малых маркированных флаконах.
  3. Анализ концентрации Na и К в моче и плазме образцов с помощью анализатора натрия / калия.
  4. Измерение FITC-инулина в плазме и моче
    1. Развести мочу до наркотиков (от 1: 200 до 1: 400) и моче после лекарственной (1:10) с HEPES буфера (500 мМ, рН 7,4).
    2. Добавить 40 мкл стандарта или пробы и 60 мкл HEPES буфера в 96-луночный планшет (один образец на лунку) и позволяют смешиваться в течение 10 мин, а покрытые алюминиевой фольгой.
    3. Создание стандартной кривой для FITC-инулин для концентрации 6,25, 12,5, 25, 50, 100, 200, 400 мкг / мл (рис 1). Определить FITC-инулин флуоресценции в образцах и стандартам с использованием планшетного с эксцитата и выбросов длины волн 485 и 538 нм, соответственно.
    4. Установите флуоресцентные значения стандартов в 4-параметра Я логистической функции регрессионного анализа. Параметры функции регрессии используются для вычисления концентрации ФИТЦ-инулин в плазме и моче образцов (таблица 1).

5. После лабораторного анализа результатов: Расчеты

  1. Рассчитать скорость потока мочи (UV; мл / мин): [объем собранной мочи (мл)] ÷ [время сбора (мин)]
  2. Рассчитать клубочковой фильтрации (СКФ; мл / мин): [Моча концентрация инулина (мкг / мл) х UV (мл / мин)] ÷ [плазменным инулин конц. (Мкг / мл)]
  3. Рассчитать Filtered нагрузки натрия (мкмоль / мин): концентрация натрия плазмы (мкмоль / мл) х СКФ (мл / мин)
  4. Рассчитать натрия экскреции Оценить (U Na V; мкмоль / мин): Моча концентрация натрия (мкмоль / мл) х UV (мл / мин)
  5. Рассчитать фракционная экскреция натрия (Na FE;%): [U Na V (мкмоль / мин)] ÷ [Отфильтрованный нагрузки натрия (мкмоль / мин)] х 100
  6. Рассчитать Отфильтровано калия Load (мкмоль / мин): концентрация калия в плазме (мкмоль / мл) х СКФ (мл / мин)
  7. Рассчитать калия экскреции Оценить (U K V; мкмоль / мин): Моча концентрация калия (мкмоль / мл) х UV (мл / мин)
  8. Рассчитать фракционная экскреция калия (K FE;%): [U К V (мкмоль / мин)] ÷ [с фильтром калия нагрузки (мкмоль / мин)] х 100

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

Мочегонное используется в лабораторной демонстрации был фуросемид, который очень быстро ингибирует реабсорбцию Na и K фильтруется почками, что приводит к увеличению Na, К и воды экскреции в течение нескольких минут введения препарата. По его основного механизма, фуросемид должна иметь м...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Соответствующий маркер для измерения СКФ должны соответствовать четырем критериям: быть свободно фильтруется в клубочках, несвязанного быть с белками плазмы, и ни поглощается ни секретируется в нефрона. Инулин фруктозы полимер, который удовлетворяет этим критериям. В результате, поч?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов. В мнения или утверждения, содержащиеся в данном документе, являются частные мнения автора и не должны быть истолкованы в качестве официальной или как отражающие взгляды Департамента армии или министерства обороны.

Благодарности

Источник финансирования для лабораторной демонстрации был NIGMS грант: GM077119. Мы благодарим д-р Джозеф Р. Хейвуд и д-ра Питера Коббет за их поддержку в коротких Couse в интегративной и органов системы фармакологии. Мы также благодарим г-жу Ханна Гарвер за техническую поддержку лаборатории демонстрации.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
5-0 Braided Silk Surgical SutureSurgical Specialties CorpSP1033
Assay Plate, 96-WellCostar 3922
Bovine Serum AlbuminSigma Chemical CoA2934-25G
CentrifugeBeckman CoulterMicroFuge 18, 357160
Conical Sample TubesDot Scientific Inc. #711-FTG
Cotton Tipped ApplicatorsSolon Manufacturing Co56200
Data Acquisition SoftwareADInstrumentsLabChart Pro 7.0
Digital Scale Denver InstrumentAPX-4001
FITC-InulinSigma Chemical CoF3272-1G
Gauze SpongesCovidien2146
Heated Surgical BedEZ-AnesthesiaEZ-212
HeparinSagnetNDC 25021-402-10
HEPESSigma Chemical CoH3375
IsofluraneAbbott Animal HealthIsoFlo, 5260-04-05
Isoflurane VaporizerEZ-AnesthesiaEZ-190F
Micro Dissecting ForcepsBiomedical Research Instruments Inc.70-1020
Microplate Reader - FluoroskanThermoScientificAscent FL, 5210460
NOVA 5+ Sodium/Potassium AnalyzerNOVA BioMedical14156
Olsen-Hegar Needle Holders with ScissorsFine Science Tools12002-12
PE-190 (for bladder catheter)BD Medical427435
Pressure Transducer ADInstrumentsMLT1199
Pyrex Culture TubesCorning Inc.99445-12
Rat Femoral Tapered Artery CatheterStrategic Applications Inc.RFA-01
Salix Furosemide 5%Intervet#34-478
Strabismus ScissorsFine Science Tools14075-11
Student Surgical ScissorsFine Science Tools91402-12
Surgical GlovesKimberly-ClarkSterling Nitrile Gloves
Syringe pumpRazel ScientificR99-E
Tissue ForcepsFine Science Tools91121-12
Tissue ScissorsGeorge Tiemann  Co105-420

5-0 Braided Silk Surgical Suture Surgical Specialties Corp SP1033 Assay Plate, 96-Well Costar  3922 Bovine Serum Albumin Sigma Chemical Co A2934-25G Centrifuge Beckman Coulter MicroFuge 18, 357160 Conical Sample Tubes Dot Scientific Inc.  #711-FTG Cotton Tipped Applicators Solon Manufacturing Co 56200 Data Acquisition Software ADInstruments LabChart Pro 7.0 Digital Scale  Denver Instrument APX-4001 FITC-Inulin Sigma Chemical Co F3272-1G Gauze Sponges Covidien 2146 Heated Surgical Bed EZ-Anesthesia EZ-212 Heparin Sagnet NDC 25021-402-10 HEPES Sigma Chemical Co H3375 Isoflurane Abbott Animal Health IsoFlo, 5260-04-05 Isoflurane Vaporizer EZ-Anesthesia EZ-190F Micro Dissecting Forceps Biomedical Research Instruments Inc. 70-1020 Microplate Reader - Fluoroskan ThermoScientific Ascent FL, 5210460 NOVA 5+ Sodium/Potassium Analyzer NOVA BioMedical 14156 Olsen-Hegar Needle Holders with Scissors Fine Science Tools 12002-12 PE-190 (for bladder catheter) BD Medical 427435 Pressure Transducer  ADInstruments MLT1199 Pyrex Culture Tubes Corning Inc. 99445-12 Rat Femoral Tapered Artery Catheter Strategic Applications Inc. RFA-01 Salix Furosemide 5% Intervet #34-478 Strabismus Scissors Fine Science Tools 14075-11 Student Surgical Scissors Fine Science Tools 91402-12 Surgical Gloves Kimberly-Clark Sterling Nitrile Gloves Syringe pump Razel Scientific R99-E Tissue Forceps Fine Science Tools 91121-12 Tissue Scissors George Tiemann  Co 105-420

Ссылки

  1. Silverthorn, D. U. Human Physiology: An integrated approach. , Pearson. (2012).
  2. Hall, J. E. Guyton and Hall Textbook of Medical Physiology. , 303-344 (2011).
  3. Levey, A. S. Measurement of renal function in chronic renal disease. Kidney International. 38 (1), 167-184 (1990).
  4. Thurau, K., Valtin, H., Schnermann, J. Kidney. Annual Review of Physiology. 30, 441-524 (1968).
  5. Shannon, J. A., Smith, H. W. The excretion of inulin, xylose, and urea by normal and phoriziniaed man. Journal of Clinical Investigation. 14, 393-401 (1935).
  6. Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. Femoral arterial and venous catheterization for blood sampling, drug administration and conscious blood pressure and heart rate measurements. Journal of Visualized Experiments. (59), (2012).
  7. Sterner, G., et al. Determining 'true' glomerular filtration rate in healthy adults using infusion of inulin and comparing it with values obtained using other clearance techniques or predictive equations. Scandinavian Journal of Urology and Nephrology. 42, 278-285 (2008).
  8. Toto, R. D. Conventional measurement of renal function utilizing serum creatinine, creatinine clearance, inulin and para-aminohippuric acid clearance. Current Opinion in Nephrology and Hypertension. 4 (6), 505-509 (1995).
  9. Matavelli, L. C., Kadowitz, P. J., Navar, L. G., Majid, D. S. Renal hemodynamic and excretory responses to intra-arterial infusion of peroxynitrite in anesthetized rats. Americam Journal of Physiology. 296, F170-F176 (2009).
  10. Davidson, W. D., Sackner, M. A. Simplification of the anthrone method for the determination of inulin in clearance studies. Journal of Laboratory, & Clinical Medicine. 62, 351-356 (1963).
  11. Symes, A. L., Gault, M. H. Assay of inulin in tissues using anthrone. Clinical Biochemistry. 8 (1), 67-70 (1975).
  12. Shalmi, M., Lunau, H. E., Petersen, J. S., Bak, M., Christensen, S. Suitability of tritiated inulin for determination of glomerular filtration rate. Americam Journal of Physiology. 260 (2 Pt 2), F283-F289 (1991).
  13. Denton, K. M., Anderson, W. P. Glomerular untrafiltration in rabbits with superficial glomeruli. EUropean Journal of Physiology. 419 (3-4), 235-242 (1991).
  14. Jobin, J., Bonjour, J. -P. Measurement of glomerular filtration rate in conscious unrestrained rats with inulin infused by implanted osmotic pumps. Americam Journal of Physiology. 248 (5 Pt 2), F734-F738 (1985).
  15. Lorenz, J. N., Gruenstein, E. A simple, nonradioactive method for evaluating single-nephron filtration rate using FITC-inulin. Americam Journal of Physiology. 276 (1 Pt 2), F172-F177 (1999).
  16. Qi, Z., et al. Serial determination of glomerular filtration rate in conscious mice using FITC-inulin clearance. Americam Journal of Physiology. 286 (3), F590-F596 (2004).
  17. Bivona, B. J., Park, S., Harrison-Bernard, L. M. Glomerular filtration rate determinations in conscious type II diabetic mice. Americam Journal of Physiology. 300 (3), F618-F625 (2011).
  18. Rosen, S. M. Effects of anaesthesia and surgery on renal hemodynamics. British Journal of Anesthesiology. 44, 252-258 (1972).
  19. Cousins, M. J. Anesthesia and the kidney. Anaesthesia and intensive care. 11 (4), 292-320 (1983).
  20. Walter, S. J., Zewde, T., Shirley, D. G. The effect of anaesthesia and standard clearance procedures on renal function in the rat. Quarterly Journal of Experimental Physiology. 74, 805-812 (1989).
  21. Rieg, T. A. A high-throughput method for measurement of glomerular filtration rate in conscious mice. Journal of Visualized Experiments. (75), (2013).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

101

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены