АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Фотолюминесценция является одним из наиболее эффективных механизмов аутентификации, используемых на сегодняшний день. Использование и улучшение материалов природного происхождения с присущими им фотолюминесцентными свойствами и включение их в тканевые подложки может привести к разработке экологичного, устойчивого и функционального текстиля для интеллектуальных приложений.

Аннотация

Красители для защитной маркировки играют ключевую роль в обеспечении целостности продукции в различных областях, таких как текстиль, фармацевтика, пищевая промышленность и другие. Однако большинство коммерческих красителей, используемых в качестве защитной маркировки, являются дорогостоящими и могут содержать токсичные и вредные вещества, представляющие опасность для здоровья человека. Куркумин, природное фенольное соединение, содержащееся в куркуме, обладает отчетливыми фотолюминесцентными свойствами наряду с ярким желтым цветом, что делает его потенциальным кандидатом для приложений аутентификации. Это исследование демонстрирует экономически эффективный и экологичный подход к разработке усиленных фотолюминесцентных излучений куркуминовых красителей для проверки подлинности текстиля. Куркумин экстрагировали из C. longa с помощью метода ультразвуковой экстракции растворителем. Экстракт был покрыт окунанием и окрашен в текстильные подложки. Хитозан был введен в качестве посмертного агента для стабилизации куркумина и в качестве косенсибилизатора. Косенсибилизация куркумина с хитозаном запускает передачу энергии для усиления его люминесцентной интенсивности. Пик поглощения в УФ-видимом диапазоне на длине волны 424 нм связан с характерным поглощением куркумина. Измерения фотолюминесценции показали широкое излучение, достигающее пика на длине волны 545 нм, со значительным усилением, связанным с передачей энергии, индуцированной хитозаном, что свидетельствует о большом потенциале в качестве фотолюминесцентного красителя природного происхождения для приложений аутентификации.

Введение

Контрафакт считается бичом в широко распространенных отраслях промышленности по всему миру. Стремительный всплеск контрафактной продукции на рынке вызывает экономический хаос, который препятствует существованию основного изобретателя 1,2,3,4,5,6. В 2020 г. это было выдвинуто на первыйплан7 в связи с сохраняющейся озабоченностью по поводу появления контрафактной продукции, о чем свидетельствует тенденция к увеличению числа публикаций, содержащих в своих названиях ключевое слово «антиконтрафакт» или «контрафакт». С момента последнего сообщения в 2019 году наблюдается значительный рост публикаций, связанных с контрафактной продукцией, что свидетельствует о том, что предпринимаются значительные усилия по борьбе с производством и распространением поддельных товаров. С другой стороны, это также может быть довольно тревожным, учитывая, что оно означает прогресс индустрии контрафактной продукции, которая, как ожидается, сохранится, если не принять эффективные меры. Текстильная промышленность не изолирована от этой проблемы, поскольку наличие контрафактной текстильной продукции серьезно повлияло на средства к существованию настоящих продавцов, производителей и ткачей, среди прочих 3,8. Например, текстильная промышленность в Западной Африке долгое время считалась одним из ведущих экспортных рынков в мире. Тем не менее, сообщалось, что примерно 85% доли рынка приходится на контрабандный текстиль, который нарушает права на товарные знаки западноафриканского текстиля. О последствиях контрафактной продукции также сообщалось на других континентах, таких как Азия, Америка и Европа, что указывает на то, что этот кризис достиг неконтролируемого уровня и представляет собой значительную угрозу для и без того испытывающей трудности текстильнойпромышленности.

С быстрым развитием науки, технологий и инноваций исследователи взяли на себя роль разработчиков функциональных материалов для борьбы с подделками. Использование скрытых технологий является одним из наиболее распространенных и эффективных подходов к противодействию производству мошеннических товаров. Он включает в себя использование фотолюминесцентных материалов в качестве защитных красителей, которые демонстрируют специфическое световое излучение при облучении различными длинами волн13,14. Однако некоторые фотолюминесцентные красители, доступные на рынке, могут оказывать токсичное воздействие при высоких концентрациях, тем самым представляя угрозу для здоровья человека и окружающей среды15,16.

Куркума (Curcuma longa) является важным растением, используемым во множестве применений, таких как краски, ароматизаторы, лекарства, косметика и красители для тканей17. В корневищах присутствуют встречающиеся в природе фенольные химические соединения, называемые куркуминоидами. Эти куркуминоиды включают куркумин, деметоксикуркумин и бисдеметоксикуркумин, среди которых куркумин является основным компонентом, ответственным за яркую желто-оранжевую окраску и свойства куркумы18. Куркумин, также известный как 1,7-бис(4-гидрокси-3-метоксифенил)-1,6-гептадиен-3,5-дион19,20 с эмпирической формулой C21H20O6, привлек значительное внимание в биомедицинской и фармацевтической областях благодаря своим антисептическим, противовоспалительным, антибактериальным и антиоксидантным свойствам 17,18,21,22,23. Интересно, что куркумин также обладает спектральными и фотохимическими характеристиками. Особого внимания заслуживают его интенсивные фотолюминесцентные свойства при воздействии ультрафиолетовых (УФ) возбуждений, которые были изучены лишь в нескольких исследованиях 19,24,25. Учитывая эти характеристики, в тандеме с его гидрофобной природой и нетоксичными свойствами, куркумин становится идеальным красителем для маркировки подлинности.

Об извлечении куркумина из куркумы впервые сообщалось в начале 1800-х годов. За последние столетия было разработано и усовершенствовано множество методов и методов экстракции для достижения более высокого выхода 26,27,28,29,30,31,32,33. Традиционная жидкостная экстракция является широко используемым подходом, поскольку в ней используются органические растворители, такие как этанол, метанол, ацетон и гексан, среди прочих, для выделения куркумина из куркумы34,35. Этот метод развивался путем модификаций в сочетании с более совершенными методами, такими как микроволновая экстракция (MAE)18,36,37, экстракция по Сокслету 38,39, ферментативная экстракция (EAE)39,40 и ультразвуковая экстракция36, в том числе для повышения урожайности. Как правило, метод экстракции растворителем применяется для экстракции натуральных красителей из-за его универсальности, низкого энергопотребления и экономической эффективности, что делает его идеальным для масштабируемых отраслей, таких как текстильная промышленность.

Куркумин был интегрирован в качестве натуральных красителей для текстиля из-за его ярко выраженного желтого оттенка. Однако плохая адсорбция природных красителей в текстильных волокнах представляет собой проблему, препятствующую их коммерческой жизнеспособности41. Протравы, такие как металлы, полисахариды и другие органические соединения, служат общими связующими веществами для усиления сродства натуральных красителей к ткани. Хитозан, полисахарид, получаемый из ракообразных, широко используется в качестве альтернативного травильного агента из-за его обилия в природе, биосовместимости и долговечности стирки42. В этом исследовании сообщается о простом и прямолинейном подходе к подготовке маркировки подлинности на основе куркумина. Сырые экстракты куркумина получали методом ультразвуковой экстракции растворителем. Фотолюминесцентные свойства экстрагированного куркумина были всесторонне исследованы на текстильных подложках и дополнительно усилены введением хитозана в качестве травильного агента. Это свидетельствует о значительном потенциале фотолюминесцентного красителя природного происхождения для приложений аутентификации.

протокол

1. Экстракция куркумина

  1. Взвесьте 3 г порошка C. longa в центрифужной пробирке объемом 50 мл.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Центрифужная пробирка объемом 50 мл использовалась для облегчения процесса центрифугирования и обработки экстракции в одном контейнере.
  2. Добавьте 38 мл этанола (AR, 99%) в центрифужную пробирку. Осторожно встряхните пробирку, чтобы обеспечить тщательное смешивание этанола с порошком C. longa .
  3. Обрабатывайте трубку ультразвуком в течение 30 минут в обычном звуковом режиме и высокой интенсивности экстракции.
  4. Чтобы отделить твердые материалы, центрифугируйте пробирку при 4430 x g в течение 10 минут. Перед использованием центрифуги откройте пробирку и снова закройте ее, чтобы разгерметизировать и предотвратить утечку.
  5. Сцеживайте жидкость для сбора надосадочной жидкости и храните ее в сухих условиях окружающей среды. Надосадочная жидкость содержит экстракт куркумина в растворителе этанола. Важно держать контейнер закрытым, чтобы предотвратить утечку растворителя.

2. Инфракрасная характеристика экстракта C. longa с преобразованием Фурье (ИК-Фурье)

ПРИМЕЧАНИЕ: Инфракрасный спектрофотометр с затухающим полным коэффициентом отражения и преобразованием Фурье (ATR-FTIR) эксплуатировался в соответствии со стандартными процедурами, приведенными в руководстве пользователя.

  1. Перед измерением ИК-спектров необходимо задать параметры измерения. Используйте опцию «Измерение», перейдите на вкладку «Дополнительно» и установите параметры для образца и фонового сканирования на 40 сканирований, разрешение сканирования на4 см 1 и диапазон от 4000 до 400 см-1.
  2. Очистите кристалл ATR пропан-2-олом (99,8%). После очистки переключитесь на Basic.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Фоновое сканирование необходимо для устранения помех окружающей среды, гарантируя, что ИК-спектры представляют исключительно анализируемый образец. Фоновые измерения выполняются только перед началом работы прибора. Очистка кристалла ATR всегда должна проводиться перед каждым новым измерением.
  3. С помощью пипетки Пастера нанесите 0,3 мл сырого экстракта C. longa на кристалл ATR и дайте ему высохнуть в течение 3–5 минут, чтобы удалить интерференцию этанола. По мере высыхания этанола экстракт накапливается в кристалле, что снижает коэффициент пропускания.
  4. В программном обеспечении нажмите кнопку Measure > Advanced , чтобы задать имя файла. После присвоения имени образцу перейдите на вкладку «Основные » и измерьте коэффициент пропускания ИК-излучения высушенного экстракта.
  5. Повторяйте шаги 2.3 и 2.4 до 3 раз или до тех пор, пока разрешение спектров не улучшится.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Улучшенное разрешение определяется уменьшением коэффициента пропускания в спектре.
  6. После завершения считывания очистите кристалл ATR с помощью 99% этанола и безворсовых салфеток. Затем очистите предметный столик НПВО с помощью пропан-2-ола.

3. УФ-видимое измерение экстракта C. longa

ПРИМЕЧАНИЕ: УФ-спектрофотометр эксплуатировался в соответствии со стандартными процедурами, приведенными в руководстве пользователя.

  1. Перед измерением образцов дайте прибору нагреться в течение 15–30 минут. Это стабилизирует источник света и детектор, тем самым обеспечивая воспроизводимость показаний. Заполните эталонную ячейку этанолом.
  2. Перед измерением спектров поглощения задайте параметры измерения. Используйте параметр «Настройка», перейдите на вкладку «Кэри » и установите время сканирования на 0,1 с, интервал данных на 1 нм и скорость сканирования на 600 нм/мин. Наконец, установите диапазон от 200 нм до 700 нм.
  3. Приготовьте 25 мл разведения экстракта C. longa в диапазоне от 1:1000 до 1:100 с шагом 1:100, используя этанол в качестве растворителя.
  4. Перелейте примерно 3,5 мл разбавленного C. longa в кварцевую кювету с помощью пипетки Пастера. Для облегчения очистки после каждого измерения образца начинайте с разбавления 1:1000 и увеличивайте до 1:100.
  5. Измерьте впитываемость экстракта, как описано ниже.
    1. Очистите кювету этанолом и повторите измерения для других разведений.
    2. Чтобы обеспечить точность впитывания, тщательно промойте кюветы разбавленным экстрактом перед переносом исследуемого раствора.
  6. Повторите шаги 3.4-3.5.2 для других концентраций.

4. Измерение фотолюминесценции экстракта C. longa

ПРИМЕЧАНИЕ: Работа флуоресцентного спектрометра проводилась в соответствии со стандартными процедурами, приведенными в руководстве пользователя.

  1. Перед измерением образцов дайте прибору нагреться в течение 15–30 минут. Это стабилизирует источник света и детектор, тем самым обеспечивая воспроизводимость каждого измерения.
  2. Перед измерением флуоресцентных спектров сначала установите параметры измерения. Нажмите кнопку Measure (Измерить ) и установите время интегрирования на 0,1 с, шаг — на 1 нм, а ширину щели — на 1 нм. Диапазон измерений может варьироваться в зависимости от источника возбуждения или излучения.
  3. С помощью пипетки Пастера осторожно перенесите около 3,5 мл разбавленного C. longa в кварцевую кювету. Для облегчения очистки после измерения образца начинайте измерение в диапазоне от 1:1000 до 1:100.
  4. Измерьте излучение экстракта с помощью источника возбуждения с длиной волны 365 нм. Установите диапазон излучения от 380 нм до 625 нм.
  5. Используя длину волны с наибольшим излучением из шага 4.4, измерьте спектр возбуждения образца. Установите нижний предел диапазона возбуждения равным 330 нм и рассчитайте верхний предел, используя контролируемую длину волны излучения минус 15 нм. Припуск 15 нм гарантирует, что рассеяние первого порядка в спектрах не будет наблюдаться.
  6. Используя длину волны с наибольшим возбуждением из шага 4.5, снова измерьте спектр излучения образца. Рассчитайте нижний предел дальности излучения, используя длину волны возбуждения плюс 15 нм. Установите верхний предел на 625 нм.
  7. Измерьте матрицу излучения-возбуждения экстракта C. longa , как описано ниже.
    1. Для согласованности установите диапазон измерения возбуждения от 330-435 нм и излучения до 450-650 нм. Поддерживайте эти параметры для всех концентраций.
    2. Очистите кювету этиловым спиртом и повторите измерения для других разведений. Для обеспечения точности измерений флуоресценции перед переносом испытуемого раствора следует промыть кюветы разбавленным экстрактом.

5. Измерение фотолюминесценции хитозана

  1. Приготовьте 300 мл 1% мас.раствора хитозана. Смешайте 3 г хитозана с 1% раствором уксусной кислоты (99,8%) до достижения 300 мл. Перемешивайте раствор в течение 24 ч или до его гомогенизации.
  2. Измерьте матрицу излучения-возбуждения хитозана, как описано ниже.
    1. Для хитозана используют следующие параметры измерения:
      Ширина щели: 1 нм (как излучение, так и возбуждение)
      Время интеграции: 0,1 с
      Диапазон излучения: 300-370 нм
      Диапазон возбуждения: 385-450 нм
  3. Измерьте ИК-спектры тканей, как описано ниже.
    1. Поместите мультитестерную ткань (Fabric #1) над кристаллом ATR. Мультитестер содержит шесть типов ткани, показанных на рисунке 1A. При измерении с помощью ATR-FTIR убедитесь, что весь кристалл ATR покрыт образцом. Ткань должна полностью соприкасаться с кристаллом ATR, потянув за рычаг прижимного аппарата для отбора образцов. Это уменьшит коэффициент пропускания, который он собирает.
    2. Измерьте коэффициент пропускания ИК-излучения тканей. Повторите измерение на других тканях.

6. Крашение тканей

  1. Взвесьте ткани, чтобы определить количество красителя и хитозановой отделки, которые будут использоваться.
  2. Готовят растворы экстракта C. longa в разведении 1:1, 1:10, 1:50, 1:100, 1:500 и 1:1000 с использованием 99% этилового спирта.
  3. Ткани окрашивают разбавленным экстрактом C. longa в соотношении материал и раствор 1:25 в течение 1 ч путем замачивания ткани в растворах.
  4. Повесьте ткани сушиться. Прополощите ткани водой из-под крана и повесьте сушиться.
  5. Проведите отделку ткани, как описано ниже.
    1. Окрашенные ткани замочить 1%-ным раствором хитозана в соотношении материала к раствору 1:40 в течение 1 ч, замочив ткань в растворе.
    2. Повесьте ткани сушиться. Прополощите ткани водой из-под крана и повесьте сушиться.

7. Фотолюминесцентные измерения окрашенных тканей

  1. Поместите ткань в держатель для образцов. При использовании мультитестеров AATCC убедитесь, что тестируемая ткань размещена в середине окна и в пределах зоны измерения нет других тканей. Чтобы зафиксировать положение тканей, используйте в качестве опоры стеклянные предметные стекла. Пример позиционирования ткани показан на рисунке 1.
  2. Для измерения фотолюминесценции ткани установите время интегрирования 0,1 с, шаг 1 нм и ширину щели 0,6 нм. Измерьте флуоресценцию окрашенных тканей при возбуждении 365 нм. Аналогично измерительным растворам, установите диапазон излучения 380-625 нм.
  3. Используя длину волны с наибольшим излучением из шага 5.3, измерьте спектр возбуждения образца. Установите нижний предел диапазона возбуждения равным 330 нм и рассчитайте верхний предел диапазона возбуждения, используя контролируемую длину волны излучения минус 15 нм. Припуск 15 нм гарантирует, что рассеяние первого порядка в спектрах не будет наблюдаться.
  4. Используя длину волны с наибольшим возбуждением из шага 7.3, измерьте спектр излучения образца. Рассчитайте нижний предел дальности излучения, используя длину волны возбуждения плюс 15 нм. Установите верхний предел на 625 нм.
  5. Повторите этап измерения 7.1–7.4 для других типов образцов тканей и с другими концентрациями.
  6. Измерьте спектры излучения тканей, окрашенных экстрактом C. longa в соотношении 1:50, используя длину волны возбуждения 365 нм.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Ткани, окрашенные разбавлением 1:50, используются для анализа эффектов отделки хитозаном, так как они демонстрируют самую высокую фотолюминесценцию. Аналогично шагу 4.4, установите диапазон излучения от 380 до 625 нм.
  7. Соберите спектрохимические данные для интерпретации.

8. Морфологический анализ тканей

ПРИМЕЧАНИЕ: Морфологический анализ тканей включает в себя два типа освещения: белый свет и ультрафиолетовый свет с длиной волны 365 нм. Выбор источника света может показать, как краситель и отделка прилипают к ткани.

  1. Поскольку в микроскопе отсутствует источник ультрафиолетового света, используйте ручной источник ультрафиолетового света с длиной волны 365 нм. Надежно закрепите источник света, чтобы сохранить постоянное положение, не влияя на процесс визуализации. Используйте зажим, прикрепленный к железной подставке, чтобы установить ультрафиолетовый свет с длиной волны 365 нм, направив его на столик микроскопа со стереозумом.
  2. Положите ткань на сцену и откройте источник белого света. С помощью ручки грубой настройки установите минимальное увеличение зума и найдите целевую область изображения. Постепенно увеличивайте увеличение до 4x и уточняйте его с помощью ручки точной настройки.
  3. Используйте встроенное программное обеспечение для работы с изображениями, чтобы вставить масштабную линейку и сделать снимок.
  4. Чтобы обеспечить единообразие изображения, настройте параметры экспозиции следующими значениями: установите компенсацию экспозиции на 100, время экспозиции на 100 мс и усиление на 20. Кроме того, отрегулируйте значения оттенка на красный: 27, зеленый: 32 и синий: 23. Другие указанные параметры, требующие настройки, включают резкость: 75, шумоподавление: 35, насыщенность: 50, гамма: 6 и контрастность: 50.
  5. Выключите источник белого света и включите источник света с длиной волны 365 нм. Захват изображения с теми же параметрами изображения.
  6. Повторяйте шаги с 8.3 по 8.6 для всех типов тканей и условий (заготовки, крашеные, только отделочные, окрашенные и готовые) до тех пор, пока не будут получены изображения всех тканей. Всего должно получиться 48 изображений тканей.

Результаты

ИК-Фурье анализ волокон определяет химическую структуру каждого волокна, представленного в мультитестерных тканях #1. ИК-Фурье спектроскопия была использована для характеристики функциональных групп, присутствующих в каждом компоненте мультитестовой ткани. Как показано на допол...

Обсуждение

Отделка текстиля является распространенной практикой в промышленности для того, чтобы придать тканям дополнительные функциональные свойства, делая их более подходящими для конкретных применений 45,47,48. В этом исследовании экстрагиро?...

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа проводится при поддержке Департамента науки и технологий Филиппинского научно-исследовательского института текстиля в рамках проекта DOST Grants-in-Aid (DOST-GIA) под названием «Скрытые технологии на пути к устойчивому развитию и защите текстильных секторов Филиппин в рамках программы «Цифровизация филиппинской промышленности ручного ткачества».

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
(Curcumin) C. longa, spray dried N/AN/ANaturally Sourced
100 mL Graduated Cylindern/a
10 mL Serological Pipetten/a
200 mL Beakern/a
365 nm UV LightAloneFireSV004 LG
50 mL Centeifuge Tuben/a
AATCC Multitester FabricTestfabrics, Inc.401002AATCC Multifiber test fabric # 1 precut pieces of 2 X 2 inches, Heat Sealed
Analytical BalanceSatoriusBSA 224S-CW
Aspiratorn/a
ATR- FTIRBrukerBruker Tensor II
CentrifugeHermle Labortechnik GmbHZ 206 A
ChitosanTokyo Chemical Industries9012-76-4
Digital  CameraToupTekXCAM1080PHB
Drying Rackn/a
EthanolChem-Supply64-17-5Undenatured, 99.9% purity
Glacial Acetic AcidRCI-Labscan64-19-7AR Grade, 99.8% purity
Glass Sliden/a
Iron Clampn/a
Iron Standn/a
Magnetic StirrerCorningPC-620D
Pasteur Pipetten/a
Propan-2-olRCI-Labscan67-63-0AR Grade, 99.8% purity
SonicatorJeio Tech Inc.UCS-20
Spectrofluorometer Horiba (Jovin Yvon)Horiba Fluoromax Plus
Stirring Barn/a
UV-Vis SpectrophotometerAgilentCary UV 100
Wash bottlen/a
Zoom Stereo MicroscopeOlympusSZ61

Ссылки

  1. Eisend, M., Hartmann, P., Apaolaza, V. Who buys counterfeit luxury brands? A meta-analytic synthesis of consumers in developing and developed markets. J Int Market. 25 (4), 89-111 (2017).
  2. Agrawal, T. K., Koehl, L., Campagne, C. Uncertainty modelling in knowledge engineering and decision making. World Scientific Procedings Series. , (2012).
  3. Cakin, M. B., Dincer, A. T. A. . Turkish studies-comparative religious studies. , (2023).
  4. Albarq, A. N. Counterfeit products and the role of the consumer in Saudi Arabia. Am J Indust Busi Manag. 5 (12), 819-827 (2015).
  5. Boamah, F., Ayesu, S. M., Crentsil, T., Pardie, S. P. The effect of academic textiles studies on the Ghana textile industry. Africa J Appl Res. 8 (2), 186-196 (2022).
  6. Bruce-Amarty, E. J., Amissah, E. R. K., Safo-Ankama, K. The decline of Ghana's textile industry: Its effects on textile education in Ghana. Art Design Studies. 22, 36-44 (2014).
  7. Abdollahi, A., Roghani-Mamaqani, H., Razavi, B., Salami-Kalajahi, M. Photoluminescent and chromic nanomaterials for anticounterfeiting technologies: Recent advances and future challenges. ACS Nano. 14 (11), 14417-14492 (2020).
  8. Norum, P. S., Cuno, A. Analysis of the demand for counterfeit goods. J Fashion Market Manage: An Int J. 15 (1), 27-40 (2011).
  9. Okonkwo, I. E., Abiala, W. Justification of counterfeits a microscopic view from a trademark perspective. Mayne Quart Law Rev. 6 (4), 1-7 (2021).
  10. Quoquab, F., Pahlevan, S., Mohammad, J., Thurasamy, R. Factors affecting consumers' intention to purchase counterfeit product. Asia Pac J Market Log. 29 (4), 837-853 (2017).
  11. Dalal, H. Challenges: A study of Textile Industry in India. Pramana Res J. 9 (5), 423-429 (2019).
  12. Mushi, H. M., Mohd Noor, N. A. Consumer behaviour and counterfeit purchase in the Tanzanian mainland. Global Bus Manage Rev (GBMR). 8 (1), 49-64 (2022).
  13. Ren, S., et al. Highly bright carbon quantum dots for flexible anti-counterfeiting. J Mat Chem C. 10 (31), 11338-11346 (2022).
  14. Liu, R. S. . Phosphors, Up Conversion Nano Particles, Quantum Dots and Their Applications. , (2017).
  15. Chang, K., et al. Conjugated polymer dots for ultra-stable full-color fluorescence patterning. Small. 10 (21), 4270-4275 (2014).
  16. Fatahi, Z., Esfandiari, N., Ranjbar, Z. A New anti-counterfeiting feature relying on invisible non-toxic fluorescent carbon dots. J Anal Test. 4 (4), 307-315 (2020).
  17. Abd El-Hack, M. E., et al. Curcumin, the active substance of turmeric: its effects on health and ways to improve its bioavailability. J Sci Food Agri. 101 (14), 5747-5762 (2021).
  18. Bener, M., Özyürek, M., Güçlü, K., Apak, R. Optimization of microwave-assisted extraction of curcumin from Curcuma longa L. (Turmeric) and evaluation of antioxidant activity in multi-test systems. Rec. Nat. Prod. 10 (5), 542-554 (2016).
  19. Van Nong, H., et al. Fabrication and vibration characterization of curcumin extracted from turmeric (Curcuma longa) rhizomes of the northern Vietnam. Springerplus. 5 (1), 1147 (2016).
  20. Kolev, T. M., Velcheva, E. A., Stamboliyska, B. A., Spiteller, M. DFT and experimental studies of the structure and vibrational spectra of curcumin. Int J Quantum Chem. 102 (6), 1069-1079 (2005).
  21. Mohajeri, M., Behnam, B., Tasbandi, A., Jamialahmadi, T., Sahebkar, A. . Studies on biomarkers and new targets in aging research in Iran: Focus on turmeric and curcumin. , (2021).
  22. Hay, E., et al. Therapeutic effects of turmeric in several diseases: An overview. Chem Biol Interact. 310, 108729 (2019).
  23. Ahmad, R. S., et al. Biochemistry, safety, pharmacological activities, and clinical applications of turmeric: A mechanistic review. Evid Based Complement Alternat Med. 2020, 7656919 (2020).
  24. Tsaplev, Y. B., Lapina, V. A., Trofimov, A. V. Curcumin in dimethyl sulfoxide: Stability, spectral, luminescent and acid-base properties. Dyes Pigments. 177, 108327 (2020).
  25. Chignell, C. F., et al. Spectral and photochemical properties of curcumin. Photochem Photobiol. 59 (3), 295-302 (1994).
  26. Sun, X., Gao, C., Cao, W., Yang, X., Wang, E. Capillary electrophoresis with amperometric detection of curcumin in Chinese herbal medicine pretreated by solid-phase extraction. J Chromatogr A. 962 (1-2), 117-125 (2002).
  27. Takenaka, M., et al. Effective extraction of curcuminoids by grinding turmeric (Curcuma longa) with medium-chain triacylglycerols. Food Sci Technol Res. 19 (4), 655-659 (2013).
  28. Heffernan, C., Ukrainczyk, M., Gamidi, R. K., Hodnett, B. K., Rasmuson, &. #. 1. 9. 7. ;. C. Extraction and purification of curcuminoids from crude curcumin by a combination of crystallization and chromatography. Org Process Res Dev. 21 (6), 821-826 (2017).
  29. Paramasivam, M., Poi, R., Banerjee, H., Bandyopadhyay, A. High-performance thin layer chromatographic method for quantitative determination of curcuminoids in Curcuma longa germplasm. Food Chem. 113 (2), 640-644 (2009).
  30. Priyadarsini, K. I. The chemistry of curcumin: from extraction to therapeutic agent. Molecules. 19 (12), 20091-20112 (2014).
  31. Nhujak, T., Saisuwan, W., Srisa-art, M., Petsom, A. Microemulsion electrokinetic chromatography for separation and analysis of curcuminoids in turmeric samples. J Sep Sci. 29 (5), 666-676 (2006).
  32. Kim, Y. J., Lee, H. J., Shin, Y. Optimization and validation of high-performance liquid chromatography method for individual curcuminoids in turmeric by heat-refluxed extraction. J Agri Food Chem. 61 (46), 10911-10918 (2013).
  33. Patel, K., Krishna, G., Sokoloski, E., Ito, Y. Preparative separation of curcuminoids from crude curcumin and turemric powder by pH-zone refining countercurrent chromatography. J Liq Chrom Rel Tech. 23 (14), 2209-2218 (2007).
  34. Paulucci, V. P., Couto, R. O., Teixeira, C. C. C., Freitas, L. A. P. Optimization of the extraction of curcumin from Curcuma longa rhizomes. Rev Bras Farmacogn. 23 (1), 94-100 (2013).
  35. Ali, I., Haque, A., Saleem, K. Separation and identification of curcuminoids in turmeric powder by HPLC using phenyl column. Anal. Methods. 6 (8), 2526-2536 (2014).
  36. Li, M., Ngadi, M. O., Ma, Y. Optimisation of pulsed ultrasonic and microwave-assisted extraction for curcuminoids by response surface methodology and kinetic study. Food Chem. 165, 29-34 (2014).
  37. Mandal, V., Mohan, Y., Hemalatha, S. Microwave assisted extraction of curcumin by sample-solvent dual heating mechanism using Taguchi L9 orthogonal design. J Pharm Biomed Anal. 46 (2), 322-327 (2008).
  38. Shankar, M., Palani, S., Nivedha, D. Extraction of Curcumin from Raw Turmeric (Curcuma longa.)-A Comparative Study, Using Soxhlet, Chemical, Chromatographic, and Spectroscopic Methods and Determining its Bioavailability. Int J Mod Dev in Eng Sci. 1 (6), 67-72 (2022).
  39. Kurmudle, N., Kagliwal, L. D., Bankar, S. B., Singhal, R. S. Enzyme-assisted extraction for enhanced yields of turmeric oleoresin and its constituents. Food Biosci. 3, 36-41 (2013).
  40. Chassagnez-Méndez, A. L., Corrêa, N. C. F., França, L. F. d., Machado, N. T. d., Araújo, M. E. A mass transfer model applied to the supercritical extraction with CO2 of curcumins from turmeric rhizomes (Curcuma longa L). Brazil J Chem Eng. 17, 315-322 (2000).
  41. Ghoreishian, S. M., Maleknia, L., Mirzapour, H., Norouzi, M. Antibacterial properties and color fastness of silk fabric dyed with turmeric extract. Fibers Poly. 14 (2), 201-207 (2013).
  42. Safapour, S., Sadeghi-Kiakhani, M., Doustmohammadi, S. Chitosan-cyanuric chloride hybrid as an efficient novel bio-mordant for improvement of cochineal natural dye absorption on wool yarns. J Textile Inst. 110 (1), 81-88 (2018).
  43. Vahur, S., Teearu, A., Peets, P., Joosu, L., Leito, I. ATR-FT-IR spectral collection of conservation materials in the extended region of 4000-80 cm(-)(1). Anal Bioanal Chem. 408 (13), 3373-3379 (2016).
  44. Gunasekaran, S., Natarajan, R., Natarajan, S., Rathikha, R. Structural investigation on curcumin. Asian J Chem. 20 (4), 2903 (2008).
  45. Kim, H. J., et al. Curcumin dye extracted from Curcuma longa L. used as sensitizers for efficient dye-sensitized solar cells. Int J Electrochem Sci. 8 (6), 8320-8328 (2013).
  46. Singh, P. K., Wani, K., Kaul-Ghanekar, R., Prabhune, A., Ogale, S. From micron to nano-curcumin by sophorolipid co-processing: highly enhanced bioavailability, fluorescence, and anti-cancer efficacy. RSC Adv. 4 (104), 60334-60341 (2014).
  47. Holmquist, H., et al. Properties, performance and associated hazards of state-of-the-art durable water repellent (DWR) chemistry for textile finishing. Environ Int. 91, 251-264 (2016).
  48. Berradi, M., et al. Textile finishing dyes and their impact on aquatic environs. Heliyon. 5 (11), e02711 (2019).
  49. Behera, M., Nayak, J., Banerjee, S., Chakrabortty, S., Tripathy, S. K. A review on the treatment of textile industry waste effluents towards the development of efficient mitigation strategy: An integrated system design approach. J Environ Chem Eng. 9 (4), 105277 (2021).
  50. Massella, D., Giraud, S., Guan, J., Ferri, A., Salaün, F. Textiles for health: a review of textile fabrics treated with chitosan microcapsules. Environ Chem Lett. 17 (4), 1787-1800 (2019).
  51. Wang, F., Huang, W., Jiang, L., Tang, B. Quantitative determination of proteins based on strong fluorescence enhancement in curcumin-chitosan-proteins system. J Fluoresc. 22 (2), 615-622 (2012).
  52. Yang, M., Wu, Y., Li, J., Zhou, H., Wang, X. Binding of curcumin with bovine serum albumin in the presence of iota-carrageenan and implications on the stability and antioxidant activity of curcumin. J Agric Food Chem. 61 (29), 7150-7155 (2013).
  53. Sneharani, A. H., Karakkat, J. V., Singh, S. A., Rao, A. G. Interaction of curcumin with beta-lactoglobulin-stability, spectroscopic analysis, and molecular modeling of the complex. J Agric Food Chem. 58 (20), 11130-11139 (2010).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

JoVE202

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены