This work is funded by NIH RO1 NS 40433 (K.J.J.).

Idam tüm işlemler Tıp Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi Indiana Üniversitesi tarafından onaylanmış ve Sağlık kılavuzların Ulusal Enstitüsü takip edilmektedir. 1. Cerrahi Tekniği <ol><li> Steril eldiven, aletler ve NIH kurallarına 25 göre steril cerrahi alanını kullanarak bu işlem sırasında aseptik teknik koruyun. Onları otoklav ile ameliyat başlamadan önce araçları sterilize (tam liste için özel Reaktifler / Ekipman Tablo). Operasyon sırasında araçları sterilize etmek için bir cam boncuk sterilizatör kullanın. </li></ol> 2. Anestezi ve Hazırlık <ol><li> Bir veteriner izofluran buharlaştırıcı sistemi kullanılarak 0.9 L / dk oksijen ve% 2.5 izofluran karışımı ile anestezi kutusuna fare anestezisi. Fare kutusundan çıkarmadan önce vücut pozisyonunda değişikliklere yanıt vermez emin olun. </li><li> Mou oftalmik merhem sürünSE gözleri kurumasını onları korumak için. </li><li> Burun konisi kutuya gaz akışını geçin. Koni içinde kendi burun ve ağız ile cerrahi ped ve emici tezgah kağıdı ile kaplı bir ısıtılmış pad üzerinde sol tarafta kare fare yerleştirin. Sürekli farenin solunum ritmi ve hızı izlemek ve gerektiğinde izofluran seviyelerini ayarlamak - anestezi yeterli düzeyde tutmak için (2,5 ila% 3 izofluran), toplam sedasyon onaylamak için ayak tutam refleksini kullanın. </li></ol> 3. Cerrahi Yaklaşım <ol><li> Hizalayın ve cerrahi alan ile stereoskopla odak. Burun konisi ayarlayın ve görme alanının kenarında konumlandırılmış böylece aşağı bantlayın. </li><li> Fare sol tarafta yalan, kesi yapılacaktır kulağın arkasındaki alanı açığa burun konisi sağ kulak kenarına bantlayın. Posterior aurikular ven kulağa boyunca yatay hareket emin olun. Not t doğru yerleştirmeO hayvan ve kulak bantlama hızlı yüz siniri bulmak için çok önemlidir. </li><li> Ve% 70 etanol ile kulak arkasında kürk ıslatın ve bir jilet veya neşter bıçak kullanarak cerrahi siteyi tıraş. Ön ıslatma kürk, bu anatomik konumda kolay tıraş sağlar. </li><li> % 70 etanol ile ve ardından bu Betadinede cerrahi fırçalama (% 7.5 povidon-iyot) gibi bir iyot çözeltisi ile deri temizleyin. Iyice bölgeyi dezenfekte bu temizlik iki kez daha tekrarlayın. </li><li> , Kesi yapmak kulak çıkıntı için alan posterior kaudal kulak arka aurikular ven iz yeri belirlemek için. Çıkıntı 3 mm posterior - yaylı makas kullanarak, 4 mm&#39;lik kesi 2 yapmak. </li><li> Künt diseksiyon kullanarak deri altı yağ ve fasya ile ayır. Kan damarları veya kas dokusu kolayca zarar görebilir, çünkü makas ile doğrudan kesme kaçının. </li><li> Kanama oluşursa, steril bir pamuklu çubukla cerrahi bölgeye baskı uygulamaken az 30 saniye boyunca karıştırılmıştır. Belirgin sıvı kaybı meydana gelmesi durumunda, fazla 25 ya da 27 G iğne kullanılarak steril% 0.9 tuzlu su çözeltisi 0.5 ml ile periton içine fare enjekte edilir. </li><li> Yüz siniri bulmak için, birkaç anahtar yerler, spinal aksesuar sinir, kulak kanalına kullanın ve (aşağıda açıklanmıştır) digastrik kas anterior. Fasiyal sinirin dalları görüntülenmiştir kadar bu yerler etrafında ayır. o zaman ortaya sinir önemli bir beyaz katı bir yapı olarak görünür ve fasya tabakası altında yatan yapılara bunu yapışır. <ol><li> Deri altı yağ ve fasya disseke edilmiş bir kez, trapez kasını innerve kafatası kaudal kısmından geçecek spinal aksesuar sinir, bulun. fasial sinir, spinal aksesuar sinir derin. </li><li> Inci beyazı görünüyor ve fasiyal sinirin rostralinde görülebilir kıkırdak kulak kanalı bulun. </li><li> Üst ve c yatıyor ön digastrik kas kas karın bulfasiyal sinirin için audal. </li></ol></li><li> Fasial sinirin ana dalları görüntülenmiştir zaman, Stylomastoid foramende kendi kökenini bulmak için dorsal onları iz. , Açık cerrahi siteyi tutun sinirin yolu takip bahar makas ipuçlarını ilerlemek, daha sonra açık yeni gelişmiş alan tutmak için dorsal forseps taşımak için ince uçlu Dumont forseps # 5/45 kullanma. </li><li> Bu noktada elmacık, yanak ile fasiyal sinirin gövdesini ve marjinal mandibular dalı gözünüzde canlandırın. NOT: Temporal dal foramen yakın bulunacaktır. üst ve alt bölüme marjinal mandibular sinir dalları yakın çene, böylece bu sinir dalları bu düzeyde görünür olmayacaktır. <ol><li> Bir sinir transeksiyonu performans ise, ince uçlu forseps ile yavaşça sinir stabilize ve yaylı makas ile sinir kesti. Beyin sapından sinir avulsing önlemek için forseps ile sinire çok çekiş uygulamaktan kaçının. İtBirbirlerinden uzakta, ya da kesilmiş ve distal sinir bir kısmını çıkarmadan kütükleri hiçbir yeniden bağlanma oluşabilir sağlamak için. </li><li> Bir ezilme yaralanması gerçekleştirmek, sonra, tüm aksonlar sever ilk ezilme sitesine dik ikinci bir açıyla bu ezmek tekrarlamak için sabit basınç kullanarak 30 saniye boyunca sinir sıkıştırmak için Dumont # 5/45 forseps kullanabilir. Aksi takdirde yaralanma hayvanlar arasında tutarsız olacaktır, 30 sn ezmek sırasında basınç değişken miktarlarda uygulamaktan kaçının. </li></ol></li></ol> 4. Kapanış ve Kurtarma <ol><li> Altta yatan yapıları üzerinde yağ ve kas yerleştirin. </li><li> Kesi kenarlarını yaklaştığı ve 7,5 mm yara klibi kullanarak yara kapatın. Dikişler ya da yapıştırıcı aynı zamanda yara kapatma için kabul edilebilir. Ameliyat sonrası analjezikler, şu anda temin edilebilir. </li><li> Farenin kulağına bandı çıkarın. Izofluran akışını kapatın ve fare 1 dakika 30 saniye için saf oksijen solumak için izin verir. Planestezi kurtarmak için hiçbir yatak ile boş bir kafes içinde fare ace. </li><li> Fare kurtarıldı zaman, yüz felci doğrulayıcı belirtileri için davranışlarını incelemek. bıyıkları felç ve sırt yanak doğru açılı olacak, burun sapma olacak, ve göz hava puf yanıt yanıp olmaz. </li><li> Ev hayvanlar ortaklaşa ameliyattan sonra onlar kadın iseniz. Daha agresif ve zorla enfeksiyona yol açar onların cagemate yara klipleri, kaldırmak eğilimindedir çünkü ortaklaşa erkek fareler konut kaçının. Gerekirse, şu anda cerrahi sonrası analjezik sağlayın. </li><li> Hiçbir enfeksiyon ya da diğer bir komplikasyon postoperatif meydana sağlamak için ameliyattan sonra birkaç gün günde bir defa fareler izleyin. Kendi üzerinde düşmüş değil varsa ameliyattan sonra 10 gün - yara klipleri 7 çıkarın. </li><li> Göz kırpma refleksi yeniden ya kadar günlük kornea komplikasyonları önlemek için etkilenen göze göz merhemi yağlama Uygulaörtülü veya ötenazi kadar. </li></ol>

<ol>
	<li>Kaufman, M., Bard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Anatomical Basis of Mouse Development. , (1999).</li><li>Ashwell, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+adult+mouse+facial+nerve+nucleus:+morphology+and+musculotopic+organization.">The adult mouse facial nerve nucleus: morphology and musculotopic organization.</a> Journal of Anatomy. 135, 531-538 (1982).</li><li>Sunderland, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+classification+of+peripheral+nerve+injuries+producing+loss+of+function.">A classification of peripheral nerve injuries producing loss of function.</a> Brain : A Journal Of Neurology. 74, 491-516 (1951).</li><li>Beahrs, T., Tanzer, L., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+recovery+and+facial+motoneuron+survival+are+influenced+by+immunodeficiency+in+crush-axotomized+mice.">Functional recovery and facial motoneuron survival are influenced by immunodeficiency in crush-axotomized mice.</a> Experimental Neurology. 221, 225-230 (2010).</li><li>Mesnard, N. A., Haulcomb, M. M., Tanzer, L., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Delayed+functional+recovery+in+presymptomatic+mSOD1G93A+mice+following+facial+nerve+crush+axotomy.">Delayed functional recovery in presymptomatic mSOD1G93A mice following facial nerve crush axotomy.</a> Journal of Neurodegeneration &amp; Regeneration. 4, 21-25 (2013).</li><li>Komiyama, M., Shibata, H., Suzuki, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Somatotopic+representation+of+facial+muscles+within+the+facial+nucleus+of+the+mouse.+A+study+using+the+retrograde+horseradish+peroxidase+and+cell+degeneration+techniques.">Somatotopic representation of facial muscles within the facial nucleus of the mouse. A study using the retrograde horseradish peroxidase and cell degeneration techniques.</a> Brain Behav Evol. 24, 144-151 (1984).</li><li>Canh, M. Y., Serpe, C. J., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD4(+)+T+cell-mediated+facial+motoneuron+survival+after+injury:+Distribution+pattern+of+cell+death+and+rescue+throughout+the+extent+of+the+facial+motor+nucleus.">CD4(+) T cell-mediated facial motoneuron survival after injury: Distribution pattern of cell death and rescue throughout the extent of the facial motor nucleus.</a> Journal of Neuroimmunology. 181, 93-99 (2006).</li><li>Isokawa-Akesson, M., Komisaruk, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Difference+in+projections+to+the+lateral+and+medial+facial+nucleus:+anatomically+separate+pathways+for+rhythmical+vibrissa+movement+in+rats.">Difference in projections to the lateral and medial facial nucleus: anatomically separate pathways for rhythmical vibrissa movement in rats.</a> Exp Brain Res. 65, 385-398 (1987).</li><li>Streit, W., Kreutzberg, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Response+of+endogenous+glial+cells+to+motor+neuron+degeneration+induced+by+toxic+ricin.">Response of endogenous glial cells to motor neuron degeneration induced by toxic ricin.</a> The Journal of Comparative Neurology. 268, 248-263 (1988).</li><li>Serpe, C. J., Tetzlaff, J. E., Coers, S., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+recovery+after+facial+nerve+crush+is+delayed+in+severe+combined+immunodeficient+mice.">Functional recovery after facial nerve crush is delayed in severe combined immunodeficient mice.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 16, 808-812 (2002).</li><li>Lal, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+facilitates+rat+facial+nerve+recovery+from+a+crush+injury.+Otolaryngology--Head+And+Neck+Surgery.">Electrical stimulation facilitates rat facial nerve recovery from a crush injury. Otolaryngology--Head And Neck Surgery.</a> Official Journal Of American Academy Of Otolaryngology-Head And Neck Surgery. 139, 68-73 (2008).</li><li>Tomov, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Example+of+Neural+Plasticity+Evoked+by+Putative+Behavioral+Demand+and+Early+Use+of+Vibrissal+Hairs+after+Facial+Nerve+Transection.">An Example of Neural Plasticity Evoked by Putative Behavioral Demand and Early Use of Vibrissal Hairs after Facial Nerve Transection.</a> Experimental Neurology. 178, 207-218 (2002).</li><li>Skouras, E., Angelov, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+studies+on+post-transectional+facial+nerve+regrowth+and+functional+recovery+of+paralyzed+muscles+of+the+face+in+rats+and+mice.">Experimental studies on post-transectional facial nerve regrowth and functional recovery of paralyzed muscles of the face in rats and mice.</a> Anatomy (International Journal of Experimental and Clinical Anatomy). 4, 1-27 (2010).</li><li>Xin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IL-10+within+the+CNS+is+necessary+for+CD4++T+cells+to+mediate+neuroprotection).">IL-10 within the CNS is necessary for CD4+ T cells to mediate neuroprotection).</a> Brain, Behavior, And Immunity. 25, 820-829 (2011).</li><li>Mesnard, N. A., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+gene+expression+in+the+axotomized+facial+motor+nucleus+of+presymptomatic+SOD1+mice.">Differential gene expression in the axotomized facial motor nucleus of presymptomatic SOD1 mice.</a> The Journal of Comparative Neurology. 519, 3488-3506 (2011).</li><li>Mesnard, N. A., Alexander, T. D., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+laser+microdissection+in+the+investigation+of+facial+motoneuron+and+neuropil+molecular+phenotypes+after+peripheral+axotomy.">Use of laser microdissection in the investigation of facial motoneuron and neuropil molecular phenotypes after peripheral axotomy.</a> Experimental Neurology. 225, 94-103 (2010).</li><li>Franchi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+motor+representation+related+to+facial+nerve+damage+and+regeneration+in+adult+rats.">Changes in motor representation related to facial nerve damage and regeneration in adult rats.</a> Experimental Brain Research. 135, 53-65 (2000).</li><li>Munera, A., Cuestas, D. M., Troncoso, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peripheral+facial+nerve+lesions+induce+changes+in+the+firing+properties+of+primary+motor+cortex+layer+5+pyramidal+cells.">Peripheral facial nerve lesions induce changes in the firing properties of primary motor cortex layer 5 pyramidal cells.</a> Neuroscience. 223, 140-151 (2012).</li><li>Liu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hereditary+absence+of+complement+C5+in+adult+mice+influences+Wallerian+degeneration,+but+not+retrograde+responses,+following+injury+to+peripheral+nerve.">Hereditary absence of complement C5 in adult mice influences Wallerian degeneration, but not retrograde responses, following injury to peripheral nerve.</a> Journal of the Peripheral Nervous System. 4, 123-133 (1999).</li><li>Ferri, C., Moore, F., Bisby, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+facial+nerve+injury+on+mouse+motoneurons+lacking+the+p75+low-affinity+neurotrophin+receptor.">Effects of facial nerve injury on mouse motoneurons lacking the p75 low-affinity neurotrophin receptor.</a> Journal of Neurobiology. 34, 1-9 (1997).</li><li>Zhou, R. Y., Xu, J., Chi, F. L., Chen, L. H., Li, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differences+in+sensitivity+to+rocuronium+among+orbicularis+oris+muscles+innervated+by+normal+or+damaged+facial+nerves+and+gastrocnemius+muscle+innervated+by+somatic+nerve+in+rats:+combined+morphological+and+functional+analyses.">Differences in sensitivity to rocuronium among orbicularis oris muscles innervated by normal or damaged facial nerves and gastrocnemius muscle innervated by somatic nerve in rats: combined morphological and functional analyses.</a> The Laryngoscope. 122, 1831-1837 (2012).</li><li>Jinno, S., Yamada, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+comparative+anatomy+in+the+axotomy+model+to+identify+distinct+roles+for+microglia+and+astrocytes+in+synaptic+stripping.">Using comparative anatomy in the axotomy model to identify distinct roles for microglia and astrocytes in synaptic stripping.</a> Neuron Glia Biology. 7, 55-66 (2011).</li><li>Jones, K. J., Serpe, C. J., Byram, S. C., Deboy, C. A., Sanders, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+the+immune+system+in+the+maintenance+of+mouse+facial+motoneuron+viability+after+nerve+injury.">Role of the immune system in the maintenance of mouse facial motoneuron viability after nerve injury.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 19, 12-19 (2005).</li><li>Moran, L. B., Graeber, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+facial+nerve+axotomy+model.">The facial nerve axotomy model.</a> Brain research. Brain research. 44, 154-178 (2004).</li><li>Council, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Guide for the Care and Use of Laboratory Animals: Eighth Edition. , (2011).</li><li>Serpe, C. J., Kohm, A. P., Huppenbauer, C. B., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exacerbation+of+Facial+Motoneuron+Loss+after+facial+nerve+transection+in+severe+combined+immunodeficient+(scid)+mice.">Exacerbation of Facial Motoneuron Loss after facial nerve transection in severe combined immunodeficient (scid) mice.</a> Neuroscience. 19, (1999).</li><li>Mesnard-Hoaglin, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SOD1(G93A)+transgenic+mouse+CD4(+)+T+cells+mediate+neuroprotection+after+facial+nerve+axotomy+when+removed+from+a+suppressive+peripheral+microenvironment.">SOD1(G93A) transgenic mouse CD4(+) T cells mediate neuroprotection after facial nerve axotomy when removed from a suppressive peripheral microenvironment.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 40, 55-60 (2014).</li><li>Wang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+and+assessment+of+the+perinatal+mouse+facial+nerve+axotomy+model+via+a+subauricular+incision+approach.">Establishment and assessment of the perinatal mouse facial nerve axotomy model via a subauricular incision approach.</a> Experimental Biology And Medicine. 237, 1249-1255 (2012).</li><li>Sharma, N., Moeller, C. W., Marzo, S. J., Jones, K. J., Foecking, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combinatorial+treatments+enhance+recovery+following+facial+nerve+crush.">Combinatorial treatments enhance recovery following facial nerve crush.</a> The Laryngoscope. 120, 1523-1530 (2010).</li><li>Lieberman, D. M., Jan, T. A., Ahmad, S. O., Most, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+corticosteroids+on+functional+recovery+and+neuron+survival+after+facial+nerve+injury+in+mice.">Effects of corticosteroids on functional recovery and neuron survival after facial nerve injury in mice.</a> Archives of Facial Plastic Surgery. 13, 117-124 (2011).</li><li>Serpe, C. J., Coers, S., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD4++T,+but+not+CD8++or+B,+lymphocytes+mediate+facial+motoneuron+survival+after+facial+nerve+transection.">CD4+ T, but not CD8+ or B, lymphocytes mediate facial motoneuron survival after facial nerve transection.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 17, 393-402 (2003).</li><li>Haulcomb, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Axotomy-induced+target+disconnection+promotes+an+additional+death+mechanism+involved+in+motoneuron+degeneration+in+ALS+transgenic+mice.">Axotomy-induced target disconnection promotes an additional death mechanism involved in motoneuron degeneration in ALS transgenic mice.</a> The Journal of Comparative Neurology. , (2014).</li><li>Bauder, A. R., Ferguson, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproducible+mouse+sciatic+nerve+crush+and+subsequent+assessment+of+regeneration+by+whole+mount+muscle+analysis.">Reproducible mouse sciatic nerve crush and subsequent assessment of regeneration by whole mount muscle analysis.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (60), (2012).</li><li>Richner, M., Bjerrum, O. J., Nykjaer, A., Vaegter, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+spared+nerve+injury+(SNI)+model+of+induced+mechanical+allodynia+in+mice.">The spared nerve injury (SNI) model of induced mechanical allodynia in mice.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (54), (2011).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

The critical step for this protocol is positioning the mouse properly before surgery is begun. If the mouse is not lying flat on its side, the ear is not taped at the correct angle, or the incision is made in an incorrect location, then finding the facial nerve becomes much more difficult. When this technique is mastered, surgeries will take only minutes per mouse. 
Either sutures, glue, or wound clips can be used to close the wound. Wound clips are preferred because of the small size of incis...

Birçok periferik sinir yaralanması modelleri var, ama motor nöronlar çalışma için göze çarpan bir fasiyal sinir aksotomi modelidir. Ayrıca kranial sinir VII olarak bilinen fasial sinir, pons kaynaklanır ve yüz ifadesi 1,2 kasları innerve eder. Bu cerrahi protokolde, fasial sinir Stylomastoid foramende onun çıkışında maruz kalan ve kesilmiş veya ezilmiş ya edilir. Sinir hasarı şiddeti sırayla akson demetleri etrafına sarın bağ dokusu katmanları olan aksonlar, endoneurium, perinörium ve epinörium devamlılığı dayalı yaralanma ayıran Sunderland 3 sınıflandırmaları, aşağıdaki sınıflandırılabilir. Ezilme yaralanması (aksonotmezis) olarak, aksonlar kopmuş, ancak perinevre ve epinöriyuma korunur. Sağlam sinir kılıfı aksonlar 4,5 regrow, içinde bir kanal olarak hizmet vermektedir, çünkü yüz siniri ezmek Komple fonksiyonel iyileşme yaklaşık 11 gün içinde gerçekleşir. ÜzerindeÖte yandan, kesme yaralanması (nöromezis) içinde, aksonlar ve 3 bağ dokusu katmanları kopmuş olup, tüm distal sinir kas innervasyon geri regrow gerekir. Epinörium Cerrahi yeniden bağlanma genellikle sinirin yaralanması yaralanması olan insan hastalarda yapılır, ancak kurtarma sonuçları nadiren uygun bulunmaktadır. Daha fazla çalışma sinir hedefine regrow başarısız ve hangi tedaviler geliştirmek ve rejeneratif sürecini hızlandırmak için istihdam edilebilir anlamak için gereklidir. Fasial sinir aksotomi modeli kullanılarak sinir yaralanması okuyan birçok avantajı vardır. İlk olarak, fasial sinir aksotomi prosedürü, hızlı, kolay ve son derece tekrarlanabilir; ve yüz kaslarının felci hayati fonksiyonları etkilemez ve iyi hayvan tarafından tolere edilir. Bu motor nöronlar th nispeten homojen nüfus ikamet çünkü basitleştirilmiş motonöron hücre gövdeleri okuyan bir kranial sinir hasarı modeli olduğundan,pons e fasiyal motor çekirdeği. Yedi subnuclei kasların belirli bir grup innerve her özel olarak orada nüfus, yüz motorlu çekirdeğinin içinde subnuclear desen dayalı farklılık yok, bu yüzden axotomy yanıt olarak subnuclear farklılıklar sonuçları 2,6,7 etkileyebilir. Fasial sinir yaralanması modelinde önemli bir yararı sinir innervasyon son derece simetrik ve yüz motorlu çekirdekleri 8 arasında çapraz olduğundan unaxotomized tarafı eşleştirilmiş iç kontrol olarak hizmet verebilir olmasıdır. Bu cerrahi yöntemi kullanmanın bir diğer avantajı, doğrudan merkezi sinir sistemine travma ya da kan-beyin engeli 9. bozulması eksikliğidir. Aşırı kanama ve enfeksiyon gibi komplikasyonlar bu prosedür ile nadirdir. Analiz, çeşitli sinir yaralanmasına bağlı fizyolojik tepkisini tayin etmek için gerçekleştirilebilir. göz kırpma refleksinin ve visker etkinlik geri kazanımı davranışsal olarak kullanılabilirFonksiyonel iyileşme 10,11 ölçüsü. Burun kılı aktivite video kayıt şu anda yüz sinir innervasyon 12,13 kurtarma tespit için en güçlü yöntemdir. Ötenazi sonra, beyin sapı histolojik analiz yüz motorlu çekirdeğin içinde motonöron hücre gövdeleri üzerinde yapılabilir. fasiyal motor çekirdeği yaralanmasına 2,6 yanıtları diferansiyel inceleme için izin, yedi subnuclei, belirli yüz kasları her özel bölünmüştür. Yüz motor nöronlar hücre yaşamını ölçmek için sayılabilir ya da immünohistokimya, biyolojik göstergeleri ve özel hücre popülasyonlarının 14 tanımlamak için kullanılabilir. fasiyal motor çekirdeği doğru sinir hasarı 15,16 hücresel yanıtın moleküler analiz için lazer yakalama kullanılarak microdissected edilebilir. Fasial sinir aksotomisi etkileri motor korteks 17,18 analiz edilebilir. Ayrıca, sinir Wallerian dejenerasyon çalışma çıkarılmasına olanak 19 ya daakson rejenerasyonu 20, ve kaslar kas kavşakları 21 çalışma çıkarılabilir. fasial sinir aksotomi da kas 21, ve bağışıklık sistemini yanıtı 23, ilişikteki santral ve periferik glial hücreleri 22 çalışma hedef için kullanılabilir. Çok fasial sinir aksotomi modeli 24 okuyan başarılı olmasına rağmen sinir hasarı hastaları için önemli bir sorundur ve güncel tedaviler iyi sonuçlar üretmek için başarısız çünkü, periferik sinir hasarı daha fazla çalışma gereklidir. Bu model sinir yaralanması fizyolojik yanıtı inceleyerek ve sinir rejenerasyonu tedavilerin etkinliğini analiz etmek için güçlü bir araçtır.

<table><tbody><tr><td>Stereo microscope</td><td>Leica</td><td>M60</td><td></td></tr><tr><td>Labeling tape</td><td>Fisher Scientific</td><td>15-952</td><td></td></tr><tr><td>Vannas-T&amp;uuml;bingen spring scissors - straight/sharp/8.5 cm/5 mm cutting edge</td><td>Fine Science Tools</td><td>15003-08</td><td>Sterilize before use</td></tr><tr><td>Dumont #5/45 forceps - standard tips/angled 45&amp;deg;/Dumoxel/11 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-35</td><td>Sterilize before use</td></tr><tr><td>Michel suture clips - 7.5 mm x 1.75 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>12040-01</td><td>Described as &quot;wound clip&quot; in protocol, sterilize before use</td></tr><tr><td>Hagenbarth cross action wound clip applier 5&quot;</td><td>George Tiemann &amp;amp; Co</td><td>160-910</td><td>Used to apply wound clip, sterilize before use</td></tr><tr><td>Michel suture clip applicator &amp;amp; remover - For 7.5 mm clips</td><td>Fine Science Tools</td><td>12029-12</td><td>Used to remove wound clip</td></tr><tr><td>0.9% Sodium chloride injection, USP</td><td>Hospira</td><td>0409-4888-10</td><td></td></tr><tr><td>Betadine, 16 oz, with dispenser</td><td>Fisher Scientific</td><td>19-027132</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glass bead sterilizer</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

facial nerve axotomy in mice: a model to study motoneuron response to injury

Bu cerrahi protokolün amacı Stylomastoid foramende onun çıkışında yüz kasları innerve yüz siniri, ortaya çıkarmak ve ya kesme veya periferik sinir hasarı neden onu ezmek için. Bu ameliyatın avantajları böylece diğer sinir yaralanması modellere kıyasla nispeten hafif cerrahi sonuç sonuçlanan sadeliği, yüksek tekrarlanabilirlik ve sonraki yüz felci hayati fonksiyonları veya hareketlilik üzerindeki etkisinin olmamasıdır. Kranial sinir yaralanması modelini kullanarak önemli bir avantajı motor nöronlar motor nöron hücre gövdeleri çalışma basitleştirilmesi, pons yüz motorlu çekirdeğinde nispeten homojen nüfus ikamet olduğunu. Çünkü yüz sinir innervasyon simetrik yapısı ve yüz motorlu çekirdekleri arasındaki karışma eksikliği, çalışma unaxotomized tarafı eşleştirilmiş iç kontrol olarak hizmet veren tek taraflı yapılabilir. Analiz çeşitli eşek postoperatif yapılabilirBu makalenin kapsamı dışındadır ayrıntıları fizyolojik tepki, s. Örneğin, kas fonksiyonunun geri kazanılması; innervasyonun bir davranış markör olarak görev yapabilir veya motor nöronlar hücre yaşamını ölçmek için sayısal olarak belirlenebilir. Ayrıca, motor nöronlar doğru moleküler analiz için lazer mikrodiseksiyon kullanılarak yakalanabilir. Yüz siniri axotomy minimal invaziv ve iyi tolere edilir, çünkü bu genetik olarak tadil edilmiş farelerin çok çeşitli kullanılabilir. Ayrıca, bu ameliyat modeli periferik sinir yaralanması tedavilerinin etkinliğini analiz etmek için kullanılabilir. Yüz sinir hasarı sadece motor nöronlar araştırılması için bir araç sağlar, ancak merkezi ve çevresel glial mikro-bağışıklık sistemi ve hedef kas da yanıtlar. fasial sinir hasarı modeli sinir hasarı ve yenilenme eğitim için güçlü bir araç olarak hizmet yaygın olarak kabul gören periferik sinir yaralanması modelidir.

Fasial sinir aksotomi gerçekleştirildikten sonra, motor nöron kaybı yaralanma sonucu ortaya çıkar. Yaralanma sonrası motonöron sağkalım gibi hem motonöron sağkalım verileri özetlemek cinsiyet, ameliyat sırasında hayvan yaş ve motonöron sayımları yapılır hangi timepoint ve Moran ve Graeber&#39;in inceleme 24 ve Jinno ve Yamada inceleme 22 gibi birçok değişkene bağlıdır. Tipik olarak, motor nöronlar yaklaşık% 86 sonrası aksotomi 14,15,26 28 gün hayatta. Mot...

Watch this Scientific Journal Video about Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury at JoVE.com

Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury

We present a surgical protocol detailing how to perform a cut or crush axotomy on the facial nerve in the mouse. The facial nerve axotomy can be employed to study the physiological response to nerve injury and test therapeutic techniques.

Farelerde Yüz Sinir Aksotomi: Sakatlık Motonöron Yanıtı Eğitim için Bir Model

The goal of this surgical protocol is to expose the facial nerve, which innervates the facial musculature, at its exit from the stylomastoid foramen and ...

facial-nerve-axotomy-mice-model-to-study-motoneuron-response-to

Research

JoVE Journal

Medicine

12.8K Görüntüleme.  Indiana University School of Medicine. We present a surgical protocol detailing how to perform a cut or crush axotomy on the facial nerve in the mouse. The facial nerve axotomy can be employed to study the physiological response to nerve injury and test therapeutic techniques. 

Video: Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury

Motor Nerve Transection and Time-lapse Imaging of Glial Cell Behaviors in Live Zebrafish

The nervous system is often described as a hard-wired component of the body even though it is a considerably fluid organ system that reacts to external stimuli in a consistent, stereotyped manner, while maintaining incredible flexibility and plasticity. Unlike the central nervous system (CNS), the peripheral nervous system (PNS) is capable of significant repair, but we have only just begun to understand the cellular and molecular mechanisms that govern this phenomenon. Using zebrafish as a model system, we have the unprecedented opportunity to couple regenerative studies with in vivo imaging and genetic manipulation. Peripheral nerves are composed of axons surrounded by layers of glia and connective tissue. Axons are ensheathed by myelinating or non-myelinating Schwann cells, which are in turn wrapped into a fascicle by a cellular sheath called the perineurium. Following an injury, adult peripheral nerves have the remarkable capacity to remove damaged axonal debris and re-innervate targets. To investigate the roles of all peripheral glia in PNS regeneration, we describe here an axon transection assay that uses a commercially available nitrogen-pumped dye laser to axotomize motor nerves in live transgenic zebrafish. We further describe the methods to couple these experiments to time-lapse imaging of injured and control nerves. This experimental paradigm can be used to not only assess the role that glia play in nerve regeneration, but can also be the platform for elucidating the molecular mechanisms that govern nervous system repair.

Although the peripheral nervous system (PNS) is capable of significant repair after injury, little is known about the cellular and molecular mechanisms that govern this phenomenon. Using live, transgenic zebrafish and a reproducible nerve transection assay, we can study dynamic glial cell behaviors during nerve degeneration and regeneration.

Motor Sinir transeksiyonu ve Canlı Zebra balığı Glial Hücre Davranışlarının Time-lapse Görüntüleme

The  nervous system is often described as a hard-wired component of the body even  though it is a considerably fluid organ system that reacts to external ...

Nörobilim

Mouse Hindbrain Ex Vivo Culture to Study Facial Branchiomotor Neuron Migration

Embryonic neurons are born in the ventricular zone of the brain, but subsequently migrate to new destinations to reach appropriate targets. Deciphering the molecular signals that cooperatively guide neuronal migration in the embryonic brain is therefore important to understand how the complex neural networks form which later support postnatal life. Facial branchiomotor (FBM) neurons in the mouse embryo hindbrain migrate from rhombomere (r) 4 caudally to form the paired facial nuclei in the r6-derived region of the hindbrain. Here we provide a detailed protocol for wholemount ex vivo culture of mouse embryo hindbrains suitable to investigate the signaling pathways that regulate FBM migration. In this method, hindbrains of E11.5 mouse embryos are dissected and cultured in an open book preparation on cell culture inserts for 24 hr. During this time, FBM neurons migrate caudally towards r6 and can be exposed to function-blocking antibodies and small molecules in the culture media or heparin beads loaded with recombinant proteins to examine roles for signaling pathways implicated in guiding neuronal migration.

Mouse Hindbrain Ex Vivo Culture to Study Facial Branchiomotor Neuron Migration

Embryonic neurons are born in the ventricular zone of the neural tube, but migrate to reach appropriate targets. Facial branchiomotor (FBM) neurons are a useful model to study neuronal migration. This protocol describes the wholemount ex vivo culture of mouse embryo hindbrains to investigate mechanisms that regulate FBM migration.

Fare Beyin<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Kültür Yüz Branchiomotor Nöron Göç Eğitim için

Embryonic neurons are born in the ventricular zone of the brain, but subsequently migrate to new destinations to reach appropriate targets. Deciphering ...

The Fibular Nerve Injury Method: A Reliable Assay to Identify and Test Factors That Repair Neuromuscular Junctions

The neuromuscular junction (NMJ) undergoes deleterious structural and functional changes as a result of aging, injury and disease. Thus, it is imperative to understand the cellular and molecular changes involved in maintaining and repairing NMJs. For this purpose, we have developed a method to reliably and consistently examine regenerating NMJs in mice. This nerve injury method involves crushing the common fibular nerve as it passes over the lateral head of the gastrocnemius muscle tendon near the knee. Using 70 day old female mice, we demonstrate that motor axons begin to reinnervate previous postsynaptic targets within 7 days post-crush. They completely reoccupy their previous synaptic areas by 12 days. To determine the reliability of this injury method, we compared reinnervation rates between individual 70 day old female mice. We found that the number of reinnervated postsynaptic sites was similar between mice at 7, 9, and 12 days post-crush. To determine if this injury assay can also be used to compare molecular changes in muscles, we examined levels of the gamma-subunit of the muscle nicotinic receptor (gamma-AChR) and the muscle-specific kinase (MuSK). The gamma-AChR subunit and MuSK to are highly upregulated following denervation and return to normal levels following reinnervation of NMJs. We found a close relationship between transcript levels for these genes and innervation status of muscles. We believe that this method will accelerate our understanding of the cellular and molecular changes involved in repairing the NMJ and other synapses.

We have developed a nerve injury method to reliably examine muscle reinnervation, and thus regeneration of neuromuscular junctions in mice. This technique involves injuring the common fibular nerve via a simple and highly reproducible surgery. Muscle reinnervation in then assessed by whole-mounting the extensor digitorum longus muscle.

Fibula Sinir Yaralanması Yöntem: Güvenilir Testi tanımak ve Test O Tamir Nöromüsküler Junctions Faktörleri

The neuromuscular junction (NMJ) undergoes deleterious structural and functional changes as a result of aging, injury and disease. Thus, it is imperative ...

Facial Nerve Surgery in the Rat Model to Study Axonal Inhibition and Regeneration

This protocol describes consistent and reproducible methods to study axonal regeneration and inhibition in a rat facial nerve injury model. The facial nerve can be manipulated along its entire length, from its intracranial segment to its extratemporal course. There are three primary types of nerve injury used for the experimental study of regenerative properties: nerve crush, transection, and nerve gap. The range of possible interventions is vast, including surgical manipulation of the nerve, delivery of neuroactive reagents or cells, and either central or end-organ manipulations. Advantages of this model for studying nerve regeneration include simplicity, reproducibility, interspecies consistency, reliable survival rates of the rat, and an increased anatomic size relative to murine models. Its limitations involve a more limited genetic manipulation versus the mouse model and the superlative regenerative capability of the rat, such that the facial nerve scientist must carefully assess time points for recovery and whether to translate results to higher animals and human studies. The rat model for facial nerve injury allows for functional, electrophysiological, and histomorphometric parameters for the interpretation and comparison of nerve regeneration. It thereby boasts tremendous potential toward furthering the understanding and treatment of the devastating consequences of facial nerve injury in human patients.

This protocol describes a reproducible approach to facial nerve surgery in the rat model, including descriptions of various inducible patterns of injury.

Aksonal İnhibisyon ve Rejenerasyon Çalışması için Sıçan Modelinde Yüz Sinir Cerrahisi

This protocol describes consistent and reproducible methods to study axonal regeneration and inhibition in a rat facial nerve injury model. The facial ...

A Mouse Model of Direct Anastomosis via the Prespinal Route for Crossing Nerve Transfer Surgery

Crossing nerve transfer surgery has been a powerful approach for repairing injured upper extremities in patients with brachial plexus avulsion injuries. Recently, this surgery was creatively applied in the clinical treatment of brain injury and achieved substantial rehabilitation of the paralyzed arm. This functional recovery after the surgery suggests that peripheral sensorimotor intervention induces profound neuroplasticity to compensate for the loss of function after brain damage; however, the underlying neural mechanism is poorly understood. Therefore, an emergent clinical animal model is required. Here, we simulated clinical surgery to establish a protocol of direct anastomosis of bilateral brachial plexus nerves via the prespinal route in mice. Neuroanatomical, electrophysiological, and behavioral experiments helped identify that the transferred nerves of these mice successfully reinnervated the impaired forelimb and contributed to accelerating motor recovery after brain injury. Therefore, the mouse model revealed the neural mechanisms underlying rehabilitation upon crossing nerve transfer after central and peripheral nervous system injuries.

We simulated clinical surgery to establish a protocol of direct anastomosis of bilateral brachial plexus nerves via the prespinal route in mice, contributing to the study of the neural mechanisms underlying rehabilitation upon crossing nerve transfer after central and peripheral nervous system injuries.

Çapraz Sinir Transferi Cerrahisi için Prespinal Yol Yoluyla Doğrudan Anastomozun Bir Fare Modeli

Crossing nerve transfer surgery has been a powerful approach for repairing injured upper extremities in patients with brachial plexus avulsion injuries. ...

Traumatic Peripheral Nerve Injury in Mice

Traumatic peripheral nerve injury (TPNI) is a common cause of morbidity following orthopedic trauma. Reproducible and precise methods of injuring nerve and denervating muscle have long been a goal in musculoskeletal research. Many traumatically injured limbs have nerve trauma that defines the long-term patient outcome. Over several years, precise methods of producing microsurgical nerve injuries have been developed, including crush, lacerations, and nerve-gap grafting, allowing for reproducible outcome assessments. Moreover, newer methods are created for calibrated crush injuries that offer clinically relevant correlations with outcomes used to assess human patients. The principles of minimal manipulation to ensure low variability in nerve injury allow for adding still more associated tissue injuries into these models. This includes direct muscle crush and other components of limb injury. Finally, atrophy assessment and precise analysis of behavioral outcomes make these methods a complete package for studying musculoskeletal trauma that realistically incorporates all the elements of human traumatic limb injury.

