Şekil 2&#39;de sunulan veriler insan cerrahi örneklerin sağlamak için Dr. Hesham Abdelbary teşekkür etmek istiyorum.

1. Doku işleme <ol><li> En iyi sonuç için, bu protokol taze izole doku% 10 işlenmeden önce cerrahisi sonrası FBS,% 1 Pennicilin / Streptomisin çözüm ve hemen% 0.1 Amphothericin B çözeltisi içeren DMEM medya yatırılan kullanarak yapılmalıdır. Bu mümkün değilse, doku işlenmeden önce 4 derece Bu ortamda bir gecede terk edilebilir. </li><li> Önce numune işleme, en az 5 dakika boyunca% 70 etanol çözüm tevdi ederek metal forseps ve tek kanatlı sterilize edin. Ayrıca,% 10 DMEM medya içeren 2 ml FBS,% 1 Pennicilin / Streptomisin çözüm ve% 0.1 Amphothericin B. ile 24-plaka hazırlamak </li><li> Doku örneği steril forseps kullanarak bir laminer akış hücre kültürü kaputu toplayın ve steril yan tarafında kapak uydurarak, boş bir 15 cm petri doku yatırmak. </li><li> Hücre kültürü kaputu, 2 mm biyopsi yumruk, Şekil 1 gibi doku içindeki bölgelerde çeşitli farklı çekirdek elde etmek için kullanın. Yatay eksende kolaylıkla kesilebilir, böylece her bir çekirdek arasında yeterince boşluk bırakarak, forseps yardımı ile 15 cm Petri kapağın çekirdek Depozito. </li><li> Şekil 1&#39;de olduğu gibi steril bir jilet ile 4 hatta dörtte Split her bir çekirdek. </li><li> Pipetlemeyin ucu kullanarak, zaten DMEM 10% FBS,% 1 Pennicilin / Streptomisin çözüm ve% 0.1 Amphothericin B çözeltisi içeren 1.5 ml içeren, Şekil 1&#39;de olduğu gibi A4 A1 farklı bir sıra belirli bir çekirdek, her çekirdek çeyrek koymak . Her çekirdek için tekrarlayın. Bu önyargı, belirli bir kuyu / durumda en aza indirirken, tümör temsili örnekleme izin vermelidir. Daha iyi temsil için, çekirdek sayısını artırmak. </li></ol> 2. Doku canlılığının değerlendirilmesi <ol><li> Şekil 1&#39;de gösterilen ve 1 saat süreyle% 5 CO 2 ile 37 derece nemlendirilmiş bir inkübatör inkübe takiben doku işleme, iyi # A1 ve # A2 25μl Alamar mavi. </li><li> Takiben kuluçka Alamar mavi, her A1 ve A2 de 3 kez 100 ul kaldırmak ve 6 farklı bir 96-plaka kuyu transfer. Floresan plaka okuyucu (530 uyarma, 590 emisyon) kullanarak sinyal okuyun ve kayıtlarınız için verileri tutmak. </li><li> Alamar mavi sinyali okunduktan sonra, DMEM,% 10 FBS + PS + AmphoB içerdiğini de A1 C1, bir pipetlemeyin ucunu kullanarak tüm doku parçalarını aktarmak. Iyi bir ortam A1 aşırı miktarda transfer etmek için dikkatli olun. </li><li> 10 6 GFP-ifade ve medya 25 ul vaccinia virüs seyreltilmiş lusiferaz ifade PFU sırasıyla kuyuları A3 ve A4 bozar. Eh, A2, hiç de dahil olmak üzere herhangi bir transgen ifade eden bir virüs ile enfekte olabilir. </li><li> 72 saat sonra, 25 ul Alamar mavi kuyuları C1 ve D1 ve 2.2 adımı tekrarlayın </li></ol> 3. Floresans mikroskobu ile GFP transgen ifade Görselleştirme <ol><li> Hücre kültürü, iyi floresan fotoğraf çekmek için doku parçaları kapsayan tüm medya çıkarın. </li><li> Bir floresan yetenekli diseksiyon mikroskop kullanarak, öncelikle uygun bir çözünürlükte bir faz kontrast görüntü çekmek </li><li> Floresan moduna geçin ve bu durumda, GFP, faiz transgen görselleştirmek için uygun filtre kullanılarak bir resim çekmek. </li><li> Eşiğe bir resim çekmek için faiz transgen (TTT) o kadar olası bir başka dalga boyu için bir floresan filtre kullanın </li></ol> 4. Lusiferaz ifade Görselleştirme Vivo görüntüleme Sistemi (IVIS) yöntemiyle <ol><li> Başlamadan önce IVIS başlatıldı olduğundan emin olun. </li><li> Kuyuları A4 ve B4, luciferase substrat 10 mg / ml, iyice karıştırılır ve oda sıcaklığında 5 dakika inkübe 5 ul ekleyin. </li><li> IVIS maruz kalma süresi 5 saniye ayarlayın ve kuyuların bir resim çekmek. Görüntü doymuş ise, düşük pozlama süresi ile tekrarlayın. Herhangi bir sinyal varsa, pozlama süresi artar. </li><li> IVIS görüntüleme yazılımı kullanarak, iyi B4 sinyal kullanılarak arka plan kaldırmak ve lüminesans sinyali ölçmek için ilgi bölgenizi seçin. </li></ol> 5. Plak yöntemi ile viral titreleri Değerlendirilmesi <ol><li> Viral titreleri niceleme önce, dokular ilk viral parçacıkların serbest homojenize olması gerekir. -80 Saklanan enfekte doku örnekleri, birkaç ay sonra yapılabilir </li><li> Analitik bir ölçek kullanılarak homojenize olması gerekir örnek tartılır. Bu durumda, biz iyi A2 toplanan örnek kullanabilirsiniz. </li><li> Doku 5 ml polistren yuvarlak alt şahin tüp yerleştirin ve 1 ml PBS ekleyin. Doku homojenizatörü kullanarak doku homojenize. Gerekirse, daha sonraki bir zamanda viral titreleri değerlendirmesi için -80 Homojenat saklayın. </li><li> Titresi vaccinia virüs, ilk 6 plaka plaka 1 milyon U2OS hücreleri ve 37 derecede gece boyunca inkübe% 5 CO 2 nemliified inkübatör confluency ertesi gün yaklaşık% 95 ulaşmıştır. </li><li> Her seyreltme adım arasındaki ipuçları değiştirmek için emin olun, virüs seri dilüsyonları serum ücretsiz medya kullanın. Genelde biz 10 dilüsyonları 1 ve 900 ul içine aktarmak için 100 ul kullanabilirsiniz. Kaç dilüsyonları yapılan beklenen virüs verimi bağlıdır. </li><li> Dilüsyonları ardından, kaplama U20S hücreler daha sonra U2OS hücreleri enfekte seyreltilmiş virüs stokunun 500 ul (her seyreltme için) kapsayan medya çıkarın. 1 saat dakika için% 5 CO 2 nemlendirilmiş inkübatör sıcaklık 37 derece hücreleri inkübe edin. </li><li> Bu süre zarfında, DMEM% 20 FBS ve 37 derecelik su banyosunda 3% CMC çözüm içeren konsantre 2 X ısınmak. </li><li> 1 saat inkübasyondan sonra, enfekte U2OS hücreleri kapsayan medya çıkarın. 2X DMEM birlikte,% 20 FBS ve enfekte U2OS hücrelerinin her iyi karşılamak için bu karışıma 2 ml% 3 CMC 01:01 hacimleri karıştırın. </li><li> Başka bir 48 saat boyunca 37 derece,% 5 CO 2 nemlendirilmiş inkübatör hücreleri koyun . </li><li> 48 saat sonra, her bir kuyunun CMC bindirme üstüne 2 ml metanol-asetik asit fiksatif ekleyin ve bir hücre kültürü kaputu 10 dakika oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> Sabit kaplama musluk suyu kullanarak kuyuların kalanı atın ve yıkayın. </li><li> 2ml Coomassie mavi çözüm için de sabit U2OS hücreleri Leke ve bir tabak çalkalayıcı düşük hızda oda sıcaklığında 30 dakika inkübe edin. </li><li> Coomassie kuyulardan leke ve musluk suyu kullanarak tabak yıkama çıkarın. Kapak kapalıyken yaklaşık bir saat boyunca kurumasını bekleyin. </li><li> Sonuç viral plaklar Şekil 2C kolayca görüntülenebilmekte. Tabaklar bu aşamada süresiz olarak saklanabilir. </li><li> 10 ila 100 plaklar görülebilir seyreltme aşamada plaklar güvenin. </li><li> Kullanılan seyreltme sayılır plakların sayısını çarpın ve PFU / ml bir titresi vermek için 2 ile çarpın. 25 plaklar iyi bir milyon kat seyreltme sayılır Örneğin, ilk sulandırılmamış örnek titresi 25, 2 ya da 50 milyon PFU / ml ile çarpılır 1 milyon ile çarpılır. Ayrıca PFU / g titreleri rapor örnek için başlangıçta ağırlığını ölçmek bu sayıyı bölmek </li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar: Doğru bir ameliyatla elde normal / tümör doku örneği veya infectable virüs olup olmadığını belirlemek için, bir ilk doku örneği uygulanabilir en emin olmanız gerekir. Şekil 1A, bu canlılığı metabolik bir boya (Alamar mavi) ve, en azından 72h bir süre boyunca hem normal ve tümör dokusu metabolik olarak aktif kalır kullanılarak tespit edilebilir gösterir. Bu dokuların kültürlerinde ex vivo viral replikasyon destek düşündürmektedir. Oncolytic virüsler önemli bir avantajı da, tedavi ya da görüntüleme transgenlerin ifade etmek için tasarlanmış olabilir. Şekil 2B-E GFP veya Lusiferaz daha bu dokuların, canlı ve aynı zamanda infectable olduğunu destekleyen, ex vivo enfekte dokuların tespit edilebilir olduğunu gösterir. Artan transgen ekspresyonu genellikle viral replikasyon ile ilişkili olmasına rağmen, mutlaka terapötik aktivite için önemli olduğu düşünülmektedir kendini amplifikasyon ve yayılması, yol açar, üretken bir viral yaşam döngüsü için eşit değildir. Bu nedenle, başlangıçta doku zarar vermek için kullanılan daha fazla virüs olup olmadığını belirlemek için gereklidir. Şekil 2B plak yöntemi ile viral kantifikasyon üzerine daha fazla virüs sonra doku enfeksiyonu hemen sonra toplanan 72 saat enfeksiyon sonrası elde olduğunu gösterir. Genel olarak tümör dokusu cerrahi olarak eksize zaman viral replikasyon sırasında destek olabilir, en az 72 saatlik bir süre için hücre kültüründe canlı kalır ki, bu veriler göstermektedir. <img src="/files/ftp_upload/2854/2854fig1.jpg" alt="Şekil 1"/> Şekil 1. Doku Bakış numune / kesit protokolü Doku örneği birkaç 2 mm çekirdeği daha sonra rastgele kuyuları A1-A4 dağılır dört çeyrek ayrılır kaldırarak işlenir. Renk kodları her kuyuda kullanılan reaktifler göstermektedir. Kuyu içinde gri gölgeli kareler tasvir 6 ayrı çekirdeğe kadar her çeyrekte temsil eder. Iyi A1 doku ilk Alamar mavi okuduktan sonra medya ile yeni bir kuyu (C1) aktarılır. Virüsler ile 72 saat inkübasyon sonunda ikinci bir okuma yapılır. Wells A4 ve B4 72 saat inkübasyon sonrası enfeksiyon sonra luciferase ile desteklenmiş <img src="/files/ftp_upload/2854/2854fig2.jpg" alt="Şekil 2"/> Şekil 2. Canlılık ve hasta doku örnekleri infectability. A) 2 saat Alamar mavi sinyal ve 72 saat toplama ile ölçülen Doku canlılığı. Y ekseni boş düzeltilmiş Alamar mavi sinyali temsil eder. B) vaccinia virüs titresi2 ve 72 saat sonrası enfeksiyon C Coomassie boyama D U2OS hücreleri üzerinde vaccinia virüs plaklar) Örnek) Lüminesans sinyal hasta VV-lusiferaz enfekte doku elde edilen doku örneklerinde gram başına toplanan IVIS kullanarak görüntülü E) Floresans mikroskobu resimleri VV-GFP ile enfekte hasta doku örneği.

<ol>
	<li>Parato, K. A., Senger, D., Forsyth, P. A., Bell, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recent+progress+in+the+battle+between+oncolytic+viruses+and+cancer.">Recent progress in the battle between oncolytic viruses and cancer.</a> Nat Rev Cancer. 5, 965-976 (2005).</li><li>Renouf, L. C., Thway, K., Sibtain, A., McNeish, I. A., Newbold, K. L., Goldsweig, H., Coffin, R., Nutting, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phase+I/II+study+of+oncolytic+HSV+GM-CSF+in+combination+with+radiotherapy+and+cisplatin+in+untreated+stage+III/IV+squamous+cell+cancer+of+the+head+and+neck.">Phase I/II study of oncolytic HSV GM-CSF in combination with radiotherapy and cisplatin in untreated stage III/IV squamous cell cancer of the head and neck.</a> Clin Cancer Res. 16, 4005-4015 (2010).</li><li>Lal, R., Harris, D., Postel-Vinay, S., de Bono, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reovirus:+Rationale+and+clinical+trial+update.">Reovirus: Rationale and clinical trial update.</a> Curr Opin Mol Ther. 11, 532-539 (2009).</li><li>Park, B. H., Hwang, T., Liu, T. C., Sze, D. Y., Kim, J. S., Kwon, H. C., Oh, S. Y., Han, S. Y., Yoon, J. H., Hong, S. H., Moon, A., Speth, K., Park, C., Ahn, Y. J., Daneshmand, M., Rhee, B. G., Pinedo, H. M., Bell, J. C., Kirn, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+a+targeted+oncolytic+poxvirus,+JX-594,+in+patients+with+refractory+primary+or+metastatic+liver+cancer:+a+phase+I+trial.">Use of a targeted oncolytic poxvirus, JX-594, in patients with refractory primary or metastatic liver cancer: a phase I trial.</a> Lancet Oncol. 9, 533-542 (2008).</li><li>Breitbach, C. J., Reid, T., Burke, J., Bell, J. C., Kirn, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Navigating+the+clinical+development+landscape+for+oncolytic+viruses+and+other+cancer+therapeutics:+no+shortcuts+on+the+road+to+approval.+Cytokine+Growth+Factor+Rev.">Navigating the clinical development landscape for oncolytic viruses and other cancer therapeutics: no shortcuts on the road to approval. Cytokine Growth Factor Rev.</a> 21, 85-89 (2010).</li><li>Boeuf, F. L. e. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synergistic+interaction+between+oncolytic+viruses+augments+tumor+killing.">Synergistic interaction between oncolytic viruses augments tumor killing.</a> Mol Ther. 18, 888-895 (2010).</li><li>Silva, N. D. e., Atkins, H., Kirn, D. H., Bell, J. C., Breitbach, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Double+trouble+for+tumours:+exploiting+the+tumour+microenvironment+to+enhance+anticancer+effect+of+oncolytic+viruses.">Double trouble for tumours: exploiting the tumour microenvironment to enhance anticancer effect of oncolytic viruses.</a> Cytokine Growth Factor Rev. 21, 135-141 (2010).</li><li>Diallo, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+high-throughput+pharmacoviral+approach+identifies+novel+oncolytic+virus+sensitizers.">A high-throughput pharmacoviral approach identifies novel oncolytic virus sensitizers.</a> Mol Ther. 18, 1123-1129 (2010).</li><li>Cooke, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-tumour+genetic+heterogeneity+and+poor+chemoradiotherapy+response+in+cervical+cancer.">Intra-tumour genetic heterogeneity and poor chemoradiotherapy response in cervical cancer.</a> Br J Cancer. , (2010).</li><li>Pennington, K., Chu, Q. D., Curiel, D. T., Li, B. D. L., Mathis, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Utility+of+a+Tissue+Slice+Model+System+to+Determine+Breast+Cancer+Infectivity+by+Oncolytic+Adenoviruses.">The Utility of a Tissue Slice Model System to Determine Breast Cancer Infectivity by Oncolytic Adenoviruses.</a> J Surg Res. , 1-6 (2010).</li><li>Hochberg, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tropism+of+herpes+simplex+virus+type+1+to+non-melanoma+skin+cancers.">Tropism of herpes simplex virus type 1 to non-melanoma skin cancers.</a> Br J Dermatol. , (2010).</li><li>Kuip, H. v. a. n. d. e. r. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Short+term+culture+of+breast+cancer+tissues+to+study+the+activity+of+the+anticancer+drug+taxol+in+an+intact+tumor+environment.">Short term culture of breast cancer tissues to study the activity of the anticancer drug taxol in an intact tumor environment.</a> BMC Cancer. 6, 86-86 (2006).</li></ol>

Bu protokol kritik adımlardan biri taze doku örneği alınmasıdır. Bir örnek, uygun olmayan bir ortam (örn. PBS) ameliyathane Uzun bir bekleyişin ardından hücre kültürü koymak ise, bu doku canlılığı uzlaşma ve infectability önlemek olabilir. Notu, normal doku doğal olarak daha fazla tümör dokularında bu etkilerin daha eğilimli. Bir başka kritik nokta, doku ve tutarlılığı örnek boyutu nasıl kullanıldığını birçok çekirdek. Gibi faktörler, doku hipoksisi ve infectectable yüzey, çekirdek ve çekirdek dörtte boyutuna bağlı olarak dalgalanma beri boyutu tutarsızlıklar hasta numunelerinin arasında değişkenlik yol açacaktır. Bu doku dilimleme makineleri kullanılarak kısmen çözülebilir ederken, burada sunulan yöntemin bir avantajı kolayca uygun olmayan, yumuşak veya viskoz dokular dahil olmak üzere, nispeten kolay olduğunu kirliliğine karşı daha az eğilimli ve doku tiplerinin çeşitli yaygın olarak uygulanabilir. doku dilimleme. Özellikle, çekirdek sayısı, daha iyi doku temsil almak için artırılabilir. Ayrıca, çekirdeklerin paralel yapılacak DNA, RNA ve protein izolasyonu gibi diğer potansiyel testleri karşılamak için daha fazla parça (örn. 5-8) kesilebilir. Ancak, hangi çekirdek tekrarlanabilir boyutlarda kesilebilir parçaları farklı boyutta corers kullanılarak modifiye edilebilir çekirdek, gerçek boyutuna bağlı olacaktır. İsteğe bağlı olarak, tekrarlanabilir büyüklükte doku parçaları elde etmenize yardımcı olacak bir yolu, onları küçük parçalar halinde parsellenmesi daha önce bir cetvel kullanarak çekirdek uzunluğu bile. Protokolü, diğer virüslerin doğal karşılamak için değiştirilebilir ve dokuların canlı olmalı ve en fazla 6 gün için çoğaltma desteği bulduk. Protokol cytrokines dahil olmak üzere diğer viral ifade transgenlerin ölçümleri daha uzatılabilir. Aşağıdaki enfeksiyon, dokularda immünohistokimyasal yöntemler, doku histolojisi daha da geliştirilmesini sağlar ve nasıl viral enfeksiyon 10-12 daha fazla kesit ve boyama için parafine olabilir .

<table border="1"><tbody><tr><th> Reaktifin Adı </th><th> Şirket </th><th> Katalog numarası </th><th> Yorumlar (isteğe bağlı) </th></tr><tr><td> Yüksek glikoz DMEM </td><td> Hyclone </td><td> SH30243.01 </td><td></td></tr><tr><td> Fetal sığır serumu </td><td> NorthBio Inc. </td><td> NBSF-701 </td><td></td></tr><tr><td> Amphothericin B çözümü </td><td> Sigma Aldrich </td><td> A2942 </td><td> % 0.1 </td></tr><tr><td> Pennicilin-Streptomisin </td><td> Sigma Aldrich </td><td> P4333 </td><td> % 1 </td></tr><tr><td> Alamar Mavi </td><td> Invitrogen </td><td> DAL1025 </td><td></td></tr><tr><td> D-luciferase potasyum tuzu </td><td> Moleküler Görüntüleme Ürünleri </td><td> D-luciferase potasyum tuzu 1g </td><td> PBS içinde yeniden süspanse 0.22 mikron filtre 10 mg / ml ve filtre </td></tr><tr><td> MEM tozu </td><td> Gibco </td><td> # 41500018 </td><td> Kullanmadan önce filtre 0,22 mikron 2X MEM ve filtre yapmak için önerilen yarım hacmi olun </td></tr><tr><td> Karboksimetil selüloz (CMC) </td><td> Sigma Aldrich </td><td> C9481 </td><td> Deiyonize su ve otoklav% 3&#39;lük bir çözüm olun. Not tozu tekrar süspansiyon için biraz zaman alabilir </td></tr><tr><td> Coomassie Brillant Blue R </td><td> Sigma Aldrich </td><td> B7920 </td><td></td></tr><tr><td> 2 mm Biyopsi yumruk </td><td> Miltex </td><td> MX-33-31 </td><td></td></tr><tr><td> Çift Kenar Hazırlık Bıçaklar </td><td> Personna Medikal Bakım </td><td> 74-0002 </td><td></td></tr><tr><td> Floresan diseksiyon Mikroskop </td><td> Leica </td><td> Model M205 FA </td><td></td></tr><tr><td> In vivo görüntüleme sistemi (IVIS) </td><td> Kaliper Yaşam Bilimleri </td><td> IVIS ® 200 serisi </td><td></td></tr><tr><td> Doku Tearor </td><td> Biospec ürünler </td><td> modeli 985370-395 </td><td></td></tr></tbody></table>

ex vivo infection of live tissue with oncolytic viruses

Oncolytic Virüsler (OVS) seçici çoğaltmak ve tümör hücreleri öldürmek 1 roman terapötikler. HSV, Reovirus ve kanser tedavisi olarak Vaccinia OVS oncolytic platformları da dahil olmak üzere çeşitli etkinliğini değerlendiren birçok klinik çalışmalar halen devam etmektedir 2-5. Oncolytic virüslerin bir önemli özelliği de genetik mikroskopi veya biyo-lüminesans görüntüleme 6,7 dokuların enfeksiyonu görselleştirmek mümkün kılan muhabiri transgenlerin ifade değiştirilmiş olabilir . Başarılı oncolytic virotherapy 8 olasılığını araştırmak üzere tedavi öncesi hasta ex vivo olarak dokuların enfekte mümkün olduğundan bu benzersiz bir avantaj sunmaktadır. Bu amaçla, uygun doku heterojenite telafi etmek ve doku canlılığı, özellikle önceden enfeksiyonu 9 değerlendirmek için doku örneği için kritik öneme sahiptir. Viral replikasyon yanı sıra, prematüre ve üretken enfeksiyon arasında ayrımcılık için homojenizasyon aşağıdaki dokulara doğrudan titrasyon oncolytic platformu tarafından ifade, muhabir transgenlerin kullanarak takip etmek de önemlidir. Bu protokolün amacı, bu sorunları ele almak ve burada 1 açıklanmaktadır. 2 hücre kültürü için tümör dokusu numune alma ve hazırlama. Metabolik boya Alamar mavi 3 GFP veya ateşböceği lusiferaz 4 ya da ifade vaccinia virüs kültürlü dokuların ex vivo enfeksiyon kullanarak doku canlılığının değerlendirilmesi. Floresan mikroskopi veya Vivo Görüntüleme Sistemi (IVIS) 5 kullanarak transgen ifade Algılama. Plak yöntemi ile virüs Niceleme. Bu kapsamlı bir yöntem doku işleme kolaylığı, doku heterojenite tazminat, doku canlılığı kontrolü, ve prematüre enfeksiyon ve kemik niyetli viral replikasyon arasında ayrımcılık da dahil olmak üzere çeşitli avantajlar sunuyor.

Watch this Scientific Journal Video about Ex Vivo Infection of Live Tissue with Oncolytic Viruses at JoVE.com

Ex Vivo Infection of Live Tissue with Oncolytic Viruses

Oncolytic virüsler kanser tedavileri için umut vericidir. Tedavisi öncesinde hastalar elde edilen canlı doku örneklerinin infectability tespit etmek için bu tedavi yaklaşımı yeteneği benzersiz bir avantaj. Bu protokol için dokuların süreci anlatılmaktadır<em&gt; Ex vivo</em&gt; Oncolytic virüs ve sonraki viral kantifikasyon enfeksiyonu.

Ex Vivo Enfeksiyon Oncolytic Virüsler Canlı Doku

Oncolytic Viruses (OVs) are novel therapeutics that selectively replicate in and kill tumor cells1. Several clinical trials evaluating the effectiveness ...

ex-vivo-infection-of-live-tissue-with-oncolytic-viruses

Research

JoVE Journal

Medicine

Ex Vivo Infection of Live Tissue with Oncolytic Viruses

12.6K Görüntüleme.  Ottawa Hospital Research Institute (OHRI). Oncolytic virüsler kanser tedavileri için umut vericidir. Tedavisi öncesinde hastalar elde edilen canlı doku örneklerinin infectability tespit etmek için bu tedavi yaklaşımı yeteneği benzersiz bir avantaj. Bu protokol için dokuların süreci anlatılmaktadır Ex vivo Oncolytic virüs ve sonraki viral kantifikasyon enfeksiyonu.

Video: Ex Vivo Infection of Live Tissue with Oncolytic Viruses

Ex Vivo Culture of Patient Tissue &amp; Examination of Gene Delivery

This video describes the use of patient tissue as an ex vivo model for the study of gene delivery. Fresh patient tissue obtained at the time of surgery is sliced and maintained in culture. The ex vivo model system allows for the physical delivery of genes into intact patient tissue and gene expression is analysed by bioluminescence imaging using the IVIS detection system. The bioluminescent detection system demonstrates rapid and accurate quantification of gene expression within individual slices without the need for tissue sacrifice. This slice tissue culture system may be used in a variety of tissue types including normal and malignant tissue and allows us to study the effects of the heterogeneous nature of intact tissue and the high degree of variability between individual patients. This model system could be used in certain situations as an alternative to animal models and as a complementary preclinical mode prior to entering clinical trial.

Ex Vivo Culture of Patient Tissue &amp; Examination of Gene Delivery

This article describes the culture of patient tissue slices for gene delivery studies and subsequent analysis of gene expression using IVIS bioluminescence imaging.

Hasta Doku ve Gen Teslimat Sınav Ex Vivo Kültür

This video describes the use of patient tissue as an ex vivo model for the study of gene delivery.  Fresh patient tissue obtained at the time of surgery ...

Tıp

Handling of the Cotton Rat in Studies for the Pre-clinical Evaluation of Oncolytic Viruses

Oncolytic viruses are a novel anticancer therapy with the ability to target tumor cells, while leaving healthy cells intact. For this strategy to be successful, recent studies have shown that involvement of the host immune system is essential. Therefore, oncolytic virotherapy should be evaluated within the context of an immunocompetent model. Furthermore, the study of antitumor therapies in tolerized animal models may better recapitulate results seen in clinical trials. Cotton rats, commonly used to study respiratory viruses, are an attractive model to study oncolytic virotherapy as syngeneic models of mammary carcinoma and osteosarcoma are well established. However, there is a lack of published information on the proper handling procedure for these highly excitable rodents. The handling and capture approach outlined minimizes animal stress to facilitate experimentation. This technique hinges upon the ability of the researcher to keep calm during handling and perform procedures in a timely fashion. Finally, we describe how to prepare cotton rat mammary tumor cells for consistent subcutaneous tumor formation, and how to perform intratumoral and intraperitoneal injections. These methods can be applied to a wide range of studies furthering the development of the cotton rat as a relevant pre-clinical model to study antitumor therapy.

Cotton rats are extremely excitable and have a strong flight-or-fight response. A handling method optimized to reduce the stress of the animals is described which will make cotton rats more accessible as a preclinical model.

Oncolytic virüs klinik öncesi Değerlendirme Çalışmaları Pamuk Rat Taşıma

Oncolytic viruses are a novel anticancer therapy with the ability to target tumor cells, while leaving healthy cells intact.  For this strategy to be ...

Ex vivo Live Imaging of Lung Metastasis and Their Microenvironment

Metastasis is a major cause for cancer-related morbidity and mortality. Metastasis is a multistep process and due to its complexity, the exact cellular and molecular processes that govern metastatic dissemination and growth are still elusive. Live imaging allows visualization of the dynamic and spatial interactions of cells and their microenvironment. Solid tumors commonly metastasize to the lungs. However, the anatomical location of the lungs poses a challenge to intravital imaging. This protocol provides a relatively simple and quick method for ex vivo live imaging of the dynamic interactions between tumor cells and their surrounding stroma within lung metastasis. Using this method, the motility of cancer cells as well as interactions between cancer cells and stromal cells in their microenvironment can be visualized in real time for several hours. By using transgenic fluorescent reporter mice, a fluorescent cell line, injectable fluorescently labeled molecules and/or antibodies, multiple components of the lung microenvironment can be visualized, such as blood vessels and immune cells. To image the different cell types, a spinning disk confocal microscope that allows long-term continuous imaging with rapid, four-color image acquisition has been used. Time-lapse movies compiled from images collected over multiple positions and focal planes show interactions between live metastatic and immune cells for at least 4 hr. This technique can be further used to test chemotherapy or targeted therapy. Moreover, this method could be adapted for the study of other lung-related pathologies that may affect the lung microenvironment.

Ex vivo Live Imaging of Lung Metastasis and Their Microenvironment

We describe a relatively simple method for ex vivo live imaging of the tumor cell-stroma interactions within lung metastasis, utilizing fluorescent reporters in mice. Using spinning-disk confocal microscopy, this technique enables visualization of live cells for at least 4 hr and could be adapted to study other inflammatory lung conditions.

Ex Akciğer Metastaz ve Bunların mikroçevresinin Canlı Görüntüleme vivo

Metastasis is a major cause for cancer-related morbidity and mortality. Metastasis is a multistep process and due to its complexity, the exact cellular ...

Transarterial Administration of Oncolytic Viruses for Locoregional Therapy of Orthotopic HCC in Rats

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a disease with limited treatment options and poor prognosis. In recent years, oncolytic virotherapies have proven themselves to be potentially powerful tools to fight malignancy. Due to the unique dual blood supply in the liver, it is possible to apply therapies locally to orthotopic liver tumors, which are predominantly fed by arterial blood flow. We have previously demonstrated that hepatic arterial delivery of oncolytic viruses results in safe and efficient transduction efficiency of multifocal HCC lesions, resulting in significant prolongation of survival in immune competent rats. This procedure closely mimics the application of transarterial embolization in patients, which is the standard palliative care provided to many HCC patients. The ability to administer tumor therapies through the hepatic artery in rats allows for a highly sophisticated preclinical model for evaluating novel viral vectors under development. Here we describe the detailed protocol for microdissection of the hepatic artery for infusion of oncolytic virus vectors to treat orthotopic HCC.

Oncolytic virotherapies are under development as novel therapeutics for the treatment of hepatocellular carcinoma (HCC). Here we describe a method for locoregional therapy of HCC via hepatic arterial administration of oncolytic virus.

Sıçanlarda Ortotopik HCC Lokorejyonel Tedavisi için oncolytic virüs transarteryel İdaresi

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a disease with limited treatment options and poor prognosis.  In recent years, oncolytic virotherapies have proven ...

Breast Milk Enhances Growth of Enteroids: An Ex Vivo Model of Cell Proliferation

Human small intestinal enteroids are derived from the crypts and when grown in a stem cell niche contain all of the epithelial cell types. The ability to establish human enteroid ex vivo culture systems are important to model intestinal pathophysiology and to study the particular cellular responses involved. In recent years, enteroids from mice and humans are being cultured, passaged, and banked away for future use in several laboratories across the world. This enteroid platform can be used to test the effects of various treatments and drugs and what effects are exerted on different cell types in the intestine. Here, a protocol for establishing primary stem cell-derived small intestinal enteroids derived from neonatal mice and premature human intestine is provided. Moreover, this enteroid culture system was utilized to test the effects of species-specific breast milk. Mouse breast milk can be obtained efficiently using a modified human breast pump and expressed mouse milk can then be used for further research experiments. We now demonstrate the effects of expressed mouse, human, and donor breast milk on the growth and proliferation of enteroids derived from neonatal mice or premature human small intestine.

Breast Milk Enhances Growth of Enteroids: An Ex Vivo Model of Cell Proliferation

This protocol describes how to establish an enteroid culture system from neonatal mouse or premature human intestine as well as an efficient method to collect milk from mice.

Anne sütü artırır büyüme Enteroids: hücre çoğalması bir Ex Vivo modeli

Human small intestinal enteroids are derived from the crypts and when grown in a stem cell niche contain all of the epithelial cell types. The ability to ...

Rapid In Vivo Assessment of Adjuvant's Cytotoxic T Lymphocytes Generation Capabilities for Vaccine Development

The assessment of modern sub-unit vaccines reveals that the generation of neutralizing antibodies is important but not sufficient for adjuvant selection. Therefore, adjuvants with both humoral and cellular immuno-stimulatory capabilities that are able to promote cytotoxic T lymphocytes (CTL) responses are urgently needed. Thus, faithful monitoring of adjuvant candidates that induce cross-priming and subsequently enhance CTL generation represents a crucial step in vaccine development. In here we present an application for a method that uses SIINFEKL-specific (OT-I) T cells to monitor the cross-presentation of the model antigen ovalbumin (OVA) in vivo in the presence of different adjuvant candidates. This method represents a rapid test to select adjuvants with the best cross-priming capabilities. The proliferation of CD8+ T cells is the most valuable indication of cross-priming and it is also regarded as a correlate of adjuvant-induced cross-presentation. This feature can be evaluated in different immune organs like lymph nodes and spleen. The extent of the CTL generation can also be monitored, thereby giving insights on the nature of a local (draining lymph node mainly) or a systemic response (distant lymph nodes and/or spleen). This technique further allows multiple modifications for testing drugs that can inhibit specific cross-presentation pathways and also offers the possibility to be used in different strains of conventional and genetically modified mice. In summary, the application that we present here will be useful for vaccine laboratories in industry or academia that develop or modify chemical adjuvants for vaccine research and development.

Rapid In Vivo Assessment of Adjuvant&#039;s Cytotoxic T Lymphocytes Generation Capabilities for Vaccine Development

We present here an application for a standard immunological technique (CFSE stained OT-I proliferation) intended to rapidly monitor adjuvant-mediated cytotoxic T lymphocyte (CTL) generation in vivo. This fast estimation of CTL capacities is useful for the development of prophylactic vaccines against intracellular pathogens as well as therapeutic cancer vaccines.

Adjuvan'ın sitotoksik T lenfositler nesil yeteneklerini hızlı Vivo içinde değerlendirilmesi için aşı geliştirme

The assessment of modern sub-unit vaccines reveals that the generation of neutralizing antibodies is important but not sufficient for adjuvant selection. ...

A Small Animal Model of Ex Vivo Normothermic Liver Perfusion

There is a significant shortage of liver allografts available for transplantation, and in response the donor criteria have been expanded. As a result, normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) has been introduced as a method to evaluate and modify organ function. NEVLP has many advantages in comparison to hypothermic and subnormothermic perfusion including reduced preservation injury, restoration of normal organ function under physiologic conditions, assessment of organ performance, and as a platform for organ repair, remodeling, and modification. Both murine and porcine NEVLP models have been described. We demonstrate a rat model of NEVLP and use this model to show one of its important applications &#8212; the use of a therapeutic molecule added to liver perfusate. Catalase is an endogenous reactive oxygen species (ROS) scavenger and has been demonstrated to decrease ischemia-reperfusion in the eye, brain, and lung. Pegylation has been shown to target catalase to the endothelium. Here, we added pegylated-catalase (PEG-CAT) to the base perfusate and demonstrated its ability to mitigate liver preservation injury. An advantage of our rodent NEVLP model is that it is inexpensive in comparison to larger animal models. A limitation of this study is that it does not currently include post-perfusion liver transplantation. Therefore, prediction of the function of the organ post-transplantation cannot be made with certainty. However, the rat liver transplant model is well established and certainly could be used in conjunction with this model. In conclusion, we have demonstrated an inexpensive, simple, easily replicable NEVLP model using rats. Applications of this model can include testing novel perfusates and perfusate additives, testing software designed for organ evaluation, and experiments designed to repair organs.

A Small Animal Model of Ex Vivo Normothermic Liver Perfusion

There is a significant liver donor shortage, and criteria for liver donors have been expanded. Normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) has been developed to evaluate and modify organ function. This study demonstrates a rat model of NEVLP and tests the ability of pegylated-catalase, to mitigate liver preservation injury.

Ex Vivo Normothermic karaciğer perfüzyon küçük bir hayvan Model

There is a significant shortage of liver allografts available for transplantation, and in response the donor criteria have been expanded. As a result, ...

An Ex Vivo Tissue Culture Model for Fibrovascular Complications in Proliferative Diabetic Retinopathy

Diabetic retinopathy (DR) is the most common microvascular complication of diabetes and one of the leading causes of blindness in working-age adults. No current animal models of diabetes and oxygen-induced retinopathy develop the full-range progressive changes manifested in human proliferative diabetic retinopathy (PDR). Therefore, understanding of the disease pathogenesis and pathophysiology has relied largely on the use of histological sections and vitreous samples in approaches that only provide steady-state information on the involved pathogenic factors. Increasing evidence indicates that dynamic cell-cell and cell-extracellular matrix (ECM) interactions in the context of three-dimensional (3D) microenvironments are essential for the mechanistic and functional studies towards the development of new treatment strategies. Therefore, we hypothesized that the pathological fibrovascular tissue surgically excised from eyes with PDR could be utilized to reliably unravel the cellular and molecular mechanisms of this devastating disease and to test the potential for novel clinical interventions. Towards this end, we developed a novel method for 3D ex vivo culture of surgically-excised patient-derived fibrovascular tissue (FT), which will serve as a relevant model of human PDR pathophysiology. The FTs are dissected into explants and embedded in fibrin matrix for ex vivo culture and 3D characterization. Whole-mount immunofluorescence of the native FTs and end-point cultures allows thorough investigation of tissue composition and multicellular processes, highlighting the importance of 3D tissue-level characterization for uncovering relevant features of PDR pathophysiology. This model will allow the simultaneous assessment of molecular mechanisms, cellular/tissue processes and treatment responses in the complex context of dynamic biochemical and physical interactions within the PDR tissue architecture and microenvironment. Since this model recapitulates PDR pathophysiology, it will also be amenable for testing or developing new treatments.

Here, we present a protocol to study the pathophysiology of proliferative diabetic retinopathy by using patient-derived, surgically-excised, fibrovascular tissues for three-dimensional native tissue characterization and ex vivo culture. This ex vivo culture model is also amenable for testing or developing new treatments.

Bir Ex Vivo doku kültürü modeli Fibrovascular komplikasyon proliferatif diyabetik retinopati

Diabetic retinopathy (DR) is the most common microvascular complication of diabetes and one of the leading causes of blindness in working-age adults. No ...

Immunofluorescence Labelling of Human and Murine Neutrophil Extracellular Traps in Paraffin-Embedded Tissue

Neutrophil granulocytes, also called polymorphonuclear leukocytes (PMN) due to their lobulated nucleus, are the most abundant type of leukocytes. They mature in the bone marrow and are released into the peripheral blood, where they circulate for about 6&#8722;8 h; however, in tissue, they can survive for days. By diapedesis through the endothelium, they leave the blood stream, enter tissues, and migrate towards the site of an infection following chemotactic gradients.&#160;Neutrophils can combat invading microorganisms by phagocytosis,&#160;degranulation, and generation of neutrophil extracellular traps (NETs). This protocol will help to detect NETs in paraffin-embedded tissue. NETs are the result of a process called NETosis, which leads to the release of nuclear, granular, and cytoplasmic components either from living (vital NETosis) or dying (suicidal NETosis) neutrophils. In vitro, NETs form cloud-like structures, which occupy a space several times larger than that of the cells from which they descended. The backbone of NETs is chromatin, to which a selection of proteins and peptides originating from granules and cytoplasm are bound. Thereby, a high local concentration of toxic compounds is maintained so that NETs can capture and inactivate a variety of pathogens including bacteria, fungi, viruses, and parasites, while diffusion of the highly active NET components leading to damage in neighboring tissue is limited. Nevertheless, in recent years it has become apparent that NETs, if generated in abundance or cleared insufficiently, do have pathological potential ranging from autoimmune diseases to cancer. Thus, detection of NETs in tissue samples may have diagnostic significance, and the detection of NETs in diseased tissue can influence the treatment of patients. Since paraffin-embedded tissue samples are the standard specimen used for pathological analysis, it was sought to establish a protocol for fluorescent staining of NET components in paraffin-embedded tissue using commercially available antibodies.

Neutrophil extracellular traps (NETs) are three-dimensional structures generated by stimulated neutrophil granulocytes. It has become clear in recent years that NETs are involved in a wide variety of diseases. Detection of NETs in tissue may have diagnostic relevance, so standardized protocols for labelling NET components are required.

Parafin-Gömülü Dokuda İnsan ve Mürin Nötrofil Ekstrasellüler Tuzaklarının İmmünofloresan Etiketlemesi

Neutrophil granulocytes, also called polymorphonuclear leukocytes (PMN) due to their lobulated nucleus, are the most abundant type of leukocytes. They ...

Optocardiography and Electrophysiology Studies of Ex Vivo Langendorff-perfused Hearts

Small animal models are most commonly used in cardiovascular research due to the availability of genetically modified species and lower cost compared to larger animals. Yet, larger mammals are better suited for translational research questions related to normal cardiac physiology, pathophysiology, and preclinical testing of therapeutic agents. To overcome the technical barriers associated with employing a larger animal model in cardiac research, we describe an approach to measure physiological parameters in an isolated, Langendorff-perfused piglet heart. This approach combines two powerful experimental tools to evaluate the state of the heart: electrophysiology (EP) study and simultaneous optical mapping of transmembrane voltage and intracellular calcium using parameter sensitive dyes (RH237, Rhod2-AM). The described methodologies are well suited for translational studies investigating the cardiac conduction system, alterations in action potential morphology, calcium handling, excitation-contraction coupling and the incidence of cardiac alternans or arrhythmias.

The objective of this study was to establish a method for investigating cardiac dynamics using a translational animal model. The described experimental approach incorporates dual-emission optocardiography in conjunction with an electrophysiological study to assess electrical activity in an isolated, intact porcine heart model.

Ex Vivo Langendorff perfüzyonlu Kalplerin Optokardiyografi ve Elektrofizyoloji Çalışmaları

Small animal models are most commonly used in cardiovascular research due to the availability of genetically modified species and lower cost compared to ...