Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.
Method Article
Burada fare tracheas bazal ve submukozal bez kanal hücrelerinin izolasyonu için bizim protokol göstermektedir. Ayrıca, bir oluşturmak için dorsal fare yağ yastığı içine kök hücreleri enjekte yöntem gösterilmektedir In vivo modeli.
Büyük hava yollarının 1. biz nefes toksinler ve enfeksiyöz ajanlar yaralanma nedenle duyarlı çevre ile doğrudan temas halinde olan ve. Büyük hava yollarının nedenle etkin bir tamir mekanizması vücudumuzun korumak için gerektirir. Bu onarım sürecinde solunum yollarında kök hücrelerden oluşur ve solunum yollarının bu kök hücreler izole onarım ve rejenerasyon mekanizmalarının anlaşılması için önemlidir. Bu hava yolu hastalıkları 2 yol açabilir anormal onarımı anlamak için de önemlidir. Bu yöntemin amacı fare trakeal submukozal bez kanallarından bir roman kök hücre popülasyonu izole etmek ve submukozal bezlerin 3 tamir ve rejenerasyon mekanizmalarının belirlenmesi, in vitro ve in vivo model sistemlerde bu hücrelerin yerleştirmektir. Bu üretim, büyük hava yollarının 3 kanal ve bazal kök hücreler izole ve test için kullanılan yöntem gösterilmektedir. Bu sayede sağlayacakBu tür kistik fibrozis, astım ve kronik obstrüktif akciğer hastalığı gibi solunum yolu hastalıkları, çalışma. Şu anda, submukozal bez kanal hücrelerinin izole edilmesi için bir yöntem bulunmamaktadır ve mukozal bezlerin yenilenme çalışmak için in vivo modellerde de yoktur.
Adımlar Anahat
1. Trakeanın Diseksiyon
2. Trakea Temizleme ve kesme
3. Tek bir hücre süspansiyonu içine enzim sindirimi ve işleme
4. FACS için boyama ve sıralama
5. In vivo ve in vitro modeller için sıralanmış hücreleri İşleme
1. Trakea Diseksiyon
2. Trakea Temizleme ve It Kesme
3. Tek Hücre Süspansiyon (SCS) içine Enzim Sindirim ve İşleme
4. FACS için boyama ve Sıralama
5. Için sıralama Hücreler İşleme: vivo Model vitro Kültür ve içinde
5-9 kültürünü oluşturan vitro kürede 5.1
In vivo modelde, 5.2
6. Temsilcisi Sonuçlar
Strifare tracheas of pping Şekil 1A 'de gösterildiği gibi ışık mikroskopisi tarafından görülebilir olan bir soyulmuş soluk borusu ile sonuçlanacaktır. Şekil 1B üzüm dokuları ve benzeri demetleri serbest bırakıldıktan mukozal bezlerin epitelyal ayrılmasından sonra bir soluk borusu ve aydınlık bir görünümünü gösterir.
Pronazın ITGA6 epitop kaldırır ve TROP2 kanal hücrelerinin ITGA6 + ve ayrılır olamaz bu yüzden - nüfus. Bununla birlikte, epitop ITGA6 korur dispase, yüzey epiteli ve hatta çok kısa inkübasyon süreleri ile kanal hücrelerinin ve bu nedenle, 3 bazal hücreleri kanal ayırmak için kullanılamaz her sindirir. Tek hücre süspansiyonlarının Flow sitometri Şekil 2A temsil edilmektedir scatter ve yan dağılım araziler ileri göstermelidir. Trakeal hücreler floresan aktive edilmiş hücre sorti için akış sitometrisi içinde Trop2 antikor ile görülmesi gereken ise geri kalan kanal hücre iyi ayrılmang (FACS) Şekil 2B'de görülmektedir. Küreler kültür içinde yaklaşık 1 hafta sonra Matrigel içinde görünür ve Şekil 3 'de gösterildiği gibi, görünüm içinde yoğun gerekir. Bu sürecin verimliliği hala Matrigel mevcut olabilir ve büyük olasılıkla kendini yenileme kapasitesine sahip değillerdir submukozal bez kanallarından hücreleri temsil edecek% 1-2 ve tek hücre sırasıdır. Şekil 4'te gösterilmiştir submukozal bez benzeri yapıların oluşumu ile fare yağ yastığı sonuçlar içine kanal kök hücrelerin Enjeksiyon. Bu bile H & E boyama olmadan bloklar görülmektedir. Bu küresel olan ve bir merkezi lümen sahiptirler. Birçok kesitlerde bu epitelyal yapılar kaçırmamak için yağ yastığı aracılığıyla yapılması gerekmektedir.
Şekil 1. Trakeal epitel Enzimatik sindirim. Yüzey epitel hücrelerinin çıkarılması blac ile gösterilirk oklar, submukozal bezi kanallarının hücrelerin çıkarılması yeşil oklar ile gösterilmiştir. Işık mikroskobu ile görülebilir çıplaklaşmış tracheas dispase sindirimi 30 dk sonra ve pronaz sindirim 4 saat sonra gösterilmektedir.
Şekil 2A. I. Epitelyal yüzey sıyırma sonra fare tracheas temsili forward scatter ve yan dağılım araziler gösteren tek hücre süspansiyonlarının akış sitometri. ii. Fare tracheas gelen kanal hücrelerde TROP2 ifade Temsilcisi FACS araziler.
Şekil 2B. I. Temsilcisi forward scatter ve yan dağılım araziler gösteren fare trakeanın alt üçte iki şeritli yüzey epitelinden tek hücre süspansiyonlarının akış sitometri. ii. Su içinde ITGA6 ifade Tipik FACS arsaepitel rface. iii. Yeşil bazal hücre popülasyonunun yolluk arka gösteren yüzey epitelinden öne ve yana saçılım bir başka temsilcisi FACS arsa. iv. Tipik ITGA6 ve TROP2 yeşil hücre popülasyonu ifade.
Şekil 3. Küreler gelişim Zaman elbette. A. Kanal küreler. Küreler kültüründe yaklaşık 1 hafta sonra Matrigel görünür olmalı ve hemen hemen tüm görünüm yoğundur. Küreler kurmazlar Tek hücreleri de görülmektedir. (Ölçek bar = 50 mikron). B. Bazal küreler görünüm büyük ve lümen vardır. Küreler kurmazlar Tek hücreleri de görülmektedir. (Ölçek bar = 50 mikron).
Şekil 4. Submukozal bez benzeri yapıların oluşumunda fare yağ yastığı sonuçlara kanalı kök hücrelerin Enjeksiyon. Örnek yapılaryağ yastığı gösterilir ve bazı Alcian mavi Periyodik Asit Schiff boyası ile müsin (açık mavi) üreten gösterilir.
Solunum kanal ve bazal hücrelerin izole edilmesi Bu teknik hava yolu onarımı ve yenilenmesi ve hava yolu hastalıkları anlayışımızı geliştirmek için önemlidir. Burada açıklanan teknikleri birkaç kritik adımları içerir. İlk Optimize enzimatik sindirim dönemdir. İkinci hücre kesme önlemek ama hücre kümeleri kırmak için giderek daha yüksek ölçer iğne ile pasajlanmasını seri boyunca tek bir hücre süspansiyonu yaratılmasıdır. Üçüncü FACS analizi ve uygun antikorlar ile hücrelerin ga...
Çıkar çatışması ilan etti.
Biz Geniş Kök Hücre Araştırma Merkezi FACS kabul ve özellikle hücre sıralama ile yardım için Jessica Scholes ve Felicia Codrea teşekkür etmek istiyorum. Iş CIRM RN2-00904-1, K08 HL074229, Amerikan Toraks Derneği / KOAH Vakfı ATS-06-065, endişe Vakfı, UCLA Jonsson Kapsamlı Kanser Merkezi Göğüs Onkoloji Programı / Akciğer Kanseri SPORE, Kaliforniya Kanser Üniversitesi tarafından finanse edildi Araştırma Koordinasyon Komitesi ve Gwynne Hazen Kiraz Memorial Laboratuvarları (BG).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Reaktif Adı | Şirket | Katalog numarası | |
Orta 10 tamamlayın: DMEM-F-12, 50/50, 1X) | Mediatech | 15-090-CV | |
HEPES (15 mM) | Invitrogen | 15630 | |
Sodyum bikarbonat (% 0.03 ya da 3.6 mm) | Invitrogen | 25080 | |
L-glutamin (4 mM) | Mediatech | 25-005-Cl | |
Penisilin (100 U / ml) | Mediatech | 30-001-CI | |
Streptomisin (100 mikrogram / m) | Mediatech | 30-001-CI | |
Amfoterisin B (0.25 mg / ml) | Lonza | 17-836R | |
IçindeSulin (10 ug / ml) | Sigma | I6634 | |
Transferrin (5 ug / ml) | Sigma | T1147 | |
Kolera toksini (0.1 mg / ml) | Sigma | C8052 | |
Epidermal Büyüme Faktörü (25 ng / ml) | BD | 354001 | |
Sığır hipofiz ekstresi (30 ug / ml) | Invitrogen | 13028-014 | |
Sığır fetüs serumu (% 5) | Balıkçı | SH3008803HI | |
Retinoik asit (0.05 uM) | Sigma | R2625 | |
Büyüme Faktörü Matrigel İndirimli | BD | 354230 |
Tablo 1. Ortam bileşenleri tamamlayın.
Reaktif Adı | Şirket | Katalog numarası | Yorumlar |
Pronazın | Roche | 10165921001 | % 0,15 ve ikinci el: 4 at-o / n ° C sindirim toplam trakeal hücreleri (ALI kültür) ayırmak -4 Saat sindirim 4 ° C SMG izole etmek |
Dispase | BD Biosciences | 354235 | 16 adet de el: RT 30 dakika |
DNaz I | Sigma | DN25 | 0.5 mg / ml 'de İkinci: RT 20-30 dk |
Tablo 2. Enzimler trakeanın enzimatik sindirim için kullanılır.
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır