Ошибка: забор крови из подключичных вен у крыс, находящихся в сознании

Резюме

Исправление было выдано для: забора крови из подключичных вен у крыс, находящихся в сознании. Обновлен раздел «Обсуждение».

Аннотация

Это исправляет статью 10.3791/66075

протокол

Исправление было выдано для: забора крови из подключичных вен у крыс, находящихся в сознании. Обновлен раздел «Обсуждение».

Третий абзац в разделе «Обсуждение» был обновлен с:

В этом исследовании неудачный забор крови в основном происходил на 4-е сутки, что может быть связано с повторными пункциями, вызывающими повреждение вен. Во время первого забора крови было заметное ощущение проникновения, когда игла проткнула кровеносный сосуд. По мере увеличения количества образцов крови это ощущение уменьшалось, что продлевало сбор крови и увеличивало частоту неудач. Поэтому после каждого забора крови необходим гемостаз под местным давлением, чтобы способствовать восстановлению сосудов и предотвратить образование локальной гематомы. Также рекомендуется попробовать более тонкую иглу, например, инсулиновую иглу, для забора крови. После неудачного прокола с одной стороны, место прокола следует наложить компрессию, и крысе следует дать отдохнуть в течение нескольких минут, прежде чем перейти на контралатеральную сторону для забора крови. Для интенсивного забора крови, необходимого для фармакокинетических экспериментов, лучше поочередно брать кровь из левой и правой подключичной вены. В тех случаях, когда она действительно недоступна, могут быть дополнены другие методы забора крови.

Кому:

В нашем исследовании основной случай недостаточности забора крови был на 4-й день, что может быть связано с повреждением вен, вызванным повторными пункциями. Повторные проколы могут привести к повреждению сосудистой стенки и спровоцировать воспалительную реакцию, в результате чего сосудистая стенка утолщается и затвердевает, и даже вызывает сужение сосудов. Если гемостаз после пункции недостаточен, экстравазированная кровь может в дальнейшем вызвать отек тканей и воспаление, что впоследствии приведет к образованию рубцовой ткани. В эти рубцовые ткани трудно проникнуть, а также они могут растягивать и заставлять кровеносные сосуды смещаться, что затрудняет их обнаружение и прокол. В нашем исследовании для забора крови использовался шприц весом 26 г (0,45 мм), который хорош по сравнению с человеческими венами, но все же наносит значительный ущерб венам крыс. Об этом свидетельствует четкое ощущение проникновения при прохождении иглы через сосуд во время первого забора крови, которое уменьшается по мере увеличения количества заборов крови, с более длительным временем забора крови и более высокой частотой неудач. Поэтому мы рекомендуем использовать более тонкую иглу инсулина для забора крови, и после забора крови следует прикладывать адекватное давление, чтобы предотвратить образование гематомы, а также проводить поочередные заборы крови, чтобы обеспечить достаточное восстановление вен. По нашему опыту, хорошо обученный флеботомист может использовать иглу 26G для поочередного забора крови из двусторонних подключичных вен одной и той же крысы 8-10 раз в течение 24 часов, со средним интервалом 2-3 часа между каждым забором крови. Тем не менее, максимальное количество заборов крови, которое может выдержать крыса, период восстановления и цикл забора крови могут зависеть от используемого игольчатого калибра, интервалов забора крови, требуемых различными экспериментами, и квалификации флеботомиста. Эти факторы нуждаются в дальнейшем изучении в будущих исследованиях. Для интенсивного забора крови, необходимого для фармакокинетических экспериментов, лучше поочередно брать кровь из левой и правой подключичной вены. В тех случаях, когда она действительно недоступна, могут быть дополнены другие методы забора крови.