The present protocol describes traumatic peripheral nerve injuries (TPNIs), including precisely calibrated crush, strictly aligned and misaligned laceration, as well as grafted and non-grafted gaps of the sciatic nerve in mice. Custom-designed sensors are developed to gauge nerve trauma, induced with commonly available tools to ensure reproducible post-TPNI outcomes.

Traumatic peripheral nerve injury (TPNI) is a common cause of morbidity following orthopedic trauma. Reproducible and precise methods of injuring nerve ...

<meta charset="utf8"></head><body>Fare Levator Auris Longus Kasında Elektroporasyon ve Sinir Hasarı

Combined In Vivo Electroporation and Short&#45;Term Reinnervation of the Cranial Levator Auris Longus Skeletal Muscle

The neuromuscular junction (NMJ) is the peripheral synapse controlling the contraction of skeletal muscle fibers to allow the coordinated movement of many organisms. At the NMJ, a presynaptic motor axon terminal contacts a muscle postsynaptic domain and is covered by terminal Schwann cells. The integrity and function of the NMJ is compromised under several conditions, including aging, neuromuscular diseases, and traumatic injuries. To analyze the potential contribution of muscle-derived proteins to NMJ maintenance and regeneration, an in vivo gene transfer strategy has been combined with the denervation of the cranial levator auris longus (LAL) muscle after mechanical nerve injury. Previous findings showed that the forced expression of control fluorescent proteins does not alter NMJ organization or neurotransmission. This procedure aims to describe a detailed method of in vivo electroporation of the LAL muscle followed by transection or crushing of the specific branch of the facial nerve innervating cranial muscles, leading to NMJ denervation and reinnervation, respectively. The combination of these experimental strategies in the convenient LAL muscle constitutes an efficient method to study the potential contribution of muscle protein overexpression or silencing in the context of short-term NMJ reinnervation.

<meta charset="utf8"></head><body>Yazar Spotlight: Sinir Yaralanması Sonrası Nöromüsküler Kavşakta Kas Proteinlerinin Rejeneratif Rolleri

Here, we present a protocol that combines in vivo electroporation and denervation of the cranial levator auris longus (LAL) muscle. This procedure enables the study of the potential role of muscle-derived proteins in the regeneration of the neuromuscular synapse.

Kranial Levator Auris Longus İskelet Kasının Kombine İn Vivo Elektroporasyonu ve Kısa Süreli Reinnervasyonu

The neuromuscular junction (NMJ) is the peripheral synapse controlling the contraction of skeletal muscle fibers to allow the coordinated movement of many ...

Farelerde Dondurucu Yaralanma Yoluyla Orofasiyal Kas Fibroz Modelinin Oluşturulması

Freezing Injury in Mouse Masseter Muscle to Establish an Orofacial Muscle Fibrosis Model

Orofacial muscle constitutes a subset of skeletal muscle tissue, with a distinct evolutionary trajectory and development origin. Unlike the somite-derived limb muscles, the orofacial muscles originate from the branchial arches, with exclusive contributions from the cranial neural crest. A recent study has revealed that regeneration is also different in the orofacial muscle group. However, the underlying regulatory mechanism remains to be uncovered. Current skeletal muscle regeneration models mainly focus on the limb and trunk muscle. In this protocol, dry ice was used to induce freezing injury in the mouse masseter muscle and tibialis anterior muscle to create an orofacial muscle fibrosis model. The temporal dynamics of muscle satellite cells and fibro-adipogenic progenitors were different between the two muscles, leading to impaired myofiber regeneration and excessive extracellular matrix deposition. With the help of this model, a deeper investigation into muscle regeneration in the orofacial area could be carried out to develop therapeutic approaches for patients with orofacial diseases.

Yazar Spotlight: Orofasiyal Kas Rejenerasyonunu Keşfetmek – İçgörüler ve Yenilikler

The goal of this protocol is to establish an orofacial muscle fibrosis model. Comparison of the histology between mice masseter and tibialis anterior muscle after freezing injury confirmed masseter muscle fibrosis. This model will facilitate further investigation into the mechanism underlying orofacial muscle fibrosis.

Orofasiyal kas fibroz modeli oluşturmak için fare masseter kasında donma yaralanması

Orofacial muscle constitutes a subset of skeletal muscle tissue, with a distinct evolutionary trajectory and development origin. Unlike the somite-derived ...

Farelerde Yüz Sinir Aksotomi: Sakatlık Motonöron Yanıtı Eğitim için Bir Model

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Motor Sinir transeksiyonu ve Canlı Zebra balığı Glial Hücre Davranışlarının Time-lapse Görüntüleme

Fare Beyin

Fibula Sinir Yaralanması Yöntem: Güvenilir Testi tanımak ve Test O Tamir Nöromüsküler Junctions Faktörleri

Aksonal İnhibisyon ve Rejenerasyon Çalışması için Sıçan Modelinde Yüz Sinir Cerrahisi

Çapraz Sinir Transferi Cerrahisi için Prespinal Yol Yoluyla Doğrudan Anastomozun Bir Fare Modeli

Traumatic Peripheral Nerve Injury in Mice

Kranial Levator Auris Longus İskelet Kasının Kombine İn Vivo Elektroporasyonu ve Kısa Süreli Reinnervasyonu

Kranial Levator Auris Longus İskelet Kasının Kombine İn Vivo Elektroporasyonu ve Kısa Süreli Reinnervasyonu

Kranial Levator Auris Longus İskelet Kasının Kombine İn Vivo Elektroporasyonu ve Kısa Süreli Reinnervasyonu

Orofasiyal kas fibroz modeli oluşturmak için fare masseter kasında donma yaralanması