Bu proje Ulusal İnme Vakfı, Hunter Tıbbi Araştırma Enstitüsü (HMRI) ve Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi (NH &amp; MAM), Avustralya tarafından finanse edildi. Teknik uzmanlık için Newcastle Üniversitesi Sağlık Çalıştayı personel Fakültesi özel teşekkürler.

1. Kafatası Penetrasyon <ol><li> Izofluran (% 5 indüksiyon,% 1.5-2 bakım)% 70 N 2 ve% 30 O 2 ile sıçan uyuşturan. Anestezi indüksiyonundan sonra, bir anestezik burun konisi içinde sıçan burnu konumlandırma, bir ısınma plaka üzerine yüzükoyun sıçan yerleştirin. </li><li> Anestezi korurken, baş stabilize oluncaya kadar kulak çubukları ekleyerek, bir stereotaksik çerçeve içinde kafası sabitleyin. Emin olun nefes bozulmaz. (Şekil 2-A). </li><li> 1.5 cm&#39;lik cilt orta hat kafa kesi yapmadan önce uzun süreli lokal anestezi, Bupivakain 0,3 ml% 0.5 (Pfizer, Avustralya) ile subkutan saç derisine enjekte edilir. (Steril aletler ve eldiven kullanılmalıdır.) </li><li> Açıkça Lambda ve bregma bulmak için yumuşak doku ve çevresindeki kaslar teşrih künt. Deri ve bağ dokusu geri çekin. </li><li> Maruz kafatasına basınç uygulayarak herhangi bir kanama kaynaklanıyor. Aşırı kanama kafatası koterize edilebilir. </li><li> Bir diş dri kullanma1 mm uç çapak, çapak sağ parietal kemiğe geniş bir delik 2 mm ll. Burr deliği yanal 2 mm ve superior sagittal sinüs önlemek ve ICP sensör yerleşimini sağlamak için bregmadan posterior 2 mm inme çalışmaları için, iskemik toprakları üzerindedir. Alternatif konumları diğer uygulamalar için de uygun olabilir. Burr dura üzerinde kafatası saydam hale derinliğe kadar delik. (Şekil 2-B). </li><li> Deliğin dibinde kafatası kaldırmak için 0.5 mm uç çapak ile çapak değiştirin. </li><li> Kafatasının çatlamasına başladığında, enkaz temizlenir delik tabanı sağlanması, kalan tüm kafatası kaldırmak için 45 ° forseps kullanabilir. (Şekil 3). </li></ol> 2. Vida Modifikasyon ve Yerleştirme <ol><li> Bir torna ve 0.7 mm matkap ucu kullanarak bir altıgen başlı vida ile bir 0.7 mm delik delin. </li><li> Yaklaşık 1.5 tur (minimum miktarda kullanılması çevirerek deliğe izleme vidasınışekilde) altta yatan doku zarar vermemeye kafatasında vida sabitlemek için gerekli döner. (Şekil 2-C ve Şekil 4). </li><li> Burr bir sol parietal kemik bir demirleme vidası için ikinci bir delik, yanal 2 mm ve bregmadan posterior 2 mm. Bu delik kafatasının tam nüfuz gerektirmez, 1 mm uç çapak vida için kafatası inceltmek için kullanılır bu yüzden. </li><li> İkinci deliğe 2 x 4 mm altıgen başlı vida takın. Bu vida diş çimento ve böylece kafatasına izleme vidalı demir yardımcı olur. </li><li> Vida başının tabanına diş çimento monomer ve polimer karıştırmak ve uygulamak için bir transfer pipet kullanın. </li><li> En az 10 dakika kuruması için diş çimento izin verin. </li></ol> 3. İntrakranial Basıç Ekleme <ol><li> Beyaz düzeltme sıvısı kullanarak, ucundan fiber-optik sensör 4 mm işaretleyin. </li><li> Steril salin (% 0.9) ile kontrol vida deliğine doldurmak ve hiçbir sağlamakhava kabarcıkları vida içinde mevcut bulunmaktadır. </li><li> Probun ucu vida sonu ile aynı hizada ise böylece vida içine ICP prob 4 mm yerleştirin. Ucu delip dura değil emin olun. </li><li> Ventilasyon ve kan basıncı nabız dalgaları yansıtan bir ICP iz görülebilir kadar vida içinde probun ucu ayarlayın. (Şekil 5). </li></ol> 4. Bir hava geçirmez Seal Şekillendirme <ol><li> Hava geçirmez bir mühür doğru bir ICP okuma zorunludur. 01:01 oranında bir viskoz materyalin biyouyumlu kalafatlama monomer ve polimer karıştırılır. Basınç sensörü prob ucunda, ve bu çıkış oyuklu vida içinde olduğu için, fiber optik prob miline kalafatlama malzemenin uygulanması sensörünün basınç hassasiyeti üzerinde bir etkisi yoktur. </li><li> Prob etrafında ince bir katman ve izleme vida başı geçerlidir. ICP prob yerinden kaçının. </li><li> 5 dakika ayarlamak için izin ver. </li><li> Ikinci bir lay uygulayınTüm izleme vida ve prob etrafında doldurmayı malzeme er. Sıvı doldurmayı malzeme herhangi bir crevasses sızan olduğundan emin olun. (Şekil 2-D). </li><li> Kulak çubukları kaldırın. </li><li> Sıçan pozisyonda kalabilir, ya da dikkatle ICP izleme sırasında yatar pozisyona döndürülmeli. </li><li> Tamamlanmış prosedürü şematik (Şekil 6) içinde tasvir edilmiştir. </li></ol> 5.. İntrakranial Basıç Kaldırma ve Reinsertion <ol><li> Tamamlanmasından ICP izleme az, ICP sensörü yavaşça vida ve kalafatlama malzemeden kateter çekerek kaldırılabilir. </li><li> SAMBA sensör ucunun korozyonu önlemek için% 1 Terg-A-zyme çözüm içine hemen yer olmalıdır. </li><li> Kalafatlama malzemenin geri kalan deliği kalafatlama malzeme ilave bir tabaka ile kaplanmıştır. (Rat bu aşamada uyandı olabilir). </li><li> Ek monitorizasyon için SAMBA kateter takın için, dilimvida başının seviyesinde kalafatlama materyal. </li><li> 5.3 - 3.2 adımları tekrarlayın. </li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar Şekil 5 on saniye içinde ICP okumaların bir temsilidir. Başlangıçta, bir Wistar sıçan ortalama ICP 6 mmHg. Şekil 5&#39;te gösterilmiştir kısa periyodik olaylar kan basıncı nabız dalgaları yansıtır. Artık periyodik olaylar havalandırma olayları gösterir. SAMBA sensör 3-4 mmHg ve 1-2 mmHg darbe genlik bir havalandırma genlik yansıttığını unutmayın. Her deneyde SAMBA sensörünün konumunu doğrulamak için, ICP izleri karın kompresleri ve bu tür apne dönemleri gibi solunum olaylara tepki için test edilmelidir. Karın sıkıştırma Şekil 7&#39;de gösterilmiştir. Apne (Şekil 8 de gösterilen) Dönemleri en deneyleri invo gözlenir<html> hayvanların solunum kendiliğinden lving. Bu olaylar solunum (diyafram dönüştürücü) ve kan basıncı izleri solunum sapmaların olmaması ile fizyolojik kayıtları tanımlanır. ICP iz eşdeğer bir değişiklik ICP prob konumlandırma doğrular. Şekil 9 kulak çubukları (adım 4.6) çıkarıldıktan sonra, tipik bir ICP iz gösteriyor. Dolayısıyla intrakranial hacim kafatası ve buna bağlı olarak bozulma hafif bir sıkıştırma adım 1.2 sonuçları kulak-bar ve artan ICP ekleme. Algılayıcı doğru yerleştirilirse, ICP en az 4 düşecek - 5 mmHg kulak çubuklarının kaldırılması ile. Histolojik analiz hemen basınç sensörü ve vida altında kortikal alanda herhangi bir hasar olup olmadığını kontrol etmek için kullanılabilir. Travmatik ve non-travmatik vida bir örneği, Şekil 4 içinde tasvir edilmiştir. _upload/3689/3689fig1.jpg &quot;/&gt; Şekil 1.. Akışkan Vs SAMBA ICP izleri dolu. ICP SAMBA fiber-optik kateter (üstte) ve bir sıvı dolu kateter (alt) ile eş zamanlı olarak kaydedildi. ICP ortalama değerler ancak sıvı dolu kateter sinyal özellikle açık solunum ve fiber-optik kateter ile görülen kan basıncı dalga göre nemlendirilmiş edildi, hem de izleri benzerdi. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig2.jpg" /> Şekil 2. İntrakranial Basınç Kateter Yerleştirme Prosedürü. Sıçan başını kulak-bar ve bir anestezi burun konisi [A] ile bir stereotaksik çerçeve içinde güvenlik altına alınmıştır. Bir delik, çapı yaklaşık 2 mm, sağ parietal kemik [B] içine açılmış. Mili bir 0.7 mm delik olan 2 x 4 mm vida takıldı [C]. Çapa vida sol parietal kemik ve kafatası ve diş çimento kaplı cerrahi alan yerleştirildi. ICP catheter (siyah ok) sonra vidalı delik ve derz dolgu malzemesi (beyaz ok) [D] ile yapılan hava geçirmez bir mühür yerleştirildi. Zımba (ölçek için) = 12 mm x 5 mm. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig3.jpg" /> Şekil 3. İzleme Vida Burr Hole Oryantasyon. Kafatası Lambda (siyah yıldız) ve bregma (beyaz yıldız) bulmak için bağ dokusu temizlenir ve delik yanal 2 mm ve bregmadan posterior 2 mm açılmış. Delik dura ve pial gemiler (siyah ok) zedelemeden enkaz aklandı. Zımba (ölçek için) = 12 mm x 5 mm. <img alt="Şekil 4" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig4.jpg" /> Şekil 4. 24 Saat ICP İzleme Fiksasyonlu Enstrümantasyon sonra Rat Beyin Histoloji. Haemotoxylin ve Eosin boyama, 6 mikron koronal kesitler. Sol: Non-travmatik vida. Sağ: Travmatik vida,solukluk alan inme hasar alan (ok) benzer hücresel morfoloji ile hasarlı dokuyu gösteriyor. 4x hedefi de ekler. <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/3689/3689fig5.jpg" /> Şekil 5. Tipik ICP Trace. Nabız basıncı dalgaları daha küçük genlikli (*) olayları tasvir ediliyor. Havalandırma uzun periyodiklik (#) olayları yansıtıyor. <img alt="Şekil 6" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig6.jpg" /> 6 Şekil. ICP Probe Yerleştirme şematik. Diyagram destek vidası (sağda) ve vida (sol) içine doldurmayı malzeme ile kaplı ICP prob yerleşimini gösterir. <img alt="Şekil 7" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig7.jpg" /> Şekil 7. Karın sıkıştırma. Karın geçici ICP sinyal canlılığı doğrulamak için (~ 1 sn) sıkıştırılmıştır. Azalmış serebral venöz dönüşünün Sıkıştırma sonuçları,intrakraniyal hacminin artırılması ve böylece ICP artmaktadır. Arter basıncı (Pa) ilk ICP yükselişi sonra sadece düştü. <img alt="Şekil 8" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig8.jpg" /> Şekil 8. Apne süresi. Nefes geçici olarak durdurulması diyafram dönüştürücü iz yansıtılır, arter basıncı (Pa) iz ve ICP iz. <img alt="Şekil 9" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig9.jpg" /> Şekil 9. Kulak-Bar Kaldırma. ICP stereotaksik frame kulak çubuklarının kaldırılması ile damla gerekir.

<ol>
	<li>Ng, L. K., Nimmannitya, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Massive+cerebral+infarction+with+severe+brain+swelling:+a+clinicopathological+study.">Massive cerebral infarction with severe brain swelling: a clinicopathological study.</a> Stroke. 1, 158-163 (1970).</li><li>Plum, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brain+swelling+and+edema+in+cerebral+vascular+disease.">Brain swelling and edema in cerebral vascular disease.</a> Res. Publ. Assoc. Res. Nerv. Ment. Dis. 41, 318-348 (1966).</li><li>Ropper, A. H., Shafran, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brain+edema+after+stroke.+Clinical+syndrome+and+intracranial+pressure.">Brain edema after stroke. Clinical syndrome and intracranial pressure.</a> Arch. Neurol. 41, 26-29 (1984).</li><li>Silver, F. L., Norris, J. W., Lewis, A. J., Hachinski, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+mortality+following+stroke:+a+prospective+review.">Early mortality following stroke: a prospective review.</a> Stroke. 15, 492-496 (1984).</li><li>Geraci, E. B., Geraci, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hyperventilation+and+head+injury:+controversies+and+concerns.">Hyperventilation and head injury: controversies and concerns.</a> J. Neurosci. Nurs. 28, 381-387 (1996).</li><li>Schwab, S., Aschoff, A., Spranger, M., Albert, F., Hacke, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+value+of+intracranial+pressure+monitoring+in+acute+hemispheric+stroke.">The value of intracranial pressure monitoring in acute hemispheric stroke.</a> Neurology. 47, 393-398 (1996).</li><li>Adams, H. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guidelines+for+the+early+management+of+patients+with+ischemic+stroke:+A+scientific+statement+from+the+Stroke+Council+of+the+American+Stroke+Association.">Guidelines for the early management of patients with ischemic stroke: A scientific statement from the Stroke Council of the American Stroke Association.</a> Stroke. 34, 1056-1083 (2003).</li><li>Zhong, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Advances+in+ICP+monitoring+techniques.">Advances in ICP monitoring techniques.</a> Neurol. Res. 25, 339-350 (2003).</li><li>Aucoin, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracranial+pressure+monitors.+Epidemiologic+study+of+risk+factors+and+infections.">Intracranial pressure monitors. Epidemiologic study of risk factors and infections.</a> Am. J. Med. 80, 369-376 (1986).</li><li>Silasi, G., MacLellan, C. L., Colbourne, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+telemetry+blood+pressure+transmitters+to+measure+intracranial+pressure+(ICP)+in+freely+moving+rats.">Use of telemetry blood pressure transmitters to measure intracranial pressure (ICP) in freely moving rats.</a> Curr. Neurovasc. Res. 6, 62-69 (2009).</li><li>Crutchfield, J. S., Narayan, R. K., Robertson, C. S., Michael, L. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+a+fiberoptic+intracranial+pressure+monitor.">Evaluation of a fiberoptic intracranial pressure monitor.</a> J. Neurosurg. 72, 482-487 (1990).</li><li>Bolander, R., Mathie, B., Bir, C., Ritzel, D., Vandevord, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Skull+Flexure+as+a+Contributing+Factor+in+the+Mechanism+of+Injury+in+the+Rat+when+Exposed+to+a+Shock+Wave.">Skull Flexure as a Contributing Factor in the Mechanism of Injury in the Rat when Exposed to a Shock Wave.</a> Ann. Biomed. Eng. , (2011).</li><li>Chavko, M., Koller, W. A., Prusaczyk, W. K., McCarron, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+blast+wave+by+a+miniature+fiber+optic+pressure+transducer+in+the+rat+brain.">Measurement of blast wave by a miniature fiber optic pressure transducer in the rat brain.</a> J. Neurosci. Methods. 159, 277-281 (2007).</li><li>Chavko, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Relationship+between+orientation+to+a+blast+and+pressure+wave+propagation+inside+the+rat+brain.">Relationship between orientation to a blast and pressure wave propagation inside the rat brain.</a> J. Neurosci. Methods. 195, 61-66 (2011).</li><li>Leonardi, A. D., Bir, C. A., Ritzel, D. V., VandeVord, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracranial+pressure+increases+during+exposure+to+a+shock+wave.">Intracranial pressure increases during exposure to a shock wave.</a> J. Neurotrauma. 28, 85-94 (2011).</li></ol>

Biz ifşa hiçbir şey yok.

Burada sunulan prosedür kafa içi basıncı çok hassas ve doğru bir kayıt sağlar. Bu minimal invaziv teknik epidural basınç sensörü konumlandırma değil, beyin doku veya ventriküllerden önemli beyin travması önler. Kritik adımları içerir: 1) kafatası yoluyla sondaj - bakım delmeyin dura veya beyin dokusu hasarı altta yatan değil dikkat edilmelidir; 2) doldurmayı malzeme ile sıkı bir mühür sağlanması - Herhangi bir sızıntı varsa, ICP iz olmayacak güvenilir. ICP...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> Diş Çimento Monomer </td><td> Henry Schein </td><td> VX-SC500MLL </td><td></td></tr><tr><td> Diş Çimento Polimer </td><td> Henry Schein </td><td> VX-SC1000GCL4 </td><td></td></tr><tr><td> Diş matkap çapak boyutu 12 </td><td> Gunz Diş </td><td> EL104S001012/10 </td><td></td></tr><tr><td> Diş matkap çapak boyutlu 6 </td><td> Gunz Diş </td><td> EL104S001006/10 </td><td></td></tr><tr><td> Metal Vida </td><td> Donanım Mağaza </td><td></td><td> 2 x 4 mm, altıgen başlı. (Şaft ile delinmiş 0.7 mm delik tarafından laboratuvar-modifiye) </td></tr><tr><td> SAMBA Kontrol Ünitesi </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 50433102 </td><td></td></tr><tr><td> SAMBA Sensör </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 50461122 </td><td> 420 LP, 15cm çıplak fiber, radyo-opak boya </td></tr><tr><td> Silagum AV Mono doldurmayı malzemesi </td><td> Gunz Diş </td><td> RG 9152 </td><td> Vinylpolysiloxanes, hidrojen polisiloksanlar, dolgu maddesi, pigmentler, katkı maddeleri, plantinum katalizörü </td></tr><tr><td> Terg-A-zyme </td><td> Alconox, Inc </td><td> 1304 </td><td> Enzim-aktif toz deterjan </td></tr></tbody></table>

epidural intracranial pressure measurement in rats using a fiber-optic pressure transducer

Artmış kafa içi basınç (ICP) inme, travmatik beyin hasarı ve kardiyak arrest gibi iskemik beyin hasarı çeşitli formları önemli bir sorundur. Bu yükseklik transtentoryal herniasyonu 1,2,3,4, orta beyin sıkıştırma, nörolojik defisit veya serebral infarkt 2,4 artış şeklinde, ileri nörolojik yaralanmalara neden olabilir. Mevcut tedaviler genellikle klinik ortamda 5,6,7 artmış ICP kontrol etmek için yetersiz kalmaktadır. Böylece, temel mekanizmasını anlamaya ilerletmek için ve yükseltilmiş ICP için yeni tedaviler geliştirmek için hayvan modellerinde ICP ölçüm doğru yöntemleri için bir ihtiyaç vardır. Hem klinik ve deneysel ortamda ICP doğrudan ölçüm olmadan tahmin edilemez. ICP kateter çeşitli yöntemler şu anda mevcut. Bunlardan intraventriküler kateter insanlarda 8 ICP ölçümü klinik &#39;altın standart&#39; haline gelmiştir. Bu yöntem, invKafatasının kısmen kaldırılması ve beyin dokusu ile kateterin enstrümantasyon olves. Sonuç olarak, intraventriküler kateterler 6-11% 9 bir bulaşma oranına sahip. Bu nedenle, subdural ve epidural cannulations iskemik yaralanma hayvan modellerinde tercih edilen yöntemler haline gelmiştir. Çeşitli ICP ölçüm teknikleri hayvan modelleri için uyarlanmış ve bu, içi sıvı dolu telemetri kateter 10 ve katı hal kateterler en sık kullanılan 11,12,13,14,15 oldular. Sıvı dolu sistemleri yanlış ICP okuma sonuçlanan hattında hava kabarcıkları gelişmekte yatkındır. Katı hal sondalar bu sorunu (Şekil 1) kaçının. Ek bir sorun deney sonuçlarını değiştirebilir herhangi bir beyin hasarı yaratmadan kafatasının altında veya ventriküller içine uydurma kateterler olduğunu. Bu nedenle, epidural ile bitişik bir ICP kateter yerleştirir bir yöntem geliştirdi, ama ne engeller vared kafatası ve beyin arasında eklemek için. Basınç sensörü yeri (kateter çok ucunda) bu model bir yüksek sadakat ICP sinyal üretmek için bulunamadığı için bir optik fiber basınç kateter (420LP, SAMBA Sensörler, İsveç) epidural yerde ICP ölçmek için kullanılır . Bizim metodoloji ile kullanılabilir benzer optik fiber teknolojileri 13 diğer üreticilerin vardır. Sinyalinin izlenmesi vida varlığı ile nemlendirilmiş olacak şekilde kateter ucu tarafında bulunan basınç sensörü sahip alternatif bir katı hal kateterler, bu model için uygun olmayacaktır. Burada, ICP ölçmek için nispeten basit ve doğru bir metot sunduk. Bu yöntem, ICP ilgili hayvan modellerinde, geniş bir aralığı boyunca kullanılabilir.

Watch this Scientific Journal Video about Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer at JoVE.com

Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer

Kafatası içindeki basınç kaydetmek için yeni bir yöntem tarif edilmiştir. Minimal invaziv yöntem doğru önemli bir beyin travması neden olmadan anestezi sıçanlarda kafa içi basınç (ICP) ölçmek için bir fiber-optik basıncı algılama sistemi kullanır. Tekniği deneysel model, geniş bir aralık içinde kullanılabilir.

Bir Fiber optik Basıç kullanarak Sıçanlarda Epidural İntrakraniyal Basınç Ölçümü

Elevated intracranial pressure (ICP) is a significant problem in several forms of ischemic brain injury including stroke, traumatic brain injury and ...

epidural-intracranial-pressure-measurement-rats-using-fiber-optic

Research

JoVE Journal

Medicine

20.7K Görüntüleme.  The University of Newcastle. Kafatası içindeki basınç kaydetmek için yeni bir yöntem tarif edilmiştir. Minimal invaziv yöntem doğru önemli bir beyin travması neden olmadan anestezi sıçanlarda kafa içi basınç (ICP) ölçmek için bir fiber-optik basıncı algılama sistemi kullanır. Tekniği deneysel model, geniş bir aralık içinde kullanılabilir.

Video: Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer

Automated Midline Shift and Intracranial Pressure Estimation based on Brain CT Images

In this paper we present an automated system based mainly on the computed tomography (CT) images consisting of two main components: the midline shift estimation and intracranial pressure (ICP) pre-screening system. To estimate the midline shift, first an estimation of the ideal midline is performed based on the symmetry of the skull and anatomical features in the brain CT scan. Then, segmentation of the ventricles from the CT scan is performed and used as a guide for the identification of the actual midline through shape matching. These processes mimic the measuring process by physicians and have shown promising results in the evaluation. In the second component, more features are extracted related to ICP, such as the texture information, blood amount from CT scans and other recorded features, such as age, injury severity score to estimate the ICP are also incorporated. Machine learning techniques including feature selection and classification, such as Support Vector Machines (SVMs), are employed to build the prediction model using RapidMiner. The evaluation of the prediction shows potential usefulness of the model. The estimated ideal midline shift and predicted ICP levels may be used as a fast pre-screening step for physicians to make decisions, so as to recommend for or against invasive ICP monitoring.

An automated midline shift estimation and intracranial pressure (ICP) pre-screening system based on computed tomography (CT) images for patients with traumatic brain injury (TBI) is proposed using image processing and machine learning techniques.

Beyin BT Görüntüleri dayalı otomatik Midline Shift ve İntrakraniyal Basınç Tahmini

In this paper we present an automated system based mainly on the computed tomography (CT) images consisting of two main components: the midline shift ...

Tıp

Ascending Aortic Constriction in Rats for Creation of Pressure Overload Cardiac Hypertrophy Model

Ascending aortic constriction is the most common and successful surgical model for creating pressure overload induced cardiac hypertrophy and heart failure. Here, we describe a detailed surgical procedure for creating pressure overload and cardiac hypertrophy in rats by constriction of the ascending aorta using a small metallic clip. After anesthesia, the trachea is intubated by inserting a cannula through a half way incision made between two cartilage rings of trachea. Then a skin incision is made at the level of the second intercostal space on the left chest wall and muscle layers are cleared to locate the ascending portion of aorta. The ascending aorta is constricted to 50&#8211;60% of its original diameter by application of a small sized titanium clip. Following aortic constriction, the second and third ribs are approximated with prolene sutures. The tracheal cannula is removed once spontaneous breathing was re-established. The animal is allowed to recover on the heating pad by gradually lowering anesthesia. The intensity of pressure overload created by constriction of the ascending aorta is determined by recording the pressure gradient using trans-thoracic two dimensional Doppler-echocardiography. Overall this protocol is useful to study the remodeling events and contractile properties of the heart during the gradual onset and progression from compensated cardiac hypertrophy to heart failure stage.

We describe a stepwise procedure for creating pressure overload and left ventricular hypertrophy in Wistar rats by constriction of the ascending aorta using a small metallic clip. This model is extensively used for studying remodeling changes during cardiac hypertrophy and for identifying and evaluating strategies for regression of such changes.

Basınç Aşırı Kardiyak hipertrofi Modeli Oluşturma Ratlarda Aort daralma, Artan

Ascending aortic constriction is the most common and successful surgical model for creating pressure overload induced cardiac hypertrophy and heart ...

Assessing Myogenic Response and Vasoactivity In Resistance Mesenteric Arteries Using Pressure Myography

Small resistance arteries constrict and dilate respectively in response to increased or decreased intraluminal pressure; this phenomenon known as myogenic response is a key regulator of local blood flow. In isobaric conditions small resistance arteries develop sustained constriction known as myogenic tone (MT), which is a major determinant of systemic vascular resistance (SVR). Hence, ex vivo&#160;pressurized preparations of small resistance arteries are major tools to study microvascular function in near-physiological states. To achieve this, a freshly isolated intact segment of a small resistance artery (diameter ~260 &#956;m) is mounted onto two small glass cannulas and pressurized. These arterial preparations retain most in vivo characteristics and permit assessment of vascular tone in real-time. Here we provide a detailed protocol for assessing vasoactivity in pressurized small resistance mesenteric arteries from rats; these arteries develop sustained vasoconstriction - approximately 25% of maximal diameter - when pressurized at 70 mmHg. These arterial preparations may be used to study the effect of investigational compounds on relationship between intra-arterial pressure and vasoactivity and determine changes in microvascular function in animal models of various diseases.

Pressure myography is used to assess vasoactivity of small arteries that develop sustained constriction when pressurized. This manuscript provides a detailed protocol to assess in isolated segments of small mesenteric arteries from rats, vasoactivity and the effect of intraluminal pressure on vascular diameter.

Basınç myography kullanma Direnç Mezenterik Arter ise andMyogenic Tepkisi ve vazoaktiviteye Değerlendirilmesi

Small resistance arteries constrict and dilate respectively in response to increased or decreased intraluminal pressure; this phenomenon known as myogenic ...

Measurement of the Pressure-volume Curve in Mouse Lungs

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential phenotypic changes are best assessed by measurement of the changes in lung elasticity. To best understand specific mechanisms underlying such pathologies in mice, it is essential to make functional measurements that can reflect the developing pathology. Although there are many ways to measure elasticity, the classical method is that of the total lung pressure-volume (PV) curve done over the whole range of lung volumes. This measurement has been made on adult lungs from nearly all mammalian species dating back almost 100 years, and such PV curves also played a major role in the discovery and understanding of the function of pulmonary surfactant in fetal lung development. Unfortunately, such total PV curves have not been widely reported in the mouse, despite the fact that they can provide useful information on the macroscopic effects of structural changes in the lung. Although partial PV curves measuring just the changes in lung volume are sometimes reported, without a measure of absolute volume, the nonlinear nature of the total PV curve makes these partial ones very difficult to interpret. In the present study, we describe a standardized way to measure the total PV curve. We have then tested the ability of these curves to detect changes in mouse lung structure in two common lung pathologies, emphysema and fibrosis. Results showed significant changes in several variables consistent with expected structural changes with these pathologies. This measurement of the lung PV curve in mice thus provides a straightforward means to monitor the progression of the pathophysiologic changes over time and the potential effect of therapeutic procedures.

Here we present a protocol to simply and reliably measure the lung pressure-volume curve in mice, showing that it is sufficiently sensitive to detect phenotypic parenchymal changes in two common lung pathologies, pulmonary fibrosis and emphysema. This metric provides a means to quantify the lung&#8217;s structural changes with developing pathology.

Fare Akciğerler Basınç-hacim Eğrisi Ölçümü

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential ...

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

A complex integration of molecular and electrical signals is needed to transform a quiescent uterus into a contractile organ at the end of pregnancy. Despite the discovery of key regulators of uterine contractility, this process is still not fully understood. Transgenic mice provide an ideal model in which to study parturition. Previously, the only method to study uterine contractility in the mouse was ex vivo isometric tension recordings, which are suboptimal for several reasons. The uterus must be removed from its physiological environment, a limited time course of investigation is possible, and the mice must be sacrificed. The recent development of radiometric telemetry has allowed for longitudinal, real-time measurements of in vivo intrauterine pressure in mice. Here, the implantation of an intrauterine telemeter to measure pressure changes in the mouse uterus from mid-pregnancy until delivery is described. By comparing differences in pressures between wild type and transgenic mice, the physiological impact of a gene of interest can be elucidated. This technique should expedite the development of therapeutics used to treat myometrial disorders during pregnancy, including preterm labor.

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

This manuscript provides a protocol for implanting telemeters in the mouse for the purpose of measuring intrauterine pressures during pregnancy.

Rahim içi Telemetri Fare Kontraktil Basıncını Ölçmek<em&gt; İn Vivo</em

A complex integration of molecular and electrical signals is needed to transform a quiescent uterus into a contractile organ at the end of pregnancy. ...

Trabecular Meshwork Response to Pressure Elevation in the Living Human Eye

The mechanical characteristics of the trabecular meshwork (TM) are linked to outflow resistance and intraocular pressure (IOP) regulation. The rationale behind this technique is the direct observation of the mechanical response of the TM to acute IOP elevation. Prior to scanning, IOP is measured at baseline and during IOP elevation. The limbus is scanned by spectral-domain optical coherence tomography at baseline and during IOP elevation (ophthalmodynamometer (ODM) applied at 30 g force). Scans are processed to enhance visualization of the aqueous humor outflow pathway using ImageJ. Vascular landmarks are used to identify corresponding locations in baseline and IOP elevation scan volumes. Schlemm canal (SC) cross-sectional area (SC-CSA) and SC length from anterior to posterior along its long axis are measured manually at 10 locations within a 1 mm segment of SC. Mean inner to outer wall distance (short axis length) is calculated as the area of SC divided by its long axis length. To examine the contribution of adjacent tissues to the effect IOP elevations, measurements are repeated without and with smooth muscle relaxation with instillation of tropicamide. TM migration into SC is resisted by TM stiffness, but is enhanced by the support of its attachment to adjacent smooth muscle within the ciliary body. This technique is the first to measure the living human TM response to pressure elevation in situ under physiological conditions within the human eye.

Trabecular meshwork (TM) migration into Schlemm&#8217;s canal space can be induced by acute pressure elevation by ophthalmodynamometer, and observed by spectral domain optical coherence tomography. The goal of this method is to quantify the morphometric response of the living outflow tract to acute pressure elevation in living tissues in situ.

Yaşayan İnsan Eye Basınç Artışı trabeküler Tepki

The mechanical characteristics of the trabecular meshwork (TM) are linked to outflow resistance and intraocular pressure (IOP) regulation. The rationale ...

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. Indeed, research focusing on the discovery of new potential therapeutic targets using genetically altered mice requires a reliable, long-term assessment of the systemic arterial pressure variation. Currently, the gold standard for obtaining long-term measurements of blood pressure in ambulatory mice uses implantable radio-transmitters, which require&#160;artery cannulation. This technique eliminates the need for tethering, restraining, or anesthetizing the animals which introduce stress and artifacts during data sampling. However, arterial blood pressure monitoring in mice via catheterization can be rather challenging due to the small size of the arteries. Here we present a step-by-step guide to illustrate the crucial key passages for a successful subcutaneous implantation of radio-transmitters and carotid artery cannulation in mice. We also include examples of long-term blood pressure activity taken from freely moving mice after a period of post-surgery recovery. Following this procedure will allow reliable direct blood pressure recordings from multiple animals simultaneously.

The goal of this protocol is to assess systemic blood pressure in conscious freely moving mice using implantable radio-telemetry devices.

Telemetri kullanarak Serbestçe Hareketli Fare Uzun süreli Tansiyon Ölçümü

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Cavernous Nerve Stimulation and Recording of Intracavernous Pressure in a Rat

The stimulation of the cavernous nerve (CN) and measurement of intracavernous pressure (ICP) have been used extensively to test and evaluate therapies for erectile dysfunction. However, the methods used vary between laboratories, and pitfalls still exist. The goal of this study was to describe a surgical technique that would provide a reliable and reproducible model. By exposing the ischiocavernosus muscle at its point of insertion on the ischial tuberosity, the penile crus could be cannulated with minimal dissection and injury to the structures involved in erectile function. Repeated stimulation of the CN, without the need for lifting and drying, was achieved by using a 125 &#181;m bipolar silver electrode and biocompatible silicon glue to isolate the electrode-nerve complex. This method prevents neuropraxia by reducing stretching and drying the nerve and provides complete isolation of the nerve, negating electrical leakage and preventing stimulation of alternative pathways.

This study describes a simplified surgical procedure and technique for performing cavernous nerve stimulation with the isolation of the nerve-electrode complex using silicone glue and intracavernous pressure measurement.

Kavernöz sinir stimülasyonu ve kayıt bir sıçan Intracavernous basınç

The stimulation of the cavernous nerve (CN) and measurement of intracavernous pressure (ICP) have been used extensively to test and evaluate therapies for ...

Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced chronic liver disease followed by an instruction for transjugular biopsy. Under local anesthesia and ultrasound guidance, a catheter introducer sheath is placed in the right internal jugular vein. Using&#160;fluoroscopic guidance, a balloon catheter is advanced into the inferior vena cava (IVC) and inserted into a large hepatic vein. Correct and sufficient wedge position of the catheter is ensured by injecting contrast media while the balloon is blocking the outflow of the cannulated hepatic vein. After calibrating the external pressure transducer, continuous pressure recordings are obtained with triplicate recordings of the wedged hepatic venous pressure (WHVP) and free hepatic venous pressure (FHVP). The difference between FHVP and WHVP is referred to as HVPG, with values &#8805;10 mm Hg indicating clinically significant portal hypertension (CSPH). Before removing the catheter, pressure readings obtained in the IVC at the same level, as well as the right atrial pressure are recorded.
Finally, a transjugular liver biopsy can be obtained via the same vascular route. Different systems are available; however, core biopsy needles are preferred over aspiration needles, especially for cirrhotic livers. Again, under fluoroscopic guidance a biopsy needle introducer sheath is advanced into an hepatic vein. Next, the transjugular biopsy needle is gently advanced through the introducer sheath: (i) in case of aspiration biopsy, the needle is advanced into the liver parenchyma under aspiration and then removed quickly, or (ii) in case of a core biopsy, the cutting-mechanism is triggered inside the parenchyma. Several separate passages can be safely performed to obtain sufficient liver specimens via transjugular biopsy. In experienced hands, the combination of these procedures takes about 30-45 min.

Here, we present a protocol for measurement of hepatic venous pressure gradient (HVPG),the gold standard to diagnose clinically significant portal hypertension. Moreover, we describe how to perform a transjugular liver biopsy within the same session.

Hepatik Venöz Basınç Gradyanı ve Transjuguler Karaciğer Biyopsisinin Ölçümü

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced ...

Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. Research focusing on cardiovascular disease models, potential cardiovascular therapeutic targets or pharmaceutical agents requires assessment of systemic arterial pressure and heart rhythm changes. In situations where radio telemetry systems are not available or affordable, the technique of femoral artery cannulation is an alternative way to obtain intra-arterial pressure waveform recordings and systemic BP measurements. This technique is economical and can be performed with standard equipment in animal facilities. However, invasive arterial pressure recording requires cannulation of small arteries, which can be a challenging surgical skill. Here, we present step-by-step protocols for femoral artery cannulation procedures. Key procedures include the calibration of the data acquisition system, tissue dissection and femoral artery cannulation, and setup of the arterial cannulation system for pressure recording. Surface electrocardiography recording procedures are also included. We also present examples of BP recordings from normotensive and hypertensive rats. This protocol allows reliable direct recordings of systemic BP with simultaneous electrocardiography.

Here, we describe a setup for simultaneous recording of electrocardiography and intra-arterial blood pressure (BP) in experimental rats, which can be done with standard equipment in animal facilities and can be applied to physiological or pharmacological studies to investigate pathogenic or therapeutic mechanisms in cardiovascular medicine.

Eşzamanlı elektrokardiyografi kayıt ve invaziv kan basınç ölçüm sıçanlarda

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. ...