JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Этот протокол описывает систему брожения в партии в пробирке фекальной микробиоты человека, используя инулин (известный пребиотик и один из наиболее широко изученных модуляторов микробиоты), чтобы продемонстрировать использование этой системы в оценке эффектов конкретных вмешательства по составу фекальной микробиоты и метаболической деятельности.

Аннотация

Появление микрофлоры кишечника в ряде заболеваний человека требует прорыва новых инструментов, методов и технологий. Такие усовершенствования необходимы для расшифровки использования модуляторов микробиома для пользы для здоровья человека. Однако крупномасштабный скрининг и оптимизация модуляторов для проверки модуляции микробиома и прогнозирования связанных с этим преимуществ для здоровья может быть практически затруднена из-за необходимости большого числа животных и/или людей. С этой целью модели in vitro или ex vivo могут способствовать предварительному скринингу модуляторов микробиома. При этом, он оптимизирован и продемонстрирован ex vivo фекальные микробиоты культуры системы, которые могут быть использованы для изучения последствий различных мероприятий кишечного микробиома модуляторов, включая пробиотики, пребиотики и другие пищевые ингредиенты, в стороне от нутрицевтики и препараты, о разнообразии и составе микрофлоры кишечника человека. Инулин, один из наиболее широко изученных пребиотических соединений и модуляторов микробиома, используется в качестве примера здесь, чтобы изучить его влияние на здоровый состав фекальной микробиоты и его метаболической деятельности, таких как фекальные рН и фекальные уровни органических кислот включая лактат и короткоцепочечные жирные кислоты (СКФО). Протокол может быть полезен для исследований, направленных на оценку воздействия различных вмешательств модуляторов на профили фекальных микробиот и прогнозирование их воздействия на здоровье.

Введение

Микробиота человека представляет собой сложное сообщество, состоящее из бактерий, археев, вирусов и эукариотических микробов1, которые населяют человеческое тело внутри и снаружи. Недавние данные установили фундаментальную роль кишечной микробиоты и микрофлоры кишечника (вся коллекция микробов и их генов, найденных в желудочно-кишечном тракте человека) в различных заболеваниях человека, включая ожирение, диабет, сердечно-сосудистых заболеваний, и рак1,2,3. Кроме того, микроорганизмы, живущие в нашем кишечнике производят широкий спектр метаболитов, которые существенно влияют на наше здоровье, а также может способствовать патофизиологии нескольких заболеваний, а также различные метаболические функции4, 5. Аномальные изменения (возмущения) в составе и функции этой кишечной микробной популяции обычно называют "кишка дисбиоз". Дисбиоз обычно ассоциируется с нездоровым состоянием хозяина и, следовательно, может быть дифференцирован от нормального (гомеостатического) микробного сообщества, связанного со здоровым состоянием контроля хозяина. Специфические модели дисбиоза микрофлоры кишечника часто встречаютсяпри различных заболеваниях 1,2,3,6,7.

Брожение непереваренной пищи, особенно ферментируемых углеводов/волокон, кишечной микробиотой не только дает энергию, но и производит различные метаболиты, включая короткоцепочечные жирные кислоты (СКФА), лактат, кормуковый, углекислый газ, метана, водорода и этанола6. Кроме того, кишечная микробиота также производит ряд других биологически активных веществ, таких как фолат, биотин, триметиламин- N-оксид, серотонин, триптофан, гамма-аминобутирная кислота, допамин, норадреналин, ацетилхолин, гистамин, дезоксихоловая кислота и 4-этилфенилов сульфат. Это происходит в первую очередь за счет использования внутренних метаболических флюсов в нише хозяина-микроба,которая способствует нескольким процессам тела, метаболическим функциям и эпигенетическим изменениям 1,8,9, 10. Однако воздействие различных вмешательств на такие микробные продукты остается незаметным или неясным из-за отсутствия простых, эффективных и воспроизводимых протоколов. Состав микробиоты кишечника человека является чрезвычайно сложной и разнообразной экосистемой, и поэтому многие вопросы о его роли в здоровье человека и патологии болезней по-прежнему остаются без ответа. Влияние многих распространенных модуляторов микробиома кишечника (например, пробиотиков, пребиотиков, антибиотиков, фекальной трансплантации и инфекций) на состав и метаболические функции кишечной микробиоты остаются в значительной степени неуловимыми. Кроме того, изучение и проверка этих эффектов in vivo затруднена, особенно потому, что большинство питательных веществ и метаболитов, вырабатываемых микрофлорой кишечника, поглощаются или удаляются одновременно и быстро в кишечнике; поэтому измерение производства, количества и переработки этих метаболитов (например, SCFA) in vivo по-прежнему остается практическим вызовом. Действительно, физиологические модели, такие как животные и человеческие субъекты имеют решающее значение для определения роли микрофлоры кишечника и его модуляции на здоровье хозяина, но они не могут быть пригодны для крупномасштабного скрининга различных типов модуляторов микробиома из-за этические, денежные или временные ограничения. С этой целью, in vitro и/или ex vivo модели, такие как культивирование кишечной микробиоты in vitro, а затем вмешательство с различными модуляторами микробиоты, могут предложить возможности экономии времени и денег и, следовательно, могут позволить предварительный или крупномасштабный скрининг различные компоненты (такие как пробиотики, пребиотики и другие интервенционные соединения) для изучения/прогнозирования их воздействия на разнообразие фекальной микробиоты, состав и метаболические профили. Исследования с использованием таких in vitro и ex vivo систем микрофлоры кишечника могут способствовать дальнейшему пониманию взаимодействий хозяина-микробиома, которые способствуют здоровью и болезням хозяина, а также могут привести к поиску новых методов лечения, нацеленных на микробиом улучшить здоровье хозяина и профилактики илечения различных заболеваний 1.

Хотя системы культуры микрофлоры кишечника in vitro не могут по-настоящему воспроизвести фактические кишечные условия, несколько лабораторий пытались разработать такие модели, некоторые из которых были признаны практически осуществимыми в некоторой степени и успешно использовались для различных целей. Одной из последних моделей кишечника является симулятор кишечной микробной экосистемы человека, который имитирует весь желудочно-кишечный тракт человека, включая желудок, тонкий кишечник и различные области толстой кишки. Однако такие технически сложные модели могут быть недоступны для других научно-исследовательских учреждений во всем мире. Поэтому по-прежнему существует острая необходимость в разработке новых альтернативных моделей, которые являются относительно простыми, доступными и практичными для лабораторий, изучающих модуляторы микробиома и их воздействие на микрофлору кишечника и здоровье хозяев. Таким образом, использование in vitro (или ex vivo) фекальной системы культуры микробиоты было бы полезно для изучения последствий таких мероприятий11,12. В частности, влияние различных пребиотиков на способность брожения микробиоты с точки зрения периодических изменений в разнообразии и составе микрофлоры кишечника, фекальных рН, а также уровни микробных метаболитов, включая СКФА и лактат, могут быть изучены 13. В этом случае, используя инулин (один из наиболее широко изученных пребиотических компонентов) в качестве примера модулятора микробиома, пошаговым протоколом этой простой системы пакетной культуры ex vivo microbiota описан, чтобы продемонстрировать его использование для оценки изменения в фекальной микробиоты и микробных метаболитов после вмешательства с модуляторами микробиома.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

ВНИМАНИЕ: Проконсультируйтесь с соответствующими листами данных о материальной безопасности и следуйте инструкциям и руководящим принципам для соответствующего обучения уровня биобезопасности 2 (BSL-2). Следуйте всем меркам культивирования в рамках стандартных правил биобезопасности и используйте шкаф BSL-2 с использованием асептических условий. Кроме того, образцы фекальных препаратов различных моделей и испытуемых людей могут иметь потенциальный риск распространения микробных заболеваний. Немедленно обратитесь за медицинской помощью в случае возникновения каких-либо травм и инфекций. Кроме того, использование образцов стула для человека и животных должно быть одобрено через институциональные этические комитеты и должно соответствовать протоколам использования образцов и предметной информации.

1. Подготовка культурных сми

  1. Подготовка культурных носителей, подготовка девяти видов фондовых решений
    1. Решение А (1000 мл): Растворите 5,4 г хлорида натрия (NaCl), 2,7 г фосфата калия диводорода (KH2PO4),0,16 г дигидрата хлорида кальция (CaCl2H2O), 0,12 г г гхлорида магния (MgCl2) No 6H2O), 0,06 г тетрагидрата хлорида марганца (MnCl2No4H2O), 0,06 г г гексагидрата кобальтового хлорида (CoCl2Х6Г2O) и 5,4 г сульфата аммония (NH4)2SO4, в деионизированной воде, чтобы сделать общий объем до 1000 мл.
    2. Раствор B (1000 мл): Растворите 2,7 г фосфата водорода калия (K2HPO4) в деионизированной воде, чтобы сделать общий объем до 1000 мл.
    3. Дрейский минеральный раствор (1000 мл): Растворите 500 мг дитиленедиамин-тетраацетата дигидрата (Na2EDTA), 200 мг ферромного сульфата гептагидрата (FeSO4no7H2O), 10 мг сульфата цинка гептагидрата (ЗнСО4) No 7H2O), 3 мг марганца (II) хлорида тетрагидрата (MnCl2No 4H2O), 30 мг фосфорной кислоты (H3PO4), 20 мг CoCl2No 6H2O, 1 мг хлоридного дигидрата (CuCl2 2H2O), 2 мг никеля (II) хексагидрат хлорид (NiCl2No 6H2O) и 3 мг натрия молибдат дигидрат (Na2MOO42H2O) в деионизированной воде, чтобы сделать общий объем до 1000 мл.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Это решение является светочувствительным, поэтому убедитесь, что они хранятся в темных/черных или алюминиевых обернутых трубках/бутылках.
    4. Водорастворимый витаминный раствор (1000 мл): Растворите 100 мг гидрохлорида тиамина (Тиамин-HCl), 100 мг D-пантотеновой кислоты, 100 мг ниацина, 100 мг пиридовина, 5 мг P-аминобензойной кислоты и 0,25 мг витамина B12 1000 мл.
    5. Салат: раствор биотина (1000 мл): Растворите 10 мг фолиевой кислоты, 2 мг Д-биотина и 100 мг бикарбоната аммония (NH4HCO3) в деионизированной воде, чтобы сделать общий объем до 1000 мл.
    6. Раствор рибофлавина (1000 мл): Растворите 10 мг рибофлавина в растворе 5 мМ HEPES (1,19 г/л), чтобы сделать общий объем до 1000 мл.
    7. Гемин раствор (10 мл): Растворить 5000 мг гемина в гидроксиде натрия 10 мм (NaOH) (0,4 г/л) раствором, чтобы сделать общий объем до 10 мл.
    8. Короткоцепочечная жирная кислотная смесь (10 мл): Смешайте 2,5 мл N-валерата, 2,5 мл изовалерата, 2,5 мл изобутирата и 2,5 мл: DL-й-метилбутират.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Это решение рекомендуется использовать в дым капот, чтобы избежать запаха и паров.
    9. Резазурин (1000 мл): Растворите 1 г резазурина в деионизированной воде и сделать общий объем до 1000 мл.
  2. Средний используется для анаэробного брожения in vitro
    1. Для приготовления этого носителя смешайте 330 мл раствора А, 330 мл раствора B, 10 мл минерального раствора Trace, 20 мл водорастворитого витаминного раствора, 5 мл фолиевой кислоты: биотиновый раствор, 5 мл раствора рибофлавина; 2,5 мл раствора гемин, 0,4 мл смеси короткоцепочечных жирных кислот, 1 мл экстракта резазурина, 0,5 г дрожжевого экстракта, 4 г карбоната натрия (Na2CO3),0,5 г Cysteine HCl-HCl-H2O и 0,5 г триптикеса, и добавить 296,1 мл дистиллятов.
    2. Проверьте рН и убедитесь, что это около 7,0, если нет, настроить рН с 1 N HCl или 1 N NaOH. Стерилизовать путем вакуумной фильтрации средств массовой информации с помощью фильтра бутылки под асептической рабочей станцией.
    3. Кроме того, смешать все компоненты (кроме витамина и гемин решений) и автоклав на 121 кв в течение 20 минут и дайте ему остыть до комнатной температуры. Одновременно, фильтр-стерилизовать витаминов и hemin решений с использованием 0,22 мембранных фильтров и добавить их в автоматическом и охлажденных средств массовой информации перед дозированием.

2. Подготовка анаэробной камеры и необходимых материалов

  1. Храните все материалы, растворы и инструменты, необходимые для эксперимента по брожению внутри анаэробной камеры по крайней мере 48 ч до начала эксперимента, чтобы гарантировать, что любой остаточный кислород, связанный с инструментами и растворимым кислородом в буферах / решениях удалены и все материалы акклиматизированы к установленным анаэробным условиям.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Материалы, необходимые внутри анаэробной камеры (48 ч ранее эксперимента, чтобы начать): (i) ферментации средств; ii) анаэробное решение (подготовлено в соответствии с разделом 4.1), (iii) вихрь, iv) баланс взвешивания, (v) муслина сырные ткани, (vi) ножницы, (vii) воронка, (viii) 1.5, 2.0, 15, 50 mL трубки, (ix) pipettor (2, 20, 200 и 1,000 л) и совместимые наконечники трубы, (x) pipet и pipets (5 и 10 мл), (xi) бумажные ткани, (xii) маркеры, (xiii) трубка стоит для различных труб, (xiv) ящик для отходов, (xv) O2 индикатор и (xvi) 70% этанол спрей бутылку (дезинфицирующее средство).

3. Подготовка труб и волокон

  1. Вес 300 мг инулина и передачи в трубку 50 мл с последующим асептически добавление 26 мл брожения средств уже подготовлены и хранятся в анаэробной камере. Подготовьте одну пустую трубку для каждого типа фекального образца и экспериментальной трубки (ы) (в зависимости от количества исследуемых соединений), в тройном.
  2. Оставьте эти трубки внутри анаэробной камеры около 24 ч, чтобы позволить гидратации образцов перед началом эксперимента брожения. Убедитесь, что температура трубки составляет 37 градусов по Цельсию во время прививки, поэтому довести трубки в инкубаторе заключены в анаэробной камере.

4. Подготовка Инокулума

  1. Анаэробный раствор разбавления (не менее 48 ч до начала эксперимента брожения): Растворите 5 г NaCl, 2 г глюкозы и 0,3 г cysteine-HCl в деионизированной воде и сделайте общий объем до 1000 мл. Autoclave и хранить его внутри анаэробной камеры по крайней мере 48 ч перед использованием.
  2. Фекальный препарат инокулума (в день эксперимента брожения): Взвесить 5 г свежего фекального образца в конической трубке 50 мл, добавить анаэробный раствор разбавления для конечного объема 50 мл (1:10 w/v) и вихря в течение 15 мин или до полного однородного. Фильтр гомогенизированной смеси через 4 слоя стерильной марли (автоклавированной) и использовать его немедленно для прививки в трубках, содержащих средства массовой информации.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Фекальные образцы из группы испытуемых могут быть объединены, если экспериментальная цель состоит в том, чтобы сравнить влияние данного соединения / ингредиента на общее здоровое по сравнению с больными фекальной микробиоты в целом.

5. Брожение и отбор проб

  1. Подготовка труб в соответствии с разделом 4.2 и прививать пустые / контрольные и экспериментальные трубки с 4 мл разбавленного и фильтрованного фекалийного инокулума. Инкубировать привитые трубки при 37 градусах Цельсия внутри анаэробной камеры. Встряхните трубки один раз в час, переворачивая осторожно, чтобы повторно приостановить волокна и инокулум.
  2. Собирайте образцы так часто, как это необходимо, например, ежечасно до 0, 3, 6, 9 и 24 ч во время брожения, взяв образец аликвота 2 мл в 2 мл трубки из соответствующих брожения труб.
  3. Измерьте рН aliquots с помощью лабораторного счетчика рН (путем прямого вставки электрода рН в образец); центрифуга оставшийся образец на 14000 х г в течение 10 мин при 4 градусах Цельсия. Немедленно заморозить супернатант и гранулы в жидком азоте, а после оснастки замораживания, хранить супернатант для анализа SCFAs и гранулы для анализа микробиома при -80 градусов по Цельсию.

6. Короткоцепочечные жирные кислоты (SCFAs) и Количественная оценка Лактата

ПРИМЕЧАНИЕ: SCFAs и лактат в супернатант культуры микробиома могут быть измерены точно в соответствии с методами, подробно описанными в другом месте13,14,15,16.

  1. Кратко, оттепель оснастки замороженных супернациантов, полученных в разделе 5 из контрольного и очистных образцов на льду и выполнять все дальнейшие этапы обработки на льду. Фильтр супернатанта через 0,45 мембранного фильтра и использовать безклеточные образцы для измерения концентраций SCFAs и лактата с помощью системы HPLC с детектором DAD на 210 нм, оснащенный колонкой HPX-87H. Используйте впрыски объем 10 л для каждого образца и используйте H2SO4 (0.005 N), чтобы утереть столбец при скорости потока 0,6 мл/мин при 35 градусах Цельсия.

7. Фекальный анализ микробиома

ПРИМЕЧАНИЕ: Выполните анализ микробиома после методов и конвейера подробновдругом месте 7,13,14,17.

  1. Кратко, извлечь геномную днк из приблизительно 200 мг фекальных гранул суспензии с помощью фекального комплекта экстракции ДНК13.
  2. Усиль гиперизменную область бактериального гена 16S rRNA с помощью штрих-кодированных грунтовок в рамках метода, описанного в другом месте13, используя грунтовые последовательности, описанные в протоколе проекта микробиома Земли18.
  3. Очистите полученные амобъективы с помощью магнитных бусин октворений и количественно очищайтесь пикогрином или эквивалентным методом. Объедините очищенные продукты ПЦР в равной концентрации моляров и последовательности на секвенсоре13.
  4. Обработка результирующих последовательностей для де-мультиплексирования, качественной фильтрации и кластеризации, таксономического назначения и редефакции, а также анализа вниз по течению с помощью количественного анализа в микробной экологии (КИИМЕ) программного обеспечения в зависимости от описанных методов Капорасо и др.19.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

Протокол используется для демонстрации влияния специфического пребиотика (т.е. инулина на состав микробиоты и метаболическую активность с точки зрения изменений в фекальной рН и концентрации лактата и СКФА в фекалиях здоровых людей различные временные точки после л?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Представленная здесь модель брожения фекальных ферментаций в пробирке является простой односерийной моделью, чтобы приблизить воздействие различных субстратов и микробных штаммов (например, пребиотиков и пробиотиков) на состав фекальной микробиоты человека, а также ее метаболическ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Авторы с благодарностью признают финансовую поддержку со стороны Центра по диабету, ожирению и метаболизму и клинического и трансляционного научного центра, Школы медицины Уэйк-Форест, Министерства обороны (Грант номер: W81XWH-18-1-0118), Кермит Гленн Филлипс II Кафедра сердечно-сосудистой медицины; Национальные институты здравоохранения финансировали Центр пожилых американцев Клода Д. Пеппера (финансируется P30AG122232); R01AG18915; R01DK114224 и Клинический и трансляционный научный центр (Клинический научно-исследовательский отдел, финансируемый UL1TR001420), также с благодарностью признаны. Мы также благодарим добровольцев за предоставление фекальных образцов, и других наших членов лаборатории за их техническую помощь в ходе этого эксперимента.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Ammonium Bicarbonate (NH4HCO3)Sigma-Aldrich217255
Ammonium Sulfate (NH4)2SO4 TGIC2388Toxic
Calcium Chloride Dihydrate (CaCl2•2H2O)Sigma-AldrichC3306Irritating
Cobaltous Chloride Hexahydrate (CoCl2•6H2O)Sigma-Aldrich255599
Cupric Chloride Dihydrate (CuCl2•2H2O)Acros organics2063450000Toxic, Irritating
Cysteine-HClSigma-AldrichC121800
D-biotinSigma-AldrichB4501
D-Pantothenic acidAlfa AesarA16609
Disodium Ethylenediaminetetraacetate Dihydrate (Na2EDTA)Biorad1610729
DL-α-methylbutyrateSigma-AldrichW271918
Ferrous Sulfate Heptahydrate (FeSO4•7H2O)Sigma-AldrichF8263Toxic
Folic acidAlfa AesarJ62937
GlucoseSigma-AldrichG8270
HeminSigma-AldrichH9039
HepesAlfa AesarA14777
IsobutyrateAlfa AesarL04038
IsovalerateAlfa AesarA18642
Magnesium Chloride Hexahydrate (MgCl2•6H2O)Sigma-AldrichM8266
Manganese Chloride Tetrahydrate (MnCl2•4H2O)Sigma-Aldrich221279
Niacin (Nicotinic acid)Sigma-AldrichN4126
Nickel(Ii) Chloride Hexahydrate (NiCl2•6H2O)Alfa AesarA14366Toxic
N-valerateSigma-Aldrich240370
P-aminobenzoic acidMP China102569Toxic, Irritating
Phosphoric Acid (H3PO4)Sigma-AldrichP5811
Potassium Dihydrogen Phosphate (KH2PO4)Sigma-AldrichP5504
Potassium Hydrogen Phosphate (K2HPO4)Sigma-Aldrich1551128
PyridoxineAlfa AesarA12041
ResazurinSigma-AldrichR7017
RiboflavinAlfa AesarA11764
Sodium carbonate (Na2CO3)Sigma-Aldrich1613757
Sodium chloride (NaCl)Fisher BioReagents7647-14-5
Sodium hydroxide (NaOH)Fisher ChemicalsS320
Sodium Molybdate Dihydrate (Na2MoO4•2H2O)Acros organics206375000
Thiamine Hydrochloride (Thiamin-HCl)Acros organics148991000
TrypticaseBD Biosciences211921
Vitamin B12Sigma-AldrichV2876
Yeast extractSigma-Aldrich70161
Zinc Sulfate Heptahydrate (ZnSO4•7H2O)Sigma-AldrichZ0251
0.22 µm membrane filter
AMPure magnetic purification beadsAgencourt
Anaerobic chamber with incubatoreForma anaerobic system, Thermo Scientific, USA
Bottle filterCorning
Cheesecloth
Illumina MiSeq sequencerMiseq reagent kit v3
pH meter
Qiagen PowerFecal kitQiagen
Quantitative Insights into Microbial Ecology (QIIME) software
Qubit-3 fluorimeterInVitrogen
VortexThermoscientific
Waters-2695 Alliance HPLC systemWaters Corporation

Ссылки

  1. Shreiner, A. B., Kao, J. Y., Young, V. B. The gut microbiome in health and in disease. Current Opinion in Gastroenterology. 31 (1), 69-75 (2015).
  2. Xu, Z., Knight, R. Dietary effects on human gut microbiome diversity. British Journal of Nutrition. 113, 1-5 (2015).
  3. Jiang, C., Li, G., Huang, P., Liu, Z., Zhao, B. The gut microbiota and Alzheimer’s disease. Journal of Alzheimers Disease. 58 (1), 1-15 (2017).
  4. Clemente, J. C., Ursell, L. K., Parfrey, L. W., Knight, R. The impact of the gut microbiota on human health: an integrative view. The Journal Cell. 148 (6), 1258-1270 (2012).
  5. Yadav, H., Jain, S., Marotta, F. Probiotics mediated modulation of gut flora might be biotherapeutical approach obesity and type 2 diabetes. Metabolomics : Open Access. 1 (3), 1-3 (2011).
  6. Ahmadi, S., et al. Dietary Polysaccharides in the Amelioration of Gut Microbiome Dysbiosis and Metabolic Diseases. Obesity and Control Theries: Open Access. 4 (3), (2017).
  7. Nagpal, R., et al. Obesity-Linked Gut Microbiome Dysbiosis Associated with Derangements in Gut Permeability and Intestinal Cellular Homeostasis Independent of Diet. Journal of Diabetes Research. , 1-9 (2018).
  8. Paul, B., et al. Influences of diet and the gut microbiome on epigenetic modulation in cancer and other diseases. Journal of Clinical Epigenetics. 7 (1), 112(2015).
  9. O’mahony, S., Clarke, G., Borre, Y., Dinan, T., Cryan, J. Serotonin tryptophan metabolism and the brain-gut-microbiome axis. Journal of Behavioural Brain Research. 277, 32-48 (2015).
  10. Sharon, G., et al. Specialized metabolites from the microbiome in health and disease. Journal of Cell Metabolism. 20 (5), 719-730 (2014).
  11. Faber, T. A., Bauer, L. L., Price, N. P., Hopkins, A. C., Fahey, G. C. In vitro digestion and fermentation characteristics of temulose molasses, a coproduct of fiberboard production, and select temulose fractions using canine fecal inoculum. Journal of Agricultural Food Chemistry. 59 (5), 1847-1853 (2011).
  12. Bourquin, L. D., Titgemeyer, E. C., Fahey, G. C. Vegetable fiber fermentation by human fecal bacteria: cell wall polysaccharide disappearance and short-chain fatty acid production during in vitro fermentation and water-holding capacity of unfermented residues. Journal of Nutrition. 123 (5), 860-869 (1993).
  13. Nagpal, R., et al. Human-origin probiotic cocktail increases short-chain fatty acid production via modulation of mice and human gut microbiome. Scientific Reports. 8 (1), 12649(2018).
  14. Nagpal, R., et al. Comparative microbiome signatures and short-chain fatty acids in mouse, rat, non-human primate and human feces. Frontiers in Microbiology. 9, 2897(2018).
  15. Thangamani, S., Guinan, J., Wang, S., Yadav, H. Antibiotic-induced decreases in the levels of microbial-derived short-chain fatty acids promote gastrointestinal colonization of Candida albicans. bioRxiv. , 428474(2018).
  16. Ahmadi, S., et al. Prebiotics from acorn and sago prevent high-fat diet-induced insulin resistance via microbiome-gut-brain axis modulation. The Journal of Nutritional Biochemistry. , (2019).
  17. Nagpal, R., et al. Gut Microbiome Composition in Non-human Primates Consuming a Western or Mediterranean Diet. Frontiers in Nutrition. 5, 28(2018).
  18. Caporaso, J. G., et al. Ultra-high-throughput microbial community analysis on the Illumina HiSeq and MiSeq platforms. ISME Journal. 6 (8), 1621-1624 (2012).
  19. Caporaso, J. G., et al. QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data. Nature Methods. 7 (5), 335-336 (2010).
  20. Garcia-Villalba, R., et al. Alternative method for gas chromatography-mass spectrometry analysis of short-chain fatty acids in faecal samples. Journal of Seperation Science. 35 (15), 1906-1913 (2012).
  21. Lee, C. H., et al. Frozen vs Fresh Fecal Microbiota Transplantation and Clinical Resolution of Diarrhea in Patients With Recurrent Clostridium difficile Infection: A Randomized Clinical Trial. JAMA. 315 (2), 142-149 (2016).
  22. Chen, M. -H., et al. In vitro fermentation of xylooligosaccharides produced from Miscanthus× giganteus by human fecal microbiota. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 64 (1), 262-267 (2015).
  23. Cook, S., Sellin, J. Short chain fatty acids in health and disease. Alimentary Pharmacology & Therapeutics. 12 (6), 499-507 (1998).
  24. Rastelli, M., Knauf, C., Cani, P. D. Gut microbes and health: a focus on the mechanisms linking microbes, obesity, and related disorders. Obesity. 26 (5), 792-800 (2018).
  25. Zou, J., et al. Fiber-mediated nourishment of gut microbiota protects against diet-induced obesity by restoring IL-22-mediated colonic health. Cell Host & Microbe. 23 (1), e44 41-53 (2018).
  26. Dinan, T. G., Cryan, J. F. Gut–brain axis in 2016: Brain–gut–microbiota axis—mood, metabolism and behaviour. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 14 (2), 69(2017).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

149in vitro

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены