CR Harding Wellcome Trust öğrencilik WT086724 tarafından desteklenmiştir.

1.. L. hazırlanması Enfeksiyon için pneumophila <ol><li> Kömür maya özütü (CYE) plakalar (2 g / L aktif kömür, 10 g / L maya ekstresi, 13 g / L ağar, 10 g / L N-(2-asetamido)-2-aminothanesulfonic asit (ACEler), Hazırlama 1 g / L α-ketoglutarat, 0.4 g / L L-sistein HCI ve 0.25 g / L demir III pirofosfat, pH 6.9). Not: Gerekirse, tabak Cye (6 ug / ml) ekleyin kanamisin (25 ug / ml) ve / veya kloramfenikol. <ol><li> Tüm L. yürütmek Biyogüvenlik çevreleme 2 düzeyinde pneumophila çalışma (BSL2), yerel kurallara uygun bir mikrobiyal güvenlik kabini (MSC) de. </li></ol></li><li> Streak L. CYE plakalar üzerine -80 ° C gliserol stoklarından pneumophila </li><li> 37 ° C&#39;de 4 gün boyunca inkübe edin Not: 4 gün boyunca plakalar inkübasyon önemli L. ölümcüllüğünü arttırmaktadır G. pneumophila 3 gün beklettikten üzerinde mellonella. </li><li> Enfeksiyondan bir gün önce, bir döngü fu tekrar süspansiyonÖnceden ısıtılmış, 1 ml bakteri ll (birkaç koloni içeren) (37 ° C) maya ekstresi (AYE) suyu ACES ve bir spektrofotometre kullanılarak 600 nm (OD 600) de içine çekmeyi ölçmek. </li><li> Son bir OD 0.1 600 (gerekirse antibiyotik ile) taze bir 3 ml&#39;lik AYE kültürünü aşılamak. <ol><li> Bir medya dahil sadece medyanın kısırlık sağlamak için kontrol. </li></ol></li><li> 21 saat için 200 rpm&#39;de bir çalkalama inkübatöründe 37 ° C&#39;de inkübe edilir. Not: Bakteriler enfeksiyon 38 için post-üstel faz yetiştirilen olmalıdır. 21 saat boyunca artan standart deneyler sağlar. Not: protein indüksiyonu için gerekirse, bir gece boyunca 0,5 mM izopropil β-D-1-tiogalaktopiranosid (IPTG) ekleyin. </li><li> 600 (bakteri post-üstel büyüme fazı, OD 600 2.5-3 olmalıdır) OD ölçün. </li><li> Steril Dulbecco fosfat tamponlu tuzlu su (D-PBS) içinde 1 x 10 9 CFU / ml bakteri kültürü vermek üzere seyreltilir. NotBir önceki sonuçlara dayanarak, bir OD 1 600, ancak bu değişik L. teyit edilmelidir, 1 x 10 9 CFU / ml &#39;ye karşılık gelir pneumophila suşları. Not: bir plazmidden bir protein indüksiyonu gerekli ise, aşı maddesi için 1 mM IPTG ilave edin. </li><li> Beklenen CFU aşı içinde mevcut olduğundan emin olmak için bir kontrol olarak Bölüm 9&#39;da tarif edildiği gibi inokulum Plate. </li></ol> 2. Larva hazırlanması <ol><li> Yeterli G&#39;ye Satınalma Mellonella ticari bir tedarikçiden larva. Larva 5. ya da 6. instar aşama (uzunluk olarak yaklaşık 2-3 cm arası) ile sevk edilir ve hemen kullanım için uygundur. Not: larva önce 39 tarif edilmiştir nasıl arka açıklayan bir yöntem. Not: Larvalar kadar iki hafta boyunca oda sıcaklığında saklanabilir ve yiyecek gerektirmez. Hemen pupa belirtileri gösteren herhangi larvaları atın. </li><li> Eseri tarafından larva için kap hazırlayın, 10 cm Petri kabı alt 10 cm filtre kağıdı bir daire ing. </li><li> Künt uçlu cımbız kullanarak, Petri kabı içine, yaklaşık benzer büyüklükte on sağlıklı larva yerleştirin. Not: sağlıksız görünümlü renkli kahverengi lekeli veya böcekler atın. Sağlıklı larvalar düzgün kremsi koyu renk hiçbir alanları ile renkli ve devredilebilecek eğer hızlı bir şekilde kendilerini sağa edebiliyoruz vardır. </li></ol> 3. G. enfeksiyonu mellonella Larva <ol><li> Yüzeye filtre kağıdı bir daire bantla tutturularak tespit edilmiştir enjeksiyon platformu hazırlayın. </li><li> Güvenli bir enjeksiyon bir platform oluşturmak için filtre kağıdına yatay bir P1000 ipucu bantlayın. Bu, steril olması gerekmez. </li><li> % 70 etanol aspirasyon ve en az 10 dakika boyunca inkübe edilerek, 20 ul mikro titer şırınga sterilize edin. <ol><li> Enjekte ederken delinmeye karşı dayanıklı eldiven giyin, </li></ol></li><li> Birkaç kez aspire ederek ve steril suyu uzaklaştırmak herhangi bir kalıntı etanol çıkarın. </li><li> UsiL. şırınga, aspirat 10 ul ng pneumophila 1 x 10 9 CFU / ml süspansiyon. </li><li> Bir larva alın ve yavaşça ama sıkıca sırtında açın, P1000 ucu eğildi. </li><li> Larvaların ön sağ proleg üzerinde şırınganın ucuna yerleştirin. </li><li> Yavaşça, bu larvaların içinde olduğundan emin, proleg içine iğne ucu takın, ve sorunsuz şırınga tüm içeriğini enjekte. Not: şırınga doğru bir şekilde takıldığında, bu bölmenin içine yerleştirmek için yalnızca bir şırınga kullanılarak larvaları almak mümkün olmalıdır. <ol><li> Enjeksiyonundan sonra, birkaç saniye larvaları gözlemlemek. Larvalar birkaç saniye sonra tarama başlayacaktır ancak sıvıyı salgılamak olmamalıdır. </li></ol></li><li> 10 7 CFU L. ile enfeksiyon; kısaca birkaç saat enfeksiyondan larvaları gözlemlemek pneumophila 130b ilk 5-8 saat pi içinde herhangi bir belirti neden olmaz Bu nedenle larva siyah / gri bu noktadan önce, t dönüyor eğerO deney kesilmelidir. Not: 1 mM IPTG ile larva aşılama deney boyunca larva yaşayabilirliğini etkilememektedir. </li><li> Aynı şekilde, larva ölüm oranı analiz etmek için bir kontrol olarak hizmet etmek için D-PBS ile enjekte edilen 10 larvaları da dahil olmak üzere bir durumda başına 10 larva, toplam enjekte edilir. </li><li> Bant Petri kapları kapalı ve ikincil muhafaza içinde yer. </li><li> Deneyin süresi boyunca, 37 ° C&#39;de standart bir kuluçka makinesi içinde bakteri inkübe edin. </li></ol> 4. Kimyasal İnhibitörü ile Larva Tedavi öncesi <ol><li> Bölümünde 3.1-3.6 önce tarif edildiği gibi olduğu enfeksiyona, enjeksiyon için larva hazırlar. </li><li> Ön içine Sitohalasin D 100 mcM çözüm 10 ul enjekte edilir, 10 larva proleg bıraktı. Not: İnhibitör larvalarına yaralanma riskini azaltmak için bakteriyel süspansiyonun farklı proleg enjekte edilir. </li><li> Bir kontrol olarak 10 larva halinde DMSO 10 ul enjekte edilir. </li><li> At larva inkübe4 saat 37 ° C. </li><li> Ön içine bölüm 3&#39;de tarif edildiği gibi, sağ 1 x 10 7 ya da proleg ile, önceden muamele edilmiş larva enjekte WT L. CFU pneumophila veya PBS kontrol. </li></ol> 5. Larvaların Ölümleri Analizi <ol><li> 18 saat sonrası enfeksiyon (pi) de, mortalite için tüm enfekte larva incelemek. </li><li> , Mortalite kontrol larvaları ters çevirin ve bacakların hareketi aramak için künt uçlu cımbız kullanmak için, sağlıklı larva hızla dik olmalıdır. Pigmentasyon enfeksiyona karşı güçlü bir bağışıklık tepkisini gösterir. Herhangi bir hareket varsa, canlı olarak sayılır. </li><li> Ölü ve canlı larva rekor sayıda. </li><li> Seçilen diğer tüm zaman noktalarında bu işlemi tekrarlayın. Not: inkübasyon en fazla üç gün boyunca devam edilirse, pupa görülebilir. Herhangi bir pupa çıkarın ve dondurma ile euthanize - 20 ° C metamorfoz oluşabilir önce. </li></ol> 6. Hemolimf Ekstraksiyon <ol><li> Rasgele seçeneğini üçlarva ve örneğin 5 ve 18 saat pi olarak seçilen zaman noktalarında bir 14 ml tüp içine yerleştirin </li><li> Larvaların bacakların herhangi bir hareket gözlenebilir kadar, 5-10 dakika boyunca buz üzerinde, bu tüp yerleştirin. </li><li> Larvaların kuyruk yakın iki kesimleri arasında bir kesi yapmak, bir neşter kullanılarak bir Petri kabı ve üzerine anestezi larva yerleştirin. </li><li> Hemolimf toplamak için bir steril 1.5 ml&#39;lik bir santrifüj tüpü içine larvaları sıkıştırın. <ol><li> En az üç bireylerden Havuz hemolenfin. Bir larva boyutuna bağlı olarak hemolimf 15-50 ul arasında verir. Not: hemolimf çıkarma sırasında numunelerin potansiyel kirlenme sonuçlanan bağırsak bozmak için çok kolaydır. Bakteri dışında kaplama, ancak, antibiyotik seçimi her zaman gerekli olacaktır (uzak bağırsaktan) kuyruk yakın larvaları keserek kirlenmeyi azaltmak. Not: toplandıktan sonra 10 dakika içinde, kahverengi ve pıhtılaştırma, işlemini hemolimf dönüm hemolimf önlemek için. </li></ol></li><li> Yeni bir 14 ml Falcon tüp, mühür ve yerine larva gövdesini iptal - 20 ° C gecede larvaların ölü sağlamak. </li><li> Ölü larva otoklavlayın ve yerel kurallara uygun şekilde atılmalıdır. </li></ol> 7. Hemocyte Canlılığının Belirlenmesi <ol><li> Yukarıda tarif edildiği gibi hemolimf ekstrakte edin. </li><li> 0.02,% 20 ul, 96 oyuklu bir plakanın bir oyuk PBS içinde (v / v) tripan mavi ile ekstre hemolimf 20 ul karıştırın. </li><li> Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Bir hemositometreyle üzerine ve canlı (mavi değil) hücreleri saymak yük hemolimfin 10 ul. </li><li> Hatasını azaltmak için üç kopya halinde her bir numune sayısı. </li></ol> 8. İmmünofloresan Mikroskopi için Çıkarılan hemocytes İşleme <ol><li> , 24 oyuklu bir plaka içerisinde, bir 10-15 mm cam lamel üzerine en az üç larva ve pipetten ekstre bir araya getirilmiş hemolimf karıştırın. Not: hemocytes cam uymak gibi Lameller tedavi gerekmez. </li><li> D-0.5 ml ilave edilirPBS ve aşağı yukarı pipetleme ve iyice karıştırın. </li><li> Bir aerosol geçirmez bir santrifüj tutucu plaka kullanılarak oda sıcaklığında (RT) 500 x g&#39;de 10 dakika boyunca plaka santrifüjleyin. </li><li> Hemocytes yapıştığı kontrol etmek ters bir mikroskop kullanılarak her iyi inceleyin. </li><li> Süpernatantı ve dikkatli bir plaka 2-3x sallanan ve bir pipet ile D-PBS kaldırarak, iyi duvarına 0.5 ml D-PBS ilave edilerek hücreler üç kez yıkayın. </li><li> % 4 PBS içinde (v / v) paraformaldehit (PFA), 0.5 ml ilave edilerek hücreleri sabitleyin. </li><li> Oda sıcaklığında 20-30 dakika arası bir süre boyunca inkübe hücreleri. </li><li> Daha önce olduğu gibi, D-PBS ile hücreler üç kez yıkayın. </li><li> Ekle 0.5 mi kalıntı PFA söndürmek ve 15 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe PBS içinde 15 mM NH4CI. </li><li> D-PBS ile hücreler üç kez yıkayın. Not: Bu aşamada, lamelleri 4 ° C de bir gece saklanabilir </li><li> PBS içinde 0.5 ml% 0.1 Triton X-100 ilave edin ve hücreleri permeabilize oda sıcaklığında 5 dakika boyunca inkübe edin. </li&gt; <li> Bloke etme çözeltisi (% 2 (PBS içinde ağırlık / hacim) BSA) ile 1 saat boyunca Blok. </li><li> Üretici tarafından belirtilen seyreltide bloke etme çözeltisi içinde seyreltilmiş birincil antikor ile karanlıkta, oda sıcaklığında 1 saat boyunca inkübe edilir. </li><li> 3 kez PBS ile yıkayın. </li><li> Yukarıdaki gibi bakterilerin görüntülenmesi için ikincil antikor ve DAPI ile 1 saat boyunca inkübe edilir. </li><li> 3 kez PBS ile yıkayın. </li><li> Cam slaytlar üzerine montaj ayıracı bir damla kullanarak lamelleri monte edin. </li><li> Tam olarak monte çözeltisi kurutmak için oda sıcaklığında, karanlıkta gece boyunca inkübe edin. </li><li> Resim bir floresan mikroskop üzerinde kayar. </li></ol> 9. Bakteri CFU miktarının belirlenmesi <ol><li> Bağırsak florası tarafından kirlenmesini önlemek için plakaları Cye 100 mikrogram / ​​ml spectinomycin ekleyin. L. pneumophila suşu 130b 40 spectinomycin doğal dayanıklıdır. </li><li> Hemolimf ekstre etmeden önce, 1.5 mi santrifüj tüpleri tartın. </li><li> 6. bölümde anlatıldığı gibi hemolimf Özü ve tartılır t yerleştirmekUBE, 5 mg / ml digitonin 1 ul ekleyin, iyice karıştırın ve hemocytes lize etmek için oda sıcaklığında 5 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Hemolimf ile tüp yeniden tartın ve ekstre hemolimf ağırlığını belirler. </li><li> AYE steril ortam içinde hemolimf on kat seri seyreltmeler yapın. </li><li> Bir kalem kullanarak, altı eşit sektörler ve etiket içine CYE plakanın tabanı bölmek. </li><li> Her dilüsyon için göz 25 ul Plaka üç damla, plakanın her bir bölümünde (en seyreltik ile başlayan). </li><li> 37 ° C de bir gece Upmost kapak ile inkübe edin </li><li> Damla tamamen kuruduktan sonra, en az bir başka iki gün boyunca 37 ° C&#39;de fazla plaka açmak ve inkübe edilir. </li><li> Her dilüsyonda kolonilerin sayılması ile ekstre bakteri sayısal olarak ve ekstre hemolimf ağırlığına normalize. </li></ol> 10. Rekabet Endeksi belirlenmesi (CI) <ol><li> Her iki suşları suyu kültür ve CYE agar plakaları prio üzerinde eşit derecede iyi büyümek olduğunu teyitrekabet endeksi teşebbüs r. </li><li> Bölüm 1 &#39;de tarif edildiği gibi WT veya kanamisine dirençli mutant bakteri süspansiyonlar hazırlamak ve bir 1:1 oranında karıştırın. <ol><li> CYE spektinomisin üzerine aşı (100 ug / ml) ve CYE spektinomisin / kanamisin Levha seri seyreltileri </li></ol></li><li> Yukarıda tarif edildiği gibi uygun bir zaman noktalarında larva ve özü hemolimf Infect. </li><li> Hemolimf çıkarma ve CYE spectinomycin ve CYE spectinomycin / kanamisin üzerine seri dilüsyonları kaplama ile canlı sayılarını belirlemek. </li><li> CI = (mutant çıkışı / WT çıkışı) / (mutant aşılama / WT inokulum) aşağıdaki gibidir: rekabetçi indeksi (CI) hesaplayın. </li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Legionella pneumophila enfeksiyonu için Galleria Mellonella larva modeli patogenezinde in vivo çalışmalar için yararlı bir araçtır. Burada makrofaj enfeksiyon yönlerini bir dizi G. değinmeyecek edilebilir olduğu gösterilmiştir virulensine ve bakteri çoğaltma Dot / Icm T4BSS rolü ve Dot / Icm-efektör SIDC lokalizasyonu dahil Mellonella modeli. Ayrıca, aktin polimerizasyon kimyasal inhibitör önemli macophages 47&#39;de elde edilen sonuçları taklit eden ve bakterilerin içselleştirme larva ölüm neden olmak için gerekli olduğunu kanıtlar destekleyici, larva ölüm azalttığını göstermektedir. Daha önce, bu ispat edilmiştir L arasında virülans olarak varyasyonlar diğer enfeksiyon modellerinde görülen pneumophila suşları G. doğrulanabilir mellonella ve post-üslü büyüme fazında hastalık oluşturma faktörlerinin bu bakteriyel hastalık oluşturma indüksiyonu için gereklidir <suteyit p&gt; 36, bu G. mellonella L. için uygun bir modeldir pneumophila enfeksiyonu. L. CFU belirlenmesi larva pneumophila, ya tek başına ya da karışık enfeksiyonların büyük ölçüde modelin yarar arttırır etkilemiştir. Daha önce, çeşitli faktörler 29,48-51 enfeksiyonun bir veya daha fazla model bakteriyel replikasyonu üzerindeki ince etkilere sahip olduğu tespit edilmiştir. Larvaları, uyarlamalı bir bağışıklık sistemine sahip olmayan, ancak, doğal immun cevabın mevcudiyeti ince fenotipleri amplifiye etmek için hizmet edebilir ki, tek başına makrofajlar ile karşılaştırıldığında daha güçlü seçim sağlar. Bu nedenle, bu suşlar muhtemelen önemli ölçüde larva mortaliteyi etkilemez iken, onlar G. bakteri çoğalmasını veya uygunluk azalma gösterebilir, bu mümkün Mellonella modeli. Yanı sıra L. replikasyonu larvaları pneumophila, biz geç enfeksiyon önemli hemocyte tükenmesi göstermiştir. L. gibipneumophila da bakteriyel bir replikasyon dolaylı bir ölçümü olarak hizmet edebilir hemocyte tükenmesi ölçülerek, çoğaltma döngüsünün sonunda konakçı hücrelerin lize beklenmektedir. Son sonuçlar bu resmi ilk 37 belived daha karmaşık olduğunu göstermektedir rağmen Hemocyte tükenmesi önce, enfeksiyon 3,52 böcek mortalite ile ilişkili olmuştur. Son zamanlarda, larva açlık bağışıklık tepkilerinin 53 bir baskı ile enfeksiyona karşı artan hassasiyet yol açtığı gösterilmiştir. Burada anlatılan deneylerde, larva çalışmanın süresi için beslenen değildi ve beslenen larvalar L. yanıt ne kadar iyi bilinmemektedir pneumophila enfeksiyonu. G. avantajlarından biri, bir model organizma olarak Mellonella enfekte larva hemocytes çıkarılması ve miktarının kolaylığıdır. Önceki videolar, ancak araya böcekler 54,55 ayıklama hemocytes için çeşitli yöntemler göstermiştirinşaat işçisi Burada yer anında işlem için basit ve uygundur. Bir kez ekstre edilmiş, hemocytes kolayca ölçülebilir immünofloresan, transmisyon elektron mikroskobu için kullanılan 36 veya 56 veya kültür sitometri akışı ve enfeksiyona hücrelerinin yanıtı ayrıntılı olarak araştırılması gereken sağlayan ex vivo 3 enfekte olabilir. Bu durum, modelin esnekliğini artırır. G. İmmünofloresan için bir uyarı Mellonella G. karşı valide antikorların sınırlı kaynağı olduğunu mellonella proteinleri. Ancak, çalışmalar larva protein 57 ve insan bağışıklık ile ilgili proteinlere karşı antikorların karşı antikorların yaratılması göstermiştir G. tanımak bulunmuştur 11 G. üzerinde immünofloresans için potansiyel gösteren Mellonella proteinler Mellonella hemocytes. G. kolaylığı Mellonella enfeksiyon olabilir, hızlı, orta verimli ekranlar için izin verirLegionella çeşitli türleri ve ırklarının hastalık oluşturma etkinliğini karşılaştırmak için kullanılabilir ve ayrıca bu tür yapışma moleküllerinin 58 ya da başka bir modellerdeki hastalık oluşturma için gerekli olan tip 2 salgılama sistemi 59 olarak daha önce tanımlanmış olan hastalık oluşturma faktörleri analiz etmek için kullanılabilir. Buna ek olarak, bu modelin kullanımı salgılanan transloke efektör proteinler de dahil olmak üzere, yeni hastalık oluşturma faktörlerinin tanımlanması ve bir daha karakterize sağlayacaktır. Son zamanlarda, L. fosfolipaz C aktivitesi gösterilmiştir pneumophila G. bir rolü vardır mellonella hastalık oluşturma 60 ve nokta / Icm efektör protein SdhA hastalık oluşturma 37 için gereklidir. Buna ek olarak, son zamanlarda G. gözlenen fenotipleri arasında bir ilişki olduğunu göstermiştir mellonella ve A / J fare suşu 37. Bu çevre hücreliye ve tek hücreli host ve muri tamamlamak için bu aracın önemini vurgulamaklane enfeksiyon modelleri. G. larva genomik dizisi mevcut olacak ve daha fazla genetik araçları kurulmuş bir kez Mellonella modeli, gelecekte daha da değerli hale gelecektir. Bu yönde adımlar bağışıklık ilgili transcriptome 61 ve Lepidoptera spp 62 gen susturulması ilerlemek için bir girişim oluşumunu ayrıntılı son yayını bulunmaktadır. G. kullanarak mellonella larvaları biz L. patogenezini araştırmak için kullanılabilir bakteriyel hastalık oluşturma basit, hızlı okumalar bir dizi pneumophila. Bu tahlillerin ve L. geniş tarama kurulması pneumophila suşları ve serogrupları bu yeni aracın yarar artacak ve L. anlayışımıza katkıda bulunacaktır pneumophila patogenezi.

Enfeksiyonu hayvan modelleri bakteriyel hastalık oluşturma faktörlerinin belirlenmesinde değerli kanıtlamıştır. Ancak, omurgasız modeller enfeksiyon geleneksel memeli modellerine bir alternatif olarak artan ilgi kazanmıştır. Mum güvesinin larvaları, Galleria mellonella giderek 1 Gram-pozitif ve Gram-negatif bakterilere 2,3 ve çok sayıda patojenik mantar 4,5 dahil olmak üzere önemli insan patojenleri, bir dizi çalışma için kullanılmaktadır. Bir böcek modeli kullanarak bir omurgasız, G. gibi, geleneksel memeli modelleri üzerinde bir takım avantajları vardır mellonella memeli modelleri etik sınırlamalara tabi değildir. Buna ek olarak, larva kolayca korunabilir olarak anestezi olmadan enfekte enjeksiyon ile, kimyasal önleyicileri ile tedavi öncesi 6 geçmesi ve 37 ° C&#39;de 7 de inkübasyon sürdürmek. İlginç bir şekilde, G. çeşitli mikroorganizmaların patojenik arasında iyi bir ilişki mellonella ve enfeksiyon memeli modelleri, 2,8 kurulmuştur. G. bağışıklık sisteminin artan anlaşılması Mellonella de bu model organizmanın karakterizasyonu yardımcı olmuştur. Memelilerde bulunan böcekler gibi bir adaptif bağışıklık sistemi yok rağmen, antimikrobiyal peptidler 9 üretimi de dahil olmak üzere gelişmiş hücresel ve humerus savunma var. Hemocytes hücresel savunma en önemli aracı ve aşağıdakilerden birisidir: G. hemolimf (veya kan) bulunan ve en çok hücre tipi Mellonella 10, Bu hücreler profesyonel fagositlerdir ve hem kaplıyor ve bir phago-lizozom 10,11 bakterileri aşağılayıcı ve bakterileri işgalci etrafında nodüller oluşturan, fiziksel bakteri çoğalmasını 12 kısıtlayarak insan makrofaj ve nötrofillerin benzer işlevleri yerine. Legionella pneumophila ağır pnömoni neden olan bir solunum patojendirörneğin yaşlı veya 13 bağışıklık gibi duyarlı toplumlarda bir (lejyoner hastalığı). Legionella taze su amip 14,15 çeşitli türlerin bir patojen olan çevre ve insan yapımı hem su kaynakları, yayg bulundu. Legionella hayatta ve konak hücreye 16-20 içerisine 275 üzerinde efektör proteinleri translokasyonunda 4 salgı sistemi (T4SS) yazın Dot / ICM (organel kaçakçılığı kusurlu / hücre içi çoğalma) olarak bilinen bir çok protein kompleksi kullanarak bu profesyonel fagositler içinde çoğaltır. Bu proteinler çarpıtma (LCV) içeren Legionella yaratılmasına yol açan, normal konakçı hücre fagositik yolları yıkmak için hizmet vermektedir. LCV lizozomlardan ile füzyonu önler ve yerine endoplazmik retikulum acemi (ER) kaba ER 21,22 benzeyen özel bir bölmede çıkan kabarcıklara türetilmiş. L. pneumophila kazara bir insan yolu olarak kabul edilirogen, bu amip içinde çoğaltmak için izin aynı stratejileri, aynı zamanda insan alveoler makrofajlar 23 çoğaltma sağlar. Memeli ana fareler ve guinea domuz 24,25 dahil olmak üzere insan Legionella enfeksiyonu için model olarak karakterize edilmiştir. Bununla birlikte, fare suşlarının çoğunluğu hafif, kendi kendini sınırlayan bir enfeksiyon geliştirir 24 inbred albino A / J fare hariç Legionella enfeksiyonu 26 dayanıklıdır. Kobay modeli daha yakından insan hastalığına 25, mutantların eksikliği benzer ve artan maliyet kullanımını 27. etmemektedir rağmen. Buna ek olarak, çeşitli omurgasız modelleri Caenorhabditis elegans 28 dahil olmak üzere Legionella pneumophila enfeksiyonu için geliştirilmiştir, Drosophila melanogaster 29 ve çeşitli türler amip 30-32. Ancak, bu modeller C. zayıflıklar, virülansını var elegans </em&gt; Sistemi, bu modelin yardımcı sınırlama, 28 nokta / Icm-bağımlı değildir. Drosophila modeli bakteriyel hastalık 29 faktörleri ve ancak umut verici görünmektedir soruşturma etkili olduğu kanıtlanmıştır, bu model tam olarak karakterize edilmemiştir. Tek hücreli amip L. çevre ana pneumophila ve moleküler seviyede 33, hastalık oluşturma faktörlerinin etkisini araştırmak için ideal olan, ancak böyle bir kaspaz 34 gibi enfeksiyon için memeli konakçı hücre cevabının çok önemli aracıları yoksundur. Memeli deney ile ilgili yüksek maliyet ve etik kaygıları ile birlikte mevcut modellerin zayıflıklar, diğer uygun model organizmaların 29,35 arayışına yol açmıştır. Biz son zamanlarda göstermiştir ki G. mellonella L. için uygun bir modeldir pneumophila 36,37 patogenezine. Bu protokol, bulaştırmak için kullanılan deney teknikleri ayrıntılıG. ing Mellonella larva, larva ahlak analiz sayma ve immünofloresans için hemocytes ayıklanması ve uygulanabilir CFU çoğaltmayı belirlenmesinde enfekte larva sayar.

<table border="1">
 <tbody>
		 <tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Material/ Equipment</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>ACES yeast extract (AYE) broth</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>4 g ACES, 4 g yeast extract, 0.4 g &alpha;-ketoglutarate, pH 6.9, 400 ml H2O, autoclaved, 4 ml iron solution*, 4 ml cysteine solution* 
		 *add sterile ingredients after autoclaving</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Charcoal buffered yeast extract (CYE) plates</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>As above, with the addition of 0.6 g activated charcoal and 6 g agar</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Sterile iron solution (Ferric Pyrophosphate)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P6526 </td>
			<td>0.6 mM solution, sterile filtered</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Sterile cysteine solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C7880</td>
			<td>3.3 mM solution, sterile filtered</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>G. mellonella (waxworms)</td>
			<td>Livefood UK</td>
			<td>W250</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Anti-HA-Tetramethyl Rhodamine Isothiocyanate (TRITC)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H9037</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Anti-Legionella LPS</td>
			<td>Cambridge Biosciences</td>
			<td>PA1-7227 </td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Anti-Rabbit IgG Alexa488</td>
			<td>Jackson Immunoreach</td>
			<td>711-485-152</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Isopropyl &beta;-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>I6758</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Dulbeccos phosphate buffered saline (D-PBS)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D8662</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Paraformaldehyde</td>
			<td>Agar Scientific</td>
			<td>R1026</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Ammonium chloride (NH4Cl)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A9434</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Trypan Blue solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T8154</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Digitonin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D141</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Cytochalasin D</td>
			<td>Biomol International</td>
			<td>BML-T109-0001</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
		 <td></td>
		 <td></td>
		 <td></td>
		 <td>[header]</td>
 </tr>
		 <tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Material</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Microtiter Syringe</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>24544</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Cell counter, double, Improved Neubauer </td>
			<td>VWR</td>
			<td>631-0926</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>For centrifuging plates </td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Fluorescence microscope</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Any microscope with appropriate filters for the required fluorophores</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>For viable cell counting </td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Puncture-proof glove</td>
			<td>Turtleskin </td>
			<td></td>
			<td></td>
		 </tr>
 </tbody>
 </table>

use of galleria mellonella as a model organism to study legionella pneumophila infection

Legionella pneumophila, Lejyoner hastalığı adında bir şiddetli pnömoni, etkeni bozar ve alveoler makrofajlar içinde çoğaltır önemli bir insan patojeni olduğunu. Onun virülens vakuol (LCV) içeren Legionella gibi bilinen bir çoğaltma müsamahakâr çarpıtma kurmak esastır Dot / Icm tip IV sekresyon sistemi (T4SS) bağlıdır. L. pneumophila enfeksiyonu ancak çoğu fare suşları yeni enfeksiyon modelleri için arama açan, keyfi olmayan farelerde örnek alınabilir. Yakın zamanda balmumu güve Galleria mellonella larvaları L. araştırılması için uygun olduğunu göstermiştir pneumophila enfeksiyonu. G. mellonella giderek insan patojenleri için bir enfeksiyon modeli olarak kullanılan ve iyi bir ilişki böcek ve memeli modellerinde çeşitli bakteri türlerinin ölümcüllüğü arasında bulunmaz. Larvaları bağışıklık savunmalarının temel bileşeni hemocytes, meslek vardırişgalciler almak ve yok diğerleri fagositlerdir. L. pneumophila, enfekte bir LCV oluşturan ve bu hücreler içinde replike edebilmektedir. Burada L. analiz etmek için protokoller göstermektedir G. pneumophila virülans bulaşıcı L. büyümeye nasıl dahil Mellonella modeli, pneumophila, inhibitörleri ile larvaları ön arıtmadan geçirilmesi larvaları bulaştırmak ve ölçümü ve mikroskobik inceleme için enfekte hücreleri ayıklamak için nasıl. Biz de rekabet deneylerinde bakteri çoğalmasını ve fitness ölçmek için nasıl açıklar. Bu yaklaşımlar L. önemli faktörlerin belirlenmesi mutantların hızlı taranması için izin verir Bu karmaşık patojenin anlayışımızı yardım için yeni bir araç açıklayan pneumophila virülans.

Burada gösterilmiştir ki G. Mellonella L. çalışma kullanımı kolay, uygun model pneumophila enfeksiyonu. Daha önce gösterilmiştir ki, L. makrofajlar, amip ve memeli modellerinde pneumophila hastalık oluşturma Nokta / Icm salgılama sistemi için 41-43. G. varlığına bağlıdır mellonella larvaları yukarıda açıklandığı gibi enfekte olan ve vahşi tip (WT) ve Nokta / Icm-eksikli suşu hastalık oluşturma karşılaştırıldı. L. 10 7 CFU ile enfeksiyon pneumophila suşu 130b 24 saat sonrası enfeksiyon (pi) içinde% 100 ölüm ile sonuçlandı. Bununla birlikte, L. fonksiyonel Dot / Icm T4SS salgı sistemi yok pneumophila Δ dotA suşu, (Şekil 1) Bu deneyde avirulent oldu. Bu gösteriyor ki L. G. pneumophila virülans Mellonella karakterizasyonu için bu model uygun hale, Dot / Icm efektörlerinin translokasyon bağlıdırBu proteinlerin fonksiyonu. Son zamanlarda, sitokalasin işlenerek fagositoz inhibisyonu maya Candida albicans 6 neden olduğu enfeksiyona larvaların susceptibly arttığı gösterildi. L. gibi pneumophila bakterilerin alımı bu modelde patogenezinde önemli olup olmadığını belirlemek için karar verildi, hücre içi bir patojen olduğunu. Larva 37 ° C&#39;de 4 saat boyunca 100 uM Cytochalasin D (CyD) 10 ul ile ön-muamele, sonra WT L. 10 7 CFU ile enfekte yalnız inhibitörü ile 24 saat pi Tedavisi izlenir pneumophila 130b ve mortalite larva hayatta etkilemedi. Ancak, ön tedavi, enfekte larva DMSO-tedavi, enfekte olmuş böcekler (Şekil 2) ile karşılaştırıldığında önemli ölçüde daha yüksek sağkalım (p = 0.0066, eşsiz T-testi) görüntülenir. CyD Tedavinin etkisi, 48 saat pi (sonuçlar gösterilmemiştir) tarafından kaldırılmış, bu nedeniyle G. ilacın yarı ömrü olabilirMellonella. Bu, L. bu alımım G. içine pneumophila Mellonella hemocytes bakteriyel virulans önemli bir yönüdür. Ifadesini doğrulamak ve G bir efektör proteinin hücre içi lokalizasyonu belirlemek amacıyla Mellonella, hemocytes ayıklanır ve mikroskobik inceleme için işlendi. Larva WT ve Δ dotA L. 4 N-terminal HA etiketler kaynaşmış iyi tanımlanmış T4SS efektör, SIDC 41-918, bir fragmanını ifade eden pneumophila 130b ile enfekte edilmiştir. Bu efektör bir fosfoinositid-4-fosfat-bağlayıcı etki alanı 44 ile LCV bağlandığı gösterilmiştir. Anti-HA (kırmızı) ve anti-Legionella (yeşil) antikorlar, 4HA-SIDC 41-918 enfekte hemocytes LCV lokalize (Şekil 3) kullanma. Bu lokalizasyonu önceden Amiblerden Dictyostelium discoideum ve c teyit memeli makrofajlar 44,45 gösterilmiştirBu modelin omparability. Ölümcüllüğü için proteinlerin önemi genellikle yabani tip ve mutant bakteri büyüme kinetiklerini karşılaştırılarak belirlenir. Enfeksiyonun boyunca bakteriyel kopya kinetiğini takip etmek amacıyla, üç larva hemolimf toplandı ve bir araya getirilmiş, (0, 5, 18, ve 24 saat pi) her zaman noktasında kurban edildi ve ekstre hemolimf CFU/0.1g tespit edilmiştir. 5 saat pi, WT bakterilerin CFU bir başlangıç ​​daldırma ancak 24 saat pi kadar artar sonra, Δ dotA gerginlik hiçbir çoğaltma uğrar ve 18 saat pi (Şekil 4) temizlenir. L. yeteneği Bir T4SS bağımlı bir şekilde makrofaj lizizine neden olmak için uzun pneumophila, ancak benzer bir çalışma, in vivo olarak gerçekleştirilmiştir, 46 belgelenmiştir. Dolaşan hemocytes konsantrasyonu 5, 18 tespit edilmiştir ve 24 saat pi larva ile enfekte edilmiştir WT veya Δ <em&gt; dotA L. pneumophila 130b, tripan mavisiyle çıkarma yöntemine göre, enfekte olmuş böcekler sayılır ve canlı hücrelerinden ekstre hemocytes. 5 saat pi de suşları arasındaki hemocyte sayıları açısından fark (Şekil 5) görülebilir. Ancak, 18 saat pi de Δ dotA, enfekte larva yok WT hemocyte konsantrasyonunda önemli bir düşüş oldu, ama. Bu fark, bağışıklık fluorışıması yoluyla görüldüğü gibi hücre içi bakteri varlığı ile birlikte hemocyte sayısındaki düşüş, anlaşılacağı 24 saat PI kalıcı olduğunu L. pneumophila sonra bakteriler bir replikasyon birkaç tur geçmesi sağlayan, bunları lize hemocytes içinde çoğaltılır. <img alt="Şekil 1" fo:content-width="3.5in" src="/files/ftp_upload/50964/50964fig1.jpg" /> Şekil 1. L. enfeksiyonu pneumophila neden Dot / Icm bağımlı larva ölüm. 10 larva PBS tek başına ya da 10 ile enfekte edildi <s72 saat ve kaydedilen larvaların ölüm süresi boyunca 37 ° C&#39;de inkübe vahşi tip (WT) ya da Δ dotA L. pneumophila 130b kadar&gt; 7 CFU. WT ile enfekte edilen tüm larvaların 24 saat enfeksiyondan (pi) içinde olduğu enfeksiyona yenik, ancak hiçbir ölüm veya tek başına PBS Δ dotA suşu ile aşılanmış larvaları görüldü. Sonuçlar, üç ayrı deneyde, ± standart sapma ortalama bulunmaktadır. <img alt="Şekil 2," fo:content-width="3.5in" src="/files/ftp_upload/50964/50964fig2.jpg" /> Şekil 2. Ölüm bakteriyel içselleştirilmesi bağlıdır. 10. L. pneumophila larvaları (p = 0.0066, eşleştirilmemiş t-test) önemli ölçüde azaltılmış, daha sonra 10 ortaya 7 WT ve 24 saat pi önceden işlemden geçirilmiş larvalar izlenmiştir mortalite ile enfekte edilmiş, 37 ° C&#39;de 4 saat boyunca 100 uM Cytochalasin D (CyD) 10 ul ile ön işleme tabi tutuldu mortalite. Sonuçlar mea temsildurum başına 10 larva ile standart sapmaları ± dört bağımsız deneyler de n. <img alt="Şekil 3," fo:content-width="6in" src="/files/ftp_upload/50964/50964fig3.jpg" /> Şekil 3,. Ekstre hemocytes efektör proteinler imüno-flüoresan görüntüleme. Hemocytes L. larva ile enfekte elde edildi 5 saat pi Hücreleri 4HA-SIDC 41-918 ifade pneumophila 130b WT veya Δ dotA çekirdekleri görselleştirmek için anti-HA (kırmızı) ve anti-Legionella (yeşil) antikorlar ve DAPI DNA leke (mavi) kullanılarak boyandı. 4HA-SIDC 41-918 çevreleyen WT gözlenen, ancak Δ dotA, bakteri edildi. Ölçek çubuğu 5 um. <img alt="Şekil 4," fo:content-width="3.5in" src="/files/ftp_upload/50964/50964fig4.jpg" /> Şekil 4,. L. pneumophila G. içinde çoğaltır Mellonella bir Dot / Icm-bağımlı bir şekilde. Larva WT veya Δ dotA L. pneumophila ve 0, 5, 18 ile enfekte edildi ve 24 saat pi bir araya getirilmiş üç enfekte olmuş böceklerin hemolimf, CYE plakaları üzerine kaplanmıştır ve CFU tespit edildi aşı ve ekstre hemolimf ağırlığına göre normalleştirilmiş. WT L. Δ dotA streyn 18 saat pi Sonuçlar içinde temizlenmiş ise, deney boyunca çoğaltılan pneumophila standart sapma ± üç ayrı deneyin ortalamasıdır. <img alt="Şekil 5," fo:content-width="3.5in" src="/files/ftp_upload/50964/50964fig5.jpg" /> Şekil 5,. WT L. enfeksiyonu önemli hemocyte imha pneumophila neden olur. Hemocytes 5, 18 ile özü çıkarıldı, ve larvaların 24 saat pi WT veya Δ dotA L. pneumophila ve bir hemositometre kullanılarak sayılmıştır canlı hücreler ile enfekte edilmiştir. Fark yokHücre sayısı, ancak 18 saat PI hemocytes sadece yaklaşık% 15 Δ dotA türü ile karşılaştırıldığında WT suşu ile enfekte larva kalır suşları arasında 5 saat pi görüldü. Sonuçlar, üç ayrı deneyde, ± standart sapma ortalama bulunmaktadır.

Watch this Scientific Journal Video about Use of Galleria mellonella as a Model Organism to Study Legionella pneumophila Infection at JoVE.com

Use of Galleria mellonella as a Model Organism to Study Legionella pneumophila Infection

Balmumu güve Galleria mellonella larva son Legionella pneumophila enfeksiyonu incelemek için bir in vivo modeli olarak kurulmuştur. Burada, aşılama, bakteriyel hastalık oluşturma ve replikasyon ölçümü hem de enfekte hemocytes ekstraksiyonu ve analizi de dahil olmak üzere Legionella larvalarda patogenezini karakterize etmek için temel teknik, göstermektedir.

Kullanımı<em&gt; Galleria mellonella</em&gt; Bir Model Organizma olarak Eğitim için<em&gt; Legionella pneumophila</em&gt; Enfeksiyon

Legionella pneumophila, the causative agent of a severe pneumonia named Legionnaires&#39; disease, is an important human pathogen that infects and ...

use-galleria-mellonella-as-model-organism-to-study-legionella

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Use of Galleria mellonella as a Model Organism to Study Legionella pneumophila Infection

40.1K Görüntüleme.  Imperial College London.  Balmumu güve Galleria mellonella larva son Legionella pneumophila enfeksiyonu incelemek için bir in vivo modeli olarak kurulmuştur. Burada, aşılama, bakteriyel hastalık oluşturma ve replikasyon ölçümü hem de enfekte hemocytes ekstraksiyonu ve analizi de dahil olmak üzere Legionella larvalarda patogenezini karakterize etmek için temel teknik, göstermektedir. 

Video: Use of Galleria mellonella as a Model Organism to Study Legionella pneumophila Infection

Introducing Shear Stress in the Study of Bacterial Adhesion

During bacterial infections a sequence of interactions occur between the pathogen and its host. Bacterial adhesion to the host cell surface is often the initial and determining step of the pathogenesis. Although experimentally adhesion is mostly studied in static conditions adhesion actually takes place in the presence of flowing liquid. First encounters between bacteria and their host often occur at the mucosal level, mouth, lung, gut, eye, etc. where mucus flows along the surface of epithelial cells. Later in infection, pathogens occasionally access the blood circulation causing life-threatening illnesses such as septicemia, sepsis and meningitis. A defining feature of these infections is the ability of these pathogens to interact with endothelial cells in presence of circulating blood. The presence of flowing liquid, mucus or blood for instance, determines adhesion because it generates a mechanical force on the pathogen. To characterize the effect of flowing liquid one usually refers to the notion of shear stress, which is the tangential force exerted per unit area by a fluid moving near a stationary wall, expressed in dynes/cm2. Intensities of shear stress vary widely according to the different vessels type, size, organ, location etc. (0-100 dynes/cm2). Circulation in capillaries can reach very low shear stress values and even temporarily stop during periods ranging between a few seconds to several minutes 1. On the other end of the spectrum shear stress in arterioles can reach 100 dynes/cm2 2. The impact of shear stress on different biological processes has been clearly demonstrated as for instance during the interaction of leukocytes with the endothelium 3. To take into account this mechanical parameter in the process of bacterial adhesion we took advantage of an experimental procedure based on the use of a disposable flow chamber 4. Host cells are grown in the flow chamber and fluorescent bacteria are introduced in the flow controlled by a syringe pump. We initially focused our investigations on the bacterial pathogen Neisseria meningitidis, a Gram-negative bacterium responsible for septicemia and meningitis. The procedure described here allowed us to study the impact of shear stress on the ability of the bacteria to: adhere to cells 1, to proliferate on the cell surface 5and to detach to colonize new sites 6 (Figure 1). Complementary technical information can be found in reference 7. Shear stress values presented here were chosen based on our previous experience1 and to represent values found in the literature. The protocol should be applicable to a wide range of pathogens with specific adjustments depending on the objectives of the study.

During the infection process, a key step is the adhesion of pathogens with host cells. In most instances this adhesion step occurs in the presence of mechanical stress generated by flowing liquid. We describe a technique that introduces shear stress as an important parameter in the study of bacterial adhesion.

Bakteriyel Yapışma Çalışma Kesme Stres Tanıtımı

During bacterial infections a sequence of interactions occur between the pathogen and its host. Bacterial adhesion to the host cell surface is often the ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

The Insect Galleria mellonella as a Powerful Infection Model to Investigate Bacterial Pathogenesis

The study of bacterial virulence often requires a suitable animal model. Mammalian models of infection are costly and may raise ethical issues. The use of insects as infection models provides a valuable alternative. Compared to other non-vertebrate model hosts such as nematodes, insects have a relatively advanced system of antimicrobial defenses and are thus more likely to produce information relevant to the mammalian infection process. Like mammals, insects possess a complex innate immune system1. Cells in the hemolymph are capable of phagocytosing or encapsulating microbial invaders, and humoral responses include the inducible production of lysozyme and small antibacterial peptides2,3. In addition, analogies are found between the epithelial cells of insect larval midguts and intestinal cells of mammalian digestive systems. Finally, several basic components essential for the bacterial infection process such as cell adhesion, resistance to antimicrobial peptides, tissue degradation and adaptation to oxidative stress are likely to be important in both insects and mammals1. Thus, insects are polyvalent tools for the identification and characterization of microbial virulence factors involved in mammalian infections.
Larvae of the greater wax moth Galleria mellonella have been shown to provide a useful insight into the pathogenesis of a wide range of microbial infections including mammalian fungal (Fusarium oxysporum, Aspergillus fumigatus, Candida albicans) and bacterial pathogens, such as Staphylococcus aureus, Proteus vulgaris, Serratia marcescens Pseudomonas aeruginosa, Listeria monocytogenes or Enterococcus faecalis4-7. Regardless of the bacterial species, results obtained with Galleria larvae infected by direct injection through the cuticle consistently correlate with those of similar mammalian studies: bacterial strains that are attenuated in mammalian models demonstrate lower virulence in Galleria, and strains causing severe human infections are also highly virulent in the Galleria model8-11. Oral infection of Galleria is much less used and additional compounds, like specific toxins, are needed to reach mortality.
G. mellonella larvae present several technical advantages: they are relatively large (last instar larvae before pupation are about 2 cm long and weight 250 mg), thus enabling the injection of defined doses of bacteria; they can be reared at various temperatures (20 &deg;C to 30 &deg;C) and infection studies can be conducted between 15 &deg;C to above 37 &deg;C12,13, allowing experiments that mimic a mammalian environment. In addition, insect rearing is easy and relatively cheap. Infection of the larvae allows monitoring bacterial virulence by several means, including calculation of LD5014, measurement of bacterial survival15,16 and examination of the infection process17. Here, we describe the rearing of the insects, covering all life stages of G. mellonella. We provide a detailed protocol of infection by two routes of inoculation: oral and intra haemocoelic. The bacterial model used in this protocol is Bacillus cereus, a Gram positive pathogen implicated in gastrointestinal as well as in other severe local or systemic opportunistic infections18,19.

The Insect Galleria mellonella as a Powerful Infection Model to Investigate Bacterial Pathogenesis

Oral and intra haemocolic infection of larvae of the greater wax moth Galleria mellonella is described. This insect can be used to study virulence factors of entomopathogenic as well as mammalian opportunistic bacteria. Rearing of the insects, methods of infection and examples of in vivo analysis are described.

Böcek<em&gt; Galleria mellonella</em&gt; Bakteriyel Patogenez İnceleyecek Güçlü Enfeksiyon Model olarak

The study of bacterial virulence often requires a suitable animal model. Mammalian models of infection are costly and may raise ethical issues. The use of ...

An In vitro Model to Study Heterogeneity of Human Macrophage Differentiation and Polarization

Monocyte-derived macrophages represent an important cell type of the innate immune system. Mouse models studying macrophage biology suffer from the phenotypic and functional differences between murine and human monocyte-derived macrophages. Therefore, we here describe an in vitro model to generate and study primary human macrophages. Briefly, after density gradient centrifugation of peripheral blood drawn from a forearm vein, monocytes are isolated from peripheral blood mononuclear cells using negative magnetic bead isolation. These monocytes are then cultured for six days under specific conditions to induce different types of macrophage differentiation or polarization. The model is easy to use and circumvents the problems caused by species-specific differences between mouse and man. Furthermore, it is closer to the in vivo conditions than the use of immortalized cell lines. In conclusion, the model described here is suitable to study macrophage biology, identify disease mechanisms and novel therapeutic targets. Even though not fully replacing experiments with animals or human tissues obtained post mortem, the model described here allows identification and validation of disease mechanisms and therapeutic targets that may be highly relevant to various human diseases.

An In vitro Model to Study Heterogeneity of Human Macrophage Differentiation and Polarization

Monocyte-derived macrophages are important cells of the innate immune system. Here, we describe an easy to use in vitro model to generate these cells. Using gradient centrifugation, negative bead isolation and specific cell culture conditions, monocyte-derived macrophages can be generated for phenotypic and functional studies.

Bir<em&gt; In vitro</emİnsan Makrofaj Farklılaşma ve Polarizasyon heterojenliği Eğitim için&gt; Model

Monocyte-derived macrophages represent an important cell type of the innate immune system. Mouse models studying macrophage biology suffer from the ...

An In vitro Model to Study Immune Responses of Human Peripheral Blood Mononuclear Cells to Human Respiratory Syncytial Virus Infection

Human respiratory syncytial virus (HRSV) infections present a broad spectrum of disease severity, ranging from mild infections to life-threatening bronchiolitis. An important part of the pathogenesis of severe disease is an enhanced immune response leading to immunopathology.	Here, we describe a protocol used to investigate the immune response of human immune cells to an HRSV infection. First, we describe methods used for culturing, purification and quantification of HRSV. Subsequently, we describe a human in vitro model in which peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) are stimulated with live HRSV. This model system can be used to study multiple parameters that may contribute to disease severity, including the innate and adaptive immune response. These responses can be measured at the transcriptional and translational level. Moreover, viral infection of cells can easily be measured using flow cytometry. Taken together, stimulation of PBMC with live HRSV provides a fast and reproducible model system to examine mechanisms involved in HRSV-induced disease.

An In vitro Model to Study Immune Responses of Human Peripheral Blood Mononuclear Cells to Human Respiratory Syncytial Virus Infection

Human respiratory syncytial virus (HRSV) can cause severe bronchiolitis in young infants. Part of the pathogenesis of severe HRSV disease is caused by the host immune response. Stimulation of primary human immune cells with HRSV provides a fast and reproducible model system to study activation of inflammatory pathways and infection.

Human respiratory syncytial  virus (HRSV) infections present a broad spectrum of disease severity, ranging  from mild infections to life-threatening ...

Cecal Ligation and Puncture-induced Sepsis as a Model To Study Autophagy in Mice

Experimental sepsis can be induced in mice using the cecal ligation and puncture (CLP) method, which causes polymicrobial sepsis. Here, a protocol is provided to induce sepsis of varying severity in mice using the CLP technique. Autophagy is a fundamental tissue response to stress and pathogen invasion. Two current protocols to assess autophagy in vivo in the context of experimental sepsis are also presented here. (I) Transgenic mice expressing green fluorescence protein (GFP)-LC3 fusion protein are subjected to CLP. Localized enhancement of GFP signal (puncta), as assayed either by immunohistochemical or confocal assays, can be used to detect enhanced autophagosome formation and, thus, altered activation of the autophagy pathway. (II) Enhanced autophagic vacuole (autophagosome) formation per unit tissue area (as a marker of autophagy stimulation) can be quantified using electron microscopy. The study of autophagic responses to sepsis is a critical component of understanding the mechanisms by which tissues respond to infection. Research findings in this area may ultimately contribute towards understanding the pathogenesis of sepsis, which represents a major problem in critical care medicine.

Experimental sepsis can be induced in mice using the cecal ligation and puncture (CLP) method. Current protocols to assess autophagy in vivo in the context of CLP-induced sepsis are presented here: A protocol for measuring autophagy using (GFP)-LC3 mice, and a protocol for measuring autophagosome formation by electron microscopy.

Çekal ligasyon ve Farelerde Autophagy incelemek için bir model olarak Sepsis Patamaya kaynaklı

Experimental sepsis can be induced in mice using the cecal ligation and puncture (CLP) method, which causes polymicrobial sepsis. Here, a protocol is ...

Use of Shigella flexneri to Study Autophagy-Cytoskeleton Interactions

Shigella flexneri is an intracellular pathogen that can escape from phagosomes to reach the cytosol, and polymerize the host actin cytoskeleton to promote its motility and dissemination. New work has shown that proteins involved in actin-based motility are also linked to autophagy, an intracellular degradation process crucial for cell autonomous immunity. Strikingly, host cells may prevent actin-based motility of S. flexneri by compartmentalizing bacteria inside &#8216;septin cages&#8217; and targeting them to autophagy. These observations indicate that a more complete understanding of septins, a family of filamentous GTP-binding proteins, will provide new insights into the process of autophagy. This report describes protocols to monitor autophagy-cytoskeleton interactions caused by S. flexneri in vitro using tissue culture cells and in vivo using zebrafish larvae. These protocols enable investigation of intracellular mechanisms that control bacterial dissemination at the molecular, cellular, and whole organism level.

Use of Shigella flexneri to Study Autophagy-Cytoskeleton Interactions

To counteract pathogen dissemination, host cells reorganize their cytoskeleton to compartmentalize bacteria and induce autophagy. Using Shigella infection of tissue culture cells, host and pathogen determinants underlying this process are identified and characterized. Using zebrafish models of Shigella infection, the role of discovered molecules and mechanisms are investigated in vivo.

Kullanımı<em&gt; Shigella flexneri</em&gt; Otofaji-Sitoiskelet Etkileşimleri Okumak

Shigella flexneri is an intracellular pathogen that can escape from phagosomes to reach the cytosol, and polymerize the host actin cytoskeleton to promote ...

Establishment and Optimization of a High Throughput Setup to Study Staphylococcus epidermidis and Mycobacterium marinum Infection as a Model for Drug Discovery

Zebrafish are becoming a valuable tool in the preclinical phase of drug discovery screenings as a whole animal model with high throughput screening possibilities. They can be used to bridge the gap between cell based assays at earlier stages and in vivo validation in mammalian models, reducing, in this way, the number of compounds passing through to testing on the much more expensive rodent models. In this light, in the present manuscript is described a new high throughput pipeline using zebrafish as in vivo model system for the study of Staphylococcus epidermidis and Mycobacterium marinum infection. This setup allows the generation and analysis of large number of synchronous embryos homogenously infected. Moreover the flexibility of the pipeline allows the user to easily implement other platforms to improve the resolution of the analysis when needed. The combination of the zebrafish together with innovative high throughput technologies opens the field of drug testing and discovery to new possibilities not only because of the strength of using a whole animal model but also because of the large number of transgenic lines available that can be used to decipher the mode of action of new compounds.

Establishment and Optimization of a High Throughput Setup to Study Staphylococcus epidermidis and Mycobacterium marinum Infection as a Model for Drug Discovery

This video article describes the high throughput pipeline that has been successfully established to infect and analyze large numbers of zebrafish embryos providing a new powerful tool for compound testing and drug discovery using a whole animal vertebrate organism.

Kuruluş ve Eğitim için bir Yüksek Verimli Kur Optimizasyonu<em&gt; Staphylococcus epidermidis</em&gt; Ve<em&gt; Mycobacterium marinum</em&gt; Enfeksiyon İlaç Keşif için bir model olarak

Zebrafish are becoming a valuable tool in the preclinical phase of drug discovery screenings as a whole animal model with high throughput screening ...

Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

Anaerobic bacteria far outnumber aerobes in many human niches such as the gut, mouth, and vagina. Furthermore, anaerobic infections are common and frequently of indigenous origin. The ability of some anaerobic pathogens to invade human cells gives them adaptive measures to escape innate immunity as well as to modulate host cell behavior. However, ensuring that the anaerobic bacteria are live during experimental investigation of the events may pose challenges. Porphyromonas gingivalis, a Gram-negative anaerobe, is capable of invading a variety of eukaryotic non-phagocytic cells. This article outlines how to successfully culture and assess the ability of P. gingivalis to invade human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). Two protocols were developed: one to measure bacteria that can successfully invade and survive within the host, and the other to visualize bacteria interacting with host cells. These techniques necessitate the use of an anaerobic chamber to supply P. gingivalis with an anaerobic environment for optimal growth.
The first protocol is based on the antibiotic protection assay, which is largely used to study the invasion of host cells by bacteria. However, the antibiotic protection assay is limited; only intracellular bacteria that are culturable following antibiotic treatment and host cell lysis are measured. To assess all bacteria interacting with host cells, both live and dead, we developed a protocol that uses fluorescent microscopy to examine host-pathogen interaction. Bacteria are fluorescently labeled with 2&#39;,7&#39;-Bis-(2-carboxyethyl)-5-(and-6)-carboxyfluorescein acetoxymethyl ester (BCECF-AM) and used to infect eukaryotic cells under anaerobic conditions. Following fixing with paraformaldehyde and permeabilization with 0.2% Triton X-100, host cells are labeled with TRITC phalloidin and DAPI to label the cell cytoskeleton and nucleus, respectively. Multiple images taken at different focal points (Z-stack) are obtained for temporal-spatial visualization of bacteria. Methods used in this study can be applied to any cultivable anaerobe and any eukaryotic cell type.

Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

This article presents two protocols: one to measure anaerobic bacteria that can successfully invade and survive within the host, and the other to visualize anaerobic bacteria interacting with host cells. This study can be applied to any cultivable anaerobe and any eukaryotic cell type.

Ana Hücreleri ile Anaerobik Bakteriler Etkileşim değerlendirilmesi için bir model organizma olarak Porphyromonas gingivalis

Anaerobic bacteria far outnumber aerobes in many human niches such as the gut, mouth, and vagina. Furthermore, anaerobic infections are common and ...

Zebrafish as a Model to Assess the Teratogenic Potential of Nitrite

High nitrate levels in the environment may&#160;result in congenital defects or miscarriages in humans. Presumably, this is due to the conversion of nitrate to nitrite by gut and salivary bacteria. However, in other mammalian studies, high nitrite levels do not cause birth defects, although they can lead to poor reproductive outcomes. Thus, the teratogenic potential of nitrite is not clear. It would be useful to have a vertebrate model system to easily assess teratogenic effects of nitrite or any other chemical of interest. Here, we demonstrate the utility of zebrafish (Danio rerio) to screen compounds for toxicity and embryonic defects. Zebrafish embryos are fertilized externally and have rapid development, making them a good model for teratogenic studies. We show that increasing the time of exposure to nitrite negatively affects survival. Increasing the concentration of nitrite also adversely affects survival, whereas nitrate does not. For embryos that survive nitrite exposure, various defects can occur, including pericardial and yolk sac&#160;edema, swim bladder noninflation, and craniofacial malformation. Our results indicate that the zebrafish is a convenient system for studying the teratogenic potential of nitrite. This approach can easily be adapted to test other chemicals for their effects on early vertebrate development.

Exposure to teratogens may cause birth defects. Zebrafish are useful for determining the teratogenic potential of chemicals. We demonstrate the utility of zebrafish by exposing embryos to various levels of nitrite and also at different times of exposure. We show that nitrite can be toxic and cause severe developmental defects.

Bir Model Olarak Zebra balığı Nitrit teratojenik potansiyelini değerlendirmek için

High nitrate levels in the environment may&#160;result in congenital defects or miscarriages in humans. Presumably, this is due to the conversion of ...

Legionella pneumophila Outer Membrane Vesicles: Isolation and Analysis of Their Pro-inflammatory Potential on Macrophages

Bacteria are able to secrete a variety of molecules via various secretory systems. Besides the secretion of molecules into the extracellular space or directly into another cell, Gram-negative bacteria can also form outer membrane vesicles (OMVs). These membrane vesicles can deliver their cargo over long distances, and the cargo is protected from degradation by proteases and nucleases. 
Legionella pneumophila (L. pneumophila) is an intracellular, Gram-negative pathogen that causes a severe form of pneumonia. In humans, it infects alveolar macrophages, where it blocks lysosomal degradation and forms a specialized replication vacuole. Moreover, L. pneumophila produces OMVs under various growth conditions. To understand the role of OMVs in the infection process of human macrophages, we set up a protocol to purify bacterial membrane vesicles from liquid culture. The method is based on differential ultracentrifugation. The enriched OMVs were subsequently analyzed with regard to their protein and lipopolysaccharide (LPS) amount and were then used for the treatment of a human monocytic cell line or murine bone marrow-derived macrophages. The pro-inflammatory responses of those cells were analyzed by enzyme-linked immunosorbent assay. Furthermore, alterations in a subsequent infection were analyzed. To this end, the bacterial replication of L. pneumophila in macrophages was studied by colony-forming unit assays. 
Here, we describe a detailed protocol for the purification of L. pneumophila OMVs from liquid culture by ultracentrifugation and for the downstream analysis of their pro-inflammatory potential on macrophages.

Legionella pneumophila Outer Membrane Vesicles: Isolation and Analysis of Their Pro-inflammatory Potential on Macrophages

Here, we describe the purification of Legionella pneumophila (L. pneumophila) outer membrane vesicles (OMVs) from liquid cultures. These purified vesicles are then used for the treatment of macrophages to analyze their pro-inflammatory potential.

Legionella pneumophila Dış Zar veziküller: İzolasyon ve Makrofajlar Onların Pro-inflamatuar Potansiyeli Analizi

Bacteria are able to secrete a variety of molecules via various secretory systems. Besides the secretion of molecules into the extracellular space or ...