JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

A robust and flexible approach to confirm herbicide resistance in weed populations is presented. This protocol allows the herbicide resistance levels to be inferred and applied to a wide range of weed species and herbicides with minor adaptations.

Özet

Robust protocols to test putative herbicide resistant weed populations at whole plant level are essential to confirm the resistance status. The presented protocols, based on whole-plant bioassays performed in a greenhouse, can be readily adapted to a wide range of weed species and herbicides through appropriate variants. Seed samples from plants that survived a field herbicide treatment are collected and stored dry at low temperature until used. Germination methods differ according to weed species and seed dormancy type. Seedlings at similar growth stage are transplanted and maintained in the greenhouse under appropriate conditions until plants have reached the right growth stage for herbicide treatment. Accuracy is required to prepare the herbicide solution to avoid unverifiable mistakes. Other critical steps such as the application volume and spray speed are also evaluated. The advantages of this protocol, compared to others based on whole plant bioassays using one herbicide dose, are related to the higher reliability and the possibility of inferring the resistance level. Quicker and less expensive in vivo or in vitro diagnostic screening tests have been proposed (Petri dish bioassays, spectrophotometric tests), but they provide only qualitative information and their widespread use is hindered by the laborious set-up that some species may require. For routine resistance testing, the proposed whole plant bioassay can be applied at only one herbicide dose, so reducing the costs.

Giriş

Herbisitler küresel bitki koruma piyasasının 1 kadar% 50'sini, en yaygın kullanılan yabancı ot kontrolü önlemi vardır. Onlar emek yoğun ve zaman alıcı bir toprak işleme uygulamaları önlemek ve sonuçta maliyet-etkin, güvenli ve kârlı gıda üretimi 2 sonuçlanır, nispeten ucuz araçlardır. Ancak, birlikte herbisit kullanımı ile ilgili bir aşırı güven ile birçok yabani ot türlerinde büyük fenolojik ve genetik değişkenlik mevcut, sık sık herbisit dirençli yabani ot popülasyonlarının seçiminde sonuçlanır. çok özel bir metabolik hedefle seçici herbisit tanıtımı 3-5 yılda direnç vakalarının sayısını büyük oranda arttırmıştır. Bugüne kadar dünya çapında 240 yabancı ot türlerinin (140 dikotlar ve 100 monocots) Eylem (SoA) 4 farklı herbisit Siteleri direnç geliştirmişlerdir. Bu sürdürülebilir bitkisel üretim için önemli bir ot yönetimi için endişe ve genel olarak daha fazladır.

Sık sık bir serada gerçekleştirilen güvenilir testler, dayalı e_content "> direnişin Erken teşhis, herbisit dirençli yabani otları yönetmek için önemli bir adımdır. Farklı yaklaşımlar olarak, amaçları, doğruluk, zaman ve mevcut kaynakların gereken seviyeye göre geliştirilmiştir de 6-12 olarak yabani ot türü gibi. Ancak, yeni bir yabancı ot biyotip direnç durumunun onayı (gerekli olduğu zaman, yani, bir ait olan bir ya da daha fazla herbisit hayatta yeteneği dahil olmak üzere birçok fizyolojik özellikleri paylaşan bireylerin bir grubu, normalde bunları kontrol edecek bir dozda kullanılan özel grup), sağlam bir bütün bitki biyo-deney, kontrollü bir ortamda 4, 11 yapılmaktadır gerekmektedir.

Bir biyotip sadece bir herbisit nadiren dayanıklıdır. Her bir biyotip bu nedenle dayanıklıdır herbisitlerin belirli bir direnç desen, SOA, yani sayısına ve türüne göre, özelliği, ve belirli bir direnci olanHer bir bitki öldürücü 13 düzeyi. haç veya birden fazla direnç 5 Desenin erken ve güvenilir bir tespiti, 14 alan direnç yönetimi için çok önemlidir.

O herbisit direnci doğal tolerans ile ilgisi vardır kayda değer bazı herbisit, örneğin, ACCase önleyici herbisitler, monokot türlerinin vs 2,4-D vs dikot türler, equisetum arvense vs yönünde bazı ot türlerinin sergi glifosat.

Bu makale herbisit (ler) tarafından yoksul kontrolü olduğu bildirildi alanlarda örneklenmiş varsayılan herbisit dirençli biyotiplerin test etmek için sağlam bir yaklaşım sunuyor. Katılan yabani ot türleri ile ilgili olarak, standart protokollere ilgili varyantlar sunulmaktadır. Petri 8 tek herbisit dozu 15 ya da tedavi tohum kullanan ya bütün bitki biyoanalizlerin dayalı alternatif teknikler / protokoller üzerinden avantajları yüksek reliab ilgiliility nedeniyle deneylerde iki herbisit dozu dahil direnç seviyesini çıkarım olasılığı. Ancak rutin direnci testi için, aynı yöntemler, böylece maliyetlerin azaltılması, tek bir herbisit dozunda uygulanabilir.

Yanı sıra direnç durumunun onayı izin olarak, elde edilen bilgiler hem aşağıdaki araştırma adımlarını optimize ve / veya ses direnç yönetimi stratejileri oluşturulması için kullanılabilir.

Protokol

1. Tohum Örnekleme ve Depolama

  1. Olumsuz iklim koşulları ya da düşük kaliteli herbisit tedavileri nedeniyle değil, yani haksız kötü herbisit performansı için ekili alanlar, monitör.
  2. Her seferinde, bir türden gelen bir tohum numunesi toplamak ve özgün bir kod atar. Olgun tohumlar genellikle herbisit tedavi (ler) hayatta olan bitkilerden mahsul hasat öncesi toplanır. Tohumlar ne zaman anne bitki tarafından olgun döken eğer zamanında monitör gözlemlemek.
  3. Türler, toplama tarihi, GPS koordinatları, belediyenin, çiftçinin adı, alan büyüklüğü, istila düzeyi, kırpma, herbisit (ler) sezonunda kullanılan ve alanın tarihsel kayıtların atanan benzersiz bir kod adını gösteren her bir numune için formu doldurunuz .
  4. Alan istilası temsilcisi olan en az 30 rastgele seçilmiş bitkilerden tohum toplayın. Tohum örneği, en az 5.000 olgun tohumları içerdiğinden emin olun. Zorunlu bir döllenmedir yabani ot türleri için(Örneğin, lolium spp., Veya Amaranthus spp.), 5000 11 civarında toplam tohum sayısı, tutmak, 10-15 bitkilerin sayısını azaltır.
  5. Yabancı otların yamalar (hektar daha fazla) geniş alanlar üzerinde dağınık sanki farklı herbisit dirençli biyotipleri seçilen alanı Alt-örnek.
  6. Atanan benzersiz kod ile etiketlenmiş damlar kağıt torbalarda saklayın tohumları.
  7. Nemin buharlaşmasını ancak ikincil uyuşukluk uyarılmasını önlemek için yüksek sıcaklık (yani, güneş altında bir arabada bırakarak önlemek) veya aşırı sıcaklık dalgalanmaları tohum maruz bırakmayın izin verin.
  8. (Saman, de-gövde tohum, vb kaldırmak) ve kuru bir odada ortam sıcaklığında saklayın temizleyin. İlk direnç testler sonrasında, vakumlu plastik torbalarda, tercihen 4 ° C'de karanlık bir odada uzun süre tohumlarını saklayın. Bu şekilde tohumları önemli ölçüde daha uzun bir süre boyunca, yaşama yetenekleri korur.

2. Dormansi Breaking Tohumların

NOT: Tohum dinlenmesi adapte ve tarımsal ekosistemlerde kalıcı yabani otlar sağlayan esnek ve verimli bir mekanizma sağlar. Tohum çimlenme dinlenmesi kırmak ve izin vermek için, farklı protokoller örneğin zararlı bitki türleri, uyuşukluk 16 tipine bağlı olarak kullanılabilir olması gerekir.
Dormansi kaldırmak için üç ana yöntem vardır:

  1. Vernalizasyon
    NOT:. Örn Amaranthus retroflexus, Chenopodium albüm, Lolium spp Avena fatua, Polygonum persicaria'ya: eşzamanlı çimlenmesini ve fide çıkmasını, bir hafta, birkaç gün arasında değişen tohum vernalizasyon bir süre elde etmek için birçok türe fizyolojik dormansi kaldırmak için gereklidir , Phalaris 17-19 paradoxa. Kadar 15 gün daha uzun bir süre Schoenoplectus mukronatus için en fazla 30 gün Papaver rhoeas, Cyperus difformis ve Ammania coccinea için gereklidir ve 20.
    1. Plastik tabaklar içinde bazı deiyonize su koyun. Herhangi bir aşırı kaldırmak, filtre kağıdı iki kat kesin ve suda bekletin. Kağıt üzerinde hava kurutulmuş tohumları yerleştirin. Gereken zaman süresi için, 4 ° C'de bir buzdolabı plastik tabaklar aktarın.
  2. Kazıma
    NOT: Bazı yabancı ot türlerinin nedeniyle mekanik dormansi, yani tohum kabuğu özelliklerine diğerlerinden daha çimlenme daha inatçı, ve 21 çimlenmeye sülfürik asit kullanılarak kimyasal kazıma kullanımını gerektirmektedir.
    1. Konsantre sülfürik asit (% 95-98) ile bir çanak hazırlayın. Su dolu bir beher hazırlayın. Dokuma olmayan kumaşın bir zarf içinde tohumlar konulur.
    2. Konsantre sülfürik asit içinde, sırası ile, 20 dakika ya da 5 dakika boyunca, örneğin, echinochloa spp., Veya Sorghum halepense tohumları bekletin.
    3. Cımbız, bir çifti kullanılarak beher dışına zarfı alın ve su dolu behere koyun. Açzarf, küçük bir kevgir içinde tohum koymak ve akan su altında iyice yıkayın.
    Varyant: A. plantago-aquatica farklı bir protokol ihtiyacı 22, 23
    1. Kloroform içinde 2 dakika için tohum bekletin. Deiyonize su ile durulayın ve tohumların emici kağıt ile kurulayın. 5 dakika için% 80 sülfürik asit içinde tohum Dunk.
    2. Küçük bir kevgir içinde tohum koyun ve akan su altında iyice yıkayın.
  3. Hasat sonrası tohum olgunlaşma
    NOT: Diğer yabancı ot türlerinin tohumları bakılmaksızın dinlenmesi kırmak için kullanılan yöntem, olgunluk sonra bir kaç ay hiç çimlenme yok.
    1. RT ve düşük nem en az 3-4 aylık bir süre için tohum saklayın ve daha sonra dinlenmesi kırma (örneğin, Oryza sativa var. Sylvatica veya P. rhoeas) için yukarıdaki protokolleri uygulayın.

3. Tohum Çimlenme

  1. Talep tohumları plas çimlenmiş edilmesi% 0.1 potasyum nitrat (KNO 3) ile% 0.6 (kütle / hacim) agar içeren tlc yemekler eklendi:
    1. Iyonu giderilmiş su kullanarak,% 0.6 +% 0.1 KNO 3'te agar ihtiva eden bir çözelti hazırlayın. Bir mikrodalga fırında agar çözülür.
    2. Plastik tabaklar içine agar çözüm dökün. Substrat soğutun ve daha sonra tohumlarda koydu.
    Varyasyon: Toprak da plastik tabaklar bir alt-tabaka olarak kullanılabilir. Bu uygulama Echinochloa spp için özellikle verimlidir., S. halepense ve Lolium spp.
  2. Her ot türlerinin optimum koşullara bağlı olarak hafif ve sıcaklık koşulları ile ilgili bir hafta boyunca bir çimlenme dolabında plastik yemekleri yerleştirin. En kış türleri için, sıcaklık aralığı 15/25 ° C, gece / gündüz ve 15-30 ľmol m -2 sn -1 bir Fotosentez Foton Akı Yoğunluğu (PPFD) sağlayan neon tüpleri ile 12 saat fotoperiyot olduğunu. Birçok yaz türleri için, sıcaklık aralığı 15/30 ° C gece / gün'dür.
    Varyant: SBöyle S. olarak ome türler, halepense, bir ısıl işlem gerekir. S. nedenle kazıma sonra, tohumlar normal şartlarda daha sonra üç gün çimlenme odasında üç gün için 24 ° C 'de 45 ° C ve 20 saat sonra, 4 saat döngüleri ve: halepense aşağıdaki koşullara tabi tutulurlar.

4. Fide Fide ve Büyüme

  1. Nakli standart çömlekçilik karışımı ile dolu plastik tepsiler (325 x 265 x 95 mm) içine on beş-yirmi fidanları (% 60 siltli tınlı toprak,% 15 kum,% 15 ve% 10 agriperlite turba - hacimce).
    Not: Fide yerine doğrudan ekim, herbisit uygulamasının performansını optimize etmek için önemli bir ön-koşul olan aynı büyüme aşamasında bitkilerin üniform bir standı elde edilmesini sağlar.
  2. Numarası ve ilerici tepsi numarasını çoğaltmak, nüfus kodu, herbisit test edilen <: Eşsiz tanımlanması için tüm bilgiler de dahil olmak üzere bir barkod her tepsiyi tanımlayın./ Li>
  3. Ya da tarla kapasitesi yakınındaki alt tabakayı korumak için gerektiği gibi bir ısıtmalı sera ve su bitkileri koyun tepsileri.
    Not: büyüme sıcaklığı yabani ot türlerine bağlı olarak değişir. Genellikle testler sonbahar / kış / bahar aylarında yapılır, bu nedenle ışık yaklaşık 150 umol m -2 sn PPFD sağlayan 400 W metal halide lambalar, -1 ve 12 saat fotoperiyodun 24 19. Yaz ot türleri ile kullanılarak güçleniyor C 4 fotosentez döngüsü genellikle daha yüksek ışık yoğunluğu gerektirir ve bu nedenle testlerin geç ilkbahar-yaz yapılan veya takviye ışık yoğunluğu yaklaşık 400 umol m -2 s -1 14 saat fotoperyod ile vardır.
  4. Çeltik, örneğin, A. infesting bazı ot türleri için farklı bir protokol kullanın plantago-aquatica, S. mukronatus ve C 22 de tarif edildiği gibi difformis.
    1. 24 yuvarlak hücreler (55 mm çapında, 64 mm derinlik) fil ile polistiren tepsilerine fidan nakli% 60 silt killi toprak,% 30 kum ve (hacimce)% 10 turba ile olmuştur.
    2. 12 cm tepsileri derin plastik kaplar su ile doldurulmuş ve onları (Şekil 1) yüzen önlemek için vidalı paslanmaz çelik çubuklar aşağı battened ayarlayın.
    3. Toprak yüzeyinin seviyesinin altında 1-2 cm kaplarda su seviyesini korumak ve yosun çoğalmasını önlemek için su (10-12 L içeren) her bir kaba bakır sülfat ve 1.5 g ekleyin.

5. Herbisit Tedaviler

  1. Acil durum öncesi herbisidler olan tedaviler:
    1. Çimlenme kabininde yaklaşık üç gün bölüm 3'te tarif edildiği gibi sonra, yukarıda tarif edilen alt tabaka içeren plastik tepsilere çimlenen tohumların ekimi ve toprak tabakası (yaklaşık 1 cm) ile kaplayın. Bu fideler herbisit etkisi ziyade aşırı mezar derinliği nedeniyle ortaya olmaz sağlamak için kritik bir adımdır.
    2. Alan dikişleri alt tabakanın atınsu dolu tabaklar üzerinde, altta bir kaç delik var tepsiler, yerleştirerek şehir.
    3. Bir gün dikimden sonra, filizlenme öncesi herbisit 25 tepsileri davranın.
    4. Daire dan kapilarite tarafından yukarıdan ve aşağıdan hem gerektiği gibi su ekleyerek tabakayı veya yakın alan kapasitesi tutun. Bu prosedür iyi bir tedavi etkinliği için (yani, çimlenen tohumlar nerede) uygun derinlikte herbisit kalıcılığını yanadır.
  2. Sonrası ortaya Herbisitlerle Tedaviler:
    1. 2-3 yaprak aşamasına ulaştığınızda bitkiler Sprey (yani büyüme evresi Genişletilmiş BBCH büyüme ölçek 26 12-13).
    2. Tedaviden sonra günden itibaren, yabani ot türlerinin su gereksinimleri ve echinochloa spp sezonu (örneğin, uygun sulama sistemini ayarlayın. O 9'a 09:00 dan düzenli aralıklarla, 3 dakika boyunca günde 4 kez su sunar pm). Su dis olduğunuotomatik yağmurlama sulama sistemi kullanılarak tributed.
      Varyant: glifosat bitki sahne BBCH 14-21 uygulanır.
  3. Herbisit hazırlama ve dağıtımı.
    Not: (ön ve son-ortaya çıkma) Bütün herbisitler, iki doz tavsiye edilen yüzey aktif maddeler ile, ticari formülasyonlar olarak uygulanır önerilen alan dozu (1 x) ve üç kez (3x) olduğu.
    1. Gerekirse, etiket talimatlarına göre toplu olarak surfaktan çözüm hazırlamak; nihai konsantrasyon genellikle nihai hacminin bir yüzdesi (örneğin,% 0.3) halinde ifade edilir ya da hacim olarak birim alan (örneğin, 1 L ha-1) ortalama dağıtılacak.
    2. Aktif terkip maddesinin doğru konsantrasyon tutmak için herbisit (çözünen) çözeltisi için çözücü olarak yüzey aktif madde solüsyonu kullanın. İlk en yoğun herbisit çözeltisi hazırlayın (3x). Ticari ürünün miktarı yüzey aktif madde çözeltisi içinde çözüldü (ya da, eğer, iyonu giderilmiş su içinde olmak hesaplayınyüzey aktif madde, aşağıdaki denklem kullanılarak) gerekli değildir:
      Doz ot = [(Doz alan x Doz max) x V fin] / V del
      Burada: Doz ot = herbisit dozu (mi), Doz alanı = herbisit alan dozu (ha mi-1), Doz maks = maksimum dozun, V kanatçık = çözeltisi (L) son hacmi, V del tarafından sağlanan hacim = tezgah püskürtücü (L ha -1).
    3. Daha az konsantre bir (1x) maddesinin hazırlanması için: (1, hacim / hacim olarak 2) herbisit solüsyonu 3x seyreltilir. Bu prosedür tartı veya herbisit pipetleme yaparken hata yapma olasılığını azaltır. Birim, birim alan (L ha-1) ortalama dağıtılacak şekilde Herbisit solüsyonu konsantrasyonu olarak ifade edilir.
    4. Alt herbisit dozunun (1x) ile muamele dizisini başlatın. Bu şekilde, aynı herbisit ile iki tedavi arasında püskürtme kabini yıkamak için bir ihtiyaç vardır.
    5. Herbisit Solutio dağıtınn üç düz fan (genişletilmiş aralık) hidrolik nozulları ile donatılmış bir patlama ile 215 kPa basınçta 300 L ha -1 (±% 1), teslim hassas tezgah püskürtücü, ve 0.75 m sn -1 hıza kullanarak .
    6. Herbisit ağartıcının% 1 ile değiştirildiğinde iki kez, püskürtme kabini yıkayın (h / h) ve daha sonra durulanır.
      Varyasyon: glifosat, 200 L ha -1 27 bir püskürtme hacmi ile tatbik edilir.
      NOT: Özellikle dikkat yüksek biyolojik herbisitler, bu tür sülfonilüreler sülfometuron veya flazasulfuron, kullanıldığı zaman ödenmesi gerekir. Bu son durumda, amonyak ile, bir bir ağartma çözeltisi ile yıkama ve bir başkası da (2.5% h / h) su ile dikkatli bir şekilde durulanmıştır.

6. Toplama ve Verilerin Analizi

  1. Otomatik olarak her tepsiyi tanımlayan bir barkod okuyucu sayesinde, tedavi yanı sıra görsel Tahmini Biyokütle (VEB) hayatta bitkilerin sayısını kaydedin. Bitkiler eşek vardırne olursa olsun renk ya da diğer görünüm aktif büyüme gösteriyorsa ölü olarak Essed.
    1. Test herbisit bağlı olarak üç ya da dört hafta tedavi (WAT) sonra değerlendirme yapmak (örneğin, ACCase inhibitörleri üç WAT ve ALS inhibitörleri ya da glifosata dört WAT).
    2. Yani duyarlı nüfus (S edin) bütün deneylerde, asla veya nadiren herbisit ile tedavi olan bir site toplanan bir nüfusa dahil edilerek genel tedavi etkinliğini değerlendirmek.
    3. Işlenmiş bitkilerin sayısının yüzdesi olarak Express bitki hayatta kalma, (iki çoğaltır ortalama değer) sadece herbisit tedavi öncesi sayılır ve ortalama değer başına standart hata (SE) hesaplayın.
    4. Tedavi ve aynı nüfus 25, 28 check-tedavi edilmezse arasındaki VEB bitki biyokütle bir görsel karşılaştırma yoluyla elde edilir. Bir puan, 0 (değil tedavi edilen kontrol ile karşılaştırıldığında) herbisit etkilenmeyen bitkiler için 10 arasında değişen zamanbitkiler açıkça ölü, her tedavi tepsiye verilir.
  2. S kurtulanlar daha fazla herbisit dozu 1x R 20% 5 ila% arasında değişmekteydi zaman bitkilerin% 5'inden az herbisit dozu 1x, SR hayatta: İki herbisit dozu ile tedavi elde edilen sonuçlara dayalı olarak dört kategoride ascribe popülasyonları Hayatta kalanlar herbisit dozu 1x de% 20'den fazla ve herbisit dozu 3x 17 de% 10'dan fazla olduğunda bitkilerin% 20 herbisit dozu 1x ve RR atlattı.

Sonuçlar

Bir dayanıklı varsayılan nüfusun direnci durumunu değerlendirmek için, herbisit etkinliğini doğrulamak için tahlilde duyarlı bir kontrol dahil etmek esastır. P. üzerinde yapılan bir tarama testinin sonuçları rhoeas popülasyonları, buğday alanları infesting bir ot, bir duyarlı kontrol (09-36) ve şüpheli dirençli bir (10-91) dört sonrası ortaya herbisit etkinliği sunulmaktadır Şekil 2'de, raporlanır. Nüfus 09-36 tamamen tek bir bitki, florasulam ve tribe...

Tartışmalar

1) tohumları, olgun, herbisite muamele (ler) hayatta kalan bitkiler temin edilmelidir: protokoller dahilinde birçok adım bir popülasyonda herbisit direnci başarılı bir şekilde değerlendirilmesi için kritik öneme sahiptir. Anne bitki tohumlarının olgunlaşması daha sonra tohum çimlenmesi zorluklar önlemek için çok önemlidir; 2) tohumların çimlenmesini uygun depolama önleyecek kalıp çoğalmasını önlemek için tavsiye edilir; Herbisit paketinin etiketinde bildirilen 3) fidanları, sağ büyüme a...

Açıklamalar

The authors declare that they have no competing financial interests.

Teşekkürler

The research was supported by the National Research Council (CNR) of Italy. The authors thank GIRE members for collecting seed samples and are grateful to Alison Garside for revising the English.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Paper bagsCelcar SAS
Plastic dishesISI plast S.p.A.SO600Transparent plastic
Sulfuric acid 95-98%Sigma-Aldrich320501
Non-woven fabricCarretta TessituraArt.TNT17Weight 17 g m-2
Chloroform >99.5%Sigma-AldrichC2432
AgarSigma-AldrichA1296
Potassium nitrate >99.0%Sigma-AldrichP8394
Plastic containersGiganplast1875/M600 x 400 x 110 mm
Plastic traysPiber plastG1210A325 x 265 x 95 mm
Polystyrene traysPlastisavioS24537 x 328 x 72 mm, 24 round cells (6x4)
Copper sulfateSigma-Aldrich451657
AgriperliteBlu Agroingross sasAGRI100
PeatBlu Agroingross sasTORBA250
Germination cabinetKWW87R
NozzlesTeejetXR11002-VK, TP11001-VHThe second type of nozzles are used only for glyphosate
Barcode generatorToshiba TECSX4
Labels with barcodeFelgaTT20200Stick-in labels with rounded corners
Barcode readerCipherlab8300-LPortable data terminal
Bench sprayerBuilt in house
Herbicides included in the results:
Commercial productActive ingredientCompanyComments
AltoreximazamoxBASF
AzimutflorasulamDow AgroSciences
BiopowerBayer Crop ScienceSurfact to be used with Hussar WG
DashBASFSurfact to be used with Altorex
Granstartribenuron-methylDupont
GulliverazimsulfuronDupont
Hussar WGiodosulfuronBayer Crop Science
Nomineebispyribac-NaBayer Crop Science
RoundupglyphosateMonsanto
TrendDupontSurfact to be used with Granstar and Gulliver
ViperpenoxsulamDow AgroSciences
Weedone LV42,4-DIsagro

Referanslar

  1. Massa, D., Kaiser, Y. I., Andújar-Sánchez, D., Carmona-Alférez, R., Mehrtens, J., Gerhards, R. Development of a geo-referenced database for weed mapping and analysis of agronomic factors affecting herbicide resistance in Apera spica-venti L. Beauv. (Silky Windgrass). Agronomy. 3 (1), 13-27 (2013).
  2. Powles, S. B., Shaner, D. L. . Herbicides Resistance and World Grains. , 308 (2001).
  3. Sattin, M. Herbicide resistance in Europe: an overview. Proc. BCPC International Congress. , 131-138 (2005).
  4. Jasieniuk, M., Le Corre, V. Deciphering the evolution of herbicide resistance in weeds. Trends Genet. 29 (11), 649-658 (2013).
  5. Heap, I. M. Identification and documentation of herbicide resistance. Phytoprotection. 75 (4), 85-90 (1994).
  6. Beckie, H. J., Heap, I. M., Smeda, R. J., Hall, L. M. Screening for herbicide resistance in weeds. Weed Technol. 14 (2), 428-445 (2000).
  7. Tal, A., Kotoula-Syka, E., Rubin, B. Seed-bioassay to detect grass weeds resistant to acetyl coenzyme A carboxylase inhibiting herbicides. Crop Prot. 19, 467-472 (2000).
  8. Boutsalis, P. Syngenta Quick-Test: a rapid whole-plant test for herbicide resistance. Weed Technol. 15 (2), 257-263 (2001).
  9. Menchari, Y., et al. Weed response to herbicides: regional-scale distribution of herbicide resistance alleles in the grass weed Alopecurus myosuroides. New Phytol. 171 (4), 861-874 (2006).
  10. Burgos, N. R., et al. Review: confirmation of resistance to herbicides and evaluation of resistance levels. Weed Sci. 61 (1), 4-20 (2013).
  11. Owen, M. J., Martinez, N. J., Powles, S. B. Multiple herbicide-resistant Lolium rigidum. (annual ryegrass) now dominates across the Western Australian grain belt. Weed Res. 54 (3), 314-324 (2014).
  12. Beckie, H. J., Tardif, F. J. Herbicide cross resistance in weeds). Crop Prot. 35, 15-28 (2012).
  13. Moss, S. R., et al. The occurrence of herbicide-resistant grass-weeds in the United Kingdom and a new system for designating resistance in screening assays. Proc. BCPC Weeds. , 179-184 (1999).
  14. Baskin, C. C., Baskin, J. M. . Seeds, Ecology, Biogeography and Evolution of dormancy and Germination. , 27-42 (1998).
  15. Sattin, M., Gasparetto, M. A., Campagna, C. Situation and management of Avena sterilis. ssp. ludoviciana. and Phalaris paradoxa. resistant to ACCase inhibitors in Italy. Proc. BCPC - Weeds. , 755-762 (2001).
  16. Scarabel, L., Varotto, S., Sattin, M. A European biotype of Amaranthus retroflexus. cross-resistant to ALS inhibitors and response to alternative herbicides. Weed Res. 47 (6), 527-533 (2007).
  17. Collavo, A., Panozzo, S., Lucchesi, G., Scarabel, L., Sattin, M. Characterisation and management of Phalaris paradoxa. resistant to ACCase-inhibitors. Crop Prot. 30 (3), 293-299 (2011).
  18. Scarabel, L., Carraro, N., Sattin, M., Varotto, S. Molecular basis and genetic characterisation of evolved resistance to ALS-inhibitors in Papaver rhoeas. Plant Sci. 166 (3), 703-709 (2004).
  19. Panozzo, S., Scarabel, L., Tranel, P. J., Sattin, M. Target-site resistance to ALS inhibitors in the polyploid species Echinochloa crus-galli. Pestic. Biochem. Phys. 105 (2), 93-101 (2013).
  20. Sattin, M., Berto, D., Zanin, G., Tabacchi, M. Resistance to ALS inhibitors in rice in north-western Italy. Proc. BCPC. Weeds. , 783-790 (1999).
  21. Scarabel, L., Berto, D., Sattin, M. Dormancy breaking and germination of Alisma plantago-aquatica. and Scirpus mucronatus. Aspects of Applied Biology. 69, 285-292 (2003).
  22. Collavo, A., Strek, H., Beffa, R., Sattin, M. Management of an ACCase-inhibitor-resistant Lolium rigidum. population based on the use of ALS inhibitors: weed population evolution observed over a 7 years field-scale investigation. Pest Manag. Sci. 69 (2), 200-208 (2013).
  23. Scarabel, L., Panozzo, S., Savoia, W., Sattin, M. Target-site ACCase-resistant Johnsongrass (Sorghum halepense). selected in summer dicot crops. Weed Technol. 28 (2), 307-315 (2014).
  24. Hess, M., Barralis, H., Bleiholder, H., Buhur, L., Eggers, T., Hack, H., Strauss, R. Use of the extended BBCH scale - general for the description of the growth stages of mono- and dicotyledonous weed species. Weed Res. 37 (6), 433-441 (1997).
  25. Collavo, A., Sattin, M. First glyphosate-resistant Lolium. spp. biotypes found in a European annual arable cropping system also affected by ACCase and ALS resistance. Weed Res. 54 (4), 325-334 (2014).
  26. Scarabel, L., Cenghialta, C., Manuello, D., Sattin, M. Monitoring and management of imidazolinone-resistant red rice (Oryza sativa. L., var. sylvatica.) in Clearfield® Italian paddy rice. Agronomy. 2 (4), 371-383 (2012).
  27. Zelaya, I. A., Anderson, J. A. H., Owen, M. D. K., Landes, R. D. Evaluation of spectrophotometric and HPLC methods for shikimic acid determination in plants: Models in glyphosate-resistant and-susceptible crops. J. Agric. Food Chem. 59 (6), 2202-2212 (2011).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

evre BilimleriSay 101Ot bilimdayan kl biyotipleriizlemetohum imlenmesiyabanc ot kontrolherbisit etkinli iherbisit tedavidiren seviyesi

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır