The authors thank Grant Calder for technical assistance with the microscope, Matt Bush for comments on the protocol, and the John Innes Centre for purchase of the Zeiss widefield microscope. This work was funded by BBSRC grant BB/I002197/1 (to M.J.B), by BBSRC Institute Strategic Programme Grant BB/J004561/1 to the John Innes Centre, by Swedish Research Council grant 621-2010-4463 (to K.F.), and by a Leopoldina Postdoctoral Fellowship (to S.S.).

Taze S. 1. İzolasyonu venezuelae Sporlar ve kültür aracı maddesinin hazırlanması <ol><li> DivIVA mCherry P ftsZ - gerilme SV60 yanda sayılan [attB φ BT1 :: pSS209 (P divIVA 10 ul sporlarla, 60 ul R2 eser element solüsyonu (TE) ile desteklenmiş 30 ml maltoz-Maya Özü-Malt Extract aşılamak (MYM) orta, -ftsZ-ypet)]. istikrarlı büyüme ve hücre sporülasyonun için bir şaşkın şişeyi ya da yeterli havalandırma sağlamak için bir bahar içeren bir şişesi kullanın. </li><li> 30 ° C&#39;de 35-40 saat ve 250 rpm&#39;de Kültür hücreleri. </li><li> Sıvı monte faz-kontrast mikroskobu ile hücrelerin inceleyin. Bu noktada misel parçaları ve sporlar görünür olacaktır. </li><li> Santrifüj 1 dakika boyunca 400 x g&#39;de bir masa üstü santrifüjü içinde 1 ml hücre misel ve büyük hücre fragmanları pelet. </li><li> Yaklaşık 300 ul süpernatant co aktarınyeni bir 1.5 ml&#39;lik tübe bir spor süspansiyonunun ntaining ve buz üzerinde tutun. Aşama 1.7 kalan kültür ortamı tutun. </li><li> Sporlar MYM-TE içinde 1:20 seyreltilir (nihai konsantrasyon: 0.5-5 x 10 7 spor / ml) ve gerektiği kadar buz üzerinde tutulur (adım 2.3). Not: Streptomyces içinde sporlanmasını tetikleyen tam koşullar, bir sporlanan kültürden herhangi bir bilinmeyen hücre dışı sinyaller dahil olmak üzere, harcanan MYM-TE ortamı kullanılarak, anlaşılmamış olmakla birlikte, sporulasyonunu uyarır. </li><li> sporlar ve miselial parçalar içermez MYM-TE harcanan olarak ulaşmak için kalan kültür ortamında 10 ml filtre sterilize. steril 0.22 mikron şırınga filtresi kullanın ve transfer steril 15 ml tüp MYM-TE geçirdi. </li><li> Benzer büyüme koşulları kullanılarak ek deneyler yapılacak ise 4 ° C&#39;de birkaç gün için hazırlanan harcanan MYM-TE tutun. </li></ol> Mikroakışkan Aygıt 2. Hazırlık Not: Her mikroakışkan plaTe gerçekleştirilebilir dört bağımsız deneyde kadar sağlar. bir deney kurarken kullanılmayan akış odaları kirlenmesini önlemek için, steril çözümler ve çalışma koşullarını kullanın. <ol><li> mikroakışkan plakadan nakliye çözüm çıkarın ve steril MYM-TE ile kuyu durulayın. </li><li> 300 ul MYM-TE 6 kuyular 2 iyi 1 ve 300 ul geçirdi MYM-TE girişine ekle. </li><li> Yük 40 ul şerit &quot;A&quot; hücre yükleme oyuk 8 adım 1.6 sporların seyreltildi ve uygun plaka manifold üretici talimatlarına mühür. </li><li> , Mikroakiskan kontrol yazılımı başlatmak uygun plaka türünü seçin ve oyuk başına 2 dakika süreyle 6 psi 5&#39;e giriş kuyulardan akan ortamı tarafından 1 asal akış kanalı ve kültür odasına bir akış programı kurmak. </li><li> Çimlenme ve hücrelerin vejetatif büyüme sağlamak için 6 saat süreyle giriş kuyusundan 1 MYM-TE akan: Mikroakiskan kontrol yazılımı olarak, deney için bir akış protokolü oluşturmak. anahtarDaha sonra deney kalan süre için de 2 ila 5 harcanan MYM-TE perfüzyon için. Deney sırasında (yaklaşık 9 ul ortam / saat karşılık gelir) 6 psi akış basıncı sabit tutmak. Adım 3.5 sonra akış programını başlatın. </li></ol> Mikroskop ve Time-lapse Protokolün 3. Kurma Not: Bu yöntem, bir sCMOS kamera, bir metal-halojen lamba, bir donanım otofokus, 96 oyuklu plakalar için bir sahne tutucu ve bir çevre bölmesi ile donatılmış bir tam motorlu ve otomatik ters Geniş açılı, mikroskop uygulanmıştır. <ol><li> deney başladıktan sonra otofokus sorunları önlemek amacıyla önceden 30 ° C çevre odasının ön ısıtmak. gerekli süre kullanılan çevre odasında, mikroskop ve ısıtma sistemine bağlıdır. deneyden önce sistem gece ısınmaya başlar. </li><li> mikroskop ve mikroskop otomasyon ve kontrol softwa açınyeniden. Böyle bir 100X, 1.46 NA yağı DIC hedef olarak optimal sinyal toplama ve uzaysal çözünürlüğü, yüksek bir sayısal açıklık (NA) immersiyon yağı hedefi kullanın. Sarı-floresan ve kırmızı floresan proteini füzyonlarının diferansiyel girişim kontrast (DIC) görüntüleri ve görüntüleri elde etmek için uygun filtre ve iki renkli aynalar seçin. </li><li> amaç üzerine daldırma petrol bir damla koyun ve görüntü alımı sırasında hücre odağı artırmak için mikroakışkan plaka üzerinde görüntüleme penceresinin altına daldırma sıvısı ekleyin. Dikkatle ters mikroskop sahneye mühürlü mikroakışkan cihaz (adım 2.5) monte edin. plaka güvenli sahne tutucu yerleştirilir ve deney boyunca kayma olmadığından emin olun. </li><li> yönlendirme için gömülü pozisyon işaretlerini kullanarak odak haline mikroakışkan kültür odasının görüntüleme penceresini getirin. ilk akış odasının soldaki kısmına odaklanın karşılık, tuzak büyüklüğü 5 ile ( &quot;A&quot; etiketli)0.7 mikron bir tuzak yüksekliği. </li><li> Mikroakiskan yazılımında, giriş kuyudan 8 den yük hücreleri 15 saniye boyunca 4 psi. görüntüleme penceresi boyunca sahne hareket ettirerek kültür odasında hücre yoğunluğu kontrol edin. Hiçbir sporların sıkışıp olsaydı, hücre yükleme adımı tekrarlayın veya alternatif istenilen hücre yoğunluğu (2.048 x 2.048 piksel görüntüleme penceresi başına 1-10 sporları) elde edilene kadar yükleme basıncı ve / veya süresini artırın. kültür odasını aşırı yüklemekten kaçının. Biz normalde Streptomyces görüntüleme için tuzak boyutu 5 kullanın, ama biz de 4 ve 3 hücreli yükleme işlemini optimize etmek konusunda ek öneriler için tedarikçinin kılavuzuna başvurun boyutları tuzağı ile iyi sonuçlar elde edilmiştir: Not. </li><li> Adım 2.5 kontrol yazılımı akış programını başlatın ve mikroakışkan plaka görüntü toplama başlamadan önce mikroskop aşamasında 1 saat ısı-gelmesini sağlayınız. </li><li> mikroskop kontrol yazılımı, mu almak için çok boyutlu bir satın kurmakzamanla çok kademeli pozisyonlarda ltiple görüntüleri: <ol><li> Autosave için: resim dosyalarının otomatik tasarrufu için dizini belirtin. </li><li> Aydınlatma ayarları için, önceden her özel yapı için en uygun aydınlatma ayarlarını belirlemek. DIC 150 msn, YFP 250 msn, RFP 100 msn: özetlenen deney için aşağıdaki pozlama süreleri kullanın. </li><li> Zaman serisi için: sırayla istenilen zaman noktalarında görüntüler elde etmek için bir zaman serisi kurdu. S. yaşam döngüsünü görüntülenmesi için venezuelae, 24 saatlik bir süre boyunca 40 dakikalık bir zaman aralığını seçin. </li><li> Sahne pozisyonları ve otomatik odaklama için: ilgi her görüntüleme konumu için sahne ve mağaza sahne pozisyonları hareket ettirerek kültür odasına tarayın. tek kademeli pozisyonları yeterince ayrı photobleaching ve phototoxicity.Typically 12 pozisyonları kadar kullanabilirsiniz aza indirmek için yer olduğundan emin olun. Her zaman noktası için çalıştırın otomatik odaklama rutin yavaş odak kayması düzeltmek için. Eğer mikroskop kontrol yazılımı mevcut&quot;Donanım otofokus yerel yüzey güncelleme&quot; olarak ayarlayın otofokus stratejisi. Seçilen sahne pozisyonların Z koordinatları doğrulandıktan sonra, donanım otofokus etkinleştirin. </li></ol></li><li> mikroskop kontrol yazılımı time-lapse deney başlatın. </li><li> Tüm sahne pozisyonları daha sonraki noktalarda odak hala olup olmadığını kontrol edin. otofokus kullanırken birkaç saat içinde çalışan time-lapse deneyler için, zaman zaman hatta bir sahne sürüklenme gözlemlemek. sahne pozisyonları odakladı gerekiyorsa, uygun bir zaman noktasında denemeyi durdurmak Odağı ayarlamak ve tanımlı görüntüleme zaman aralığının (adım 3.7.3) içinde denemeyi yeniden başlatın. Zaman serisi bağlamak için nasıl adım 4.3&#39;e bakın. </li><li> 24-30 saat sonra görüntü elde etme durdurmak veya ilgi bölgedeki hif sporları içine farklılaşmış zaman (DIC görüntü serisi bakınız). Yazılımın akış programı durdurmak ve mikroakışkan cihaz demonte. </li><li> Kısa vadeli sto için kullanılan mikroakışkan tabak hazırlayınöfke. MYM-TE kalan çıkarın ve 6 kuyusundan 1 MYM-TE geçirdi boş atık kuyu 7 ve steril koşullar altında hücre yükleme kuyu 8. yeniden dolum için şeritli &quot;A&quot; kuyu ve kullanılmayan hatlarının kuyular ( &quot;B&quot; kullanılmıştır steril fosfat tamponlu salin ile plaka üzerinde, &quot;D&quot;), (PBS). 4 ° C&#39;de ve mağaza kurumasını önlemek için parafilm plaka mühür. </li></ol> Fiji Yazılım Kullanma Time-lapse Filmler 4. Nesil Not: farklı ticari ve özgür yazılım paketleri ZenBlue, Metamorph, Icy, ImagePro veya ImageJ dahil time-lapse mikroskopi görüntüleri işlemek için kullanılabilir olduğunu unutmayın. Burada bir açık kaynak görüntü işleme ImageJ dayalı bir program ve hangi zaten yararlı önceden yüklenmiş eklentileri bir dizi sağlar olan Fiji, odaklanmak. <ol><li> Fiji yüklü olduğu bir bilgisayara time-lapse deney transfer görüntüleme verileri. </li><li> programı başlatın ve &amp; kullanarak görüntüleme dosyasını içe# 34; Dosya&gt; İçe Aktar&gt; Biyo-Biçimleri &quot;. Ya da basitçe Fiji içine görüntüleme dosyasını sürükleyerek&quot; Biyo-Biçimleri İthalat Seçenekleri her aydınlatma kanalı için ayrı bir görüntü yığını elde etmek için bölünmüş kanallar &quot;&quot;, kutuyu işaretleyin &quot;(DIC , RFP, YFP). </li><li> İsteğe bağlı: (DIC, RFP, YFP her kanal için, bağlı refocusing (adım 3.9) görüntü edinimi bir mola kaynaklanan ayrı zaman serisi birleştirme ilgili görüntü yığınlarını açmak ve çalıştırmak &quot;Image&gt; Yığınlar&gt; Araçlar&gt; Concatenate&quot; için ). </li><li> görüntü yığınlarından gezinerek zaman atlamalı veri kalitesini değerlendirmek. zamanla odak kaldı hifler, gösteri misel büyüme için bakmak ve sonunda sporlar (DIC yığını) oluştururlar. sırasıyla, bitkisel ya da sporogenic hifler (YFP yığınında) tek halkaları veya birden fazla, merdiven benzeri yapılar oluşturan hifal ucunda DivIVA-mCherry (RFP yığını) ve FtsZ-YPet için beklenen hücre içi lokalizasyonu inceleyin. </li><li> aşağı işlenme için ilgi bir bölge yalıtmakgörüntülerin ng. Time-lapse mikroskopi genellikle Fiji tarafından işlenmesini yavaşlatabilir büyük dosyaları üretir. Nedenle tespit ve faiz (ROI) bir bölge izole etmek ve görüntü yığınının bu küçük bir versiyonu hakkında daha fazla görüntü işleme adımları gerçekleştirmek için tavsiye edilir. <ol><li> Menüde &quot;Dikdörtgen Seçim&quot; aracını seçin ve gelişmekte olan hif görüntü dizi boyunca ROI çevrili olduğu şekilde DIC görüntü yığınında bir dikdörtgen ROI çizin. </li><li> &quot;Ctrl&quot; + &quot;Shift&quot; + &quot;D&quot; ile YG-yığını çoğaltın. </li><li> YFP görüntü yığını adı çubuğuna tıklayın ve &quot;Düzenle&gt; Seçim&gt; Seçimi Restore&quot; YFP yığınında aynı borudaki konumuna yığını özgün DIC önceki dikdörtgen seçim geri ve &quot;Ctrl&quot; ile ROI çoğaltmak için menüde + &quot;Shift&quot; + &quot;D&quot;. </li><li> RFP yığını için bu işlemi tekrarlayın. </li></ol></li><li> üç resim t yığınlarının görüntüleri hizalayıno zamanla xy düzleminde sahne sürüklenir kaldırın. DIC yığınında son kareye gidin ve menüden &quot;Eklenti&gt; Kayıt&gt; StackReg&gt; RigedBody&quot; seçeneğini seçin. RFP ve YFP görüntü yığını için bu adımı yineleyin. Gerekirse, adım 4.5.1-4.5.3 yineleyerek ROI kırpın. </li><li> İsteğe bağlı: &quot;&gt; Süreç Kontrast geliştirin&quot; &quot;Parlaklık ve Kontrast Aracı ayarlama&quot; ( &quot;Ctrl&quot; + &quot;Shift&quot; + &quot;C&quot;) ya da seçmek her görüntü yığını için elle parlaklık ve kontrast ayarlama menüden ve &quot;Normale&quot; uygulamak yığının tüm görüntüleri komut. Ikinci komut aşağı görüntü analizi etkileyebilir, bu nedenle piksel değerlerini değiştirebilir ve olacağı unutulmamalıdır. </li><li> İsteğe bağlı: yatay veya dikey &quot;Image&gt; Yığınlar&gt; Araçlar&gt; birleştirin&quot; eklentisi kullanarak (RGB dosya formatına dönüştürülmüş 4.11 bakınız) bireysel yığınları birleştirin. </li><li> (&amp; Ve bir süre Stamper ( &quot;&gt;&gt; Ölçek Bar Araçlar Analiz&quot;) bir ölçek çubuğu ekleyin# 34; Image&gt; Yığınları&gt; Saat Stamper &quot;). </li><li> &quot;.tiff&quot; Formatında bir görüntü dizisi olarak değiştirilmiş görüntü yığınlarını kaydedin. Bir film üretmek için, &quot;.avi&quot; olarak kaydedin. Alternatif olarak, &quot;Biyo-Biçimleri&gt; Biyo-Biçimleri İhracatçı&quot; eklentisi ve &quot;.mov&quot; dosya türünü seçin kullanarak QuickTime formatında ihracat görüntü serisi. </li><li> tek kare resim elde etmek için, + &quot;D&quot; ilgi çerçeve seçin ve görüntü &quot;Ctrl&quot; + &quot;Shift&quot; yinelenen. &quot;Görüntü&gt; Type&gt; RGB renk veya 8-bit&quot; adı altında ortaya çıkan görüntü &quot;RGB&quot; veya &quot;8-bit&quot; türünü değiştirmek ve &quot;tiff&quot; olarak görüntüyü kaydetmek. Not: Fiji ek daha açıklamak işlevleri veya işlem time-lapse serisi bir dizi sunuyor. Ayrıntılı bilgi (http://fiji.sc/Fiji) Fiji çevrimiçi destek gidin. </li></ol>

<ol>
	<li>Bush, M. J., Tschowri, N., Schlimpert, S., Fl&#228;rdh, K., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=c-di-GMP+signalling+and+the+regulation+of+developmental+transitions+in+streptomycetes.">c-di-GMP signalling and the regulation of developmental transitions in streptomycetes.</a> Nat. Rev. Microbiol. 13, 749-760 (2015).</li><li>Jakimowicz, D., van Wezel, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+division+and+DNA+segregation+in+Streptomyces.:+how+to+build+a+septum+in+the+middle+of+nowhere?.">Cell division and DNA segregation in Streptomyces.: how to build a septum in the middle of nowhere?.</a> Mol. Microbiol. 85, 393-404 (2012).</li><li>McCormick, J. R., Fl&#228;rdh, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Signals+and+regulators+that+govern+Streptomyces+development.">Signals and regulators that govern Streptomyces development.</a> FEMS Microbiol. Rev. 36, 206-231 (2012).</li><li>Fl&#228;rdh, K., Richards, D. M., Hempel, A. M., Howard, M., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+apical+growth+and+hyphal+branching+in+Streptomyces.">Regulation of apical growth and hyphal branching in Streptomyces.</a> Curr. Opin. Microbiol. 15, 737-743 (2012).</li><li>Hempel, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Ser/Thr+protein+kinase+AfsK+regulates+polar+growth+and+hyphal+branching+in+the+filamentous+bacteria+Streptomyces.">The Ser/Thr protein kinase AfsK regulates polar growth and hyphal branching in the filamentous bacteria Streptomyces.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 109, E2371-E2379 (2012).</li><li>Fuchino, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+gradients+of+an+intermediate+filament-like+cytoskeleton+are+recruited+by+a+polarity+landmark+during+apical+growth.">Dynamic gradients of an intermediate filament-like cytoskeleton are recruited by a polarity landmark during apical growth.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 110, E1889-E1897 (2013).</li><li>Holmes, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coiled-coil+protein+Scy+is+a+key+component+of+a+multiprotein+assembly+controlling+polarized+growth+in+Streptomyces.">Coiled-coil protein Scy is a key component of a multiprotein assembly controlling polarized growth in Streptomyces.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 110, E397-E406 (2013).</li><li>McCormick, J. R., Su, E. P., Driks, A., Losick, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Growth+and+viability+of+Streptomyces+coelicolor.+mutant+for+the+cell+division+gene+ftsZ.">Growth and viability of Streptomyces coelicolor. mutant for the cell division gene ftsZ.</a> Mol. Microbiol. 14, 243-254 (1994).</li><li>Margolin, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=FtsZ+and+the+division+of+prokaryotic+cells+and+organelles.">FtsZ and the division of prokaryotic cells and organelles.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 6, 862-871 (2005).</li><li>Grantcharova, N., Lustig, U., Fl&#228;rdh, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamics+of+FtsZ+assembly+during+sporulation+in+Streptomyces+coelicolor+A3(2).">Dynamics of FtsZ assembly during sporulation in Streptomyces coelicolor A3(2).</a> J. Bacteriol. 187, 3227-3237 (2005).</li><li>Richards, D. M., Hempel, A. M., Fl&#228;rdh, K., Buttner, M. J., Howard, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanistic+basis+of+branch-site+selection+in+filamentous+bacteria.">Mechanistic basis of branch-site selection in filamentous bacteria.</a> PLoS Comput. Biol. 8, e1002423 (2012).</li><li>Hempel, A. M., Wang, S. B., Letek, M., Gil, J. A., Fl&#228;rdh, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assemblies+of+DivIVA+mark+sites+for+hyphal+branching+and+can+establish+new+zones+of+cell+wall+growth+in+Streptomyces+coelicolor.">Assemblies of DivIVA mark sites for hyphal branching and can establish new zones of cell wall growth in Streptomyces coelicolor.</a> J. Bacteriol. 190, 7579-7583 (2008).</li><li>Wolanski, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Replisome+trafficking+in+growing+vegetative+hyphae+of+Streptomyces+coelicolor+A3(2).">Replisome trafficking in growing vegetative hyphae of Streptomyces coelicolor A3(2).</a> J. Bacteriol. 193, 1273-1275 (2011).</li><li>Jyothikumar, V., Tilley, E. J., Wali, R., Herron, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time-lapse+microscopy+of+Streptomyces+coelicolor.growth+and+sporulation.">Time-lapse microscopy of Streptomyces coelicolor.growth and sporulation.</a> Appl. Environ. Microbiol. 74, 6774-6781 (2008).</li><li>Willemse, J., Borst, J. W., de Waal, E., Bisseling, T., van Wezel, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Positive+control+of+cell+division:+FtsZ+is+recruited+by+SsgB+during+sporulation+of+Streptomyces.">Positive control of cell division: FtsZ is recruited by SsgB during sporulation of Streptomyces.</a> Genes. Dev. 25, 89-99 (2011).</li><li>Glazebrook, M. A., Doull, J. L., Stuttard, C., Vining, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sporulation+of+Streptomyces+venezuelae.+in+submerged+cultures.">Sporulation of Streptomyces venezuelae. in submerged cultures.</a> J. Gen. Microbiol. 136, 581-588 (1990).</li><li>Bibb, M. J., Domonkos, A., Chandra, G., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Expression+of+the+chaplin+and+rodlin+hydrophobic+sheath+proteins+in+Streptomyces+venezuelae.is+controlled+by+sigma(BldN)+and+a+cognate+anti-sigma+factor,+RsbN.">Expression of the chaplin and rodlin hydrophobic sheath proteins in Streptomyces venezuelae.is controlled by sigma(BldN) and a cognate anti-sigma factor, RsbN.</a> Mol. Microbiol. 84, 1033-1049 (2012).</li><li>Al-Bassam, M. M., Bibb, M. J., Bush, M. J., Chandra, G., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Response+regulator+heterodimer+formation+controls+a+key+stage+in+Streptomyces+development.">Response regulator heterodimer formation controls a key stage in Streptomyces development.</a> PLoS Genet. 10, e1004554 (2014).</li><li>Bush, M. J., Bibb, M. J., Chandra, G., Findlay, K. C., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genes+required+for+aerial+growth,+cell+division,+and+chromosome+segregation+are+targets+of+WhiA+before+sporulation+in+Streptomyces+venezuelae.">Genes required for aerial growth, cell division, and chromosome segregation are targets of WhiA before sporulation in Streptomyces venezuelae.</a> MBio. 4, e00684-e00613 (2013).</li><li>Tschowri, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tetrameric+c-di-GMP+mediates+effective+transcription+factor+dimerization+to+control+Streptomyces+development.">Tetrameric c-di-GMP mediates effective transcription factor dimerization to control Streptomyces development.</a> Cell. 158, 1136-1147 (2014).</li><li>Mirouze, N., Ferret, C., Yao, Z., Chastanet, A., Carballido-L&#242;pez, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MreB-Dependent+Inhibition+of+Cell+Elongation+during+the+Escape+from+Competence+in+Bacillus+subtilis.">MreB-Dependent Inhibition of Cell Elongation during the Escape from Competence in Bacillus subtilis.</a> PLoS Genet. 11, e1005299 (2015).</li><li>Zopf, C. J., Maheshri, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acquiring+fluorescence+time-lapse+movies+of+budding+yeast+and+analyzing+single-cell+dynamics+using+GRAFTS.">Acquiring fluorescence time-lapse movies of budding yeast and analyzing single-cell dynamics using GRAFTS.</a> J. Vis. Exp. (e50456), (2013).</li><li>Meniche, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subpolar+addition+of+new+cell+wall+is+directed+by+DivIVA+in+mycobacteria.">Subpolar addition of new cell wall is directed by DivIVA in mycobacteria.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 111, E3243-E3251 (2014).</li><li>Donovan, C., Schauss, A., Kramer, R., Bramkamp, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chromosome+segregation+impacts+on+cell+growth+and+division+site+selection+in+Corynebacterium+glutamicum.">Chromosome segregation impacts on cell growth and division site selection in Corynebacterium glutamicum.</a> PLoS One. 8, e55078 (2013).</li><li>Rojas, E., Theriot, J. A., Huang, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Response+of+Escherichia+coli.+growth+rate+to+osmotic+shock.">Response of Escherichia coli. growth rate to osmotic shock.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 111, 7807-7812 (2014).</li><li>Fl&#228;rdh, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Essential+role+of+DivIVA+in+polar+growth+and+morphogenesis+in+Streptomyces+coelicolor+A3(2).">Essential role of DivIVA in polar growth and morphogenesis in Streptomyces coelicolor A3(2).</a> Mol. Microbiol. 49, 1523-1536 (2003).</li><li>Sliusarenko, O., Heinritz, J., Emonet, T., Jacobs-Wagner, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+subpixel+precision+analysis+of+bacterial+morphogenesis+and+intracellular+spatio-temporal+dynamics.">High-throughput subpixel precision analysis of bacterial morphogenesis and intracellular spatio-temporal dynamics.</a> Mol. Microbiol. 80, 612-627 (2011).</li><li>Young, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+single-cell+gene+expression+dynamics+in+bacteria+using+fluorescence+time-lapse+microscopy.">Measuring single-cell gene expression dynamics in bacteria using fluorescence time-lapse microscopy.</a> Nat. Protoc. 7, 80-88 (2012).</li><li>Carpenter, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CellProfiler:+image+analysis+software+for+identifying+and+quantifying+cell+phenotypes.">CellProfiler: image analysis software for identifying and quantifying cell phenotypes.</a> Genome Biol. 7, R100 (2006).</li><li>Kuru, E., Tekkam, S., Hall, E., Brun, Y. V., Van Nieuwenhze, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synthesis+of+fluorescent+D-amino+acids+and+their+use+for+probing+peptidoglycan+synthesis+and+bacterial+growth+in+situ.">Synthesis of fluorescent D-amino acids and their use for probing peptidoglycan synthesis and bacterial growth in situ.</a> Nat. Protoc. 10, 33-52 (2015).</li><li>Szafran, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Topoisomerase+I+(TopA)+is+recruited+to+ParB+complexes+and+is+required+for+proper+chromosome+organization+during+Streptomyces+coelicolor.+sporulation.">Topoisomerase I (TopA) is recruited to ParB complexes and is required for proper chromosome organization during Streptomyces coelicolor. sporulation.</a> J. Bacteriol. 195, 4445-4455 (2013).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Streptomyces yaşam döngüsü time-lapse mikroskopi geçmişte teknik açıdan zorlayıcı olmuştur. Burada (Şekil 2) görselleştirmek ve gelişim programı aracılığıyla ilerlemesini iz yardımcı olmak için hücre polarite işaretleyici DivIVA ve hücre bölünmesi proteini FtsZ için floresan protein füzyonları kullanarak tüm yaşam döngüsünün canlı hücre görüntüleme gerçekleştirmek için sağlam bir protokol mevcut. Bu yöntem Orta S. yetiştirme (MYM-TE harcanan) harcanan orta ile sürekli orta perfüzyon ve normal büyüme ortamı (MYM&#39;nin-TE) alışverişini sağlayan bir mikroakışkan cihaz venezuelae. Kültür durumun değişim besin açısından zengin bir ortamda sürekli bir tedarik bitkisel growt uyarır, oysa sporulasyonunu teşvik nedeniyle harcanan kültür ortamında herhangi henüz tanımlanmamış hücre dışı sinyalleri olarak kuyu (örn nisap algılama sinyalleri) olarak beslenme vites açıklanan protokole önemlidirneredeyse hiç spor oluşumu H (veriler gösterilmemiştir). Bu nedenle, bu mikro-akışkan sistemi içinde kültürlenmesi daha deney esneklik sağlar ve kültür koşullarının değiştirilmesi yanıt olarak bakteri büyümesinin değişikliklerin uzun süreli izlenmesine olanak sağlar, çünkü agaroz üzerinde hücrelerin kültürlenmesi daha üstündür. mikroakışkan plakaları tek bir kullanım için tasarlanmıştır, ancak sadece sonraki deneylerde kullanılabilen hücre ile inoküle edilmemiş kanalları akar. Biz uzun zaman açılmıştır plakalara manifoldu sızdırmazlık problemleri yaşamış gibi, bir hafta içinde bir mikroakışkan plaka tüm kanallarını kullanmanızı öneririz. Bir deney kurarken, biz mikrop tüpleri (veriler gösterilmemiştir) ortaya önce donmuş bir gliserol stoku türetilen sporlar en az 6 saat gerekli ise taze hazırlanmış sporlar, akış odasına yüklenen iki saat içinde çimlenmiş bulundu. çimlenme bu gecikme deney uzunluğunu uzatır ve engelleyebilirekipman kullanılabilirliği ve deneysel koşullar. Mikrop tüplerinin geliştirilmesi ve akıbet için yeterli besin sağlamak için en az 3 saat MYM-TE perfüzyon ile denemeyi başlatmak için de önemlidir. Deney vejetatif büyümeyi incelemek için tasarlanmış ise MYM-TE ile Perfüzyon ilk 3 saat ötesine uzatılabilir. sporların başlangıç ​​malzemesinin tercih seçeneği sağlarken, kısa hifal parçaları da mikroakışkan plakaya yüklenebilir. Ancak, makaslanmış misel kullanarak yükleme verimi düşüktür önemli ve genellikle sigara sporlanan mutantlar incelerken bir sınırlama mevcut olabilecek çeşitli yükleme çalışır gerektirir. Ne olursa olsun kullanılan inokulum Çeşidi, medya difüzyon müdahale ve görüntü analizi komplike edebilir hızlı kalabalık yol açacaktır bu kadar sporların veya hifal fragmanları ile kültür odasını aşırı önemlidir. Muhabir proteinlerin yapımını planlamak önemlidir dikkatli bir şekildLly Streptomyces floresan time-lapse görüntüleme kullanım için. Hedef protein ve flüoresan raportör ve N- veya C-terminali füzyonları seçimi arasındaki ekleyicinin boyu kritik öneme sahip olabilir. Ayrıca, görüntüleme frekansı ve maruz kalma süresi de dahil olmak üzere uygun deney koşulları, her bir floresan etiketli proteini için önceden tespit edilmesi gerekmektedir. S. düşük seviyelerde ifade edilen bir floresan etiketli protein görüntüleme sorunlu olabilir sarı / yeşil kanaldaki venezuelae hifler sergi otomatik floresans. Buna ek olarak, bu çimlenme ve ilk vejetatif büyüme fazı, S. sırasında dikkat edilmelidir venezuelae kısa dalga boylu ışığa (örneğin CFP protein füzyonları kullanırken) için özellikle duyarlıdır. Bakterilerin canlı hücre görüntüleme için görüntüleme yöntemleri ve floresan muhabiri sistemlerinde sürekli ilerlemelere rağmen, yazılım paketleri çoğu (örneğin MicrobeTracker, Schnitzelcveri setleri bu tür sonraki otomatik işleme arşın, CellProfiler) bir çok hücreli yaşam tarzı 27-29 ile ipliksi bakteriler elde edilen görüntülerin analizini desteklemez. Bu nedenle, Streptomyces ve diğer lifli bakteri görüntüleme de niceliksel veri yüksek verimli bir analizi için uygun bir algoritma geliştirilmesi için bir ihtiyaç vardır. Özetle, burada açıklanan çalışma S. muazzam potansiyelini göstermektedir Çünkü sıvı içinde sporlanmalanna kabiliyetini cinsi için yeni bir model gelişim sistem olarak venezuelae. Mikroakışkan kültür cihazı deneyimsiz kullanıcılar için bile kullanımı basittir. Bu dinamik protein lokalizasyonu, polarize büyüme ve unigenomic sporların zincirleri içine çok hücreli misel morfolojik farklılaşma dahil Streptomyces yaşam döngüsü, merkezi hücre biyolojik süreçleri incelemek için mükemmel bir platform sağlar. Buna ek olarak, bu deney u ayarlamakp ayrıca peptidoglikan sentezini veya propidium iyodür ve 4 izlemek için floresan D-amino asitler &#39;, 6-diamidino-2-fenilindol olarak kültür koşulları alternatif gerektiren gelişme olayları, ya da floresan boyaların kullanımını araştırmak için cezbedici bir başlangıç ​​noktası sağlar (DAPI) kromozom organizasyonu 30,31 görselleştirmek için.

A correction was made to: <a href="http://www.jove.com/video/53863/fluorescence-time-lapse-imaging-complete-s-venezuelae-life-cycle" target="_blank">Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device</a>
The author&#39;s name was updated from:
Mark Buttner
to:
Mark J. Buttner

A correction was made to: <a href="http://www.jove.com/video/53863/fluorescence-time-lapse-imaging-complete-s-venezuelae-life-cycle" target="_blank">Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device</a>
The middle initial J. has been added to author Mark Buttner.

Erratum: Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device

Streptomycet&#39;ler uykuda, unigenomic sporlar 1-3 bir çok hücreli, besin süpürücü misel gelen morfolojik farklılaşma içeren karmaşık bir gelişimsel döngüsünde ile karakterize edilir toprakta yaşayan bakteriler vardır. Uygun büyüme koşulları altında, tipik bir Streptomyces spor bir ya da iki tohum tüpü (Şekil 1) haddelenmesiyle çimlenme başlar. Bu tüpler ucu uzantısı uzamış ve vejetatif misel olarak bilinen dallı hifal ağına büyür. Polar büyüme ve hifal dallanma temel protein DivIVA tarafından yönetilmektedir. Bu halkalı-halka proteini büyük sitoplazmik kompleks bir parçası olarak uzanan uç 4-7 yeni hücre kılıfı malzemesinin sokulması için çok önemlidir polarisome olarak adlandırılır. Vejetatif büyüme sırasında, hifal filamentler sözde çapraz duvarların 8 seyrek oluşumu ile bölümlere olur. yeniden bu çapraz duvarların oluşumu<html> quires FtsZ, çoğu bakteri 9 hücre bölünmesi için gerekli olan tübülin gibi iskelet proteindir. Streptomyces, ancak, bu vejetatif çapraz duvarlar daralma ve hücre-hücre ayrımına neden olmayan ve bu nedenle de misel kütle birbiriyle bağlantılı sinsityal bölmelerin ağı olarak kalır. Iyi anlaşılmış değildir besin sınırlaması ve diğer sinyallere yanıt olarak, uzman bir anten hif vejetatif misel uzakta kırmaya ve havaya 3 dönüşebilir. Bu yapıların montajı haline uzun multi-genomik hava hifler eşit büyüklükte unigenomic Prospore bölmeleri onlarca bölünmüş sırasında gelişme üreme fazını başlatır. Bu büyük hücre bölünmesi olayı tek sporogenic hifler 2,10 içinde birden fazla FtsZ yüzük senkron daralma tarafından tahrik edilir. Morfolojik ayrım uykuda, kalın duvarlı, pigmentli sporların salınımı ile tamamlanır. t &quot;fo: keep-together.within-page =&quot; 1 &quot;&gt; <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/53863/53863fig1.jpg" /> Şekil 1:. Katı ortam üzerinde Streptomyces yaşam döngüsü Bu S. klasik çalışmalara dayalı yaşam döngüsünün bir modeldir agar plakaları üzerinde büyüyen coelicolor. Bir sporun hücresel gelişim hif dallanma bir ağ oluşturmak üzere uç uzantısı büyür bir ya da iki germ tüpleri, oluşumu ile başlar. Polar büyüme ve bitkisel hiflerin dallanma DivIVA (kırmızı) tarafından yönetilmektedir. vejetatif çapraz duvarların oluşumu FtsZ (yeşil) gerektirir. besin sınırlamalar ve diğer sinyallere yanıt olarak, hava hif inşa edilmiştir. hava büyüme tutuklanması sıkıca kutu benzeri Prospore bölmeye sporogenic hif bölümlendirirse sporülasyon septa doğuran FtsZ-ringler, bir merdiven montaj ile koordine edilir. Bu bölmeler kalın spor Duvara montaj ve sonunda Relea vardırolgun pigmentli sporlar sed. Streptomyces yaşam döngüsünün kilit gelişim olayları iyi 1,3 karakterize edilir. Ancak, yine de ne kıt, protein yerelleştirme dinamikleri, kromozom hareketi ve gelişimsel kontrollü hücre bölünmesi olarak farklılaşmasını destekleyen hücre içi süreçlere, içgörü sağlamak için floresan time-lapse mikroskobu kullanan hücre biyolojik çalışmalar vardır. Streptomyces gelişme Canlı hücre görüntüleme nedeniyle yaşam döngüsünün karmaşıklığı ve organizmanın fizyolojik özelliklerinin zorlu olmuştur. Bitkisel büyüme önceki çalışmaları ve sporlaşma septasyon başlangıç ​​aşamaları oksijen geçirgen görüntüleme odaları veya mikroskop sahnede 11-15 Streptomyces coelicolor agaroz destekli büyüme istihdam var. Ancak bu yöntemler, bir dizi faktöre ile sınırlıdır. Bazı sistemler sadece hücresel büyümenin kısa vadeli görüntüleme izinhücreler önce d floresan proteinleri yetersiz oksijen kaynağı muzdarip veya bağlı hifal geliştirme üç boyutlu desen odak düzleminden dışarı büyür. Uzun vadeli görüntüleme hücreleri alternatif büyüme ya da stres koşullarına maruz ve agaroz pedleri ortamdan eşiğe ciddi zayıf floresan izlemek için yeteneği sınırlar olamaz çünkü agaroz pedleri sınırları deneysel esneklik üzerinde hücrelerin yetiştirilmesi mümkün olduğu durumlarda sinyaller. Burada mükemmel hassasiyet ve duyarlılığı ile tam Streptomyces yaşam döngüsünün canlı hücre görüntüleme için bir protokol açıklar. Bir floresan geniş açılı mikroskobu (Şekil 2) bağlı olan bir mikro sıvısal tertibat Streptomyces büyüyerek, şimdi en fazla 30 saatlik bir süre boyunca çimlenme, vejetatif büyüme ve sporulizasyon septumu oluşumunu izlemek mümkündür. Bu büyük ölçüde, yeni bir model organizma Streptomyces kullanılmasıyla kolaylaştırılır </em&gt; venezuelae o batık kültürde yakın tamamlanması için sporulates ve böylece klasik bir model türlerinin S. sınırlama üstesinden gelir, çünkü Katı ortam 16-20 sadece sporulates coelicolor. vejetatif gelişmesi ve spor görselleştirmek yardımcı olmak için, birlikte express floresan hücre polarite işaretleyici DivIVA ve anahtar hücre bölünmesi proteini FtsZ sürümlerini etiketledi. Başarıyla mikobakteriler, Escherichia coli Corynebacterium glutamicum, Bacillus subtilis ve maya 21-25 için kullanılan olan bir ticari olarak temin edilebilir mikroakışkan cihaz kullanmaktadır. Sistem tek bir odak düzlemi hücreleri yakalar ve farklı haznelerden kültür ortamının sürekli perfüzyon kontrol edilmesini sağlar. Ayrıntılı protokolde S. ortaya çıkarmak için bu özellikten yararlanmak sporulasyonunu tanıtmak için bir beslenme downshift için bitkisel misel venezuelae. protokol deScribed tüm Streptomyces yaşam döngüsünün canlı hücre görüntüleme için, ancak belirli gelişim evreleri özel ilgi ise alternatif medya koşulları veya mikroskop ayarları seçilebilir. <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/53863/53863fig2.jpg" /> Şekil 2: Şematik deneysel iş akışı betimleyen. protokol açıklanan üç temel adım gösterilmiştir. İlk olarak, sporlar ve harcanan ortam sabit faz kültüründen hazırlanmıştır. İkincisi, taze sporlar mikroakışkan sistemi ve S. yüklenir venezuelae gelişimsel ömrü optimal büyüme sıcaklığı korumak için bir kuluçka hücresine sahip, tam otomatik bir ters mikroskop kullanılarak boyunca görüntüsü alınır. Üçüncü olarak, elde edilen time-lapse serisi analiz ve açık kaynak yazılımı Fiji kullanılarak işlenir.

<table border="1">
	<tbody>
		<tr>
			<td>B04A CellAsic ONIX plate for bacteria cells</td>
			<td>Merck-Millipore</td>
			<td>B04A-03-5PK</td>
			<td>Microfluidic culture plates</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CellAsic ONIX Microfluidic Perfusion System and ONIX FG (version 5.0.2)</td>
			<td>Merck-Millipore</td>
			<td>EV-262</td>
			<td>The latest ONIX vesion (July 2015) and instructions on how to use the programme can be found here: http://www.merckmillipore.com</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Axio Observer.Z1 Microscope</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>431007-9902-000</td>
			<td>Fully automated and motorized inverted widefield microscope</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Incubator XL multi S1 with Temperature Module S1 and Heating unit XL S2</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>411857-9061-000</td>
			<td>Environmental chamber surrounding the microscope</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plan-Apochromat 100x/1.46 Oil DIC objective</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>420792-9800-000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ocra FLASH 4 V2</td>
			<td>Hamamatsu Photonics K.K.</td>
			<td>C11440-22CU</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Illuminator HXP 120V</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>423013-9010-000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FL Filter Set 46 HE YFP shift free</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>489046-9901-000</td>
			<td>Fluorescent filter set, excitation 500/25 nm, emission 535/30 nm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FL Filter Set 63 HE RFP shift free</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>489063-0000-000</td>
			<td>Fluorescent filter set, excitation 572/25 nm, emission 629/30 nm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mounting frame K-M for multiwell plates</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>000000-1272-644</td>
			<td>Stage holder for microfluidic plate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZEN pro 2012</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>410135-1002-120</td>
			<td>Microscope control software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZEN Module Time Lapse</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>410136-1031-110</td>
			<td>Software module to set up time-lapse microscopy experiments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZEN Module Tiles/Positions</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>410136-1025-110</td>
			<td>Software module to save specific stage positions (xzy)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fiji</td>
			<td>open-source software package</td>
			<td>http://fiji.sc/Fiji</td>
			<td>Generation of time-lapse movies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Maltose-Yeast Exctract-Malt Extract (MYM) 
			4 g Maltose 
			4 g Yeast extract 
			10 g Malt extract 
			add 1 L H2O using 50 % tap water and 50 % reverse osmosis water and supplement with 200 ml of R2 trace element solution per 100 ml after autoclaving</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Sporulation medium used to culture S. venezuelae SV60</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>R2 Trace element solution (TE) 
			8 mg ZnCl2 
			40 mg FeCl3-6H2O 
			2 mg CuCl2-2H2O 
			2 mg MnCl2-4H2O 
			2 mg Na2B4O7-10H2O 
			2 mg (NH4)6Mo7O24-4H2O 
			add 200 ml H2O 
			Autoclave and store at 4 oC</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Add 0.002 volumes to MYM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS (phosphate buffered saline)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P4417-100TAB</td>
			<td>Used to refill inlet wells of unused lanes in B04A plates in order to prepare plate for short-term storage.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.22 &#181;m syringe filters</td>
			<td>Satorius stedim</td>
			<td>16532-K</td>
			<td>Preparation of spent MYM-TE</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SV60</td>
			<td>John Innes Centre strain collection</td>
			<td></td>
			<td>S. venezuelae strain expressing divIVA-mcherry and ftsZ-ypet</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

fluorescence time-lapse imaging of the complete s. venezuelae life cycle using a microfluidic device

Live-cell imaging of biological processes at the single cell level has been instrumental to our current understanding of the subcellular organization of bacterial cells. However, the application of time-lapse microscopy to study the cell biological processes underpinning development in the sporulating filamentous bacteria Streptomyces has been hampered by technical difficulties. 
Here we present a protocol to overcome these limitations by growing the new model species, Streptomyces venezuelae, in a commercially available microfluidic device which is connected to an inverted fluorescence widefield microscope. Unlike the classical model species, Streptomyces coelicolor, S. venezuelae sporulates in liquid, allowing the application of microfluidic growth chambers to cultivate and microscopically monitor the cellular development and differentiation of S. venezuelae over long time periods. In addition to monitoring morphological changes, the spatio-temporal distribution of fluorescently labeled target proteins can also be visualized by time-lapse microscopy. Moreover, the microfluidic platform offers the experimental flexibility to exchange the culture medium, which is used in the detailed protocol to stimulate sporulation of S. venezuelae in the microfluidic chamber. Images of the entire S. venezuelae life cycle are acquired at specific intervals and processed in the open-source software Fiji to produce movies of the recorded time-series.

Tüm S. başarılı canlı hücre görüntüleme venezuelae yaşam döngüsü çimlenme, vejetatif büyüme ve sporlanma (Şekil 3, Film 1) en önemli gelişim aşamaları dahil olmak üzere, sürekli bir zaman serisi elde edilir. yaşam döngüsü boyunca ilerlemenin Görselleştirme daha DivIVA mCherry ve FtsZ-YPet ayrı hücre içi lokalizasyonu ile geliştirilmiştir. Çimlenme ve vejetatif büyüme sırasında, DivIVA mCherry sadece büyüyen hifal ipuçları ya da yeni şube noktaları (Şekil 4A) oluşturan işaretleri birikir. Bu sonuçlar DivIVA 12,26 önceden bildirilen hücre içi konumlandırma ile uyumludur. Bunun aksine, FtsZ-YPet artan misel (Şekil 4B) düzensiz aralıklarla tek halka-benzeri yapılar oluşturmaktadır. Bu yapılar İnterconn oluşumuna neden olmayan konstriktif bitkisel çapraz duvarlar sentezi için iskele temintutarları hifal bölmeleri 8. Sporogenic hif içine hif büyüyen hücre farklılaşması polar DivIVA mCherry odaklarının kaybolması ile görünür hale gelir, polar büyüme yakalanması ve FtsZ-YPet floresans birlikte artış (Şekil 4C). hif sporlanan olarak FtsZ-YPet lokalizasyonu deseni dramatik değişiklikler; İlk sarmal FtsZ-YPet filamentler hypha boyunca takla ve sonra aniden neredeyse eşzamanlı olay, bu helezonlar düzenli aralıklı FtsZ-YPet halkaların bir merdiven içine birleşmek. Burada tarif edilen deney koşulları altında, bu eşit olarak dağıtılmış FtsZ-YPet merdivenler yaklaşık 2 saat süre ile devam etmektedir. Son olarak, sporulasyon septa diferansiyel girişim kontrast (DIC) görüntüleri (Şekil 4D) ve en sonunda yeni sporlar yayımlanan içinde fark edilebilir hale gelir. olarak sağlayan Fiji yazılımını kullanarak görüntü işleme açıklayan sonraki protokol<html> TEP-adım edinilen time-lapse serisi (Film 1) den yayınlanması için bir film üretmek için nasıl bir açıklama. <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/53863/53863fig3.jpg" /> Şekil 3: S. temsili time-lapse floresan mikroskopi serisinden Anlık görüntüler venezuelae üreten floresan etiketli FtsZ (yeşil) ve DivIVA (Kırmızı) birleştirilmiş görüntülerin seçilen kareleri vardır Gösterildi (üst panel: RFP-YFP DIC, alt panel: DIC). çimlenme, vejetatif büyüme ve sporülasyonun dahil Streptomyces yaşam döngüsü görselleştirerek. Görüntüler Film 1. Zaman alınmıştır saat şöyledir: dk. Ölçek çubukları = 5 um. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53863/53863fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> d / 53863 / 53863fig4.jpg &quot;/&gt; Şekil 4: Streptomyces yaşam döngüsünün başarılı zaman atlamalı serisi için Örnek sonuçlar DivIVA mCherry (A) lokalizasyonu.. RFP ve DIC kanallarının birleştirilmiş görüntüleri ile Movie 1 iki sonraki zaman noktalarında anlık gösterilmiştir. DivIVA mCherry yeni hifal şube siteleri (dolu ok başı) işaretler ve polar büyüme (açık ok başı) doğrudan hifal ucunda lokalize. Ölçek çubuğu = 10 vejetatif büyüme (ok başı) sırasında um (B) FtsZ-YPet yerelleştirme. FtsZ-YPet (DIC, alt panel) sıkmak yok tek halka benzeri yapılar (üst panel) oluşturur. Sporlanma septasyon sırasında (C) FtsZ-YPet (yeşil) yerelleştirme. (Sa: dk) DivIVA mCherry odakları aşağıda gösterildiği geçen süre, kırmızı renkle gösterilmiştir. Ölçek çubuğu: 5 mikron. (C) den sporlanan hif DIC görüntüleri İlgili (D) şeklini gösterensonunda sporların bir zincir (sağ resim) içine olgun görünür sporlanma septa (sol resim) ile Prospore bölmeleri, bir tirme. Zaman saat şöyledir: dk. Ölçek çubuğu = 5 mikron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53863/53863fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Film 1 Çerçeve" src="/files/ftp_upload/53863/53863mov1.jpg" /> Film 1: yaşam döngüsünün venezuelae Streptomyces Time-lapse floresan mikroskopi dizileri film birleştirilmiş RFP-YFP görüntüleri (solda) ve karşılık gelen diferansiyel girişim kontrast (DIC) görüntüleri (sağda) oluşur.. DivIVA mCherry yeşil, kırmızı ve FtsZ-YPet gösterilmiştir. tek kare arasındaki zaman aralığı 40 dk. Ölçek çubuğu = 10 mm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53863/movie1.mov" target="_blank">Thi görmek için buraya tıklayınız</a>s film.

Watch this Scientific Journal Video about Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device at JoVE.com

Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device

Streptomyces are characterized by a complex life cycle that has been experimentally challenging to study by cell biological means. Here we present a protocol to perform fluorescence time-lapse microscopy of the complete life cycle by growing Streptomyces venezuelae in a microfluidic device.

Tam Floresans Zaman atlamalı Görüntüleme<em&gt; S. venezuelae</emBir mikroakışkan Cihaz Kullanımı&gt; Yaşam Döngüsü

Live-cell imaging of biological processes at the single cell level has been instrumental to our current understanding of the subcellular organization of ...

fluorescence-time-lapse-imaging-complete-s-venezuelae-life-cycle

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device

13.7K Görüntüleme.  John Innes Centre, Norwich Research Park. Streptomyces are characterized by a complex life cycle that has been experimentally challenging to study by cell biological means. Here we present a protocol to perform fluorescence time-lapse microscopy of the complete life cycle by growing Streptomyces venezuelae in a microfluidic device.

Video: Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device

Using Bioluminescent Imaging to Investigate Synergism Between Streptococcus pneumoniae and Influenza A Virus in Infant Mice

During the 1918 influenza virus pandemic, which killed approximately 50 million people worldwide, the majority of fatalities were not the result of infection with influenza virus alone. Instead, most individuals are thought to have succumbed to a secondary bacterial infection, predominately caused by the bacterium Streptococcus pneumoniae (the pneumococcus). The synergistic relationship between infections caused by influenza virus and the pneumococcus has subsequently been observed during the 1957 Asian influenza virus pandemic, as well as during seasonal outbreaks of the virus (reviewed in 1, 2). Here, we describe a protocol used to investigate the mechanism(s) that may be involved in increased morbidity as a result of concurrent influenza A virus and S. pneumoniae infection. We have developed an infant murine model to reliably and reproducibly demonstrate the effects of influenza virus infection of mice colonised with S. pneumoniae. Using this protocol, we have provided the first insight into the kinetics of pneumococcal transmission between co-housed, neonatal mice using in vivo imaging 3.

Using Bioluminescent Imaging to Investigate Synergism Between Streptococcus pneumoniae and Influenza A Virus in Infant Mice

A concurrent infection with influenza A virus is one of the factors implicated in the induction of invasive pneumococcal disease during asymptomatic Streptococcus pneumoniae carriage. Here we describe a mixed infection method using infant mice to investigate the synergism between these two respiratory pathogens.

Yılları arasında sinerjistik Araştırma Bioluminescent Görüntüleme kullanma Streptococcus pneumoniae Bebek Fare ve İnfluenza A Virüsü

During the 1918 influenza virus pandemic, which killed approximately 50 million people worldwide, the majority of fatalities were not the result of ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Live Cell Imaging of Bacillus subtilis and Streptococcus pneumoniae using Automated Time-lapse Microscopy

During the last few years scientists became increasingly aware that average data obtained from microbial population based experiments are not representative of the behavior, status or phenotype of single cells. Due to this new insight the number of single cell studies rises continuously (for recent reviews see 1,2,3). However, many of the single cell techniques applied do not allow monitoring the development and behavior of one specific single cell in time (e.g. flow cytometry or standard microscopy).
Here, we provide a detailed description of a microscopy method used in several recent studies 4, 5, 6, 7, which allows following and recording (fluorescence of) individual bacterial cells of Bacillus subtilis and Streptococcus pneumoniae through growth and division for many generations. The resulting movies can be used to construct phylogenetic lineage trees by tracing back the history of a single cell within a population that originated from one common ancestor. This time-lapse fluorescence microscopy method cannot only be used to investigate growth, division and differentiation of individual cells, but also to analyze the effect of cell history and ancestry on specific cellular behavior. Furthermore, time-lapse microscopy is ideally suited to examine gene expression dynamics and protein localization during the bacterial cell cycle. The method explains how to prepare the bacterial cells and construct the microscope slide to enable the outgrowth of single cells into a microcolony. In short, single cells are spotted on a semi-solid surface consisting of growth medium supplemented with agarose on which they grow and divide under a fluorescence microscope within a temperature controlled environmental chamber. Images are captured at specific intervals and are later analyzed using the open source software ImageJ.

Live Cell Imaging of Bacillus subtilis and Streptococcus pneumoniae using Automated Time-lapse Microscopy

This protocol provides a step-by-step procedure to monitor single cell behavior of different bacteria in time using automated fluorescence time-lapse microscopy. Furthermore, we provide guidelines how to analyze the microscopy images.

Canlı Hücre Görüntüleme Bacillus subtilis Ve Streptococcus pneumoniae Otomatik Zaman atlamalı Mikroskopi

During the last few years scientists became increasingly aware that average data obtained from microbial population based experiments are not ...

Intravital Imaging of the Mouse Thymus using 2-Photon Microscopy

Two-photon Microscopy (TPM) provides image acquisition in deep areas inside tissues and organs. In combination with the development of new stereotactic tools and surgical procedures, TPM becomes a powerful technique to identify "niches" inside organs and to document cellular "behaviors" in live animals. While intravital imaging provides information that best resembles the real cellular behavior inside the organ, it is both more laborious and technically demanding in terms of required equipment/procedures than alternative ex vivo imaging acquisition. Thus, we describe a surgical procedure and novel "stereotactic" organ holder that allows us to follow the movements of Foxp3+ cells within the thymus.
Foxp3 is the master regulator for the generation of regulatory T cells (Tregs). Moreover, these cells can be classified according to their origin: ie. thymus-differentiated Tregs are called "naturally-occurring Tregs" (nTregs), as opposed to peripherally-converted Tregs (pTregs). Although significant amount of research has been reported in the literature concerning the phenotype and physiology of these T cells, very little is known about their in vivo interactions with other cells. This deficiency may be due to the absence of techniques that would permit such observations. The protocol described in this paper provides a remedy for this situation.
Our protocol consists of using nude mice that lack an endogenous thymus since they have a punctual mutation in the DNA sequence that compromises the differentiation of some epithelial cells, including thymic epithelial cells. Nude mice were gamma-irradiated and reconstituted with bone marrows (BM) from Foxp3-KIgfp/gfp mice. After BM recovery (6 weeks), each animal received embryonic thymus transplantation inside the kidney capsule. After thymus acceptance (6 weeks), the animals were anesthetized; the kidney containing the transplanted thymus was exposed, fixed in our organ holder, and kept under physiological conditions for in vivo imaging by TPM. We have been using this approach to study the influence of drugs in the generation of regulatory T cells.

We have developed novel laboratory tools and protocols for intravital imaging acquisition of the thymus. Our technique should help in the identification of &#x201C;niches&#x201D; within the thymus where T cell development occurs.

2-Foton Mikroskopi kullanarak Fare Thymus intravital Görüntüleme

Two-photon Microscopy (TPM) provides image acquisition in deep areas inside tissues and organs. In combination with the development of new stereotactic ...

Isolation and Genome Analysis of Single Virions using 'Single Virus Genomics'

Whole genome amplification and sequencing of single microbial cells enables genomic characterization without the need of cultivation 1-3. Viruses, which are ubiquitous and the most numerous entities on our planet 4 and important in all environments 5, have yet to be revealed via similar approaches. Here we describe an approach for isolating and characterizing the genomes of single virions called 'Single Virus Genomics' (SVG). SVG utilizes flow cytometry to isolate individual viruses and whole genome amplification to obtain high molecular weight genomic DNA (gDNA) that can be used in subsequent sequencing reactions.

Single Virus Genomics (SVG) is a method to isolate and amplify the genomes of single virons. Viral suspensions of a mixed assemblage are sorted using flow cytometry onto a microscope slide with discrete wells containing agarose, thereby capturing the virion and reducing genome shearing during downstream processing. Whole genome amplification is achieved using multiple displacement amplification (MDA) resulting in genomic material that is suitable for sequencing.

&#39;Tek Virüs Genomik&#39; kullanarak Tek viryonlar İzolasyonu ve Genom Analizi

Whole genome amplification and sequencing of single microbial cells enables genomic characterization without the need of cultivation 1-3. Viruses, which ...

Real-time Live Imaging of T-cell Signaling Complex Formation

Protection against infectious diseases is mediated by the immune system 1,2. T lymphocytes are the master coordinators of the immune system, regulating the activation and responses of multiple immune cells 3,4. T-cell activation is dependent on the recognition of specific antigens displayed by antigen presenting cells (APCs). The T-cell antigen receptor (TCR) is specific to each T-cell clone and determines antigen specificity 5. The binding of the TCR to the antigen induces the phosphorylation of components of the TCR complex. In order to promote T-cell activation, this signal must be transduced from the membrane to the cytoplasm and the nucleus, initiating various crucial responses such as recruitment of signaling proteins to the TCR;APC site (the immune synapse), their molecular activation, cytoskeletal rearrangement, elevation of intracellular calcium concentration, and changes in gene expression 6,7. The correct initiation and termination of activating signals is crucial for appropriate T-cell responses. The activity of signaling proteins is dependent on the formation and termination of protein-protein interactions, post translational modifications such as protein phosphorylation, formation of protein complexes, protein ubiquitylation and the recruitment of proteins to various cellular sites 8. Understanding the inner workings of the T-cell activation process is crucial for both immunological research and clinical applications.
Various assays have been developed in order to investigate protein-protein interactions; however, biochemical assays, such as the widely used co-immunoprecipitation method, do not allow protein location to be discerned, thus precluding the observation of valuable insights into the dynamics of cellular mechanisms. Additionally, these bulk assays usually combine proteins from many different cells that might be at different stages of the investigated cellular process. This can have a detrimental effect on temporal resolution. The use of real-time imaging of live cells allows both the spatial tracking of proteins and the ability to temporally distinguish between signaling events, thus shedding light on the dynamics of the process 9,10. We present a method of real-time imaging of signaling-complex formation during T-cell activation. Primary T-cells or T-cell lines, such as Jurkat, are transfected with plasmids encoding for proteins of interest fused to monomeric fluorescent proteins, preventing non-physiological oligomerization 11. Live T cells are dropped over a coverslip pre-coated with T-cell activating antibody 8,9, which binds to the CD3/TCR complex, inducing T-cell activation while overcoming the need for specific activating antigens. Activated cells are constantly imaged with the use of confocal microscopy. Imaging data are analyzed to yield quantitative results, such as the colocalization coefficient of the signaling proteins.

We describe a live-cell imaging method that provides insight into protein dynamics during the T-cell activation process. We demonstrate the combined usage of the T-cell spreading assay, confocal microscopy and imaging analysis to yield quantitative results to follow signaling complex formation throughout T-cell activation.

T hücre gerçek zamanlı Canlı Görüntüleme Kompleks Oluşum Sinyal

Protection against infectious diseases is mediated by the immune system 1,2. T lymphocytes are the master coordinators of the immune system, regulating ...

Monitoring Dendritic Cell Migration using 19F / 1H Magnetic Resonance Imaging

Continuous advancements in noninvasive imaging modalities such as magnetic resonance imaging (MRI) have greatly improved our ability to study physiological or pathological processes in living organisms. MRI is also proving to be a valuable tool for capturing transplanted cells in vivo. Initial cell labeling strategies for MRI made use of contrast agents that influence the MR relaxation times (T1, T2, T2*) and lead to an enhancement (T1) or depletion (T2*) of signal where labeled cells are present. T2* enhancement agents such as ultrasmall iron oxide agents (USPIO) have been employed to study cell migration and some have also been approved by the FDA for clinical application. A drawback of T2* agents is the difficulty to distinguish the signal extinction created by the labeled cells from other artifacts such as blood clots, micro bleeds or air bubbles. In this article, we describe an emerging technique for tracking cells in vivo that is based on labeling the cells with fluorine (19F)-rich particles. These particles are prepared by emulsifying perfluorocarbon (PFC) compounds and then used to label cells, which subsequently can be imaged by 19F MRI. Important advantages of PFCs for cell tracking in vivo include (i) the absence of carbon-bound 19F in vivo, which then yields background-free images and complete cell selectivityand(ii) the possibility to quantify the cell signal by 19F MR spectroscopy.

Monitoring Dendritic Cell Migration using 19F / 1H Magnetic Resonance Imaging

Tracking of cells using MRI has gained remarkable attention in the past years. This protocol describes the labeling of dendritic cells with fluorine (19F)-rich particles, the in vivo application of these cells, and monitoring the extent of their migration to the draining lymph node with 19F/1H MRI and 19F MRS.

Kullanarak İzleme Dendritik Hücre Göç<sup&gt; 19</sup&gt; F /<sup&gt; 1</sup&gt; H Manyetik Rezonans Görüntüleme

Continuous  advancements in noninvasive imaging modalities such as magnetic resonance  imaging (MRI) have greatly improved our ability to study ...

RNA Purification from Intracellularly Grown Listeria monocytogenes in Macrophage Cells

Analysis of the transcriptome of bacterial pathogens during mammalian infection is a valuable tool for studying genes and factors that mediate infection. However, isolating bacterial RNA from infected cells or tissues is a challenging task, since mammalian RNA mostly dominates the lysates of infected cells. Here we describe an optimized method for RNA isolation of Listeria monocytogenes bacteria growing within bone marrow derived macrophage cells. Upon infection, cells are mildly lysed and rapidly filtered to discard most of the host proteins and RNA, while retaining intact bacteria. Next, bacterial RNA is isolated using hot phenol-SDS extraction followed by DNase treatment. The extracted RNA is suitable for gene transcription analysis by multiple techniques. This method is successfully employed in our studies of Listeria monocytogenes gene regulation during infection of macrophage cells 1-4. The protocol can be easily modified to study other bacterial pathogens and cell types.

RNA Purification from Intracellularly Grown Listeria monocytogenes in Macrophage Cells

Here we describe a method for bacterial RNA isolation from Listeria monocytogenes bacteria growing inside murine macrophages. This technique can be used with other intracellular pathogens and mammalian host cells.

RNA Arıtma Hücre içindeki dan Yetiştirilen<em&gt; Listeria monocytogenes</em&gt; Makrofaj

Analysis of the transcriptome of bacterial pathogens during mammalian infection is a valuable tool for studying genes and factors that mediate infection. ...

Assessing Retinal Microglial Phagocytic Function In Vivo Using a Flow Cytometry-based Assay

Microglia are the tissue resident macrophages of the central nervous system (CNS) and they perform a variety of functions that support CNS homeostasis, including phagocytosis of damaged synapses or cells, debris, and/or invading pathogens. Impaired phagocytic function has been implicated in the pathogenesis of diseases such as Alzheimer's and age-related macular degeneration, where amyloid-&#946; plaque and drusen accumulate, respectively. Despite its importance, microglial phagocytosis has been challenging to assess in vivo. Here, we describe a simple, yet robust, technique for precisely monitoring and quantifying the in vivo phagocytic potential of retinal microglia. Previous methods have relied on immunohistochemical staining and imaging techniques. Our method uses flow cytometry to measure microglial uptake of fluorescently labeled particles after intravitreal delivery to the eye in live rodents. This method replaces conventional practices that involve laborious tissue sectioning, immunostaining, and imaging, allowing for more precise quantification of microglia phagocytic function in just under six hours. This procedure can also be adapted to test how various compounds alter microglial phagocytosis in physiological settings. While this technique was developed in the eye, its use is not limited to vision research.

Assessing Retinal Microglial Phagocytic Function In Vivo Using a Flow Cytometry-based Assay

Microglial phagocytosis is critical for the maintenance of tissue homeostasis and inadequate phagocytic function has been implicated in pathology. However, assessing microglia function in vivo is technically challenging. We have developed a simple but robust technique for precisely monitoring and quantifying the phagocytic potential of microglia in a physiological setting.

Retina Mikroglial Fagositik Fonksiyonu değerlendirilmesi<em&gt; İn Vivo</em&gt; A Akış Sitometri bazlı analiz kullamlarak

Microglia are the tissue resident macrophages of the central nervous system (CNS) and they perform a variety of functions that support CNS homeostasis, ...

Non-invasive In Vivo Fluorescence Optical Imaging of Inflammatory MMP Activity Using an Activatable Fluorescent Imaging Agent

This paper describes a non-invasive method for imaging matrix metalloproteinases (MMP)-activity by an activatable fluorescent probe, via in vivo fluorescence optical imaging (OI), in two different mouse models of inflammation: a rheumatoid arthritis (RA) and a contact hypersensitivity reaction (CHR) model. Light with a wavelength in the near infrared (NIR) window (650 - 950 nm) allows a deeper tissue penetration and minimal signal absorption compared to wavelengths below 650 nm. The major advantages using fluorescence OI is that it is cheap, fast and easy to implement in different animal models.
Activatable fluorescent probes are optically silent in their inactivated states, but become highly fluorescent when activated by a protease. Activated MMPs lead to tissue destruction and play an important role for disease progression in delayed-type hypersensitivity reactions (DTHRs) such as RA and CHR. Furthermore, MMPs are the key proteases for cartilage and bone degradation and are induced by macrophages, fibroblasts and chondrocytes in response to pro-inflammatory cytokines. Here we use a probe that is activated by the key MMPs like MMP-2, -3, -9 and -13 and describe an imaging protocol for near infrared fluorescence OI of MMP activity in RA and control mice 6 days after disease induction as well as in mice with acute (1x challenge) and chronic (5x challenge) CHR on the right ear compared to healthy ears.

Non-invasive In Vivo Fluorescence Optical Imaging of Inflammatory MMP Activity Using an Activatable Fluorescent Imaging Agent

This paper explains the application of fluorescent imaging using an activatable optical imaging probe to visualize the in vivo activity of key matrix metalloproteinases in two different experimental models of inflammation.

Non-invaziv<emIn vivo</em&gt; Aktive Edilebilir Floresan Görüntüleme Ajanını Kullanan İnflamatuvar MMP Aktivitesinin Flüoresan Optik Görüntülemesi

This paper describes a non-invasive method for imaging matrix metalloproteinases (MMP)-activity by an activatable fluorescent probe, via in vivo ...

Visualization of Biofilm Formation in Candida albicans Using an Automated Microfluidic Device

Candida albicans is the most common fungal pathogen of humans, causing about 15% of hospital-acquired sepsis cases. A major virulence attribute of C. albicans is its ability to form biofilms, structured communities of cells attached to biotic and abiotic surfaces. C. albicans biofilms can form on host tissues, such as mucosal layers, and on medical devices, such as catheters, pacemakers, dentures, and joint prostheses. Biofilms pose significant clinical challenges because they are highly resistant to physical and chemical perturbations, and can act as reservoirs to seed disseminated infections. Various in vitro assays have been utilized to study C. albicans biofilm formation, such as microtiter plate assays, dry weight measurements, cell viability assays, and confocal scanning laser microscopy. All of these assays are single end-point assays, where biofilm formation is assessed at a specific time point. Here, we describe a protocol to study biofilm formation in real-time using an automated microfluidic device under laminar flow conditions. This method allows for the observation of biofilm formation as the biofilm develops over time, using customizable conditions that mimic those of the host, such as those encountered in vascular catheters. This protocol can be used to assess the biofilm defects of genetic mutants as well as the inhibitory effects of antimicrobial agents on biofilm development in real-time.

Visualization of Biofilm Formation in Candida albicans Using an Automated Microfluidic Device

This protocol describes the use of a customizable automated microfluidic device to visualize biofilm formation in Candida albicans under host physiological conditions.

Görselleştirme bir otomatik mikrosıvısal aygıtı kullanarak Candida albicans biyofilm oluşumu

Candida albicans is the most common fungal pathogen of humans, causing about 15% of hospital-acquired sepsis cases. A major virulence attribute of C. ...

Tam Floresans Zaman atlamalı Görüntüleme

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Yılları arasında sinerjistik Araştırma Bioluminescent Görüntüleme kullanma Streptococcus pneumoniae Bebek Fare ve İnfluenza A Virüsü

Canlı Hücre Görüntüleme Bacillus subtilis Ve Streptococcus pneumoniae Otomatik Zaman atlamalı Mikroskopi

2-Foton Mikroskopi kullanarak Fare Thymus intravital Görüntüleme

'Tek Virüs Genomik' kullanarak Tek viryonlar İzolasyonu ve Genom Analizi

T hücre gerçek zamanlı Canlı Görüntüleme Kompleks Oluşum Sinyal

Kullanarak İzleme Dendritik Hücre Göç

RNA Arıtma Hücre içindeki dan Yetiştirilen

Retina Mikroglial Fagositik Fonksiyonu değerlendirilmesi

Non-invaziv

Görselleştirme bir otomatik mikrosıvısal aygıtı kullanarak Candida albicans biyofilm oluşumu