JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu iletişim kuralı spectrophotometrically trans-plazma membran elektron taşıma ekstraselüler elektron alıcısı kullanan izlemek ve bu hücre dışı elektron alıcısı ile oluşabilir enzimatik etkileşimleri analiz için hedeftir.

Özet

Trans-plazma membran elektron taşıma (tPMET) hücre dışı oksidanlar ile hücre içi indirgeyici stres hücrelerden korunması hem de hasar koruma bir rol oynar. Bu işlem için hücre dışı oksidanlar hücre içi reductants elektron taşıma iyi tanımlanmış değildir. Burada hücre dışı elektron alıcısı kullanan tPMET izlemek için C2C12 myotubes tarafından spektrofotometrik deneyleri mevcut: suda çözünen tetrazolium tuz-1 (WST-1) ve 2,6-dichlorophenolindophenol (DPIP veya DCIP). Bu elektron alıcısı azaltılması, biz gerçek zamanlı analiz bu süreçte izlemek edebiliyoruz. Enzimler askorbat oksidaz (AO) ve süperoksit dismutaz (SOD) deneyleri için gibi eklenmesiyle, biz tPMET kısmını askorbat verme ya da süperoksit üretimi nedeniyle sırasıyla belirleyebilirsiniz. WST-1 düşük arka plan ile istikrarlı sonuçlar üretmek için gösterildi iken, DPIP AO ve spektrofotometrik analiz ile gösterilmiştir SOD eklenmesi sonra yeniden oksitlenmiş olmayı başardı. Bu yöntem bir gerçek zamanlı, çok iyi, hızlı spektrofotometrik tahlil tPMET, ferricyanide (FeCN) ve ferricytochrome c azaltma gibi izlemek için kullanılan diğer yöntemler üzerinde avantajları ile gösterilmektedir.

Giriş

Saf plazma membran elektron alıcısı azaltma becerisini plazma zarı doğasında Redoks kapasitesi1sahip görünümüne yol açmıştır. Daha önce görüldü mantar, bitki ve hayvan, tPMET bir işlemi birden çok organizmalar2,3,4,5' e ortak var. Saccharomyces cerevisiae, havuç hücreleri, eritrositler, lenfositler, osteosarkom, Melanom, makrofajlar, iskelet kası ve nötrofil2,3, bu işlem özellikle gösterilmiştir 4 , 5 , 6 , 7. hücre dışı oksidanlar azaltmak için plazma zarı arasında elektron taşıma bir süreç içinde tPMET de dahil olmak üzere birçok hücresel işlevler ilgilenmektedir: hücre büyüme5,8, hücre canlılığı9, demir metabolizma10,11,12,13ve Reaktif oksijen türleri12,14,15koruma sinyalizasyon hücre. Pek çok hücresel fonksiyon tPMET'ın katılımı nedeniyle, tPMET bir dengesizlik kanser16, kardiyovasküler hastalık17, dahil olmak üzere bazı ciddi sağlık koşulları, gelişimine katkıda bulunmak olan ve metabolik Sendromu18.

Plazma zarı arasında elektron transferi izlemek için birden çok yolu vardır, ancak en çok kullanılan teknik ekstraselüler elektron alıcısı Renkölçer deneyleri ile azalma değerlendirmek için. Yaygın olarak kullanılan hücre dışı elektron alıcısı tetrazolium tuzları, DPIP, FeCN ve ferricytochrome c19,20dir. En sık kullanılan tetrazolium WST-119bilinen ikinci nesil bir tuz tuzudur. Bu bileşik Renkölçer deneyleri ilk nesil tetrazolium tuzlar, su çözünürlük21artırmak iki Sülfonat grup nedeniyle göre kullanmak kolaydır. WST-1, iki tek-elektron transferi olaylar ara elektron alıcısı 1-metoksi-phenazine methosulfate (MPM), ile birlikte azalır. Bu azalma WST-1 zayıf renkli oksitlenmiş şeklinde bir daha yoğun, sarı formazan20,22' ye değişir. WST-1 37 x 103 M-1cm-1, yüksek molar tükenme katsayısı bir yüksek tahlil duyarlılık21,22' ye lider vardır. DPIP da tPMET izlemek için bir hücre dışı elektron alıcısı olarak kullanılmaktadır. Bu DPIP extracellularly tPMET ara elektron alıcısı23,24yardımı olmadan tarafından azaltılabilir gösterilmiştir. Ara elektron alıcısı olmaması nedeniyle DPIP doğrudan WST-124aksine plazma zarı pick-up elektron olabilir. Benzer şekilde DPIP, extracellularly ferrocyanide için tPMET ara elektron alıcısı19,24yardımı olmadan düşülmesi için FeCN gösterilmiştir. WST-1 ve DPIP, FeCN bir alt tahlil duyarlılık9için önde gelen bir düşük molar tükenme katsayısı vardır. TPMET izlemek için başka bir sık kullanılan hücre dışı elektron alıcısı ferricytochrome c. WST-1, ferricytochrome c azaltma artar ara elektron alıcısı, MPM22kullanımı ile benzer olduğunu. WST-1 olsa da, ferricytochrome c yöntemi yüksek bir arka plan ve düşük molar tükenme katsayısı22nedeniyle daha az duyarlıdır.

Burada tPMET spektrofotometrik deneyleri aracılığıyla gerçek zamanlı analiz için bir yöntem mevcut. Ekstraselüler elektron alıcısı ferricytochrome c gibi diğer yaygın olarak karşılaştırıldığında olmak daha ucuz kullanılan iken her ikisi de yüksek molar tükenme katsayısı gibi WST-1 ve DPIP, hücre dışı elektron alıcısı yöntemi kullanılmıştır. Biz phenazine methosulfate (PMS) kullanılan MPM'ler yerine onlar-si olmak benzer kimyasal makyaj ve PMS çok daha az pahalı. MPM'ler uzun bir raf ömrü ihtiyacı bir ticari kiti için önemli bir özelliği olan photochemically stabil. İstikrar sorunu olmamalı böylece Ancak, biz PMS her tahlil için taze olun. Biz de hücre dışı elektron alıcısı ve daha fazla tPMET süreci karakterize için kullanılması gereken enzimler arasındaki olası enzimatik etkileşimler (bkz. şekil 1) değerlendirmek için bir yöntem mevcut. Özellikle, AO ve SOD kullanılan enzimler tPMET kısmını askorbat taşıma veya hücre dışı süperoksit açıklaması, plazma zarı arasında taşınması elektron için iki yaygın yöntem nedeniyle belirlemek.

Protokol

Not: Resim 1 anahtar adımlar şematik bir bakış için bkz:.

1. WST-1 azaltma tahlil

  1. Standart hücre kültür yordamlar7 satır A-f kullanan bir 96-şey tabak içinde kullanarak C2C12 yapışık hücreleri ayırt etmek ve büyümek
    1. İn Dulbecco'nın modifiye kartal orta (%2 at serum, 100 U/mL penisilin ve 0.1 mg/mL streptomisin ile desteklenmiş DMEM) oluşan bir farklılaşma aracı kullanın. %5 CO237 ° C'de hücreler kuluçkaya.
    2. TPMET askorbat katılımı izlerken, farklılaşma medya 100 µM askorbik asit ile ek. Hücre farklılaşması medya ~ 24-48 için kuluçkaya izin h.
  2. Hisse senedi WST-1 ve PMS çözümleri hazırlayın.
    1. Bir 10 mM hisse senedi WST-1 yapmak için WST-1 0,033 g dağıtılması (formül ağırlık (FW): 651.34 g/mol) 5 mL fosfat tamponlu tuz (PBS). 4 ° C'de mağaza
    2. PMS 5 mM stokunun yapmak, PMS 0.0023 g dağıtılması (FW: 306.34 g/mol) 1,5 ml deiyonize H2O (diH2O). -20 ° C'de depolayın ve ışıktan korumak.
  3. İçin PBS veya HEPES 11,4 ml 5 mM son bir konsantrasyon arabelleğe alınmış serum glikoz 0.0108 g ekleyin (HBS; 20 mM HEPES sodyum tuz, 140 mM NaCl, 5 mM KCl, 2.5 mM MgSO4, 1 mM CaCl2). 10 mm WST-1 400 µM son bir konsantrasyon ve 5 mm PMS 20 µM son bir konsantrasyon için 48 µL için 480 µL ekleyin.
  4. TPMET askorbat katılımı izlerken, çözüm iki 6 mL aliquots bölün. Bir aliquot için Ekle diH2O 6 µL ve diğer aliquot olarak 2 kU/mL AO 2 U/mL nihai bir konsantrasyon için 6 µL ekleyin.
  5. TPMET katılımı süperoksit izlerken, çözüm iki 6 mL aliquots bölün. Bir aliquot için 0,1 M KPO4 arabelleği 55 µL ekleyin ve diğer aliquot 6.5 kU/ml SOD 60 U/mL nihai bir konsantrasyon için 55 µL ekleyin.
  6. PBS hücrelerle yıkayın. Medya Aspire edin ve 150 µL PBS ekleyin. O zaman PBS Aspire edin.
    Not: Kaplama, ekli hücrelerle tahlil yapılır. Böylece, hiçbir aralıklarla veya tripsin yıkama işleminin kullanımı olduğunu.
  7. WST-1 çözüm (-) 100 µL eklemek SOD veya (-) AO sütunlara 1-6 ve 100 µL WST-1 çözüm (+) SOD veya (+) AO 96-şey plaka 7-12 sütuna ekleyin. G ve H satır arka plan denetimleri kullanın (değişikliği izlemek içinYani, Wells hücreleri olmadan tek başına reaktif Absorbans içinde).
  8. 438, 1 h için her 10 min Spektrofotometre kullanarak Absorbans değerleri ölçmek nm.
  9. Okuma sonra medya Aspire edin ve her yıkama PBS 150 µL ile iyi. O zaman PBS Aspire edin.
  10. Her şey için Absorbans değişimi Absorbans için o kadar iyi herhangi bir zamanda noktada bir kuyudan için ilk Absorbans çıkararak hesaplar. Bu değişiklik arka plan wells (Yani, wells ile tahlil çözüm ama hiçbir hücre) gözlenen Absorbans (varsa) yapılan değişikliğin düzeltin.
  11. Analiz için 60 dk kontrol ölçüm Absorbans verileri normalleştirmek veya wells PBS veya HBS ile yıkayın ve bir bicinchoninic asit (BCA) protein tahlil gerçekleştirin.
  12. 2 mg/mL sığır serum albumin (BSA) standart Ekle (aralığı 0.5-2 hücreleri izdiham derecesine bağlı olarak standart Curve µL) boş wells için (satır G ve H), sonra BCA reaktif için bütün wells ekleyin..
  13. Nmol protein µg başına WST-1 azaltılması yoluyla veri ölçmek. 37 mM-1 cm-1 22 tükenme katsayısı azaltılmış WST-1'de 438 kullanmak nm.

2. DPIP azaltma tahlil

  1. Büyümek ve C2C12 yapışık hücreleri ile aynı prosedürü adım 1.1 olarak ayırt etmek.
  2. Hisse senedi 10 mM DPIP çözüm aşağıdaki gibi hazırlayın. DPIP 0,029 g dağıtılması (FW: 290.08 g/mol) diH2O. Onayla 600 Absorbans ölçme tarafından DPIP konsantrasyonu 10 ml nm bir Spektrofotometre ile. 1 mM-1 cm-1 23 tükenme katsayısı azaltılmış DPIP 600 kullanmak nm. 4 ° C'de mağaza
  3. 0.0108 g glikoz PBS 11.880 mL 5 mM son bir konsantrasyon için ekleyin. 10 mm DPIP 100 µM son bir konsantrasyon için 120 µL ekleyin.
  4. TPMET askorbat katılımı izlerken, çözüm iki 6 mL aliquots bölün. Bir aliquot için Ekle diH2O 6 µL ve diğer aliquot olarak 2 kU/mL AO 2 U/mL nihai bir konsantrasyon için 6 µL ekleyin.
  5. TPMET katılımı süperoksit izlerken, çözüm iki 6 mL aliquots bölün. Bir aliquot için 0,1 M KPO4 arabelleği 55 µL ekleyin ve diğer aliquot 6.5 kU/ml SOD 60 U/mL nihai bir konsantrasyon için 55 µL ekleyin.
  6. Medya Aspire edin ve PBS 150 µL hücrelerde yıkayın. PBS Aspire edin ve DPIP çözüm (-) 100 µL eklemek SOD veya (-) AO sütunlara 1-6 ve 100 µL DPIP çözüm (+) SOD veya (+) AO 96-şey plaka 7-12 sütuna ekleyin. Arka plan denetimleri satır G ve H kullanarak (değişikliği izlemek içinYani, Wells hücreleri olmadan tek başına reaktif Absorbans içinde).
  7. 600 nm kullanarak Absorbans ölçmek Spektrofotometre her 10 min için 1 h Absorbans 60 dk adımlara 1.9-1,13 benzer denetime göre değişiklik ölçmek.

3. düşük elektron alıcısı yüzeylerde AO veya SOD için olup belirlenmesi

  1. PBS veya HBS 5.436 mL için 10 mm WST-1 400 µM son bir konsantrasyon ve 5 mm PMS 20 µM son bir konsantrasyon için 24 µL için 240 µL ekleyin.
    1. DPIP için 10 mm DPIP, 100 µM, son bir konsantrasyon için 60 µL PBS veya HBS için 5.940 mL ekleyin.
  2. Her bir düz-alt 96-şey plaka yokluğunda hücreleri, iyi ve 438, Spektrofotometre Absorbans ölçmek için çözüm 100 µL eklemek için DPIP için WST-1 veya 600 nm nm.
  3. 10 mM askorbat 1 µL kuyular için 100 mikron son bir konsantrasyon yarısını ekleyin. Onu stabilize kadar Absorbans izlemek.
  4. İstikrar, üzerine 200 U/mL AO 1 µL 2 U/mL nihai bir konsantrasyon için her şey için veya 60 U/mL her son bir konsantrasyon iyi ve 1 h Absorbans izlemek için 6 kU/ml SOD 1 µL ekleyebilirsiniz.

Sonuçlar

İstatistik ANOVA ile RStudio istatistiksel yazılım25kullanarak yinelenen ölçüleri ile gerçekleştirilmiştir. Örneklerin boyutu şekil efsanelerde gösterilir.

TPMET izlemek için C2C12 myotubes hücre dışı elektron alıcısı, WST-1 ve DPIP ile birlikte kullanılmıştır. AO WST-1 kısmını belirlemek için kullanılan ve DPIP azalma nedeniyle askorbat sızma ve SOD WST-1 azaltma kısmını ...

Tartışmalar

Biz hücre dışı elektron alıcısı, WST-1 ve DPIP, C2C12 myotubes tPMET izlemek için spektrofotometrik deneyleri içinde kullanmak için iki yöntem sundu. Spektrofotometre plaka okuyucu ve hücre hatlarında standart kültür yordamlar büyüme ile tPMET bu elektron alıcısı basit Mikroplaka tahlil ile izlemek mümkündür. İyi iyi bir tahlil içinde WST-1 azaltma tekrarlanabilir değil ama gün-gün değişkenlik var. PBS arabellek olarak kullanan varyasyon (CV) günlük fark 0.18 ve arabellek 0,23 olduğu gibi...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Thomas Bell, Lyn Mattathil, Mark Mannino ve Neej Patel ve teknik destek için teşekkür etmek istiyorum. Bu eser Jonathan Fisher için Amerika Birleşik Devletleri halk sağlığı hizmet Ödülü R15DK102122 diyabet Ulusal Enstitüsü ve sindirim ve böbrek hastalıkları (NIDDK) tarafından desteklenmiştir. El yazması içerik sadece yazarlar sorumludur ve mutlaka NIDDK veya Ulusal Sağlık Enstitüleri resmi görüşlerini temsil etmiyor.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
C2C12 myoblastsAmerican Type Culture Collection CRL-1772
Dulbecco's modified eagle's medium - low glucoseSigmaD6046
Fetal Plex animal serum complexGemini Bio-Products 100-602
penicillin-streptomycinSigma516106
horse serumGibco Technologies16050-130
Dulbecco's phosphate buffered salineSigmaD8537
trypsin-EDTASigmaT4049
15 cm culture dishesTPP93150
96 well culture platesTPP92096
2-(4-Iodophenyl)-3-(4-nitrophenyl)-5-(2,4-disulfophenyl)-2H-tetrazolium Sodium Salt (WST-1)Accela ChemBio  IncSY016315
phenazine methosulfate SigmaP9625
L-ascorbic acidSigmaA5960
ascorbate oxidase SigmaA0157
superoxide dismutase SigmaS5395
2,6-dichloroindophenol sodium salt ICN Biomedicals215011825
D-(+)-glucoseSigmaG7528
HEPES sodium saltSigmaH3784
sodium chlorideSigmaS7653
potassium chlorideFisher Scientific BP366
magnesium sulfate heptahydrateSigmaM5921
calcium chloride dihydrateSigmaC7902
potassium phosphateFisher Scientific BP363
Pierce BCA Protein Assay KitThermo Scientific23225
Powerwave X-I spectrophotometerBiotek Insturmentsdiscontinued 
Spectronic Genesys 5 SpectrophotometerThermo Scientific336001
PureGrade 96-well microplate, F-bottom, clear, untreated, non-sterileMidSci781602
Iron (II) chloride tetrahydrateSigma220299
Iron (II) sulfate heptahydrateSigma215422
hypoxanthineSigmaH9636
xanthine oxidaseSigmaX4500
ExcelMicrosoft
R StudioRstudiohttps://www.rstudio.com/products/rstudio/
KC4Biotek Insturmentsdiscontinued 

Referanslar

  1. Kilberg, M. S., Christensen, H. N. Electron-transferring enzymes in the plasma membrane of the Ehrlich ascites tumor cell. Biochemistry. 18 (8), 1525-1530 (1979).
  2. Crane, F. L., Roberts, H., Linnane, A. W., Low, H. Transmembrane ferricyanide reduction by cells of the yeast Saccharomyces cerevisiae. J Bioenerg Biomembr. 14 (3), 191-205 (1982).
  3. Craig, T. A., Crane, F. L. Evidence for trans-plasma membrane electron transport system in plact cells. Proc. Indiana Acad. Sci. 90, 150-155 (1981).
  4. Mishra, R. K., Passow, H. Induction of intracellular ATP synthesis by extracellular ferricyanide in human red blood cells. J Membr Biol. 1 (1), 214-224 (1969).
  5. Crane, F. L., Sun, I. L., Clark, M. G., Grenbing, C., Low, H. Transplasma-membrane redox systems in growth and development. Biochim Biophys Acta. 811, 233-264 (1985).
  6. Berridge, M. V., Tan, A. S. Trans-plasma membrane electron transport: a cellular assay for NADH- and NADPH-oxidase based on extracellular, superoxide-mediated reduction of the sulfonated tetrazolium salt WST-1. Protoplasma. 205 (1-4), 74-82 (1998).
  7. Eccardt, A. M., et al. Trans-plasma membrane electron transport and ascorbate efflux by skeletal muscle. Antioxidants. 6 (4), 89 (2017).
  8. Sun, I. L., Navas, P., Crane, F. L., Morre, D. J., Low, H. NADH diferric transferrin reductase in liver plasma membrane. J Biol Chem. 262 (33), 15915-15921 (1987).
  9. Larm, J. A., Vaillant, F., Linnane, A. W., Lawen, A. Up-regulation of the plasma membrane oxidoreductase as a prerequisite for the viability of human Namalwa rho 0 cells. J Biol Chem. 269 (48), 30097-30100 (1994).
  10. Inman, R. S., Coughlan, M. M., Wessling-Resnik, M. Extracellular ferrireductase activity of K562 cells is coupled to transferrin-independent iron transport. Biochemistry. 33, 11850-11857 (1994).
  11. Castillo-Olivares, A., Esteban del Valle, A., Marquez, J., Nunez de Castro, I., Medina, M. A. Ehrlich cell plasma membrane redox system is modulated through signal transduction pathways involving cGMP and Ca2+ as second messengers. J Bioenerg Biomembr. 27 (6), 605-611 (1995).
  12. Medina, M. A., del Castillo-Olivares, A., Nunez de Castro, I. Multifunctional plasma membrane redox systems. Bioessays. 19 (11), 977-984 (1997).
  13. Medina, M. A., del Castillo-Olivares, A., Schweigerer, L. Plasma membrane redox activity correlates with N-myc expression in neuroblastoma cells. FEBS Lett. 311 (2), 99-101 (1992).
  14. Diaz-Gomez, C., Villalba, J. M., Perez-Vicente, R., Crane, F. Ascorbate Stabilization Is Stimulated in rho(0)HL-60 Cells by CoQ10 Increase at the Plasma Membrane. Biochem Biophys Res Commun. 234, 79-81 (1997).
  15. Navarro, F., et al. Protective role of ubiquinone in vitamin E and selenium-deficient plasma membranes. Biofactors. 9 (2-4), 163-170 (1999).
  16. Herst, P. M., Berridge, M. V. Cell surface oxygen consumption: a major contributor to cellular oxygen consumption in glycolytic cancer cell lines. Biochim Biophys Acta. 1767 (2), 170-177 (2007).
  17. Baoutina, A., Dean, R. T., Jessup, W. Trans-plasma membrane electron transport induces macrophage-mediated low density lipoprotein oxidation. FASEB J. 15 (9), 1580-1582 (2001).
  18. Furukawa, S., et al. Increased oxidative stress in obesity and its impact on metabolic syndrome. J Clin Invest. 114 (12), 1752-1761 (2004).
  19. Del Principe, D., Avigliano, L., Savini, I., Catani, M. V. Trans-plasma membrane electron transport in mammals: functional significance in health and disease. Antioxid Redox Signal. 14 (11), 2289-2318 (2011).
  20. Berridge, M. V., Tan, A. S. High-Capacity Redox Control at the Plasma Membrane of Mammalian Cells Trans-Membrane, Cell Surface, and Serum NADH-Oxidases. Antioxidants & Redox Signaling. 2 (2), 231-242 (2000).
  21. Ishiyama, M., Shiga, M., Sasamoto, K., Mizoguchi, M., He, P. G. A New Sulfonated Tetrazolium Salt That Produces a Highly Water-Soluble Formazan Dye. Chemical & Pharmaceutical Bulletin. 41 (6), 1118-1122 (1993).
  22. Berridge, M. V., Herst, P. M., Tan, A. S. Tetrazolium dyes as tools in cell biology: New insights into their cellular reduction. Biotechnology Annual Review. 11, 127-152 (2005).
  23. Gurtoo, H. L., Johns, D. G. On the interaction of the electron acceptor 2,6-dichlorophenolindophenol with bovine milk xanthine oxidase. J Biol Chem. 246 (2), 286-293 (1971).
  24. Tan, A. S., Berridge, M. V. Distinct trans-plasma membrane redox pathways reduce cell-impermeable dyes in HeLa cells. Redox Rep. 9 (6), 302-306 (2004).
  25. . . R: A language and environment for statistical computing. , (2013).
  26. Peskin, A. V., Winterbourn, C. C. A microtiter plate assay for superoxide dismutase using a water-soluble tetrazolium salt (WST-1). Clinica Chimica Acta. 293 (1-2), 157-166 (2000).
  27. Higaki, Y., et al. Oxidative stress stimulates skeletal muscle glucose uptake through a phosphatidylinositol 3-kinase-dependent pathway. Am J Physiol Endocrinol Metab. 294 (E889-E897), (2008).
  28. Zuagg, W. Spectroscopic characteristics and some chemical propertiesof N-methylphenazinium methyl sulfate (phenazine methosulfate) and pyocyanine at the oxidation level. J Biol Chem. 239 (11), 3964-3970 (1964).
  29. Dayan, J., Dawson, C. R. Substrate specificity of ascorbate oxidase. Biochem Biophys Res Commun. 73 (2), 451-458 (1976).
  30. Bellavite, P., della Bianca, V., Serra, M. C., Papini, E., Rossi, F. NADPH oxidase of neurtrophils forms superoxide anion but does not reduce cytochrome c and dichlorophenolindophenol. FEBS. 170 (1), 157-161 (1984).
  31. Berridge, M. V., Tan, A. S., McCoy, K. D., Wang, R. The biochemical and cellular basis of cell proliferation assays that use tetrazolium salts. Biochemica. 4, 15-20 (1996).
  32. Tan, A. S., Berridge, M. V. Superoxide produced by activated neutrophils efficiently reduces the tetrazolium salt, WST-1 to produce a soluble formazan: a simple colorimetric assay for measuring respiratory burst activation and for screening anti-inflammatory agents. J Immunol Methods. 238 (1-2), 59-68 (2000).
  33. Phillips, P. A., et al. Myricetin induces pancreatic cancer cell death via the induction of apoptosis and inhibition of the phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K) signaling pathway. Cancer Letters. 308 (2), 181-188 (2011).
  34. Altundag, E., et al. Quercetin-induced cell death in human papillary thyroid cancer (B-CPAP) cells. Journal of thyroid research. 2016 (8), (2015).
  35. Ukeda, H., Kawana, D., Maeda, S., Sawamura, M. Spectrophotometric Assay for Superoxide Dismutase Based on the Reduction of Highly Water-soluble Tetrazolium Salts by Xanthine-Xanthine Oxidase. Biosci Biotechnol Biochem. 63 (3), 485-488 (1999).
  36. Halaka, F. G., Babcock, G. T., Dye, J. L. Properties of 5-methylphenazinium methyl sulfate. Reaction of the oxidized form with NADH and of the reduced form with oxygen. J Biol Chem. 257 (3), 1458-1461 (1982).
  37. Maghzal, G. J., Krause, K. H., Stocker, R., Jaquet, V. Detection of reactive oxygen species derived from the family of NOX NADPH oxidases. Free Radic Biol Med. 53 (10), 1903-1918 (2012).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Biyokimyasorunu 135tPMETWST 1DPIPaskorbats peroksitC2C12 myotubesspektrofotometrik tahlil

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır