zebrafish larva preparation, mounting, and light-sheet imaging for cardiac development studies

Zebra Balığı Kardiyak Kasılmasının Sanal Gerçeklik Etkileşimi ile Analizi

The zebrafish (Danio rerio) is a widely used model organism for studying cardiac development, physiology, and repair due to its optical transparency, genetic tractability, and regenerative capacity1,2,3,4. Upon myocardial infarction, while structural and functional changes impact the cardiac ejection and hemodynamics, technical limitations continue to hinder the ability to investigate the dynamic process during cardiac regeneration with the high spatiotemporal resolution. For example, conventional imaging methods, such as confocal microscopy, have limitations in terms of imaging depth, temporal resolution, or phototoxicity for capturing the dynamic changes and assessing cardiac contractile function during multiple cardiac cycles5.
Light-sheet microscopy represents a state-of-the-art imaging method that successfully addresses these issues by quickly sweeping the laser across the heart&#39;s ventricle and atrium, achieving detailed images with enhanced spatiotemporal resolution and negligible photo-bleaching and photo-toxic effects6,7,8,9,10,11.
This protocol introduces a comprehensive imaging strategy that includes LSM system construction, 4D image reconstruction, 3D cell tracking, and interactive analysis to capture and analyze the dynamics of cardiomyocytes across the entire heart during multiple cardiac cycles12. The customized imaging system and computational methodology allow&#160;one to track the myocardial microstructure and contractile function at the single-cell level in transgenic Tg(myl7:nucGFP) zebrafish larvae. Furthermore, small molecule compounds were delivered into the embryos using microinjection to assess drug-induced cardiac injury and subsequent regeneration. This holistic strategy provides an entry point to in vivo investigate structural, functional, and mechanical properties of myocardium at the single-cell level during cardiac development and regeneration.

Yazar Spotlight: Kalp Fonksiyonunun Tek Hücreli Analizi için Zebra Balığında Yüksek Çözünürlüklü 4D Işık Sayfası Görüntüleme ve Sanal Gerçeklik

Zebra Balığı Kardiyak Kasılmasının 4D Işık Sayfası Görüntüleme

Our research uses 4D light-sheet imaging to explore cardiac contractile function in zebrafish, aiming to understand the dynamics of cardiac contraction at the single-cell level. One of the foremost experimental challenges is achieving high spatial terminal resolution, dynamic imaging of cardiac function while observing natural heart rhythms. Our study fills the gap in analyzing intricate 4D cardiac dynamic at single-cell resolution.We utilize GPU-based parallel computation, virtual reality, and advance cell tracking to interpret light-sheet imaging data. Our novel virtual reality platform offers an interactive approach to assess regional cardiac contractions, providing manipulative functionalities for more in-depth analysis. By facilitating user-directed analysis of cardiac contraction, our protocol could lead to an enhanced understanding of cardiac development and disease.

Zebra Balığı Larvalarının Kardiyak Gelişim Çalışmaları için Hazırlanması, Montajı ve Işık Tabakası Görüntüleme

Başlamak için, zebra balığı larvalarının gelişimini döllenmeden sonraki sıfır ila yedi gün arasında kaydetmek için stereo mikroskobu açın. Litre başına 150 miligram trikain ile% 0.8 düşük erime noktalı agaroz hazırlayın. Agaroz oda sıcaklığına soğutulduktan sonra, bir transfer pipeti kullanarak, anestezi uygulanmış zebra balığını agaroza taşıyın.Başka bir transfer pipeti kullanarak, agarozlu balığı florlu bir etilen propilen tüpe monte edin. Tüpü monte edilmiş zebra balığı larvası ile altı eksenli motorlu ışık tabakası mikroskobu numune aşamasına takın. Tüpü E3 suyla dolu numune haznesine daldırın.Kalbin daha iyi görselleştirilmesi için zebra balığı larvalarını ventral taraftan döndürün. Motorlu s'yi bağlayınamp iş istasyonuna sage. Ve istenen hareket modu da dahil olmak üzere gerekli tüm parametreleri yapılandırın.CMOS kamera ve iş istasyonu arasında bir bağlantı kurun. Adım boyutunu 1 mikrometreye, toplam kare sayısını 300'e ve pozlama süresini 5 milisaniyeye ayarlayın. Ardından, istediğiniz ilgi alanını tanımlayın.Lazeri açın ve larvaların ışık tabakası mikroskobu görüntülemesini başlatın. Larvaların üç ila beş kardiyak döngüsünü kapsayacak şekilde 300 kareyi 2D görüntü dizisi olarak kaydedin. Tüm kalp kaplanana kadar yeni örnek diliminin başka bir görüntü dizisini kaydedin.

zebrafish-larva-preparation-mounting-light-sheet-imaging-for-cardiac

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Zebrafish Larva Preparation, Mounting, and Light-Sheet Imaging for Cardiac Development Studies

100 Görüntüleme.  The University of Texas at Dallas. Başlamak için, zebra balığı larvalarının gelişimini döllenmeden sonraki sıfır ila yedi gün arasında kaydetmek için stereo mikroskobu açın. Litre başına 150 miligram trikain ile% 0.8 düşük erime noktalı agaroz hazırlayın. Agaroz oda sıcaklığına soğutulduktan sonra, bir transfer pipeti kullanarak, anestezi uygulanmış zebra balığını agaroza taşıyın.Başka bir transfer pipeti kullanarak, agarozlu balığı florlu bir etilen propilen tüpe monte edin. T...

Video: Zebra Balığı Larvalarının Kardiyak Gelişim Çalışmaları için Hazırlanması, Montajı ve Işık Tabakası Görüntüleme

4D Light-sheet Imaging of Zebrafish Cardiac Contraction

Zebrafish is an intriguing model organism known for its remarkable cardiac regeneration capacity. Studying the contracting heart in vivo is essential for gaining insights into structural and functional changes in response to injuries. However, obtaining high-resolution and high-speed 4-dimensional (4D, 3D spatial + 1D temporal) images of the zebrafish heart to assess cardiac architecture and contractility remains challenging. In this context, an in-house light-sheet microscope (LSM) and customized computational analysis are&#160;used to overcome these technical limitations. This strategy, involving LSM system construction, retrospective synchronization, single cell tracking, and user-directed analysis, enables one to investigate the micro-structure and contractile function across the entire heart at the single-cell resolution in the transgenic Tg(myl7:nucGFP) zebrafish larvae. Additionally, we are able to further incorporate microinjection of small molecule compounds to induce cardiac injury in a precise and controlled manner. Overall, this framework allows one to track physiological and pathophysiological changes, as well as the regional mechanics at the single-cell level during cardiac morphogenesis and regeneration.

This protocol utilizes light-sheet imaging to investigate cardiac contractile function in zebrafish larvae and gain insights into cardiac mechanics through cell tracking and interactive analysis.

Zebrafish is an intriguing model organism known for its remarkable cardiac regeneration capacity. Studying the contracting heart in vivo is essential for ...