Name: using the electroretinogram to assess function in the rodent retina and the protective effects of remote limb ischemic preconditioning
Uploaded: 2015-06-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 34 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Using the Electroretinogram to Assess Function in the Rodent Retina and the Protective Effects of Remote Limb Ischemic Preconditioning at JoVE.com

Yazarlar kemirgen izleme, işleme ve deney Bayan Sharon Spana yardımı için müteşekkiriz. Doktora finansman desteği Vizyon Mükemmellik University of Sydney ve Avustralya Araştırma Merkezi tarafından sağlanmıştır.

Bu protokol University of Sydney hayvan bakım kurallarına uyar. 1. Yapımı elektrotlar <ol><li> Pozitif elektrot platin tel çapı 1-2 mm kısa (5 cm) uzunluğu (kornea irtibata geçecektir biri) Construct. Bir döngü içine çapında bir kaç mm o moda. Senin amplifikatör giriş aşamaya ulaşmak için yeterince uzun bir geleneksel kurşun bu döngü bağlayın (Şekil 4). </li><li> Bir Ag / AgCl de kongre kablosuna bağlı çapı 1-2 mm, pelet kullanılarak (hayvanın ağzına gidecek) negatif elektrot Construct (Şekil 4). </li><li> (Hayvanın kıç girecek) referans elektrot, aynı zamanda uygun uzunlukta bir kurşun bağlanmış temiz derialtı iğne (23 G) kullanmak gibi (Şekil 4). </li><li> İdeal olarak, (pozitif U üç elektrotları bağlamak için, cihaz üreticileri tarafından sağlanan üç kurşun kablolar kullanın94; Kornea, negatif → ağız, amplifikatör kıç → referans). </li></ol> Işık Stimulus ve ERG Set-up 2. Bağlantı ve Kalibrasyon <ol><li> Karanlık yapılabilir küçük bir kayıt laboratuvarı, oluşturun (veya bulmak). Kırmızı yapılan over-the-tezgah ışık veya kırmızı kafa lambasının ya da her ikisi ile donatın. </li><li> 1 lux geçmemesi kurulum sırasında sıçan göz ulaşan kırmızı ışık aydınlık onaylamak için bir lüks metre kullanın. Not: Bir nötral yoğunluk filtresi lamba parlaklığını azaltmak için kullanılabilir ve lamba ışık kaynağı, özellikle kırmızı ışık yayarlar gerekir. Işık kaynakları düşük (görünür) dalga boylarını yayan eğer karanlık adaptasyonu tehlikeye olacak. </li><li> (Bu genellikle şeffaf bant ile sebat gerektirir) kayıt laboratuvarı giren tüm sokak ışık kapatmak ve üzerinde sığacak kadar büyük ve o kadar loş bir nötral yoğunluk filtresi (bu yaprak satın alınabilir) hazırlamak, herhangi bir bilgisayar ekranı içinde olacak laboratuvar. Not: Kaçak ışık veBir ekranın ışık sıçan gözün karanlık adaptasyonu halel için yeterlidir. </li><li> Veri toplama donanımına amplifikatörü bağlayın. Amplifikatöre pozitif, negatif ve referans uçlarını bağlayın. Bilgisayar ve LED Ganzfeld güç kaynağı ünitesi güvenli bir zemin kaynağına bağlı olduğundan emin olun. Not: Bazı laboratuvarlar bina toprağa bağlı, topraklama noktaları uzman var; Bir su borusu etkili bir alternatiftir. </li><li> Bir araştırma kalitesinde Radyometresiz LED ışık kaynağı ayarlayın. Hayvanın gözü bir deney sırasında yer alacak hangi pozisyonda metrenin sensörünü sabitleyin. </li><li> Ganzfeld LED&#39;ler yanıp söner arasındaki flaş enerji, flaş süresi, flaş tekrarı ve zaman içinde adım adım artışlar tam saha ERG protokolünü çalıştırmak Program, interstimuls aralığı (ISI), ayarlar olarak adlandırılan. Bir örnek tam saha protokolü için bakınız Tablo 1. Not: ERG yanıp söner tekrarlayan loş yanıp söner yükselecek tam saha bBir adım akıllıca bir şekilde doğru yanıp söner. ikiz Flash program tam saha protokolü üzerinde izler ve çubuk ve koni yanıtları izolasyonunu sağlar. </li></ol> ERG Deney 3. Gün önce <ol><li> Karanlık kaydetmeden önce 12 saat Sprague-Dawley sıçanları adapte. Bu kaçak ışık ortadan edildikten sonra, kayıt laboratuvarda bunu yapmak uygundur. </li></ol> ERG Deney 4. Gün <ol><li> Hayvan kayıt sırasında hafifçe ısıtılır olabilmesi için düzenleyin. Biz hayvanın kafası Ganzfeld girişinde doğru noktada dinlenme böylece inşa hafif metal platformu kullanmak. platform, bir su banyosu içinde 40 ° C&#39;ye ısıtılmış su pompası içinden dahili boru vardır. Not: Deneyim bu 37 ° C&#39;de hayvanın çekirdek sıcaklığını korur olduğunu göstermektedir. </li><li> Karanlık koşullarda sıçan tartılır. Telaffuz ağırlığı ve doğru ketamin (60 mg / kg) ve ksilazin oluşturan (5 mg / kg) dozda. Sıçan gen dizginlemektly ve intraperitoneal anestezik enjekte. </li><li> Enjeksiyon zamanı not edin. Hayvan bilinçsiz sonra (genellikle 5 dakika içinde) hafifçe bir refleks yanıtı mevcut olup olmadığını görmek için, tek ayak pedi kısma anestezi derinliğini kontrol edin. Bu refleks geçmeden önce, yok ya da zayıf olana kadar beklemek en iyisidir. </li><li> Korneaya proxmethacaine tek atropin damla ve başka uygulayın. </li><li> Siyah iplik 10 cm uzunluğunda kesin. Basit bir düğüm ile bir döngü yapın ve göz ekvator üzerinde döngü kayma. Hafifçe sıkın; etkisi minimum basınç, hafif öne göz küresinin çekmektir. Bu göz kapaklarında net kornea tutar. </li><li> Uygula karbomer göz kornea yüzeyine düşer. Emin Karbomer kornea yüzeyinde kalır ve göz kapakları veya yüz dökülmemesine değildir. </li><li> Isıtmalı platformun üstüne emici yatak yerleştirin. </li><li> Ganzfeld açılışında önerilen yerde baş yatak üzerinde Pozisyonu sıçan. </li><li> Ekle intrektum içine ernal ısı probu. Kuyruk prob kablosunu bantlama pozisyon Güvenli ısı probu. </li><li> Subkutan arka bacak içine referans elektrodu (23 G iğne) yerleştirin ve amplifikatör bağlanın. </li><li> Güvenli ağızda negatif elektrot (Ag / AgCl pelet) yerleştirin. Bu ağız kaymasını önlemek için, sabit bir yüzeye bağlanarak kurşun yapıştırın. </li><li> Korneanın merkezi üzerinde pozitif elektrot yerleştirin. Bir mikromanipülatör kullanarak, elektrot hafifçe kornea dokunur emin olun. </li><li> 37.5 ° C - Kontrol vücut ısısı 37.0 yer almaktadır. </li><li> Hayvan düzgün yerleştirilmiş ve elektrotlar yerdesiniz sonra, opak malzeme ile tüm kurulum (Ganzfeld ve hayvan) asmak (karanlık adaptasyonu korumak için). Biz yumuşak siyah bir bez kullanın. </li><li> Ön toplama örnekleme 5 milisaniye ile 100-1000 msn koleksiyonu zaman 2 KHz örnekleme hızında ayarlanmış edinme yazılımında. 1-1,000 bant geçiren filtreler ayarlayınHz ve bu örnekleme sağlamak bir flaş aşağıdaki ~ 250 msn dönemini örnek tetiklenir. </li><li> Kayıt taban çizgisini kontrol edin. Bu gereksiz gürültü özgür olmak, ancak bazı amplifikatör gürültü ve solunum salınım göstermesi gerekir. </li><li> Bazal gereksiz gürültüyü gösteriyorsa, sorun giderme başlar. Çoğu problem elektrot pozisyonu veya topraklama kaymaya ilişkilidir. Kayıtlar gereksiz gürültü serbest olmasını sağlamak için bir Faraday kafesi kullanın. </li><li> Bir test flaş, 0.4 günlük scot cd.sm -2 çalıştırın. Benzer bir ERG dalga 2A görünmelidir Şekil. 0.4 günlük scot cd.sm -2 flaş laboratuvar tipik tepkiler (: -474 ± 39 mV ve b-dalgası: a-dalgası 1,512 ± 160 mV, n = 11) &#39;dir. </li><li> Karanlık hayvan 10 dakika süreyle yeniden adapte izin verin. Bu taban çizgisini yeniden kontrol etmek, bu 10 dakika kullanmak daha uygun olur. </li><li> Istikrarlı sinyal aşağıdaki onay kaydı başlar. </li><li> Kayıt oturumun sonunda, vücut temperat kontrolURE muhafaza edilmiştir. Elektrotları çıkarın. Kornealara karbomer polimer yeniden uygulayın. Hayvan konut dönmeden önce, tamamen mobil ve aktif olana kadar hayvan bir ısı pad üzerinde kurtarmak için izin verin. </li></ol> 5. Uzaktan İskemi <ol><li> Uyanık veya anesteziye kemirgenlerde ya uzaktan iskemi gerçekleştirin. </li><li> Hayvan anestezi ise, (yukarıda) ısıtılmış bir platform üzerine yattı ve diz net arka ekstremite, üst kısmı üzerinde tansiyon aleti Kolluğu kayma. </li><li> Hayvanlar işlenen için kullanılırsa, anestezi olmadan bu yordamı gerçekleştirmek mümkündür; Bu iki kişi gerekir. Bir kişi hafifçe hayvan kısıtlayan ve ikinci tansiyon aleti manşeti uygular ve sfingomanometre çalışır. </li><li> Uyanık hayvanlar için, yavaşça tek hindlimb ücretsiz, hayvan sarmak için havlu bir parça ~ 15 cm x 30-50 cm kullanın. Merkez sahibinin kol ve gövde, ve yeri arasında sıkışmış olan, sol önkol (diyelim ki) onun sırtında hayvan LayManşet tıpkı nitelendirdi. </li><li> Manşeti Deflate ve hava basınç valfi kapalı olduğundan emin olun. Narkoz hayvanlarda 160 mmHg manşeti Pompa ve uyanık hayvanlarda 180 mmHg. Bu sistolik basıncı (genellikle 140 mmHg ve 160 mmHg sırasıyla) aşıyor. </li><li> El pompası kullanılarak, gerektiğinde bu baskıları koruyun. </li><li> Iskemi için planlanan bir süre sonra (biz 5 dk reperfüzyon ile ayrılmış, 5 dakika 2 dönemleri kullanın), hava basınç valfi gevşeterek manşet basıncını Söndür. </li><li> Footpad bağlı bir cilt sıcaklık probu ile uzaktan iskemi etkisini onaylayın. Cilt sıcaklığı tipik olarak 5 dakika boyunca, 32-30 ° C&#39;ye düşer ve reperfüzyon kurtarır. </li></ol> 6. Işık Hasar <ol><li> Sıçanlar koyu adapte gecede, önce hafif hasar prosedüründe olduğundan emin olun. </li><li> (Gecikmeden bizim deneylerde) ekstremite iskemi aşağıdaki uygun zamanda, her bir hayvan, bir pleksiglas kutular, wi içine tek başına yerleştirilirzemin tabanlı kaplarda inci su ve gıda. Not: Işık kaynaklı hasar sadece albino hayvanlarda yapılabilir. </li><li> Standart bir süre (genellikle 09:00) bir önceden kalibre 1,000 lux beyaz ışık açın ve 24 saat süreyle bu durumu korumak. </li></ol> 7. ERG Veri çıkarımı ve Analizi <ol><li> ERG ortalama dalga formları edinin. Çıkarma ile sıfır olmayan bir taban için, gerekirse ayarlanır. </li><li> Başlangıç ​​ve birinci arasındaki gerilim farkı olarak, (yüksek uyaran yoğunluklarına orta ve sunulan) a dalgasının genlik ölçün (&lt;30 msn gecikme) oluk (Şekil 1). </li><li> Tipik 80-100 msn (Şekil 1) bir gecikme meydana gelen bir dalgasının tepe ve şu dalganın pozitif arasındaki gerilim farkı olarak b-dalgası genliği ölçün. </li><li> 90 Hz geçiş bandı ile, 60-235 Hz verileri süzmek için bir dönüşüm Fourier kullanarak osilatör potansiyelleri izole edin <sup&gt; 7. Gerekli izole salınımlı bir potansiyel sinyal daha sonra filtresiz dalga çıkarılır olabilir Bir dalga çukur kimliğini doğrulamak için. </li><li> a- ve b-dalgası zirveleri örtülü süresi (gecikme) da yararlı bir tedbir (Şekil 1) olabilir. Çubuk yanıtı izole etmek için ikiz yanıp kullanın. Karışık tepki (flaş 1) çubuk tepkisini izole etmek (Şekil 2) koni yanıt (flaş 2) çıkarın. </li><li> Bireysel ışık yoğunluğu bir dalga ve b-dalgası genlikleri (tedavi sonrası / post-tedavi-bazal) Normale veya tedavi grupları için ortalama. Yoğunluk-yanıt eğrileri flaş enerjiye karşı grup genlikleri ve hatayı arsa. </li></ol>

<ol>
	<li>Arden, G. B., Heckenlively, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Principles and practice of clinical electrophysiology of vision. , 139-183 (2006).</li><li>Bui, B. V., Fortune, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ganglion+cell+contributions+to+the+rat+full-field+electroretinogram.">Ganglion cell contributions to the rat full-field electroretinogram.</a> Journal of Physiology-London. 555 (1), 153-173 (2004).</li><li>Fortune, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+ganglion+cell+functional+loss+in+rats+with+experimental+glaucoma.">Selective ganglion cell functional loss in rats with experimental glaucoma.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 45 (6), 1854-1862 (2004).</li><li>Alarcon-Martinez, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Short+and+long+term+axotomy-induced+ERG+changes+in+albino+and+pigmented+rats.">Short and long term axotomy-induced ERG changes in albino and pigmented rats.</a> Molecular Vision. 15 (254-255), 2373-2383 (2009).</li><li>Lyubarsky, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functionally+rodless+mice:+transgenic+models+for+the+investigation+of+cone+function+in+retinal+disease+and+therapy.">Functionally rodless mice: transgenic models for the investigation of cone function in retinal disease and therapy.</a> Vision Research. 42 (4), 401-415 (2002).</li><li>Bush, R. A., Sieving, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> A PROXIMAL RETINAL COMPONENT IN THE PRIMATE PHOTOPIC ERG A-WAVE. Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 35 (2), 635-645 (1994).</li><li>Liu, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+the+electroretinographic+oscillatory+potentials+in+normal+and+ROP+rats.">Development of the electroretinographic oscillatory potentials in normal and ROP rats.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 47 (12), 5447-5452 (2006).</li><li>Casson, R. J., Wood, J. P. M., Melena, J., Chidlow, G., Osborne, N. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+ischemic+preconditioning+on+light-induced+photoreceptor+injury.">The effect of ischemic preconditioning on light-induced photoreceptor injury.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 44 (3), 1348-1354 (2003).</li><li>Lawson, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aerobic+Exercise+Protects+Retinal+Function+and+Structure+from+Light-Induced+Retinal+Degeneration.">Aerobic Exercise Protects Retinal Function and Structure from Light-Induced Retinal Degeneration.</a> Journal of Neuroscience. 34 (7), 2406-2412 (2014).</li><li>Grimm, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HIF-1-induced+erythropoietin+in+the+hypoxic+retina+protects+against+light-induced+retinal+degeneration.">HIF-1-induced erythropoietin in the hypoxic retina protects against light-induced retinal degeneration.</a> Nature Medicine. 8 (7), 718-724 (2002).</li><li>Weymouth, A. E., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rodent+electroretinography:+Methods+for+extraction+and+interpretation+of+rod+and+cone+responses.">Rodent electroretinography: Methods for extraction and interpretation of rod and cone responses.</a> Progress in Retinal and Eye Research. 27 (1), 1-44 (2008).</li><li>Bayer, A. U., Cook, P., Brodie, S. E., Maag, K. P., Mittag, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+different+recording+parameters+to+establish+a+standard+for+flash+electroretinography+in+rodents.">Evaluation of different recording parameters to establish a standard for flash electroretinography in rodents.</a> Vision Research. 41 (17), 2173-2185 (2001).</li><li>Pugh, E. N., Lamb, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=AMPLIFICATION+AND+KINETICS+OF+THE+ACTIVATION+STEPS+IN+PHOTOTRANSDUCTION.">AMPLIFICATION AND KINETICS OF THE ACTIVATION STEPS IN PHOTOTRANSDUCTION.</a> Biochimica Et Biophysica Acta. 1141 (2-3), 111-149 (1993).</li><li>Breton, M. E., Schueller, A. W., Lamb, T. D., Pugh, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ANALYSIS+OF+ERG+A-WAVE+AMPLIFICATION+AND+KINETICS+IN+TERMS+OF+THE+G-PROTEIN+CASCADE+OF+PHOTOTRANSDUCTION.">ANALYSIS OF ERG A-WAVE AMPLIFICATION AND KINETICS IN TERMS OF THE G-PROTEIN CASCADE OF PHOTOTRANSDUCTION.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 35 (1), 295-309 (1994).</li><li>Mizota, A., Adachi-Usami, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+body+temperature+on+electroretinogram+of+mice.">Effect of body temperature on electroretinogram of mice.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 43 (12), 3754-3757 (2002).</li><li>Szabo-Salfay, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+electroretinogram+and+visual+evoked+potential+of+freely+moving+rats.">The electroretinogram and visual evoked potential of freely moving rats.</a> Brain Research Bulletin. 56 (1), 7-14 (2001).</li><li>Charng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conscious+Wireless+Electroretinogram+and+Visual+Evoked+Potentials+in+Rats.">Conscious Wireless Electroretinogram and Visual Evoked Potentials in Rats.</a> Plos One. 8 (9), (2013).</li><li>Galambos, R., Juhasz, G., Kekesi, A. K., Nyitrai, G., Szilagyi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NATURAL+SLEEP+MODIFIES+THE+RAT+ELECTRORETINOGRAM.">NATURAL SLEEP MODIFIES THE RAT ELECTRORETINOGRAM.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (11), 5153-5157 (1994).</li><li>Galambos, R., Szabo-Salfay, O., Szatmar, E., Szilagyi, N., Juhasz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sleep+modifies+retinal+ganglion+cell+responses+in+the+normal+rat.">Sleep modifies retinal ganglion cell responses in the normal rat.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (4), 2083-2088 (2001).</li><li>Guarino, I., Loizzo, S., Lopez, L., Fadda, A., Loizzo, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+chronic+implant+to+record+electroretinogram,+visual+evoked+potentials+and+oscillatory+potentials+in+awake,+freely+moving+rats+for+pharmacological+studies.">A chronic implant to record electroretinogram, visual evoked potentials and oscillatory potentials in awake, freely moving rats for pharmacological studies.</a> Neural Plasticity. 11 (3-4), 241-250 (2004).</li><li>Huang, J. C., Salt, T. E., Voaden, M. J., Marshall, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NON-COMPETITIVE+NMDA-RECEPTOR+ANTAGONISTS+AND+ANOXIC+DEGENERATION+OF+THE+ERG+B-WAVE+IN-VITRO.">NON-COMPETITIVE NMDA-RECEPTOR ANTAGONISTS AND ANOXIC DEGENERATION OF THE ERG B-WAVE IN-VITRO.</a> Eye (London). 5 (4), 476-480 (1991).</li><li>Sasovetz, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> KETAMINE HYDROCHLORIDE - EFFECTIVE GENERAL ANESTHETIC FOR USE IN ELECTRORETINOGRAPHY. Annals of Ophthalmology. 10 (11), 1510-1514 (1978).</li><li>Mojumder, D. K., Wensel, T. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Topical+Mydriatics+Affect+Light-Evoked+Retinal+Responses+in+Anesthetized+Mice).">Topical Mydriatics Affect Light-Evoked Retinal Responses in Anesthetized Mice).</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 51 (1), 567-576 (2010).</li><li>Fraunfel, F. t., Burns, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ACUTE+REVERSIBLE+LENS+OPACITY+-+CAUSED+BY+DRUGS,+COLD,+ANOXIA,+ASPHYXIA,+STRESS,+DEATH+AND+DEHYDRATION.">ACUTE REVERSIBLE LENS OPACITY - CAUSED BY DRUGS, COLD, ANOXIA, ASPHYXIA, STRESS, DEATH AND DEHYDRATION.</a> Experimental Eye Research. 10 (1), 19 (1970).</li><li>Calderone, L., Grimes, P., Shalev, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ACUTE+REVERSIBLE+CATARACT+INDUCED+BY+XYLAZINE+AND+BY+KETAMINE-XYLAZINE+ANESTHESIA+IN+RATS+AND+MICE.">ACUTE REVERSIBLE CATARACT INDUCED BY XYLAZINE AND BY KETAMINE-XYLAZINE ANESTHESIA IN RATS AND MICE.</a> Experimental Eye Research. 42 (4), 331-337 (1986).</li><li>Behn, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dark+adaptation+is+faster+in+pigmented+than+albino+rats.">Dark adaptation is faster in pigmented than albino rats.</a> Documenta Ophthalmologica. 106 (2), 153-159 (2003).</li><li>Sugawara, T., Sieving, P. A., Bush, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+relationship+of+the+scotopic+and+photopic+ERG+to+photoreceptor+cell+loss+in+light+damaged+rats.">Quantitative relationship of the scotopic and photopic ERG to photoreceptor cell loss in light damaged rats.</a> Experimental Eye Research. 70 (5), 693-705 (2000).</li><li>Machida, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=P23H+rhodopsin+transgenic+rat:+Correlation+of+retinal+function+with+histopathology.">P23H rhodopsin transgenic rat: Correlation of retinal function with histopathology.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 41 (10), 3200-3209 (2000).</li><li>Brandli, A., Stone, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remote+Ischemia+Influences+the+Responsiveness+of+the+Retina.">Remote Ischemia Influences the Responsiveness of the Retina.</a> Observations in the Rat. Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 55 (4), 2088-2096 (2014).</li><li>Maccarone, R., Di Marco, S., Bisti, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Saffron+supplement+maintains+morphology+and+function+after+exposure+to+damaging+light+in+mammalian+retina.">Saffron supplement maintains morphology and function after exposure to damaging light in mammalian retina.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 49 (3), 1254-1261 (2008).</li><li>Hood, D. C., Birch, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+abnormal+rod+photoreceptor+activity+with+the+a-wave+of+the+electroretinogram:+Applications+and+methods.">Assessing abnormal rod photoreceptor activity with the a-wave of the electroretinogram: Applications and methods.</a> Documenta Ophthalmologica. 92 (4), 253-267 (1996).</li><li>Robson, J. G., Frishman, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+rod-driven+a-wave+of+the+dark-adapted+mammalian+electroretinogram.">The rod-driven a-wave of the dark-adapted mammalian electroretinogram.</a> Progress in Retinal and Eye Research. 39, 1-22 (2014).</li><li>Hood, D. C., Birch, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+COMPUTATIONAL+MODEL+OF+THE+AMPLITUDE+AND+IMPLICIT+TIME+OF+THE+B-WAVE+OF+THE+HUMAN+ERG.">A COMPUTATIONAL MODEL OF THE AMPLITUDE AND IMPLICIT TIME OF THE B-WAVE OF THE HUMAN ERG.</a> Visual Neuroscience. 8 (2), 107-126 (1992).</li><li>Wachtmeister, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oscillatory+potentials+in+the+retina:+what+do+they+reveal.">Oscillatory potentials in the retina: what do they reveal.</a> Progress in Retinal and Eye Research. 17 (4), 485-521 (1998).</li></ol>

Jonathan Stone CSCM Pty Ltd direktörü

Yukarıda tarif edilen koyu adapte flaş ERG yöntemi sıçanlarda retina fonksiyonlarını değerlendirmek için güvenilir bir yöntemdir. A-dalgası ve b-dalgası Hem hafif hasar azaltılmıştır. Uzaktan iskemik önkoşullama a-dalgası ve b dalga ışık hasar kaynaklı azalmalar hafifletilmiş. Retina fonksiyonunun Bu muhafaza uzak iskemik önkoşullama gibi hipoksi, iskemi ve egzersiz 8-10 gibi koruyucu önkoşullama diğer formları andıran, nöro kaynaklı olduğunu göstermektedir. Kayıt kurulumu...

ERG ışığa karşılık olarak retina tarafından oluşturulur ve gözün korneal yüzeyi kaydedilen bir elektrik potansiyeli. Kayıt koşulları dikkatle idare edildiğinde, ERG retina fonksiyonunu değerlendirmek için çeşitli şekillerde kullanılabilir. İşte biz &#39;flaş ERG&#39;, retina, bir Ganzfeld arka planda sunulan kısa, parlak flaş maruz kaldığında oluşan potansiyeli kaydetmek nasıl tarif. Ganzfeld homojen ışık dağıtır ve ışık flaş yaklaşık eşit bütün retina ulaşır. Retina kaydetmeden önce koyu adapte edilir ve hayvan kayıt için hazırlanmış gibi koyu adaptasyonu devam edilirse, ERG hem çubuk ve koni fotoreseptör tarafından oluşturulan aldı. koyu adapte flaş ERG iki şekilde analiz edilmiştir karakteristik dalga biçimi vardır. İlk olarak, ERG, dalga biçiminin, erken ve geç bileşenleri ayırt ve nöron sekansına ilişkilendirilmiştirretina al aktivasyonu. erken bileşen kısa gecikme negatif gidiş potansiyel bir dalga (Şekil 1). Bu olumlu bir gidiş potansiyeli takip ediyor, b- dalgası olarak adlandırılan. b- dalga yükselen aşaması ayrı bir bileşen (osilatör potansiyelleri veya OP) olarak kabul edilir salınımları göstermektedir. a-dalgası fotoreseptör tarafından oluşturulan olarak kabul edilir, amacrine hücreleri 1 ile iç nükleer tabaka hücreleri ve ops b-dalgası. Uyarıcı gücüne dayalı, çok loş flaşlar tepkiler skotopik eşik tepkisi mümkündür adlandırılan. skotopik sınır tepkisi, retinal bez hücrelerin 2-4 elde edilmesi anlaşılmalıdır. İkincisi, flaş ERG ışık adaptasyon ile ayrılabilir veya bir iki flaş protokolü tarafından çubuk ve koni odaklı bileşenleri içine, aşağıda anlatılan. Fotopik koşullar altında, koni nüfusu düşük olduğu için dalga, sıçanlarda değil saptanabilir, ancak Operasyonel ve b-dalgası5 açık. Kimin retinalar yüksek koni nüfusa sahip primatlar, olarak, çubuk ve koni yollar hem saptanabilir bir dalga 6 üretir. Genellikle flaş ERG çıkarılan iki yararlı önlemler fotoreseptör nüfusu zarar verici parlak maruz bırakılarak, örneğin azalır, Şekil 2&#39;de gösterilen tipik bir flaş yanıtları. Şekil 1 &#39;deki gibi ölçülür A ve B amplitüdü, Hangi Işık, ERG tüm bileşenleri azalır. Gibi uzak iskemik önkoşullama (RIP) olarak nöroprotektif müdahaleler, a- b-dalgaları (Şekil 3) genliklerinin korunması ile doğrulanabilir. Özetle, ERG analizi hasarlı sağlıklı, hafif ve neuroprotected retina arasındaki karşılaştırmalar sağlar.

<table><tbody><tr><td>PC computer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Powerlab, 4 channel acquistion hardware</td><td>AD Instruments</td><td>PL 35044</td><td>Acquistion of ERG</td></tr><tr><td>Animal Bio Amp</td><td>AD Instruments</td><td>FE 136</td><td>Amplifier for ERG</td></tr><tr><td>Lab chart</td><td>AD Instruments</td><td></td><td>Signal collection software</td></tr><tr><td>Ganzfield</td><td>Photometric solutions</td><td>FS-250A</td><td>Light stimulus</td></tr><tr><td>Ganzfield operating system</td><td>Photometric solutions</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Research Radiometer</td><td>International light technologies</td><td>ILT-1700</td><td>calibrate light series</td></tr><tr><td>Lux meter</td><td></td><td>LX-1010B</td><td>check red light illumanation</td></tr><tr><td>Excel</td><td>Microsoft</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lead wires</td><td>AD Instruments</td><td></td><td>Connect postive, negative ground electrodes to amplifier</td></tr><tr><td>Lead wires - alligator</td><td>AD Instruments</td><td></td><td>ground ganzfield and acquistion hardware to computer</td></tr><tr><td>Platinum wire 95%</td><td>A&amp;amp;E metals</td><td></td><td>postive electrode</td></tr><tr><td>Mouth electrode Ag/AgCl Pellet</td><td>SDR</td><td>E205</td><td>negative electode</td></tr><tr><td>26 G needle</td><td>BD</td><td></td><td>ground electode</td></tr><tr><td>Water pump</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Water bath</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubing</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Homeothermic blanket system with flexible probe</td><td>Harvard Appartus</td><td>507222F</td><td></td></tr><tr><td>Atropine 1% w/v</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td></td><td>topical mydriasis</td></tr><tr><td>Proxmethycaine 0.5% w/v</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td></td><td>topical anaesthetic</td></tr><tr><td>Visco tears eye drops</td><td>Novartis</td><td></td><td>carbomer polymer</td></tr><tr><td>Thread</td><td></td><td></td><td>retract eye lid</td></tr><tr><td>Tweezers</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Reusable adhesive</td><td>Blu tac</td><td></td><td>Dim red headlamp. Affix electrodes</td></tr><tr><td>Absorbent bedding</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ketamil - ketamine 100 mg/ml - 50 ml</td><td>Troy Laboratories Pty Ltd</td><td></td><td>dissociative</td></tr><tr><td>Xylium - Xylazine 100 mg/ml - 50 ml</td><td>Troy Laboratories Pty Ltd</td><td></td><td>muscle relaxant</td></tr><tr><td>Scale</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

using the electroretinogram to assess function in the rodent retina and the protective effects of remote limb ischemic preconditioning

The ERG is the sum of all retinal activity. The ERG is usually recorded from the cornea, which acts as an antenna that collects and sums signals from the retina. The ERG is a sensitive measure of changes in retinal function that are pan-retinal, but is less effective for detecting damage confined to a small area of retina. In the present work we describe how to record the &#8216;flash&#8217; ERG, which is the potential generated when the retina is exposed to a brief light flash. We describe methods of anaesthesia, mydriasis and corneal management during recording; how to keep the retina dark adapted; electrode materials and placement; the range and calibration of stimulus energy; recording parameters and the extraction of data. We also describe a method of inducing ischemia in one limb, and how to use the ERG to assess the effects of this remote-from-the-retina ischemia on retinal function after light damage. A two-flash protocol is described which allows isolation of the cone-driven component of the dark-adapted ERG, and thereby the separation of the rod and cone components. Because it can be recorded with techniques that are minimally invasive, the ERG has been widely used in studies of the physiology, pharmacology and toxicology of the retina. We describe one example of this usefulness, in which the ERG is used to assess the function of the light-damaged retina, with and without a neuroprotective intervention; preconditioning by remote ischemia.

protokolü, in vivo olarak, kemirgen retina görme fonksiyonu ölçmek için kullanılabilir. a-dalgası, fotoreseptör fonksiyonunun bir ölçüsü, ve b-dalgası, iç retina fonksiyonun bir ölçümü olan, Şekil 1 &#39;de açıklanmış bulunmaktadır. Şekil 2A gösterildiği gibi artan ışık uyaran ile çubuk hakim ERG sinyal artar. a-dalgası 0.4 günlük scot cd.sm -2 ve 2.5 log Scot cd.sm de doyuma kadar a-dalgası artar genlik...

Watch this Scientific Journal Video about Using the Electroretinogram to Assess Function in the Rodent Retina and the Protective Effects of Remote Limb Ischemic Preconditioning at JoVE.com

Using the Electroretinogram to Assess Function in the Rodent Retina and the Protective Effects of Remote Limb Ischemic Preconditioning

The electroretinogram (ERG) is an electrical potential generated by the retina in response to light. This paper describes how to use the ERG to assess retinal function, in dark-adapted rats, and how it can be can be used to assess a neuroprotective intervention, in the present case remote ischemic preconditioning.

Kemirgen Retina ve Uzaktan Ekstremite İskemik Önkoşullamanın Koruyucu Etkileri Fonksiyonu Değerlendirmek Üzere elektroretinogram kullanma

The ERG is the sum of all retinal activity. The ERG is usually recorded from the cornea, which acts as an antenna that collects and sums signals from the ...

using-electroretinogram-to-assess-function-rodent-retina-protective

Research

JoVE Journal

Neuroscience

16.1K Görüntüleme.  University of Sydney. The electroretinogram (ERG) is an electrical potential generated by the retina in response to light. This paper describes how to use the ERG to assess retinal function, in dark-adapted rats, and how it can be can be used to assess a neuroprotective intervention, in the present case remote ischemic preconditioning.

Video: Using the Electroretinogram to Assess Function in the Rodent Retina and the Protective Effects of Remote Limb Ischemic Preconditioning

Implantation and Recording of Wireless Electroretinogram and Visual Evoked Potential in Conscious Rats

The full-field electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are useful tools to assess retinal and visual pathway integrity in both laboratory and clinical settings. Currently, preclinical ERG and VEP measurements are performed with anesthesia to ensure stable electrode placements. However, the very presence of anesthesia has been shown to contaminate normal physiological responses. To overcome these anesthesia confounds, we develop a novel platform to assay ERG and VEP in conscious rats. Electrodes are surgically implanted sub-conjunctivally on the eye to assay the ERG and epidurally over the visual cortex to measure the VEP. A range of amplitude and sensitivity/timing parameters are assayed for both the ERG and VEP at increasing luminous energies. The ERG and VEP signals are shown to be stable and repeatable for at least 4 weeks post surgical implantation. This ability to record ERG and VEP signals without anesthesia confounds in the preclinical setting should provide superior translation to clinical data.

We show surgical implantation and Recording procedures to measure visual electrophysiological signals from the eye (electroretinogram) and brain (visual evoked potential) in conscious rats, which is more analogous to the human condition where recordings are conducted without anesthesia confounds.

Bilinçli Sıçanlarda implantasyon ve Kablosuz Elektroretinogram Recording ve Görsel Uyarılmış Potansiyel

The full-field electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are useful tools to assess retinal and visual pathway integrity in both ...

Davranış

Direct-Coupled Electroretinogram (DC-ERG) for Recording the Light-Evoked Electrical Responses of the Mouse Retinal Pigment Epithelium

The retinal pigment epithelium (RPE) is a specialized monolayer of cells strategically located between the retina and the choriocapillaris that maintain the overall health and structural integrity of the photoreceptors. The RPE is polarized, exhibiting apically and basally located receptors or channels, and performs vectoral transport of water, ions, metabolites, and secretes several cytokines.
In vivo noninvasive measurements of RPE function can be made using direct-coupled ERGs (DC-ERGs). The methodology behind the DC-ERG was pioneered by Marmorstein, Peachey, and colleagues using a custom-built stimulation recording system and later demonstrated using a commercially available system. The DC-ERG technique uses glass capillaries filled with Hank&#8217;s buffered salt solution (HBSS) to measure the slower electrical responses of the RPE elicited from light-evoked concentration changes in the subretinal space due to photoreceptor activity. The prolonged light stimulus and length of the DC-ERG recording make it vulnerable to drift and noise resulting in a low yield of useable recordings. Here, we present a fast, reliable method for improving the stability of the recordings while reducing noise by using vacuum pressure to reduce/eliminate bubbles that result from outgassing of the HBSS and electrode holder. Additionally, power line artifacts are attenuated using a voltage regulator/power conditioner. We include the necessary light stimulation protocols for a commercially available ERG system as well as scripts for analysis of the DC-ERG components: c-wave, fast oscillation, light peak, and off response. Due to the improved ease of recordings and rapid analysis workflow, this simplified protocol is particularly useful in measuring age-related changes in RPE function, disease progression, and in the assessment of pharmacological intervention.

Direct-Coupled Electroretinogram DC-ERG for Recording the Light-Evoked Electrical Responses of the Mouse Retinal Pigment Epithelium

Here, we present a method for recording light-evoked electrical responses of the retinal pigment epithelium (RPE) in mice using a technique known as DC-ERGs first described by Marmorstein, Peachey, and colleagues in the early 2000s.

Mouse Retinal Pigment Epitelinin Işık Uyarılmış Elektriksel Tepkilerini Kaydetmek için Doğrudan Birleştirilmiş Elektroretinogram (DC-ERG)

The retinal pigment epithelium (RPE) is a specialized monolayer of cells strategically located between the retina and the choriocapillaris that maintain ...

Kimya

Remote Limb Ischemic Preconditioning:  A Neuroprotective Technique in Rodents

Sublethal ischemia protects tissues against subsequent, more severe ischemia through the upregulation of endogenous mechanisms in the affected tissue. Sublethal ischemia has also been shown to upregulate protective mechanisms in remote tissues. A brief period of ischemia (5-10 min) in the hind limb of mammals induces self-protective responses in the brain, lung, heart and retina. The effect is known as remote ischemic preconditioning (RIP). It is a therapeutically promising way of protecting vital organs, and is already under clinical trials for heart and brain injuries. This publication demonstrates a controlled, minimally invasive method of making a limb &#8211; specifically the hind limb of a rat &#8211; ischemic. A blood pressure cuff developed for use in human neonates is connected to a manual sphygmomanometer and used to apply 160 mmHg pressure around the upper part of the hind limb. A probe designed to detect skin temperature is used to verify the ischemia, by recording the drop in skin temperature caused by pressure-induced occlusion of the leg arteries, and the rise in temperature which follows release of the cuff. This method of RIP affords protection to the rat retina against bright light-induced damage and degeneration.

Remote ischemic preconditioning (RIP) is a method of conditioning tissues against damaging stress. We have established a method of remote ischemia at the hind limb, by inflating a sphygmomanometer cuff for 5-10 min. The neuroprotective capabilities of RIP have been demonstrated in a model of retinal degeneration in rodents.

Uzaktan Ekstremite İskemik Önkoşullanma: Kemirgenler Bir Nöroprotektiftir Tekniği

Sublethal ischemia protects tissues against subsequent, more severe ischemia through the upregulation of endogenous mechanisms in the affected tissue. ...

Tıp

Glutamate and Hypoxia as a Stress Model for the Isolated Perfused Vertebrate Retina

Neuroprotection has been a strong field of investigation in ophthalmological research in the past decades and affects diseases such as glaucoma, retinal vascular occlusion, retinal detachment, and diabetic retinopathy. It was the object of this study to introduce a standardized stress model for future preclinical therapeutic testing.
Bovine retinas were prepared and perfused with an oxygen saturated standard solution, and the ERG was recorded. After recording stable b-waves, hypoxia (pure N2) or glutamate stress (250 &#181;m glutamate) was exerted for 45 min. To investigate the effects on photoreceptor function alone, 1 mM aspartate was added to obtain a-waves. ERG-recovery was monitored for 75 min.
For hypoxia, a decrease in a-wave amplitude of 87.0% was noted (p &#60;0.01) after an exposition time of 45 min (decrease of 36.5% after the end of the washout p = 0.03). Additionally, an initial decrease in b-wave amplitudes of 87.23% was recorded, that reached statistical significance (p &#60;0.01, decrease of 25.5% at the end of the washout, p = 0.03).
For 250 &#181;m glutamate, an initial 7.8% reduction of a-wave amplitudes (p &#62;0.05) followed by a reduction of 1.9% (p &#62;0.05). A reduction of 83.7% of b-wave amplitudes (p &#60;0.01) was noted; after a washout of 75 min the reduction was 2.3% (p = 0.62). In this study, a standardized stress model is presented that may be useful to identify possible neuroprotective effects in the future.

With this study, we introduce a standardized stress model for the isolated superfused bovine retina for future preclinical therapeutic testing. The effect of either hypoxia (pure N2) or glutamate stress (250 &#181;M glutamate) on retinal function represented by a- and b-wave amplitudes was evaluated.

İzole Perfüze Omurgalı Retina için bir Stres Modeli olarak Glutamat ve hipoksi

Neuroprotection has been a strong field of investigation in ophthalmological research in the past decades and affects diseases such as glaucoma, retinal ...

Simultaneous Recording of Electroretinography and Visual Evoked Potentials in Anesthetized Rats

The electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are commonly used to assess the integrity of the visual pathway. The ERG measures the electrical responses of the retina to light stimulation, while the VEP measures the corresponding functional integrity of the visual pathways from the retina to the primary visual cortex following the same light event. The ERG waveform can be broken down into components that reflect responses from different retinal neuronal and glial cell classes. The early components of the VEP waveform represent the integrity of the optic nerve and higher cortical centers. These recordings can be conducted in isolation or together, depending on the application. The methodology described in this paper allows simultaneous assessment of retinal and cortical visual evoked electrophysiology from both eyes and both hemispheres. This is a useful way to more comprehensively assess retinal function and the upstream effects that changes in retinal function can have on visual evoked cortical function.

This protocol describes simultaneous measurement of electroretinogram and visual evoked potentials in anesthetized rats.

Elektroretinografi Eşzamanlı Kayıt ve Anestezi Sıçanlar Görsel Uyarılmış Potansiyeller

The electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are commonly used to assess the integrity of the visual pathway. The ERG measures the ...

Nörobilim

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, diabetic retinopathy, and retinal vascular occlusions. Rodent models of I/R injury are providing significant insights into mechanisms and treatment strategies for human I/R injury, especially with regard to neurodegenerative damage in the retinal neurovascular unit. Presented here is a protocol for inducing retinal I/R injury in mice through elevation of intraocular pressure (IOP). In this protocol, the ocular anterior chamber is cannulated with a needle, through which flows the drip of an elevated saline reservoir. Using this drip to raise IOP above systolic arterial blood pressure, a practitioner temporarily halts inner retinal blood flow (ischemia). When circulation is reinstated (reperfusion) by removal of the cannula, severe cellular damage ensues, resulting ultimately in retinal neurodegeneration. Recent studies demonstrate inflammation, vascular permeability, and capillary degeneration as additional elements of this model. Compared to alternative retinal I/R methodologies, such as retinal arterial ligation, retinal I/R injury by elevated IOP offers advantages in its&#160;anatomical specificity, experimental tractability, and technical accessibility, presenting itself as a valuable tool for examining neuronal pathogenesis and therapy in the retinal neurovascular unit.

This article describes a procedure for inducing retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure in mice. Retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure serves to model human pathologies characterized by compromised oxygen and nutrient delivery in the retina, enabling researchers to examine potential cellular mechanisms and treatments for human diseases of the retinal neurovascular unit.

Göz İçi Basıncı Yükselmesi ile Retina İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

Optimizing the Setup and Conditions for Ex Vivo Electroretinogram to Study Retina Function in Small and Large Eyes

Measurements of retinal neuronal light responses are critical to investigating the physiology of the healthy retina, determining pathological changes in retinal diseases, and testing therapeutic interventions. The ex vivo electroretinogram (ERG) allows the quantification of contributions from individual cell types in the isolated retina by addition of specific pharmacological agents and evaluation of tissue-intrinsic changes independently of systemic influences. Retinal light responses can be measured using a specialized ex vivo ERG specimen holder and recording setup, modified from existing patch clamp or microelectrode array equipment. Particularly, the study of ON-bipolar cells, but also of photoreceptors, has been hampered by the slow but progressive decline of light responses in the ex vivo ERG over time. Increased perfusion speed and adjustment of the perfusate temperature improve ex vivo retinal function and maximize response amplitude and stability. The ex vivo ERG uniquely allows the study of individual retinal neuronal cell types. In addition, improvements to maximize response amplitudes and stability allow the investigation of light responses in retina samples from large animals, as well as human donor eyes, making the ex vivo ERG a valuable addition to the repertoire of techniques used to investigate retinal function.

Optimizing the Setup and Conditions for Ex Vivo Electroretinogram to Study Retina Function in Small and Large Eyes

Modification of existing multielectrode array or patch clamp equipment makes the ex vivo electroretinogram more widely accessible. Improved methods to record and maintain ex vivo light responses facilitate the study of photoreceptor and ON-bipolar cell function in the healthy retina, animal models of eye diseases, and human donor retinas.

Ex Vivo Elektroretinogramın Küçük ve Büyük Gözlerde Retina Fonksiyonunu İncelemesi için Kurulum ve Koşulların Optimize Edilmesi

Measurements of retinal neuronal light responses are critical to investigating the physiology of the healthy retina, determining pathological changes in ...

A Murine Model of Ischemic Retinal Injury Induced by Transient Bilateral Common Carotid Artery Occlusion

Diverse vascular diseases such as diabetic retinopathy, occlusion of retinal veins or arteries and ocular ischemic syndrome can lead to retinal ischemia. To investigate pathological mechanisms of retinal ischemia, relevant experimental models need to be developed. Anatomically, a main retinal blood supplying vessel is the ophthalmic artery (OpA) and OpA originates from the internal carotid artery of the common carotid artery (CCA). Thus, disruption of CCA could effectively cause retinal ischemia. Here, we established a mouse model of retinal ischemia by transient bilateral common carotid artery occlusion (tBCCAO) to tie the right CCA with 6-0 silk sutures and to occlude the left CCA transiently for 2 seconds via a clamp, and showed that tBCCAO could induce acute retinal ischemia leading to retinal dysfunction. The current method reduces reliance on surgical instruments by only using surgical needles and a clamp, shortens occlusion time to minimize unexpected animal death, which is often seen in mouse models of middle cerebral artery occlusion, and maintains reproducibility of common retinal ischemic findings. The model can be utilized to investigate the pathophysiology of ischemic retinopathies in mice and further can be used for in vivo drug screening.

Here, we describe a mouse model of retinal ischemia by transient bilateral common carotid artery occlusion using simple sutures and a clamp. This model can be useful for understanding the pathological mechanisms of retinal ischemia caused by cardiovascular abnormalities.

Geçici Bilateral Ortak Karotid Arter Tıkanması sonucu İndüklenen İskemik Retina Yaralanmasının Murine Modeli

Diverse vascular diseases such as diabetic retinopathy, occlusion of retinal veins or arteries and ocular ischemic syndrome can lead to retinal ischemia. ...

<meta charset="utf8"></head><body>Retina Patolojilerini İncelemek için Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarı için Fare Modeli

Induction of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury in a Mouse Eye Model

Ischemia-reperfusion injuries are known to cause a range of retinal pathologies, including diabetic retinopathy, glaucoma, retinal vascular occlusions, and other vaso-occlusive conditions. This manuscript presents a method for inducing ischemia-reperfusion injury in a mouse model. The method utilized anterior chamber cannulation attached to a saline reservoir, generating hydrostatic pressure to raise the intraocular pressure to 90-100 mmHg. This method effectively caused constriction of retinal capillaries to induce retinal ischemia. At the end of the ischemic period (60 min), the intraocular pressure was normalized (&#8804;20 mmHg) before removing the cannula from the anterior chamber to initiate reperfusion. Days after the ischemia/reperfusion procedure, the eyes were collected and sectioned for histological staining. The histopathology of the retinal sections was scored by evaluating eight parameters of retinal injury: folds, hemorrhage, deformation, cell loss in the ganglion cell, inner nuclear, outer nuclear, and photoreceptor layers, and damage to retinal pigment epithelial cells. This method provided a reproducible model to study the mechanisms and pathology of retinal ischemia/reperfusion injury. In addition, this model can facilitate the discovery of potential therapeutic targets to treat retinal ischemia/reperfusion injury, advancing the study of retinal pathologies and improving patient outcomes.

<meta charset="utf8"></head><body>Bir Fare Gözü Modelinde Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu

This protocol models retinal ischemia-reperfusion injury in a mouse eye by inducing retinal ischemia via anterior chamber cannulation and intraocular pressure elevation, followed by intraocular pressure normalization to initiate the reperfusion.

Bir Fare Gözü Modelinde Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu

Ischemia-reperfusion injuries are known to cause a range of retinal pathologies, including diabetic retinopathy, glaucoma, retinal vascular occlusions, ...

Kemirgen Retina ve Uzaktan Ekstremite İskemik Önkoşullamanın Koruyucu Etkileri Fonksiyonu Değerlendirmek Üzere elektroretinogram kullanma

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Bilinçli Sıçanlarda implantasyon ve Kablosuz Elektroretinogram Recording ve Görsel Uyarılmış Potansiyel

Mouse Retinal Pigment Epitelinin Işık Uyarılmış Elektriksel Tepkilerini Kaydetmek için Doğrudan Birleştirilmiş Elektroretinogram (DC-ERG)

Uzaktan Ekstremite İskemik Önkoşullanma: Kemirgenler Bir Nöroprotektiftir Tekniği

İzole Perfüze Omurgalı Retina için bir Stres Modeli olarak Glutamat ve hipoksi

Elektroretinografi Eşzamanlı Kayıt ve Anestezi Sıçanlar Görsel Uyarılmış Potansiyeller

Göz İçi Basıncı Yükselmesi ile Retina İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Ex Vivo Elektroretinogramın Küçük ve Büyük Gözlerde Retina Fonksiyonunu İncelemesi için Kurulum ve Koşulların Optimize Edilmesi

Geçici Bilateral Ortak Karotid Arter Tıkanması sonucu İndüklenen İskemik Retina Yaralanmasının Murine Modeli

Bir Fare Gözü Modelinde Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu

Bir Fare Gözü Modelinde Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu