JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu iletişim kuralı kortikal interneuron ataları ve sonrası Mitotik interneuron öncüleri fare embriyonik kök değiştirilmiş bir embryoid vücut monolayer yöntemi kullanarak hücre oluşturmak için bir yöntem açıklanır. Bu ataları/hareketlenme öncesi ilk belirtiler kullanılan vitro olabilir fluorescently sıralanmış ve kader tayini çalışmak için yenidoğan yeni korteksimiz içine nakledilen veya tedavi uygulamalarında kullanılan.

Özet

GABAergic kortikal interneurons heterojen bir nüfus eksitatör piramidal nöronların çıkışını düzenleyen hem de piramidal nöron topluluklar çıkışlarını eşitleme kritik rol oynarlar hücre vardır. İnterneuron işlevinde açıkları nöropsikiyatrik bozukluklar, şizofreni, otizm ve epilepsi gibi çeşitli karıştığı olmuştur. Embriyonik kök hücrelerden kortikal interneurons türetme sadece kendi geliştirme ve fonksiyon incelenmesi için izin verir, ama kortikal interneuron ile ilgili bozukluklar patogenezinde temel moleküler mekanizmaları görmemizi sağlar. İnterneurons da hayatta, göç ve bütünleşmek içine ana bilgisayar kortikal devresi sonrası nakli, yapım onları kullanmak için ideal aday hücre tabanlı terapiler için olağanüstü kapasitesine sahip. Burada, bir ölçeklenebilir, yüksek verimli, değiştirilmiş embryoid vücut monolayer yöntemi interneuron ataları Nkx2.1 ifade etmek ve onların döl fare embriyonik kök hücreler (mESCs) üzerinden türetme için mevcut. Nkx2.1::mCherry:Lhx6::GFP çift muhabir mESC satırını kullanarak, Nkx2.1 ataları veya onların Lhx6 ifade sonrası Mitotik döl olabilir (FACS) sıralama Floresans aktif hücre ile izole ve daha sonra aşağı akım uygulamaları bir dizi kullanılacaktır. Ayrıca parvalbumin (PV) veya somatostatin için (SST) interneuron alt grupları, hangi-ebilmek var olmak yararlı kader tayini yönlerini çalışmak için veya kullanmak için alt grubu vitaminlerle zenginleştirilmiş interneuron yararlanacak terapötik uygulamalarda zenginleştirmek için yöntemler sağlar nakillerine.

Giriş

Fareler ve insanlar içinde kabaca tüm kortikal inhibitör interneurons (CIns) yarısı nerede medial ganglionic hazretleri (MGE) bilinen bir geçici subcortical yapısı içinde kaynaklanan neuroepithelial ataları, CIns ve diğer nöronal ve gliyal alt gruplar transkripsiyon faktörü Nkx2.11,2hızlı. CIn alt gruplar veya alt türlerinden kesişen morfolojik, nörokimyasal, Elektrofizyolojik ve bağlantı özellikleri3,4tarafından tanımlanır. MGE elde edilen CIns gruplandırılabilir çoğunlukla üst üste alt gruplar PV veya SST, hangi ilişkilendirir belirli Elektrofizyolojik ve bağlantı eğilimler5ile ifade onların ifade dayalı. İşlev bozukluğu interneurons, özellikle o PV alt grubu içinde birden çok nöropsikiyatrik bozukluklar ve hastalıklar6,7' karıştığı olmuştur. Bu yöntem genel amacı Mitotik ataları kök hücre kaynaklı ve göçmen öncüleri PV veya SST CIn kader kortikal interneuron biyoloji okuyan ve kullanılmak üzere hücre tabanlı terapiler için zenginleştirilmiş üretmektir.

İnterneuron ataları Nkx2.1 ifade etmek ve onların döl mESCs gelen türetme ölçeklenebilir ve yüksek verimli bir yöntem geliştirdik. Bir Nkx2.1::mCherry:Lhx6::GFP kullanarak çift muhabir mESC kaplamak8, Nkx2.1 ataları ya da onların Lhx6 ifade sonrası Mitotik döl FACS yolu ile izole ve daha sonra aşağı akım uygulamaları bir dizi kullanılacaktır. Sinyal yolları bir dizi, kültür süresi ve neurogenesis modu manipüle ederek, biz fluorescently etiketli interneuron öncüleri aşağı akım uygulamaları bir dizi için uygun milyonlarca alabilirsiniz.

MESCs9,10,11,12,13,14, Wnt üzerinde dayanır bizim yöntem MGE benzeri ataları oluşturmak için birkaç yöntem mevcut olmasına rağmen antagonist XAV-939, Foxg1/Nkx2.1 telencephalic ataları ortak ifade oluşturma özellikle verimli. Buna ek olarak, interneuron ataları veya onların sonrası Mitotik Lhx6 ifade döl çift muhabir sistemimiz üzerinden seçin yeteneği büyük ölçüde farklı ataları ve onların döl üretmek için kapasite artırır.

Protokol

Not: Bu protokol için açıklanan çift muhabir mESC hattı (sande@mail.med.upenn.edu) istek üzerine sağlanmaktadır.

1. medyası hazırlama

Not: tüm medya hücre kültüründe kullanmadan önce 37 ° c sıcak.

  1. Fare embriyonik Fibroblast (MEF) medya (hazırlığı 500 mL)
    1. Dulbecco'nın modifiye kartal orta (DMEM) ve bir 500 mL 0,22 µm gözenek filtre ünitesi filtreden 449 ml 50 mL fetal sığır serum (FBS) ekleyin.
    2. 1 mL antimikrobiyal ajan (50 mg/mL) filtrasyon sonra ekleyin. 1 ay veya aliquot ve ≤ dükkanında 4 ° C'de medya saklamak-20 ° c
  2. N2 medya (hazırlığı 500 mL)
    1. 5 mL L-alanin-L-glutamin ekleyin (100 x) ve 500 µL 2-Mercaptoethanol (55 mM) 489.5 ml DMEM: Besin karışımı F-12 (DMEM/F-12) ve 500 mL 0,22 µm gözenek filtre ünitesi filtreden.
    2. 1 mL antimikrobiyal ajan (50 mg/mL) ve 5 mL N2 ek-B filtrasyon sonra ekleyin. Medya 4 ° c ilâ 1 ay boyunca karanlıkta saklayın.
  3. (500 mL hazırlığı) serum-Alerjik büyüme orta (KSR)
    1. 75 mL serum-Alerjik orta ek, 5 mL L-glutamin ekleyin (100 x), 5 mL MEM sigara-esansiyel Amino asitler (MEM-NEAA) (100 x), ve 500 µL 2-Mercaptoethanol (55 mM) 413.5 mL sigara-glutamin içeren DMEM ve filtre 500 mL 0,22 µm gözenek filtre birimi üzerinden.
    2. 1 mL antimikrobiyal ajan (50 mg/mL) filtrasyon sonra ekleyin. Medya 4 ° c ilâ 1 ay için saklayın.
  4. Fare embriyonik kök hücre medya (hazırlığı 500 mL)
    1. 75 mL kök hücre sınıf FBS, 5 mL MEM-NEAA ekleyin (100 x), 5 mL L-glutamin (100 x), ve 500 µL 2-Mercaptoethanol (55 mM) 413.5 mL sigara-glutamin içeren DMEM ve filtre 500 mL 0,22 µm gözenek filtre birimi üzerinden.
    2. 1 mL antimikrobiyal ajan (50 mg/mL) filtrasyon sonra ekleyin. Medya 4 ° C'de 1 ay veya aliquot ve ≤ mağazasında için karanlıkta saklamak-20 ° c

2. Kültür mESCs

  1. Plaka mitotically etkin olmayan MEF besleyici hücreler MEF medya doku kültürü üzerine 3-4 x 104 hücreleri/cm2tabak tedavi. En az 12 h onları mESCs kaplama daha önce bir hücre kültür kuluçka ≥ % 95 bağıl nem ve % 5 CO2 37 ° C'de yerleşmek izin verir. Hemen değil kullandıysanız, her 3 günde MEF ortamı değiştirin. MEFs kaplama 7 gün içinde kullanılmayan eğer atın.
  2. MESCs (1-4 x 104 hücreleri/cm2yoğunluk aralığı) MEF plakaları fare lösemi inhibitör faktör (mLIF) (1000 U/mL) içeren mESC medya ekleyin. ≥ % 95 bağıl nem ve % 5 CO237 ° C'de hücreler kuluçkaya.
  3. Geçiş tripsin-EDTA (% 0.05 tripsin) kullanarak mESCs (1:5-1:10) çanak olur sonra ~ % 70-80 birleşmesi veya koloniler dokunmaya başlıyor. Bu genellikle 2 günde ortaya çıkar, ancak ilk kaplama yoğunluğu bağlı olarak 4 veya 5 gün sürebilir.
  4. MESCs mESC orta pluripotency tutmak için MEF besleyici katmandaki korumak.
  5. Farklılaşma başlamadan önce en az bir kez üzerine jelatin kaplı plakaları olmadan MEFs sulandırmak için MEFs hücreleri geçiş.
    1. % 0.1 ekleyerek jelatin kaplı plakalar fosfat tamponlu tuz (PBS) ile Ca2 +/Mg2 + bir doku kültürü tedavi çanak içinde jelatin hazırlamak ve en az 1 h. plaka 1.5-2 x 106 hücreler/10 cm tabak için 37 ° C'de bırakarak (2.7-3.6 x 104 hücre/cm2) ve hücre farklılaşması başlamadan önce 2 gün boyunca genişletmek izin verir.

3. mESCs MGE benzeri Telencephalic ataları doğru ayırt

  1. Farklılaşma gün (DD) 0 "hücreleri float" =
    1. MESCs büyüdü sonra jelatin kaplı levha 2 gündür medya Aspire edin ve PBS olmadan Ca2 +/Mg2 +bir kez hücrelerle yıkayın. Yeterli tripsin-plaka (tipik olarak 4 mL tripsin-EDTA bir 10 cm doku kültürü yemek için) yüzeyine kapak ve geri içine ≥95% bağıl nem ve % 5 CO2 37 ° C'de kuluçka makinesi 4 dk için hücreleri yerleştirmek için EDTA (% 0.05 tripsin) ekleyin.
    2. 4 dk sonra mESC medya ile 2 kez birimi kullanan tripsin-EDTA gidermek. Hücreleri bir uygun ölçekli santrifüj tüpü aktarmak ve hücreleri 200 x g 5 min için de santrifüj kapasitesi. 5 dk sonra tüpü çıkarması ve medya Pelet bozmadan Aspire edin. BMP inhibitörü LDN-193189 içeren Pelet 1 ml KSR:N2 medya (1:1) resuspend (250 nM) ve Wnt inhibitörü XAV-939 (10 µM).
    3. Bir hemasitometre veya otomatik hücre sayacı kullanarak hücre konsantrasyonu ölçmek. LDN-193189 içeren KSR:N2 medya (1:1) 75.000 hücre/mL ekleyerek olarak embryoid organları (EBs) hücreleri büyüyen Başlat (250 nM) ve XAV-939 (10 µM) yapışık olmayan doku kültürü yemekleri. ≥ % 95 bağıl nem ve % 5 CO237 ° C'de hücreler kuluçkaya.
  2. DD1 üzerinde "kaplama doku kültürü tedavi yemekleri ile Poli-L-lizin (10 µg/mL PBS ile Ca2 +/Mg2 +) tarafından bir gecede açılış" hücre (O/N) ≥ % 95 bağıl nem ile 37 ° C'de veya en az 1 h için hazırlayın.
  3. DD2, Poli-L-lizin Aspire edin ve laminin (10 µg/mL PBS ile Ca2 +/Mg2 +) ile plakalar ceket O/N ≥ % 95 bağıl nem ile 37 ° C'de.
    Not: O/N optimal, gibi küçük ise 2 h yeterli olabilir. Tabak diğer gün kullanılmazsa, laminin Aspire edin, PBS ile Ca2 +/Mg2 +değiştirin ve 4 ° C'de 2 hafta için saklamak.
  4. DD3 ("Kara hücreleri")
    1. EB ayrılma işlemine başlamadan önce laminin Aspire edin ve tabakaları bana izin tamamen kuru bir doku kültürü Hood. Parlak veya gözle görülür ıslak görünen plakaları kullanmayın. EBs medya ile 15 mL tüp ve 15 g x veya EBs pelleted kadar 3-4 dk santrifüj içine aktarın.
  5. Medya Aspire edin ve 3 mL Dnaz içeren hücre dekolmanı çözümü ekleyin (2 U/mL) ve ≥ % 95 bağıl nem ile 37 ° C'de kuluçkaya ve % 5 CO2 15 dakika süreyle yavaşça EB ayrılma yardım için tüp her 3 dakikada fiske.
  6. EBs artık görünür veya 15dk geçen kez Dnaz içeren 6 mL KSR:N2 (1:1) eklemek (1 U/mL) ve 200 x g de 5 dk santrifüj.
  7. KSR:N2 (1:1) LDN-193189 içeren hücrelerde plaka (250 nM), XAV-939 (10 µM) ve ROCK inhibitörü Y-27632 (10 µM) 4.5-5 x 104 hücreleri/cm2.

4. SST zenginleştirici Protokolü: "DD12 GFP yüksek Sonic Kirpi (SHH)" (Adım 3.7 devamı)

  1. DD5 üzerinde FGF-2 içeren medya KSR:N2 (1:1) ile değiştirmek (10 ng/mL), IGF-1 (20 ng/mL) ve SSH (50 ng/mL).
  2. Gün 8 (Adım 4.4) yeniden kaplama için doku kültürü tabak hazırlamak 3.2-3.3 adımlarda açıklanan yönergeleri kullanarak.
  3. DD7 üzerinde FGF-2 içeren medya KSR:N2 (1:1) ile değiştirmek (10 ng/mL), IGF-1 (20 ng/mL) ve ŞŞŞ (50 ng/mL).
  4. DD8 üzerinde hücreleri yeniden plaka.
    Not: Bu adım gerekli değildir, ancak hücreleri yeniden kaplama erken farklılaşmış, istenmeyen hücre tipleri azaltabilir. Yeniden kaplama aynı zamanda aşağı akım immunohistokimyasal analizleri yapmak zor hücre topları keser ve sonraki zaman noktalarda FACS verimliliğini artırır.
    1. Hücreleri yeniden plaka, plaka ile tripsin-EDTA (% 0.05 tripsin) hücrelerden ≥95% bağıl nem ve % 5 CO237 ° C'de 5 min için ayırmak için. KSR:N2 ile 2 kez birimi kullanan tripsin-EDTA gidermek ve 5 dakika süreyle 200 x g, santrifüj filtre hücreleri herhangi bir kümeleri kaldırmak için 40 µm filtre tüpünden. FGF-2 içeren hücreler 250.000 hücreler/cm2 N2/KSR (1:1)'de yeniden plaka (10 ng/mL), IGF-1 (20 ng/mL) ve Y-27632 (10 µM) ŞŞŞ ile (50 ng/mL).
      Not: Bunun yerine, karar DD8 sayfasındaki hücreleri yeniden plaka değil yaptıysanız, medya ŞŞŞ içeren KSR:N2 ile değiştirmek (50 ng/mL) DD12 DD7 her 2 gün ve IGF-1 eklemeye devam edin (20 ng/mL) ve FGF-2 (10 ng/mL) DD9 kadar.
  5. DD10 üzerinde medya ŞŞŞ içeren KSR:N2 ile değiştirmek (50 ng/mL).
  6. DD12 üzerinde SST alt için zenginleştirilmiş hücreleri elde etmek için FACS Lhx6::GFP belirlemek için kullanın-sadece hücreleri ifade.
    1. Hücreleri ayırmak için bir sigara tripsin içeren hücre-ayrılma reaktif tripsin-EDTA yerine kullanın. Hücreleri bir kez PBS olmadan Ca2 +/Mg2 +ile yıkayın. Dnaz içeren önceden ısıtılmış tripsin sigara içeren hücre-ayrılma reaktif ekleyin (2 U/mL) hücreleri. Kuluçka makinesi 10-30 dk ya kadar hücreleri bağlantısız ≥95% bağıl nem ve % 5 CO2 37 ° C'de yer onları. Yavaşça plakaları her 5 dk ayrılma yardım için dokunun.
      Not: DD11-12 kültürler için sadece 10-15 dk gerekli olabilir. DD15-16 kültürler için 30 dakika veya daha fazla tam ayrılma için gerekli olabilir.
    2. Hücreleri tamamen tabağını kaldırdı, standart protokolleri kullanarak FACS izolasyon için ilerlemek veya diğer aşağı akım analizleri hücrelerdeki kullanmak.

5. PV zenginleştirici Protokolü: "DD11/DD17 mCherry + aPKCi"--dan adım 3.7 (devamı)

  1. DD5 üzerinde FGF-2 içeren medya KSR:N2 (1:1) ile değiştirmek (10 ng/mL) ve IGF-1 (20 ng/mL).
  2. DD8 yeniden kaplama için doku kültürü tabak hazırlamak (Adım 4.4) kullanma yönergeleri özetlenen adımlar 3.2-3.3.
  3. DD7 üzerinde FGF-2 içeren medya KSR:N2 (1:1) ile değiştirmek (10 ng/mL) ve IGF-1 (20 ng/mL).
  4. DD8 üzerinde hücreleri aşağıdaki istisnalar 4.4. adımda açıklandığı gibi yeniden plaka: hücreleri yeniden kaplama, ŞŞŞ ile smoothened agonist yerine (SAG; 30 nM) ve atipik PKC inhibitörü (aPKCi; 2 µM) ekleyin. Birlikte, yeniden hassasiyette medya ele alındığında şimdi N2/KSR (1:1) FGF-2 içeren (10 ng/mL), IGF-1 (20 ng/mL), Y-27632 (10 µM), SAG (30 nM) ve aPKCi (2 µM).
  5. DD10 üzerinde medya aPKCi (2 µM) içeren KSR:N2 ile değiştirin.
  6. DD11
    Not: Bu noktada, Nkx2.1::mCherry+ hücreleri PV CIns olmak için zenginleştirilmiş.
    1. 4.6. adımda belirtilen aynı iletişim kuralını kullanarak FACS için plaka hücrelerden ayırmak. Karar daha sonra bir farklılaşma gün Nkx2.1::mCherry+ hücreleri toplamak için bu adımı dikkate almayın.
  7. DD12 üzerinde medya aPKCi (2 µM) içeren KSR:N2 ile değiştirin. DD14 üzerinde medya aPKCi (2 µM) içeren KSR:N2 ile değiştirin. DD16 üzerinde medya aPKCi (2 µM) içeren KSR:N2 ile değiştirin. DD17 üzerinde 4.6. adımda belirtilen aynı iletişim kuralını kullanarak Nkx2.1::mCherry+ hücreleri toplamak.

6. PV zenginleştirici Protokolü: "DD17 mCherry düşük ŞŞŞ" (Adım 3.7 devamı)

  1. DD5 üzerinde FGF-2 içeren medya KSR:N2 (1:1) ile değiştirmek (10 ng/mL) ve IGF-1 (20 ng/mL). DD7 üzerinde FGF-2 içeren medya KSR:N2 (1:1) ile değiştirmek (10 ng/mL) ve IGF-1 (20 ng/mL).
  2. DD9 üzerinde medya KSR:N2 (1:1) ile değiştirin. Bu noktadan itibaren hiçbir ek büyüme faktörleri gereklidir.
    1. 2 günde DD17 hücrelerdeyse hasat kadar medya değiştirmeye devam.

Sonuçlar

Bu raporda açıklanan iletişim kuralı bizim yayımlanmış protokolleri15,16,17 değiştirilmiş bir versiyonu ve Nkx2.1::mCherry:Lhx6::GFP çift-muhabir mESC hattımız ile kullanım için optimize edilmiştir. DD0-5 DD8 yeniden kaplama ile birlikte, Wnt inhibitörü XAV-939 ekleyerek neyin yukarı tüm DAPI + çekirdeği kültüründe % 50'si de Nkx2.1 (şekil 1A

Tartışmalar

Bu yöntem J1 kaynaklı mESCs (SCRC-1010) desenlendirme son derece etkili olmakla birlikte, diğer mESC çizgileri ve klonal yalıtır değişken başarı yaşadım. Örneğin, Foxg1::venus mESCs (EB3 kaynaklı; Danjo vd. 13) yanıt kötü bu protokolü ve Foxg1 indüksiyon DD12 tarafından genellikle sırasına % 1-2 olur. Tam olarak anlamıyorum nedeniyle, aynı anda (JQ27 denir) Bu protokol için açıklanan satır olarak izole edildi (JQ59 denir) başka bir Nkx2.1::mCherry:Lhx6::GFP ?...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Bu protokolü geliştirmeye yardımcı erken çalışmaları için Nkx2.1::mCherry:Lhx6:GFP çift muhabir mESC çizgi gibi Jennifer Tyson, Asif Maroof ve Tim Petros geliştirmek için Qing Xu için minnettarız. Biz de CHOP Akış Sitometresi çekirdek teknik destek için teşekkür ederiz. Bu eser bir NIH R01 MH066912 (SA) ve F30 MH105045-02 (DT) tarafından desteklenmiştir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Bottle-top vacuum filter systemCorningCLS430769
Test Tube with Cell Strainer Snap CapThermoFisherCorning 352235
Mouse embryonic fibroblasts (CF-1 MEF IRR 7M)MTI-GlobalstemGSC-6101G1 vial of 7M MEFs is sufficient for four 10-cm TC plates. References: 29,35
FBSAtlanta BiologicalsS11150H
PrimocinInvivogenAnt-pm-2Also known as antimicrobial agent. Do not filter with base media -- add after filtration. References: 9,11,36,37
N2 supplement-BStemcell Technologies7156Do not filter with base media -- add after filtration
Glutamax (100x)ThermoFisher35050061Also known as L-alanine-L-glutamine. References: 9,11,38,39
KnockOut Serum Replacement (KSR)ThermoFisher10828028Also known as serum-free medium supplement. References: 9,11
L-glutamine (100x)ThermoFisher25030081
MEM-NEAA (100x)ThermoFisher11140050
2-MercaptoethanolThermoFisher21985023
KnockOut DMEMThermoFisher10829018Also known as non-glutamine containing DMEM. References: 9,11
Hyclone FBSVWR82013-578Also known as stem cell grade FBS. References: 9,11
Tissue culture treated dish (10cm)BD Falcon353003
Non-adherent sterile petri dish (10cm)VWR25384-342
Leukemia inhibitory factor (mLIF)ChemiconESG1107Do not freeze, store at 4'C. References: 9,11
DMEM/F12ThermoFisher11330032
0.1% Gelatin SolutionATCCATCC PCS-999-027
LamininSigmaL2020
Poly-L-lysineSigmaP6282
Trypsin-EDTA (0.05%)ThermoFisher25300054
AccutaseThermoFisherA1110501Also known as non-trypsin containing cell dissociation reagent. References: 9,11
RQ1 RNase-Free DNasePromegaM610A
LDN-193189Stemgent04-0074Resuspend in DMSO and store at -80'C in single use aliquots
XAV939Stemgent04-0046Resuspend in DMSO and store at -80'C in single use aliquots
rhFGF-2R&D Systems233-FBResuspend in PBS with 0.1% BSA and store at -80'C in single use aliquots
rhIGF-2R&D Systems291-G1Resuspend in PBS with 0.1% BSA and store at -80'C in single use aliquots
ROCK inhibitor (Y-27632)Tocris1254Resuspend in DMSO and store at -80'C in single use aliquots
Smoothened agonist (SAG)Millipore566660-1MGResuspend in H20 and store at -80'C in single use aliquots
rm Sonic Hedgehog/SHHR&D Systems464-SH-025Resuspend in PBS with 0.1% BSA and store at -80'C in single use aliquots
PKCζ Pseudosubstrate Inhibitor, MyristoylatedEMD Millipore539624Resuspend in H20 and store at -80'C in single use aliquots

Referanslar

  1. Jones, E. G. The origins of cortical interneurons: mouse versus monkey and human. Cereb Cortex. 19, 1953-1956 (2009).
  2. Wonders, C. P., Anderson, S. A. The origin and specification of cortical interneurons. Nature reviews. Neuroscience. 7 (6), 687-696 (2006).
  3. Ascoli, G. A., et al. Petilla terminology: nomenclature of features of GABAergic interneurons of the cerebral cortex. Nature reviews. Neuroscience. 9, 557-568 (2008).
  4. DeFelipe, J., et al. New insights into the classification and nomenclature of cortical GABAergic interneurons. Nature reviews. Neuroscience. 14, 202-216 (2013).
  5. Xu, X., Roby, K. D., Callaway, E. M. Immunochemical characterization of inhibitory mouse cortical neurons: three chemically distinct classes of inhibitory cells. J Comp Neurol. 518, 389-404 (2010).
  6. Inan, M., Petros, T. J., Anderson, S. A. Losing your inhibition: Linking cortical GABAergic interneurons to schizophrenia. Neurobiol Dis. 53, 36-48 (2013).
  7. Benes, F. M., Berretta, S. GABAergic interneurons: implications for understanding schizophrenia and bipolar disorder. Neuropsychopharmacology. 25, 1-27 (2001).
  8. Tyson, J. A., Goldberg, E. M., Maroof, A. M., Petros, T. P., Anderson, S. A. Duration of culture and Sonic Hedgehog signaling differentially specify PV versus SST cortical interneuron fates from embryonic stem cells. Development. 142, 1267-1278 (2015).
  9. Au, E., et al. A modular gain-of-function approach to generate cortical interneuron subtypes from ES cells. Neuron. 80, 1145-1158 (2013).
  10. Petros, T. J., Maurer, C. W., Anderson, S. A. Enhanced derivation of mouse ESC-derived cortical interneurons by expression of Nkx2.1. Stem Cell Res. 11, 647-656 (2013).
  11. Cambray, S., et al. Activin induces cortical interneuron identity and differentiation in embryonic stem cell-derived telencephalic neural precursors. Nat Commun. 3, 841 (2012).
  12. Chen, Y. J., et al. Use of "MGE Enhancers" for Labeling and Selection of Embryonic Stem Cell-Derived Medial Ganglionic Eminence (MGE) Progenitors and Neurons. PloS one. 8, e61956 (2013).
  13. Danjo, T., et al. Subregional specification of embryonic stem cell-derived ventral telencephalic tissues by timed and combinatory treatment with extrinsic signals. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 31, 1919-1933 (2011).
  14. Watanabe, K., et al. Directed differentiation of telencephalic precursors from embryonic stem cells. Nat Neurosci. 8, 288-296 (2005).
  15. Tyson, J. A., et al. Duration of culture and sonic hedgehog signaling differentially specify PV versus SST cortical interneuron fates from embryonic stem cells. Development. 142, 1267-1278 (2015).
  16. Maroof, A. M., et al. Directed differentiation and functional maturation of cortical interneurons from human embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 12, 559-572 (2013).
  17. Tischfield, D. J., Kim, J., Anderson, S. A. Atypical PKC and Notch Inhibition Differentially Modulate Cortical Interneuron Subclass Fate from Embryonic Stem Cells. Stem Cell Reports. 8, 1135-1143 (2017).
  18. Liodis, P., et al. Lhx6 activity is required for the normal migration and specification of cortical interneuron subtypes. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 3078-3089 (2007).
  19. Du, T., Xu, Q., Ocbina, P. J., Anderson, S. A. NKX2.1 specifies cortical interneuron fate by activating Lhx6. Development. 135, 1559-1567 (2008).
  20. Marin, O., Anderson, S. A., Rubenstein, J. L. Origin and molecular specification of striatal interneurons. Journal of Neuroscience. 20, 6063-6076 (2000).
  21. Xu, Q., Wonders, C. P., Anderson, S. A. Sonic hedgehog maintains the identity of cortical interneuron progenitors in the ventral telencephalon. Development. 132, 4987-4998 (2005).
  22. Glickstein, S. B., Alexander, S., Ross, M. E. Differences in cyclin D2 and D1 protein expression distinguish forebrain progenitor subsets. Cereb Cortex. 17, 632-642 (2007).
  23. Petros, T. J., Bultje, R. S., Ross, M. E., Fishell, G., Anderson, S. A. Apical versus Basal Neurogenesis Directs Cortical Interneuron Subclass Fate. Cell Rep. 13, 1090-1095 (2015).
  24. Xu, Q., Tam, M., Anderson, S. A. Fate mapping Nkx2.1-lineage cells in the mouse telencephalon. J Comp Neurol. 506, 16-29 (2008).
  25. Wonders, C. P., et al. A spatial bias for the origins of interneuron subgroups within the medial ganglionic eminence. Dev Biol. 314, 127-136 (2008).
  26. Inan, M., Welagen, J., Anderson, S. A. Spatial and temporal bias in the mitotic origins of somatostatin- and parvalbumin-expressing interneuron subgroups and the chandelier subtype in the medial ganglionic eminence. Cereb Cortex. 22, 820-827 (2012).
  27. Flames, N., et al. Delineation of multiple subpallial progenitor domains by the combinatorial expression of transcriptional codes. The Journal of neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 9682-9695 (2007).
  28. Fogarty, M., et al. Spatial genetic patterning of the embryonic neuroepithelium generates GABAergic interneuron diversity in the adult cortex. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 10935-10946 (2007).
  29. Eiraku, M., et al. Self-organized formation of polarized cortical tissues from ESCs and its active manipulation by extrinsic signals. Cell Stem Cell. 3, 519-532 (2008).
  30. Colasante, G., et al. Rapid Conversion of Fibroblasts into Functional Forebrain GABAergic Interneurons by Direct Genetic Reprogramming. Cell Stem Cell. 17, 719-734 (2015).
  31. Xu, Q., Cobos, I., De La Cruz, E., Rubenstein, J. L., Anderson, S. A. Origins of cortical interneuron subtypes. The Journal of neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. 24, 2612-2622 (2004).
  32. Southwell, D. G., et al. Interneurons from embryonic development to cell-based therapy. Science. 344, 1240622 (2014).
  33. Tyson, J. A., Anderson, S. A. GABAergic interneuron transplants to study development and treat disease. Trends Neurosci. 37, 169-177 (2014).
  34. Donegan, J. J., et al. Stem cell-derived interneuron transplants as a treatment for schizophrenia: preclinical validation in a rodent model. Mol Psychiatry. , (2016).
  35. Deglincerti, A., et al. Self-organization of human embryonic stem cells on micropatterns. Nat Protoc. 11, 2223-2232 (2016).
  36. Chambers, S. M., et al. Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling. Nat Biotechnol. 27, 275-280 (2009).
  37. Wang, J., et al. Isolation and cultivation of naive-like human pluripotent stem cells based on HERVH expression. Nat Protoc. 11, 327-346 (2016).
  38. Zeltner, N., et al. Capturing the biology of disease severity in a PSC-based model of familial dysautonomia. Nat Med. 22, 1421-1427 (2016).
  39. Blahos, J., et al. A novel site on the Galpha -protein that recognizes heptahelical receptors. J Biol Chem. 276, 3262-3269 (2001).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Neurosciencesay 130beyinfareinterneuronfarkl la makorteksh cre k lt rk k h crenakli

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır