The authors are very thankful to the Federal Ministry of Education and Research (BMBF) of Germany for the funding of their work. Also, the authors thank Ines Lemser, Sylke Stahlberg, Ingolf R&#252;cknagel and all the other colleagues working in the team of the animal house (FLI, Germany) for their technical assistance with the bronchoscopies. They are very thankful to Maria-Christina Haase (FLI, Germany) for her help in providing literature. Furthermore, the authors wish to express their gratitude to Dr. Angela Berndt (FLI, Germany) and Nicolette Bestul (University of Wisconsin-River Falls) for critical reading of the manuscript.

Etik Bildirimi Bu çalışma Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı için Avrupa ve Ulusal Kanun ile sıkı göre yürütülmüştür. Protokol Thüringen Eyaleti, Almanya (: 04-004/11 İzni Sayısı) Hayvan Deneyleri Etik ve Hayvanları Koruma Komitesi tarafından onaylandı. Tüm deneyler Hayvan Koruma yetkili kurumsal Temsilcisi gözetiminde yapıldı. Bronkoskopi kesinlikle genel anestezi altında yapıldı. Çalışma süresince, her türlü çaba rahatsızlık veya acı en aza indirmek için yapıldı. Genel notlar Tarif edilen teknikler yaklaşık 60-80 kg ağırlığında, yaşı, yaklaşık 6-8 hafta buzağılar için geliştirilmiştir. Diğer büyük hayvan türleri, yaş ve vücut ağırlığı farklıdır buzağıların kullanım için, teknik boyutunu ve ağırlığını uygun ve dikkate belirli bir hayvan türünün akciğer anatomisini almak için adapte edilmelidir. Tümkullanılan ekipman steril olması gerekmektedir. Chlamydia psittaci, insanlarda solunum ve genel hastalığa neden olabilir zoonotik bir bakteridir. Non-kuş C. Mevcut protokolde kullanılan psittasi gerginlik DC15 biyogüvenlik düzeyi 2 altında ele alınmalıdır. patojen ile enfekte hayvanlarla Tüm iş böyle bir solunum cihazı, bir sıçrama, su geçirmez tulum, lastik çizme ve eldiven gibi kişisel koruyucu ekipman giymiş yapılmalıdır. Uygun bir solunum cihazı giymek, büyük önem taşımaktadır C için enfeksiyonun doğal yol tarihi psittaci Aerogen olduğunu. Ambalajlama ve örnekleri etiketleme her şeyin hayvan konut birimini ayrılmadan önce üreticinin talimatlarına göre klamidya karşı bir dezenfektan etkili tedavi edilmelidir beri dezenfektan dayanıklı olmalıdır. 1.. Bronkoskopi için Animal hazırlanması <ol><li> Anestezik doz için buzağı ağırlığını belirler. </li><li> Bir intravenöz (IV) erişim i yerleştirinn Sol boyun damarı. </li><li> İlk olarak, yavaş yavaş sedasyon oluştuktan sonra, (2.0 mg / kg vücut ağırlığı) enjekte ketamin, daha sonra yaklaşık olarak 30 saniye boyunca (0.2 mg / kg vücut ağırlığı) enjekte ksilazin. </li><li> Masanın üzerine hayvan kaldırın ve sağ lateral pozisyonda yerleştirin. Hayvan yeterince masaya yerleştirildikten sonra IV erişim hala yerinde olup olmadığını kontrol edin ve gerekirse yeniden ayarlayın. Anestezi sırasında, düzenli olarak anestezi derinliğini belirlemek için göz kapağı refleksi kontrol edin. </li><li> Hayvan giderek nefes sonra, birisi dilini dışarı çekin ve boyun germek var. Hafif dönen hareketlerini kullanarak, hayvanın ağzında bir metal tüp spekulum yerleştirin. Gırtlak görünür oluncaya kadar, bir el feneri kullanarak, görme kontrol altında ileri spekulum itin. </li><li> Gerektiğinde 7 mg ksilazin ve ketamin 70 mg bir bolus enjekte edilerek bütün endoskopik işlem boyunca anestezi koruyun. </li></ol> . 2. Aşılama (Aşılama Siteler: Şekil 1) </p&gt; <ol><li> 1, 2, 3 inokulum ihtiva eden şırıngalar, ve 5 ml inokulum hazırlayın. </li><li> Endoskop çalışma kanalı içine bir teflon tüp yerleştirin. Tüp Endoskop ucundan çıkmamalıdır. </li><li> Metal spekulum aracılığıyla endoskop yerleştirin. Spekulum hafif readjustments gırtlak geçişini sağlamak için gerekli olabilir. Sağ tarafında kapalı dalları, monitörde resim hizalamak için yardımcı olur Bronş soluk borusu,. </li><li> Teflon tüpün sonuna kadar 5 ml inokulum ile şırınga takın. Inokulum tevdi edilecektir dalları içine tüp gidin ve istenilen miktarda (Sağ akciğer geçerli: Lobus medius: 0.5 ml, Lobus accessorius: 0.5 ml, Lobus caudalise: 0.5 ml ve 1.0 ml; Sol akciğer: Lobus kraniyalise, kraniyalise Pars : 0.5 mi, pars caudalis: 0.5 ml, Lobus caudalis: 1.5 mi). 1 ile şırınga takın ve# 160; tüp ml inokulum, sonra Bronş soluk borusu gidin ve inokulum mevduat (: 1.0 ml Lobus kraniyalise, caudalise Pars). Her zaman aynı sırayla bölgeselleştirmelerini yaklaşım yararlıdır. </li><li> Endoskop ve spekulum çıkarın. </li><li> Bir aktüatör her burun deliğine 1 ml inokulum püskürtün. </li><li> Geri ahıra hayvan getirmek ve uyanma için yüzükoyun pozisyonda yerleştirin. Bu sternal yatma korumak için yeterli bilince kavuşana kadar sahipsiz veya diğer hayvanların şirket hayvan bırakmayın. Termoregülasyonda hayvanın yeteneği, genel anestezi altında azalmış olduğundan kurtarma kararlı, klimalı olmalıdır. Not: İlk klinik işaretler kullanılır patojene bağlı olarak, aşılamadan sonra yaklaşık 24-36 saat gerçekleşmelidir. </li></ol> . 3 Örnekleme Yöntemleri (Örnekleme Siteler: Şekil 2) <ol><li> 1,1-1,6 adımları tarif edildiği gibi hayvan hazırlayın. </li><li> Bronkoalveoler lavaj <ol><li> Bir su banyosunda her bir steril izotonik tuzlu su içinde 20 ml ihtiva eden 5 şırıngalar, koyun ve bunları, yaklaşık 38 ° C&#39;ye kadar ısınmasına izin </li><li> Endoskop çalışma kanalı içine bir lavaj kateteri takın, sonra metal spekulum içine endoskop yerleştirin ve endoskop daha öncesinde herhangi itti olamaz nerede &quot;kama pozisyonu&quot; ne ulaşana kadar sol akciğer ana bronş içine ileriye gidin. </li><li> Birbiri ardına, lavaj kateteri ile sıcak NaCl çözeltisi ile şırınga takmak, sıvıyı aşılamak ve doğrudan aspire. Bronkoalveoler lavaj sıvısı silikonlu cam şişelerde saklanır ve cam yüzeyine tutunmasını alveol makrofajlar önlemek için derhal kurtarma sonra buz koymak gerekir. Telkin tuzlu su miktarı ve geri kazanılan sıvı miktarını hem de not edin. </li><li> Çalışma kanalından lavaj kateteri çıkarın. </li></ol></li><li> Bronşiyal fırçalama<ol><li> Açıklanan protokol, bu Bifurcatio trakea olan, arzu edilen örnekleme konuma endoskop gidin. </li><li> Fırça ucu monitörde görünene kadar Endoskop çalışma kanalına takmadan önce tüp ile fırça örtün. </li><li> Ileri plastik tüp ile yaklaşık 5 cm fırça itin ve kolu iterek plastik tüp onu ortaya çıkarmak, daha sonra fırça edilecek konuma gidin. </li><li> Fırça ve bronş duvarı arasında temas sağlamak için endoskop gezinirken hafifçe ileri geri fırça iterek ve çekerek epitel aramaları dökülmek. Kanama oluşur ovuşturarak durdurun. Çalışma kanalı çekerek önce tüp ile fırça örtün. </li><li> Hafifçe slayt üzerinde fırça yuvarlayarak mikroskop slaytlar beş smear kadar hazırlayın. -20 ° C&#39;de 10 dakika, kuru hava ve saklamak için, soğuk metanol smear sabitleştirmek </li><li> Fırça olarak durulanabilirörneklenen hücrelerin amacına bağlı olarak çeşitli medya. Aynı fırça ile birden manşonlarla alarak, yalnızca mukoza zarını tahriş yok medyada durulayın emin olun. </li></ol></li><li> Transbronşial akciğer biyopsisi <ol><li> Açıklanan protokol, bu Lobus kraniyalise pars caudalis olan, arzu edilen örnekleme konuma endoskop gidin. Açık çalışma kanalı içine biyopsi forseps ekleme ve sorunsuz çalıştığından emin olmak için onu birkaç kez kapatmadan önce. </li><li> Hafif bir direnç oluşana kadar soluk borusu bronş kaudal şube içine biyopsi forseps itin. Geri 2-3 cm çekin forseps açık, ileriye yaklaşık 2 cm itmek, forseps kapatın, geri çekin ve çalışma kanalından forseps çıkarın. Bu biraz pratik gerektirir. </li><li> Dikkatli bir iğne veya küçük forseps kullanarak, biyopsi forseps doku kaldırmak. Dokunun bir başka kullanımına bağlı olarak, sıvı Nitr saklayınojen veya uygun bir sabitleme aracı. Bu otolitik işlemleri önlemek için kaldırılmasından sonra doğru gerçekleşmesi gerekir. </li></ol></li><li> Post-prosedürel tedavi <ol><li> Geri ahıra hayvan getirmek ve uyanma için yüzükoyun pozisyonda yerleştirin. Bu sternal yatma korumak için yeterli bilince kavuşana kadar sahipsiz veya diğer hayvanların şirket hayvan bırakmayın. Termoregülasyonda hayvanın yeteneği, genel anestezi altında azalmış olduğundan kurtarma kararlı, klimalı olmalıdır. </li><li> Sonraki 24 saat pnömotoraks belirtileri için yakından hayvan izleyin. Hayvan tam kendine geldi zaman yem ve taze su sağlayın. </li></ol></li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Aşılamadan bir bronkoskopik yöntem geliştirilmiştir ve çeşitli bronkoskopik örnekleme yöntemi deney koşulları altında büyük hayvanlarda kullanılmak üzere adapte edilmiştir. Açıklanan teknikler bile endoskopi deneyimi az olan sınav için, öğrenmesi kolay. Bronkoskopi işlemi minimal invaziv ve aşılama yöntemleri yanı sıra, açıklanan örnekleme yöntemleri (BAL, transbronşiyal akciğer biyopsisi, bronşiyal fırçalama) ile ilişkili herhangi bir yan etkisi hiç hayvanların herhangi görüldü. İnsanlarda Transbronşial akciğer biyopsisi ile ilişkili komplikasyonlar kanama ve pnömotoraks 48, bunların hiçbiri bu prosedür uygulandı buzağılarda görüldü. Transbronşiyal akciğer biyopsisi daha zaman alıcı ve transkütan yöntemine göre daha ekipman gerektirir, ama daha az invaziv ve yara enfeksiyonu riski taşımıyor. Inoculat ve görsel olarak kontrol, endoskopik yöntemiyon akciğerin belirli bölgelerde patojenin bir tanımlanmış miktarının birikmesine izin verir. Bu nedenle, her aşılanmış hayvanlarda 32-34 çok tutarlı klinik ve patolojik bulgular elde edilir. Ancak, buzağılarda doğal enfeksiyon tüm özelliklerini benzemez. Solunum C&#39;lik bir modelinde doğal enfeksiyonları buzağıların genellikle apikal lob pnömoni gelişir, oysa psittaci enfeksiyon, aşılama açıklanan teknik patojen yerleştirme 34 siteleri ile ilişkili akciğer lezyonlarına yol açtı. Bu durum, büyük baş hayvanlar, doğal edinilmiş akciğer enfeksiyonu bağlamında deneysel bulguların ile yorumlayarak dikkate alınmalıdır. Videoendoskopik BAL akciğerin tanımlanmış bir örnekleme alanı sağlar. Deney amacıyla, bu kör koşullar altında bir burun kateter kullanımı ile karşılaştırıldığında daha avantajlıdır. Nedeniyle sığır akciğer anatomisi, körü körüne takılan kateter itmek olacaktırÇoğu durumda 53,54 doğru diyafram lob ed ve muayene yıkanır olduğu akciğer alanı üzerinde bir etkisi vardır. Yan yatma anestezi uygulanmış buzağıların endoskopik BAL bir başka avantajı,% 80&#39;den fazla bir telkin akışkanın yüksek ortalama iyileşme oranıdır. Diğer çalışmalar ile karşılaştırılması ayakta, sedasyon buzağılar, 133.3 ± 1.6 ml 46 bir iyileşme ve 127.13 ± 3.53 ml 45 kaudal lob içine sıvı 240 ml damlatılması sonra rapor edilir, ortaya koymaktadır. Sedasyon buzağılarda sternal yatma telkin sıvının% 51 kuyruk lob 43 kranial lobda ve% 62 geri olabilir. Bu, aşılanan sıvının yaklaşık yarısı dana dik olarak elde edilebilir anlamına gelir. Daha fazla numune hazırlama için gerekli BAL&#39;da miktarına bağlı olarak, bu istenen tüm deneyler yürütmek için yeterli malzeme bırakmayın olabilir. Sığırlarda BAL birçok araştırma grupları tarafından kullanılan ve birçok olmuşturfarklı parametreler çeşitli koşullar altında incelenmiştir. Birçok yazar bazal lob 43,45,46 arasında lavaj uygulandı, ancak lavaj için kullanılan sıvı miktarı araştırma grupları arasında farklılık gösterir. Bu zor, farklı yayınlardan bulguları karşılaştırmak için yapım, kazanılan hücre, protein ve diğer maddelerin seyreltme tutarsızlık yol açar. Bu nedenle, sığırlarda kullanım için hemen uygulamasından sonra elde edilir, 20 ml sıcak gövde, izotonik tuzlu su (toplamda 100 mi), beş fraksiyonları ile yıkanması tavsiye edilir. Büyük bir çap (örneğin,&gt; 2 mm) ile lavaj bir kateter kullanılarak, her fraksiyonun hacmi biraz kateterin kalır sıvının miktarına bağlı olarak, artan gerekmektedir. Sığır akciğer yüksek segmente anatomi metodik bir sınırlama yol açar; Akciğerin bir kısmından elde edilen sonuçlar, akciğer geri kalanı için doğru olmayabilir. Orada hiçbir yanabronş biyopsisi ve lavaj tarafından soruşturulduklarını tüm akciğer alan görüş kontrolü, muayene örneklenmiş alanlar sağlıklı veya hastalıklı olup olmadığını bilemeyiz. Bu nedenle, bu patojen patojenin daha yüksek bir geri kazanım oranına sahip ve hastalıklı akciğer alanlarının numune daha yüksek bir olasılık olması amacıyla daha önce aşılanmıştır yerleri örnek için çok önemlidir. Başka bir sınırlama kötü klinik durumun hayvanlarda artmış anestezi riski olduğunu. Tarif edilen yöntemler, ancak mümkün olduğu kadar düşük hayvanlar için yük tutmak için hastalık hafif ve orta şiddette modelleri kullanılmalıdır. Rumende gaz geliştirme bu türlerde anestezi riski artar gibi geviş getiren hayvanlarda genel anestezi, her zaman mümkün olduğunca kısa olmalıdır. Hayvanlar bronkoskopi geliştirilen gaz efflux izin hemen sonra yüzükoyun pozisyonda yerleştirilmesi gerekir ve tamamen anestezi kurtarıldı kadar yakından izlenmesi gerekir. Ayrıca, tarif edilen teknikler suita değildiraz 24 saat aralıklarla örnekleme için ble. Açıklanan protokol, diğer enfeksiyöz ajanlar adapte edilebilir. Çeşitli patojenlerin endoskopik aşılama C gibi tarif edilmiştir psittaci 32-34, Pasteurella haemolytica 38-40,42, Haemophilus somni 55 ve sığır viral ishal virüsü 44. Ayrıca, akciğer patojeni yatırma siteleri istenen modele uyarlanabilir. (I) Örnekleme siteleri aşılama yerle ilgili ve beklenen patolojik bulgulara dayanarak seçilmelidir: örnekleme siteleri seçerken, bazı önemli gerçekler dikkate alınmalıdır. Otopsi bakımı yapılacak olduğunda, (ii) ex vivo numune için yeterli Örneklenmemiş akciğer alanları bırakmak için özen gösterilmelidir. Onlar ekipman ile ulaşılabilir böylece (iii) Örnekleme sitesi yerleri seçilmelidir. Özellikle Transbronşial akciğer biyopsisi için, biyopsi forseps uzunluğu nedeniyle sınırlamalar vardır. (Iv) To örneklemenin sırası önemlidir, bronşiyal fırçalama ve transbronşiyal akciğer biyopsisi Balf kontamine hangi, küçük kanamalara yol açabilir olduğunu. Bu nedenle, BAL zaman ilk elde edilmelidir. Diğer türlerde protokolünü kullanırken, türe özel akciğer anatomisi dikkate alınmalıdır.

Biyomedikal Araştırma Büyük Hayvan Modellerinin Değerleri Modern disiplinlerarası biyomedikal araştırmalarda, hayvan modelleri hala karmaşık etkileşimler aydınlatmak için vazgeçilmez - sağlık ya da bir hastalık durumu ile ilgili - memeli organizmalar içinde. Çalışmaların% 1&#39;den daha az evcil hayvanlar ile çalışırken biyomedikal araştırma 1 için model olarak sığır, at, koyun, kümes hayvanları ya da okudu bilim adamlarına layık olan 17 Nobel ödülü rağmen, hayvan deneyleri günümüzde büyük çoğunluğu, kemirgenler ile yapılmaktadır ya da hayvancılık. Küçük hayvanlar birçok pratik avantaj (yani düşük maliyetli, genetik yumuşaklık, yüksek verimlilik, çok sayıda genetik durumu, ve immünolojik aletleri ve kitleri) sunmak, ve genetiği değiştirilmiş fare modelleri genellikle belirli moleküler yollar keşfetmek mekanik çalışmalar gerçekleştirmek için kabul edilir. Kompleks sistemler, t biyomedikal araştırmaO biyolojik alaka ve fareler modellerinin klinik faydası daha şüpheli hale gelmektedir. Onlar yanıltıcı ve biyolojik karmaşıklık 2-9 tefrit riskini dayanamaz. Nedeniyle türler arası özelliklerine, tek bir hayvan türü tamamen insani durumu ayna olacak ve birden fazla model kullanımı disiplinlerarası bir biyomedikal araştırma yaklaşımı yararlı gibi görünüyor. Öteleme tıp bağlamında, büyük hayvanlar insan hem de hayvan sağlığı için 1 çift kullanımlı yüksek biyolojik alaka ile sonuç sağlama gibi karşılaştırmalı modelleri sunmak için fırsat sunuyoruz. Dikkate değer, insan genomu daha yakından laboratuvar kemirgen genom tarafından daha sığır genom tarafından benzetilen. Ayrıca diğer takson kıyasla, farelerin genom daha 10-12 yeniden düzenlenmiş olan, son zamanlarda teyit edilmiştir. Karmaşık bir araştırma tasarımı, hayvancılık kullanımı uniq sunuyorhayvan ödün vermeden tek-ve--aynı Individuum in vivo örneklerinin çeşitli tekrarlanan toplama intra-birey, uzun vadeli çalışmaların ue fırsattır. Bu nedenle, fonksiyonel inflamatuar ve morfolojik değişimler zaman 13 belli bir süre içinde aynı konuda izlenebilir. Bir Uygun Solunum Modeli Olarak Sığır Akciğer Nedeniyle akciğer anatomisi, solunum fizyolojisi ve pulmoner immünoloji önemli farklılıklar yüksek sayıda, fareler insan akciğer hastalığı birçok önemli patofizyolojik açıdan yeniden yoktur. Solunum hastalığı 2,9,14-16 hayvan modellerinde olarak kullanılırken bu dikkate alınmalıdır. Anatomi ve yapının özelikleri her memeli akciğer için mevcut olmakla beraber, fonksiyonel özellikleri (örn. akciğer hacimleri, hava akımları ve solunum mekaniği) nedeniyle benzer vücut ağırlıkları yetişkin insanlar ve buzağılar arasında daha iyi karşılaştırılabilir(50-100 kg). Aşağıdaki gibi sığır akciğer türe özgü özellikleri özetlenmiştir: sol akciğer (iki parçaya bölünmüş ve lobus caudalis olan lobus kraniyalise,) iki lob oluşur, sağ akciğer dört lob oluşur (lobus kraniyalise, lobus medius, lobus caudalis ve lobus accessorius). Çoğu diğer memelilerin akciğer anatomisi aksine, trakea sağ yan tarafında doğrudan sağ kranial lob dalları bronş. Anatomi subgros ile ilgili olarak, sığır akciğer Lobülasyonlu yüksek derecede ve nispeten düşük özgül akciğer uyum yol interstisyel doku 17,18 yüksek bir yüzdesi ve daha yüksek bir akciğer doku direncini 19 sunulur. Bu nedenle, gerekli olan nefes alma aktivitesi diğer türler 20,21 kıyasla oldukça yüksektir. Lobülasyonlu yüksek derecede bölümlerinin güçlü bağımsızlığı yol açar. Bu nedenle, inflammatory süreçler bağ dokusu septa ile sınırlı olup, hastalıklı ve sağlıklı kesimleri genellikle aynı lobda içinde yalan. Nedeniyle teminat hava yollarının eksikliği, sığır akciğer özellikle obstrüktif akciğer bozuklukları 13 ayna uygundur. Sığır akciğerde damar ile ilgili olarak, küçük bir pulmoner arter çok önemli bir düz kas tabakaları göstermektedir. Bu nedenle, dana da 22-24 yeniden pulmoner hipertansiyon veya vasküler köklü bir hayvan modeli olarak hizmet edebilir. Solunum yolu enfeksiyonları ile ilgili olarak, doğal olarak meydana gelen hastalıkların insanda karşılaştırılabilir hastalığına yakalanmış olan birçok benzerlik bu hayvan bulunmaktadır. Tipik örnekler, tüberküloz ile 25, respiratuvar sinsityal virüs buzağı 26-28 (RSV) enfeksiyonu ya da doğal olarak kazanılmış enfeksiyonları Chlamydia 29 bulunmaktadır. Bu nedenle, büyük bir hayvan modelleri doğal ev sahibi yakın durumu benzemektedir. Bu nedenle, en çok usef vardırul konukçu-patojen etkileşimlerine ve insan 30,31 karşılık gelen hastalığın patofizyolojisi karmaşık incelemek için. Solunum Chlamydia psittaci enfeksiyonu biyolojik ilgili model olarak, buzağı sığırlar bu patojenin 32-35 doğal konakları temsil beri seçildi. Hayvanlar ve insanlar arasında hastalık ya da olası bulaşma yolları patogenezi ile ilgili, bu modelden elde edilen bilgiler, sığır ve insan hem de etkisi ile bilgimizi genişletmek için yardımcı olacaktır. Modeli aynı zamanda akciğer C ortadan kaldırılması için genel kabul görmüş ve alternatif tedavi seçenekleri doğrulamak için yardımcı olabilir hem veteriner ve insan tıbbında ilgi yine, psittaci enfeksiyonlar,. Sığır Solunum Sistemi ve örnekler elde Uygulanan Teknikler Bu kağıt açıklar ve teknikleri ve tanı yöntemlerini göstermektedir applicablsığır akciğeri e ve memeli akciğer ve terapötik müdahale etkinliği üzerinde patojenin hem etkisini değerlendirmek için bir model olarak kullanılır. Bronkoskopi 1960&#39;lardan beri insan tıp yapılmıştır ve güvenli bir işlemdir 36 olarak kabul edilir. Buzağılarda deneysel bronkoskopi ilk kez 37 için 1968 yılında tarif edilmiştir. Patojenlerin intrabronşiyal uygulama Potgieter ve arkadaşları tarafından ileri sürülmüştür. Güvenilir bir yöntem buzağıların 38 alt solunum yolu hastalığı üretmek ve şimdi sığır araştırma 34,39,40 yaygın bir yöntemdir gibi. Videoendoskopik kontrol altında patojenin bir tanımlanmış miktarının intrabronşiyal aşılama akciğerde, enfeksiyöz ajanın seçici yerleştirme sağlar. Bu, tüm hayvanlarda 34 tutarlı klinik ve patolojik bulgulara yol açar nedeniyle patojen maruz kalma değişmiş olması beklenen akciğer bölgelerinde hedeflenen örnekleme sağlar. <pclass = &quot;jove_content&quot;&gt; bronkoalveoler lavaj sıvısı (BAL) akciğer inflamasyon varlığı ve şiddeti için iyi tanımlanmış bir göstergedir. Bronkoalveoler lavaj (BAL), solunum hastalıkları 41 çeşitli teşhisinde insan tıbbında standart bir prosedürdür. Canlı sığır, BAL geçen yüzyılın 42 geç yetmişli Wilkie ve Markham tarafından tanıtıldı. Bu sığır alt solunum yollarını incelemek için güvenli ve tekrarlanabilir bir teknik olarak kabul edildi. Nedeniyle esnek fiberoptik bronkoskop ile sağlıklı buzağılar 1988 Pringle vd. Yapılan BAL&#39;da sağlıklı hayvanlarda BALS parametrelerle ilgili yeterli verilerin eksikliği. Yazarlar ayrıca karşılaştırılabilir sonuçlar elde etmek için 43 deneysel koşullar altında BAL protokolleri standardize etmek gereğine işaret etti. BAL hala buzağılarda 44-46 in vivo bir örnekleme yöntemi olarak kullanılmaktadır. Bronş fırçalama yaygın olarak bir insan tıbbında kullanılanneoplastik lezyonlar veya mikrobiyolojik analizler 36 için örnek bir tanı aracıdır. Araştırma amacıyla, sitolojik fırçalama ile hasat epitel hücrelerinin birincil hücre kültürleri 47 elde edilebilir. Sığır olarak, mikrobiyolojik analizler için bronş manşonlarla kullanımının akciğer 43 mikrobiyal çevre karakterize etmek için tarif edilmiştir. Transbronşial akciğer biyopsisi akciğer doku örnekleri sağlar ve insanlarda akciğer hastalıkları yaygın için değerli bir tanı aracıdır. Iatrojenik pnömotoraks ve prosedür ile ilgili kanama, bu teknik ile ilişkili komplikasyonlar vardır. Bunların sıklığı insan hastalara 48&#39;deki yüzde birden az olduğu bildirilmektedir. TBAB gereken ekipmanın yüksek maliyet ve biyopsileri elde etmek için gerekli olan zamana bağlı olarak sığır kullanımı için yaygın bir yöntem değildir. Bunun yerine, deri, akciğer biyopsileri tarla koşullarında 49-51 altında daha uygundur.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1174">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:192px;">Veterinary Video Endoscope</td>
			<td style="width:419px;">Karl Storz GmbH &#38; Co. KG, Tuttlingen, Germany</td>
			<td style="width:121px;">PV-SG 22&#8211;140</td>
			<td style="width:443px;">diameter: 9 mm, working channel: 2,2 mm, working length 140 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">lavage catheter&#160;</td>
			<td>Karl Storz GmbH &#38; Co. KG, Tuttlingen, Germany</td>
			<td></td>
			<td>diameter: 2 mm; length: 180 cm, Luer-lock-adapter</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">acuator</td>
			<td>WEPA Apothekenbedarf GmbH &#38; Co KG, Hillscheid, Germany</td>
			<td>32660</td>
			<td>length: 60 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">biopsy forceps</td>
			<td>Karl Storz GmbH &#38; Co. KG, Tuttlingen, Germany</td>
			<td>REF 60180LT</td>
			<td>1.8 mm, serrated, oval</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Omnifix 20 ml, Luer-Lock</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td>
			<td>4617207V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">cytology brush</td>
			<td>mtp GmbH, Neuhausen ob Eck, Germany</td>
			<td>110240-10&#160;</td>
			<td>working length 180 cm, brush length: 15 mm, diameter 1.8 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">iv acess&#160;</td>
			<td>Henry Schein Vet GmbH, Hamburg, Germany</td>
			<td>370-211</td>
			<td>diameter 1.2 mm, length 43 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Rompun 2% (xylazin)</td>
			<td>Bayer Vital GmbH, Leverkusen, Germany</td>
			<td></td>
			<td>0.2 mg/kg bodyweight</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ketamin 10% (ketamine)</td>
			<td>bela-pharm GmbH &#38; Co. KG, Vechta, Germany</td>
			<td></td>
			<td>2.0 mg/kg bodyweight</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">isotonic saline solution</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td>
			<td>3200950</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">SUB 6 waterbath</td>
			<td>CLF analytische Laborger&#228;te GmbH, Emersacker, Germany</td>
			<td>n/a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">metal tube speculum&#160;</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>diameter: 3.5 cm, length: 35 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">flashlight</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">siliconized glass bottles</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>siliconize with Sigmacote (Sigma-Aldrich Co. LLC)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Omnifix Luer 3 ml</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td>
			<td>4616025V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Omnifix Luer 5 ml</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td>
			<td>4616057V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">sealing plugs</td>
			<td>Henry Schein Vet GmbH, Hamburg, Germany</td>
			<td>900-3057</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">inoculum</td>
			<td></td>
			<td>n/a</td>
			<td>dilute pathogen in 8mL buffer</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

the bovine lung in biomedical research: visually guided bronchoscopy, intrabronchial inoculation and in vivo sampling techniques

Solunum tıp araştırmalarında alternatif hayvan modelleri için devam eden bir arama var. Araştırmanın amacı bağlı olarak, akciğer hastalığı modeli olarak büyük hayvanlar genellikle farenin yapmak çok daha iyi, insan akciğer durum benzer. Büyük hayvanlarla çalışan hayvanlar da ödün vermeden uzun vadeli çalışmalar sağlar zaman, belli bir dersin tekrar tekrar aynı hayvanı örnek bir fırsat sunuyor. Amaç, solunum Chlamydia psittaci enfeksiyonu bir sığır modelinde in vivo kullanım için örnekleme yöntemlerini ortaya koymaktır. Numune alma çalışma sırasında, her bir hayvanda, çeşitli zaman noktalarında yapılmalıdır, ve numuneler, deney koşulları altında konakçı tepkisi, hem de patojen incelemek için uygun olmalıdır. Bronkoskopi, insan ve veteriner hekimliğinde değerli bir tanı aracıdır. Bu güvenli ve minimal invaziv bir işlemdir. Bu Kutuple intrabronşiyal buzağıların aşı hem de alt solunum yolu için örnekleme yöntem açıklanır. Videoendoskopik, intrabronşiyal aşılama tüm aşılanmış hayvanlarda çok tutarlı klinik ve patolojik neden olur ve, bu nedenle, bulaşıcı akciğer hastalığı modellerinde kullanılmak için çok uygundur. Açıklanan örnekleme yöntemleri, bronkoalveoler lavaj, bronş fırçalama ve transbronşiyal akciğer biyopsisi. Tüm bu insan tıp değerli tanı araçlarıdır ve 6-8 hafta arası buzağılar için deneysel amaçlar için adapte olabilir. Elde edilmiş olan numuneler konukçuda akciğer iltihabı şiddetinin patojen saptanması ve tanımlanması için uygundur edildi.

Hastalık Kursu Hayvanların sağlığı üzerinde patojenin etkisi klinik muayene ile değerlendirilebilmektedir. Bizim solunum enfeksiyon modellerinde, hayvanlar günde iki kez incelenmiş ve klinik gözlemler, bir puanlama sistemi kullanılarak kaydedildi. Ek bilgiler örneğin başka in vivo örnekleme yöntemleri, kan toplama ve bezlerden veya akciğer fonksiyon ölçümü yapılarak yakalandı. Aşılama enfeksiyon 32-34 ilerlemesini tanımlamak için patolojik muayene sonra farklı zaman noktalarında gerçekleştirilmiştir. BALS Kurtarma Oranı Telkin sıvısının iyileşme oranı 83.05 ± 4.58% idi (ortalama ± SD). Patojen Algılama Patojenin rekültivasyon bronşiyal manşonlarla de yapılabilir. Ayrıca, çeşitli örneklerin PCR tarama patojeni tespit etmek mümkündür, örneğin, tissue biyopsi, sitoloji fırçası örnek BAL-hücreleri 52 veya faringeal sürüntü. Patojenin Görselleştirme akciğer biyopsisi ve BAL-hücrelerinin sedimantasyon preparatların dondurulmuş imüno (Şekil 3) gerçekleştirmek de mümkündür. Önceki deneylerde, kan örnekleri ve çubuklar (konjonktiva, dışkı, burun) ve PCR yayılması ve patojenin 32 dökülme karakterize etmek için yapıldı. Akciğer dokusunda lokal inflamasyon belirteçleri BAL sıvısında olarak, akciğer iltihabı, çeşitli parametreler incelenebilir. Akciğer iltihabı mevcut olduğunda, toplam hücre sayımı ve nötrofillerin oranı genellikle artar. Hücre farklılaşması için BAL-hücrelerinin sedimantasyon preparatları Giemsa göre boyanan ve immersiyon yağı (Şekil 4) kullanılarak ayırt edilebilir. BAL sıvısında hücresel ve oranlar sıvı santrifüj (, 20 dakika 300 x g) ile ayrılır. BALS-Süpernatan Akciğerde enflamatuar işlemler sırasında değiştirmek ve deney koşulları altında incelenebilir çeşitli işaretçileri içerir. Örnekler toplam protein ve eikosanoidlerin 29,34 vardır. Tarif edilen numunelerin olası başka bir kullanım şematik bir genel görünüşü Şekil 5&#39;te gösterilmektedir. <img alt="Şekil 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig1highres.jpg" width="500" /> Aşılama siteleri (sarı) sığır akciğer Şekil 1.. Plan. Numaraları inokulum farklı bronşlara tatbik edildiği sırasını göstermektedir. R: sağ; L: Sol. Sağ akciğer: 1 Lobus medius: 0.5 ml, 2 Lobus accessorius: 0.5 mi, 3 Lobus caudalis: 0.5 ml ve 1.0 ml 4; Sol akciğer: Lobus kraniyalise, <strong&gt; 5 pars kraniyalise: 0.5 ml, 6 pars caudalis: 0.5 ml, 7 Lobus caudalis: 1.5 ml, 8 Lobus kraniyalise, pars caudalis: 1.0 ml. <img alt="Şekil 2," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig2highres.jpg" width="500" /> . Şekil 2. aşılama siteleri (sarı) ve örnekleme siteleri ile sığır akciğer şeması:. Bronkoalveoler lavaj (mavi), bronşiyal fırçalama (yeşil) ve akciğer biyopsisi (turuncu) Tüm numuneler patojen tevdi edilmiştir bölgelerden elde edilir unutmayın önce. R: sağ, L: Sol. <img alt="Şekil 3," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig3highres.jpg" width="500" /> Chl ile aşılanmış bir buzağı Şekil 3 a.) Akciğer biyopsisi<html> amydia psittaci aşılamadan 4 gün sonra (dpi), b) bir dana BAL sıvısında hücresel tortu C ile aşılandı psittaci 9 dpi. Klamidya için immünohistokimyasal etiketleme. Chlamydial inklüzyonlar (oklar) akciğerde (a) ve alveolar makrofajlar (b) yer almaktadır. Hematoksilen counterstain. <img alt="Şekil 4," fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51557/51557fig4highres.jpg" width="500" /> Şekil 4. C. ile aşılanmış bir buzağı BAL&#39;da Hücresel sediment psittaci 9 dpi. alveol makrofajlarının, (+) BAL sıvısında baskın hücre türüdür. Enflamatuar süreçler mevcut olduğunda nötrofil granülositler miktarı (*) artar. Modifiye Pappenheim boyama. es.jpg &quot;width =&quot; 600 &quot;/&gt; Şekil 5. Numune hazırlama için olası yöntemler. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51557/51557fig5highres.jpg" target="_blank">, bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about The Bovine Lung in Biomedical Research: Visually Guided Bronchoscopy, Intrabronchial Inoculation and In Vivo Sampling Techniques at JoVE.com

The Bovine Lung in Biomedical Research: Visually Guided Bronchoscopy, Intrabronchial Inoculation and In Vivo Sampling Techniques

Bu makalede deneysel koşullar altında sığır bronkoskopik teknikler, yani bronkoskopik güdümlü aşılama, bronkoalveoler lavaj, bronş fırçalama ve transbronşiyal akciğer biyopsisi açıklanır.

Biyomedikal Araştırma Sığır Akciğer: Görme Kılavuzlu Bronkoskopi, intrabronşiyal Aşılama ve<em&gt; In Vivo</em&gt; Örnekleme Teknikleri

There is an ongoing search for alternative animal models in research of respiratory medicine. Depending on the goal of the research, large animals as ...

the-bovine-lung-biomedical-research-visually-guided-bronchoscopy

Research

JoVE Journal

Medicine

The Bovine Lung in Biomedical Research: Visually Guided Bronchoscopy, Intrabronchial Inoculation and In Vivo Sampling Techniques

23.0K Görüntüleme.  Friedrich-Loeffler-Institut.  Bu makalede deneysel koşullar altında sığır bronkoskopik teknikler, yani bronkoskopik güdümlü aşılama, bronkoalveoler lavaj, bronş fırçalama ve transbronşiyal akciğer biyopsisi açıklanır. 

Video: The Bovine Lung in Biomedical Research: Visually Guided Bronchoscopy, Intrabronchial Inoculation and In Vivo Sampling Techniques

Making Sense of Listening: The IMAP Test Battery

The ability to hear is only the first step towards making sense of the range of information contained in an auditory signal. Of equal importance are the abilities to extract and use the information encoded in the auditory signal. We refer to these as listening skills (or auditory processing AP). Deficits in these skills are associated with delayed language and literacy development, though the nature of the relevant deficits and their causal connection with these delays is hotly debated.
When a child is referred to a health professional with normal hearing and unexplained difficulties in listening, or associated delays in language or literacy development, they should ideally be assessed with a combination of psychoacoustic (AP) tests, suitable for children and for use in a clinic, together with cognitive tests to measure attention, working memory, IQ, and language skills. Such a detailed examination needs to be relatively short and within the technical capability of any suitably qualified professional. Current tests for the presence of AP deficits tend to be poorly constructed and inadequately validated within the normal population. They have little or no reference to the presenting symptoms of the child, and typically include a linguistic component. Poor performance may thus reflect problems with language rather than with AP. To assist in the assessment of children with listening difficulties, pediatric audiologists need a single, standardized child-appropriate test battery based on the use of language-free stimuli.
We present the IMAP test battery which was developed at the MRC Institute of Hearing Research to supplement tests currently used to investigate cases of suspected AP deficits. IMAP assesses a range of relevant auditory and cognitive skills and takes about one hour to complete. It has been standardized in 1500 normally-hearing children from across the UK, aged 6-11 years. Since its development, it has been successfully used in a number of large scale studies both in the UK and the USA. IMAP provides measures for separating out sensory from cognitive contributions to hearing. It further limits confounds due to procedural effects by presenting tests in a child-friendly game-format. Stimulus-generation, management of test protocols and control of test presentation is mediated by the IHR-STAR software platform. This provides a standardized methodology for a range of applications and ensures replicable procedures across testers. IHR-STAR provides a flexible, user-programmable environment that currently has additional applications for hearing screening, mapping cochlear implant electrodes, and academic research or teaching.

A test battery (IMAP) for performing an in-depth assessment of auditory and cognitive abilities contributing to listening skills is described. It is quick to administer, child-friendly and free from linguistic confounds. Stimulus generation and protocol management are controlled via a software platform (IHR-STAR) to ensure replicable procedures.

Dinlemede Making Sense IMAP Test Batarya:

The ability to hear is only the first step towards making sense of the range of information contained in an auditory signal. Of equal importance are the ...

Tıp

Method of Isolated Ex Vivo Lung Perfusion in a Rat Model: Lessons Learned from Developing a Rat EVLP Program

The number of acceptable donor lungs available for lung transplantation is severely limited due to poor quality. Ex-Vivo Lung Perfusion (EVLP) has allowed lung transplantation in humans to become more readily available by enabling the ability to assess organs and expand the donor pool. As this technology expands and improves, the ability to potentially evaluate and improve the quality of substandard lungs prior to transplant is a critical need. In order to more rigorously evaluate these approaches, a reproducible animal model needs to be established that would allow for testing of improved techniques and management of the donated lungs as well as to the lung-transplant recipient. In addition, an EVLP animal model of associated pathologies, e.g., ventilation induced lung injury (VILI), would provide a novel method to evaluate treatments for these pathologies. Here, we describe the development of a rat EVLP lung program and refinements to this method that allow for a reproducible model for future expansion. We also describe the application of this EVLP system to model VILI in rat lungs. The goal is to provide the research community with key information and &#8220;pearls of wisdom&#8221;/techniques that arose from trial and error and are critical to establishing an EVLP system that is robust and reproducible.

Method of Isolated Ex Vivo Lung Perfusion in a Rat Model: Lessons Learned from Developing a Rat EVLP Program

Ex-Vivo Lung Perfusion (EVLP) has allowed lung transplantation in humans to become more readily available by enabling the ability to assess organs and expand the donor pool. Here, we describe the development of a rat EVLP program and refinements that allow for a reproducible model for future expansion.

İzole Yöntemi<em&gt; Ex vivo</emBir Rat Modelinde&gt; Akciğer Perfüzyon: Sıçan EVLP Programı Geliştirme Öğrenilmiş Dersler

The number of acceptable donor lungs available for lung transplantation is severely limited due to poor quality. Ex-Vivo Lung Perfusion (EVLP) has allowed ...

Depletion of Mouse Cells from Human Tumor Xenografts Significantly Improves Downstream Analysis of Target Cells

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic patient tumors in different assays1. Human tumor xenografts represent the gold standard with respect to tumor biology, drug discovery, and metastasis research 2-4. Tumor xenografts can be derived from different types of material like tumor cell lines, tumor tissue from primary patient tumors4 or serially transplanted tumors. When propagated in vivo, xenografted tissue is infiltrated and vascularized by cells of mouse origin. Multiple factors such as the tumor entity, the origin of xenografted material, growth rate and region of transplantation influence the composition and the amount of mouse cells present in tumor xenografts. However, even when these factors are kept constant, the degree of mouse cell contamination is highly variable.
Contaminating mouse cells significantly impair downstream analyses of human tumor xenografts. As mouse fibroblasts show high plating efficacies and proliferation rates, they tend to overgrow cultures of human tumor cells, especially slowly proliferating subpopulations. Mouse cell derived DNA, mRNA, and protein components can bias downstream gene expression analysis, next-generation sequencing, as well as proteome analysis 5. To overcome these limitations, we have developed a fast and easy method to isolate untouched human tumor cells from xenografted tumor tissue. This procedure is based on the comprehensive depletion of cells of mouse origin by combining automated tissue dissociation with the benchtop tissue dissociator and magnetic cell sorting. Here, we demonstrate that human target cells can be can be obtained with purities higher than 96% within less than 20 min independent of the tumor type.

Human tumor xenografts are vascularized and infiltrated by cells of mouse origin during the growth phase in vivo. To circumvent the bias caused by these contaminating cells during downstream analysis, we developed a method allowing for comprehensive depletion of all mouse cells by magnetic cell sorting.

İnsan Tümör ksenogratflarının gelen Fare Hücrelerinin tükenmesi Anlamlı Hedef Hücre Alt Analizi geliştirir

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic ...

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo and noninvasively in humans via phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS). However, the approach has not been widely adopted in translational and clinical research, with variations in methodology and limited guidance from the literature. Increased optimization, standardization, and dissemination of methods for in vivo 31PMRS would facilitate the development of targeted therapies to improve OXPHOS capacity and could ultimately favorably impact cardiovascular health. 31PMRS produces a noninvasive, in vivo measure of OXPHOS capacity in human skeletal muscle, as opposed to alternative measures obtained from explanted and potentially altered mitochondria via muscle biopsy. It relies upon only modest additional instrumentation beyond what is already in place on magnetic resonance scanners available for clinical and translational research at most institutions. In this work, we outline a method to measure in vivo skeletal muscle OXPHOS. The technique is demonstrated using a 1.5 Tesla whole-body MR scanner equipped with the suitable hardware and software for 31PMRS, and we explain a simple and robust protocol for in-magnet resistive exercise to rapidly fatigue the quadriceps muscle. Reproducibility and feasibility are demonstrated in volunteers as well as subjects over a wide range of functional capacities.

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

This work demonstrates the feasibility of an in vivo phosphorus-31 magnetic resonance spectroscopy (31PMRS) technique to quantify mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity in human skeletal muscle.

Fosfor-31 Manyetik Rezonans Spektroskopisi: Ölçme için Aracı<em&gt; İn Vivo</emİnsan İskelet Kası içinde&gt; Mitokondriyal Oksidatif Fosforilasyon Kapasitesi

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo ...

Sampling Strategies and Processing of Biobank Tissue Samples from Porcine Biomedical Models

In translational medical research, porcine models have steadily become more popular. Considering the high value of individual animals, particularly of genetically modified pig models, and the often-limited number of available animals of these models, establishment of (biobank) collections of adequately processed tissue samples suited for a broad spectrum of subsequent analyses methods, including analyses not specified at the time point of sampling, represent meaningful approaches to take full advantage of the translational value of the model. With respect to the peculiarities of porcine anatomy, comprehensive guidelines have recently been established for standardized generation of representative, high-quality samples from different porcine organs and tissues. These guidelines are essential prerequisites for the reproducibility of results and their comparability between different studies and investigators. The recording of basic data, such as organ weights and volumes, the determination of the sampling locations and of the numbers of tissue samples to be generated, as well as their orientation, size, processing and trimming directions, are relevant factors determining the generalizability and usability of the specimen for molecular, qualitative, and quantitative morphological analyses. Here, an illustrative, practical, step-by-step demonstration of the most important techniques for generation of representative, multi-purpose biobank specimen from porcine tissues is presented. The methods described here include determination of organ/tissue volumes and densities, the application of a volume-weighted systematic random sampling procedure for parenchymal organs by point-counting, determination of the extent of tissue shrinkage related to histological embedding of samples, and generation of randomly oriented samples for quantitative stereological analyses, such as isotropic uniform random (IUR) sections generated by the &#34;Orientator&#34; and &#34;Isector&#34; methods, and vertical uniform random (VUR) sections.

The practical application and performance of methods for generation of representative tissue samples of porcine animal models for a broad spectrum of downstream analyses in biobank projects are demonstrated, including volumetry, systematic random sampling, and differential processing of tissue samples for qualitative and quantitative morphologic and molecular analyses types.

Örnekleme stratejileri ve Biobank doku örnekleri domuz Biyomedikal modellerinden işlenmesi

In translational medical research, porcine models have steadily become more popular. Considering the high value of individual animals, particularly of ...

Direct Intrabronchial Administration to Improve the Selective Agent Deposition Within the Mouse Lung

Intratracheal (IT) administration of experimental agents is an essential technique in murine models of diffuse lung diseases, such as bleomycin-induced pulmonary fibrosis.&#160; However, distribution of intratracheally-administered agents to the distal mouse lung is often asymmetric, with lung parenchymal concentrations increased in the smaller (but equally accessible) left lung of the mouse.&#160; Described in this report is a novel intrabronchial (IB) approach to cannulate the left and/or right lungs of living mice non-operatively.&#160; It is also demonstrated how this approach can be used to selectively administer agents to one lung or adapted (via dose-adjusted IB delivery) to improve the left-right symmetry of lung delivery of experimental agents, thereby improving models of diffuse lung disease such as bleomycin-induced pulmonary fibrosis.

Intratracheal (IT) administration of experimental agents in mice often results in asymmetric delivery to the distal lungs.&#160; In this report, we describe a direct intrabronchial (IB) approach to cannulate each lung in living mice non-operatively.&#160; This approach can be used to selectively administer agents to one lung or may be adapted to improve the symmetric agent delivery to both lungs.

Fare akciğer Içinde seçici Ajan biriktirme geliştirmek için doğrudan Intrabronchial yönetim

Intratracheal (IT) administration of experimental agents is an essential technique in murine models of diffuse lung diseases, such as bleomycin-induced ...

On-Site Sampling and Extraction of Brain Tumors for Metabolomics and Lipidomics Analysis

Despite the variety of tools available for cancer diagnosis and classification, methods that enable fast and simple characterization of tumors are still in need. In recent years, mass spectrometry has become a method of choice for untargeted profiling of discriminatory compound as potential biomarkers of a disease. Biofluids are generally considered as preferable matrices given their accessibility and easier sample processing while direct tissue profiling provides more selective information about a given cancer. Preparation of tissues for the analysis via traditional methods is much more complex and time-consuming, and, therefore, not suitable for fast on-site analysis. The current work presents a protocol combining sample preparation and extraction of small molecules on-site, immediately after tumor resection. The sampling device, which is of the size of an acupuncture needle, can be inserted directly into the tissue and then transported to the nearby laboratory for instrumental analysis. The results of metabolomics and lipidomics analyses demonstrate the capability of the approach for the establishment of phenotypes of tumors related to the histological origin of the tumor, malignancy, and genetic mutations, as well as for the selection of discriminating compounds or potential biomarkers. The non-destructive nature of the technique permits subsequent performance of routinely used tests e.g., histological tests, on the same samples used for SPME analysis, thus enabling attainment of more comprehensive information to support personalized diagnostics.

The manuscript presents on-site sampling of human brain tumors with solid phase microextraction followed by their biochemical profiling towards the discovery of biomarkers.

Metabolomik ve Lipidomik Analizler için Beyin Tümörlerinin Yerinde Örnekleme sivesi ve ekstraksiyonu

Despite the variety of tools available for cancer diagnosis and classification, methods that enable fast and simple characterization of tumors are still ...

Ex Vivo and In Vivo Animal Models for Mechanical and Chemical Injuries of Corneal Epithelium

Corneal injury to the ocular surface, including chemical burn and trauma, may cause severe scarring, symblepharon, corneal limbal stem cells deficiency, and result in a large, persistent corneal epithelial defect. Epithelial defect with the following corneal opacity and peripheral neovascularization result in irreversible visual impairment and hinder future management, especially keratoplasty. Since the animal model can be used as an effective drug development platform, models of corneal injury to the mouse and alkali burn to rabbit corneal epithelium are developed here. New Zealand white rabbit is used in the alkali burn model. Different concentrations of sodium hydroxide can be applied onto the central circular area of the cornea for 30 s under intramuscular and topical anesthesia. After copious isotonic normal saline irrigation, residual loose corneal epithelium was removed with corneal burr deep down to the Bowman's layer within this circular area. Wound healing was documented by fluorescein staining under Cobalt blue light. C57BL/6 mice were used in the traumatic model of murine corneal epithelium. The murine central cornea was marked using a skin punch, 2 mm in diameter, and then debrided by a corneal rust ring remover with a 0.5 mm burr under a stereomicroscope. These models can be prospectively used to validate the therapeutic effect of eye drops or mixed agents such as stem cells, which potentially facilitate corneal epithelial regeneration. By observing corneal opacity, peripheral neovascularization, and conjunctival congestion with stereomicroscope and imaging software, therapeutic effects in these animal models can be monitored.

Ex Vivo and In Vivo Animal Models for Mechanical and Chemical Injuries of Corneal Epithelium

Here, animal models based on mouse and rabbit are developed for mechanical and chemical injury of corneal epithelium to screen new therapeutics and the underlying mechanism.

Kornea Epitelinin Mekanik ve Kimyasal Yaralanmaları için Ex Vivo ve In Vivo Hayvan Modelleri

Corneal injury to the ocular surface, including chemical burn and trauma, may cause severe scarring, symblepharon, corneal limbal stem cells deficiency, ...

Dissection Techniques and Histological Sampling of the Heart in Large Animal Models for Cardiovascular Diseases

The standard gross examination and sampling are key elements in the reproducibility and success of experimental studies of cardiovascular diseases carried out in large animals. Considering the complex anatomy of the heart, interspecies differences, and the types of compensatory and pathological reactions, consistent protocols are challenging to implement. The utilization of multiple dissection protocols is usually adapted to suit the prosector's experience, and personal preference continues to be a source of experimental and interobserver variability. Here, the aim is to present the main anatomical features and landmarks, dissection protocols, and histological sampling standards of the heart in some commonly used species (including dogs, pigs, ruminants, and cats) as models of cardiovascular diseases.
Two standard gross examination protocols are presented here. First, the inflow-outflow method, which follows the physiological blood flow direction through the heart and large vessels (frequently used in dogs, ruminants, and pigs), and second, the four-chamber dissection technique (exemplified in cats). Both techniques can be adapted to any species in certain experimental circumstances. The sampling protocols include all the areas of interest (sinoatrial node, ventricles, interventricular septum, atria, valves, and aorta), and if properly carried out, improve both the reproducibility and reliability of experimental studies.

Due to the complex anatomy, a consistently reproducible dissection and harvesting protocol for cardiac samples can be challenging to implement. This manuscript presents the key elements of some standard cardiac dissection protocols, highlighting both the gross examination approaches and the sampling sites commonly used for histopathologic examination.

Diseksiyon Teknikleri ve Kardiyovasküler Hastalıklar için Büyük Hayvan Modellerinde Kalbin Histolojik Örneklemesi

The standard gross examination and sampling are key elements in the reproducibility and success of experimental studies of cardiovascular diseases carried ...

Acemi Bronkoskopistler için Esnek Bronkoskopi

Systematic Bronchoscopy: the Four Landmarks Approach

Flexible bronchoscopy is a technically difficult procedure and has been identified as the most important procedure that should be integrated into a simulation-based training program for pulmonologists. However, more specific guidelines that govern bronchoscopy training are needed to meet this demand. To ensure patients a competent examination, we propose a systematic, stepwise approach, splitting the procedure into four &#34;landmarks&#34; to support novice endoscopists navigating the bronchial maze. The procedure can be evaluated based on three established outcome measures to ensure a thorough and effective inspection of the bronchial tree: diagnostic completeness, structured progress, and procedure time.
The stepwise approach relying on the four landmarks is used at all simulation centers in Denmark and is being implemented in the Netherlands. To provide instant feedback to novice bronchoscopists when training and to relieve time constraints from consultants, we suggest that future studies should implement artificial intelligence&#160;as a feedback and certification tool when training new bronchoscopists.

Yazar Spotlight: Simülasyon Tabanlı Bir Ortamda Sistematik Bronkoskopiyi Öğrenmek 

Here, we present a protocol to navigate the bronchial maze in a structured manner, splitting the bronchoscopy into a stepwise approach-the four landmarks approach.

Sistematik Bronkoskopi: Dört Önemli Nokta Yaklaşımı

Flexible bronchoscopy is a technically difficult procedure and has been identified as the most important procedure that should be integrated into a ...