Name: modified microsecure vitrification: a safe, simple and highly effective cryopreservation procedure for human blastocysts
Uploaded: 2017-03-02T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 35 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Modified MicroSecure Vitrification: A Safe, Simple and Highly Effective Cryopreservation Procedure for Human Blastocysts at JoVE.com

MC Schiewe analiz ve yıllık CDC ve SART verilerini değerlendirirken yaptığı istatistiksel uzmanlık için Las Vegas Doğurganlık Merkezi&#39;nde Sayın Orman Garner teşekkür etmek istiyorum. Ayrıca, yazarlar teknik yetenekleri ve uzmanlık onun özel destek ve inanç için onların Tıp Direktörü Dr. Robert E. Anderson, teşekkür etmek istiyorum.

mS-VTF prosedürünün geliştirilmesi, insan oosit ve embriyo dondurulması üzerine 2008-2009 (Aspire IRB, Santee, CA) onaylı Kurumsal Değerlendirme Kurulu (KİK) çalışmanın bir parçası olarak yürütülmüştür. Prosedür bu yana rutin olarak aydınlatılmış onam formları imzaladı kısırlık hastalarının klinik tedavisi uygulanmıştır. 1. Kalite-Kontrol Hususlar <ol><li> Hastaları ayırt etmek için farklı renkler (örneğin, kalem, etiket veya kimlik (ID) çubuklar veya fişler) kullanıyorsanız günde embriyo cryopreserving birden fazla grup. </li><li> Her hasta için farklı yemekler ve pipet kullanın. başka bir çözümden blastokist taşırken transfer ortamın hacmi en aza indirmek. </li><li> saman ya da cihaz başına bir blastosist cryopreserve. aseptik / steril tekniği korumak ve tüm güvenlik önlemlerine uymak. </li><li> Hekimlerin Sevk Formu onaylamak ve initiatin önce hasta onam imzaladıg prosedürleri. envanterindeki hastaların embriyo (lar) ın eğilim kontrol edin. </li><li> blastosist başka bir tesise transfer edilecekse bir &quot;Ulaştırma Sorumluluk ve Onay Release&quot; kullanın. tüm imzalar yerinde veya noter şahit emin olun. </li><li> biyoanalizlere, endotoksin tespitler ve sona ermesi / lot numarası doğrulama ve izleme de dahil olmak üzere uygun ortam için kalite kontrol önlemleri ve protein takviyeleri, uygun şekilde, onaylayın. </li><li> &lt;% 95 sağkalım oranları: &lt;% 80 ve tek öploid blastokist kullanılarak klinik gebelik oranları: &lt;% 50, klinik dondurulması sonuç izleme ve değerlendirme gibi tahsilat oranları gibi kritik limitler (endişe, yani düşük seviyelerde) oluşturulması. </li></ol> 2. Kryoprezervasyon Prosedürü <ol><li> Hazırlık <ol><li> çalışma sayfaları içine giren veri ve dondurulması veritabanı ve envanter günlüğüne de dahil olmak üzere, uygun evrak tamamlamak(Ler). </li><li> Taze dondurma çözümleri hazırlayın ya da ticari bir kaynak (üreticinin tavsiye depolama ve raf ömrü koşulları uyarak) kullanın. </li><li> Saman hazırlanması. <ol><li> Bireyselleştirilmiş steril paketlerin etiketleme tarafını açın. ambalaj karşı tutup kısmen kaldırma ve saman çekerek, geleneksel 0.3 mL embriyo saman bulunan dolgu memesini ayırın; saman plastik paketi içinde aseptik aittir ise bu ortam koşullarına etiket ucunu gösterecektir. <ol><li> 0.3-ml meni / embriyo payet için (Değişiklik), aşağı 0.5 cm fişi itin. bir bazik masa darbeli kaynaklayıcı kullanımı yoluyla pamuk PVP fiş önüne, bir iç sızdırmazlık uygulanır. </li><li> Sadece fiş önünde, elektrodun teflon yüzeyine saman ayarlayın. ısı etkinleştirmek için kolu bastırın. kırmızı ışık göründüğünde kolu bırakın. bir sıcaklıkta yeterli flatte bir tam kaynak mühür, ısı sağlamak için,ns karşıt yüzeyleri, daha sonra 180 ° &#39;den fazla çevirmek ve gerektiği gibi karşıt yüzeyi 19 kapatın. </li></ol></li></ol></li><li> Bir cryomarker kullanarak, her saman / aygıt etiket ve hasta adı, benzersiz bir kimlik numarası (örneğin, SSN, DOB, veya hasta kimlik numarası) ve donma tarih cryogoblet. Ayrıca her saman / cihaza (örneğin, 1, 2, 3, vs.) benzersiz bir numara bulunur. <ol><li> Bir renk ağırlıklı İD çubuk üzerine etiket (tercihen renkli) elde edin yerleştirilir ve 0.3 ml embriyo damlacık içine mühürlü olması. kullanılıncaya kadar kendine özgü steril pakete saman dönün. Not: sadece 30 mm renk ağırlıklı kimlik çubuklar kimlik çubuk her iki tarafına bitişik, daha sonra iki rulman ek yerleştirme gereklidir, varsa. </li></ol></li><li> benzersiz bir yazıtlı kimlik numarası ile her bastonu tanımlayın. Bir LN 2 depolama tankı sayısını ve her hastanın örnek (ler) st olabilir bir teneke kutu numarasını belirlemekORed uzun dönem. </li><li> Damlacık kimliği (Şekil 1A) tutan / hasta adı, çözüm kimliği ve embriyo ile alt yüzeyi etiketleme taze cryo yemekleri (100 mm) hazırlayın. Spesifik olarak, damlacıkların 4 satır ayarlamak: izotonik HEPES-tamponlu ortamı (yukarıda), V1 (dengeleme çözeltisi (ES)), V2 (ara madde çözeltisi (IS)), V3 (vitrifikasyon çözeltisi (VS) alt). etiketli sütunlarla sağ üst tarafta embriyo kimliğini yazın. Not: 25- arasında bir dizi 50 uL (n = 3), her bir son 10 ya da 15 uL damlacık / solüsyon türü tutma sağlamak için kullanılan damlacıkları yıkama (örneğin, V1, V2, veya V3) saftır ve sulandırılmamış. Beş ayrı embriyolar kadar, bu yaklaşımı kullanarak, tek bir çanak kullanılarak vitrifiye yapabilirsiniz tarafından. kullanılmadığı damlacıkların herhangi oda sıcaklığı buharlaşma / dehidratasyonu önlemek için zaman örtülü her yemeğin tutun. </li><li> baz ucunda 3 cm kesilmesiyle steril flexipettes hazırlama ( &quot;VTF uçları&quot; olarak anılacaktır). Bireysel üzerine onları takınpipetler (3 uL ayarlanır) ve bir strafor tüp raf (Şekil 1B) dik pipet-VTF ipuçları ayarlayın. </li></ol></li><li> embriyo Seçimi <ol><li> hasta / örnek tanımlama onaylayın. </li><li> - (400X büyütme 200) notu ve sınıflandırmak blastokistlerle Gardner derecelendirme sistemine 20 göre, erken sırasıyla yumurtadan blastosist, için 1&#39;den 6&#39;ya kadar bir sayısal sınıflandırması kullanılarak ve A, B veya C sınıfı atanmış ters bir mikroskop kullanılarak iç hücre kütlesinden (ICM) ve ilkel trofoblast (TE). Not: blastosist biyopsisi ve euploidy analiz için hazırlanırken, zona pellucida TE erken herniasyonunu teşvik etmek Gün 3 lazer ablasyon öncesi yumurtadan ve böylece değiştirilmiş derecelendirme sınıflandırması 2 gerektirir. % 50 yumurtadan, ve 5. sınıf kuluçka blastosist&gt;% 50 TE ke var - Kısacası,% 10 TE herniasyonu kadar Sınıf 3 tam blastosist sergi, 4. sınıf blastosist 10 olan genişletilmişN (Şekil 2A-C). Not: Bizim tercih (Grade 1 veya 2 blastosist geç morula dahil Sınıf 3 veya Ancak Gün 5 veya 6 tarihinde ≥BB kalitesi yüksek blastokistlerle, erken aşamalarda daha düşük kalitede (C) ve post-sıkıştırma embriyoların vitrifiye blastosist cryopreserve için ) kesinlikle tamamen sağlam ısınma hayatta ve canlı doğum elde etme yeteneğine embriyo elde edebilirsiniz. </li><li> Düşük molaritesi vitrifikasyon çözümleri kullanılıyorsa cryodilution işleminin başlamasından önce, bir trofoektoderm birleşme micropuncturing veya bir trophectodermal hücresi 21, bir laser darbesi ablasyon gerçekleştirerek, her blastosist blastokoel kapa (&lt;6.5 M veya% 40 h / h). Not: blastosist daraltmak için gerek cihaz bağlı değildir. mS-VTF (2008) Kendi erken gelişim, başlangıçta etilen glikol (EG) / oosit ile başarılı bir şekilde DMSO çözeltileri (1 1 term gebelik dışında) kullanılan, ancak bir alt-optimal (&lt;% 80)Fare blastokist 16 hayatta kalma / geliştirme başkaları 21 tarafından yaşandı. yüksek molar gliserol tabanlı çözümler yana, fiziksel blastokol çöküşü gereksizdir (2009 den beri) mevcut VTF sisteminde kullanılan (7.9 M aşan). Bununla birlikte, yumurtadan blastosist seçici kuluçka, genel olarak tavsiye edilir. </li></ol></li><li> Cryodilution ve Blastosist Yükleme <ol><li> Inkübatör hasta kültür çanak çıkarın ve embriyo (lar) vitrifiye için çıkarmadan önce başka bir kişi (yani, ikincil bir kaynak tarafından tanık) ile hasta / örnek tanımlama onaylayın. </li><li> stereomikroskobi altında, adım 2.2.2 başına blastosist gelişimi onaylamak cryo fiş güncellemek ve cryo yemeğin izotonik tutma damlacık içine kültür çanak pipet blastosist (ler). </li><li> Vitrifikasyon flexipette (yani, VTF ucu) kullanarak bireysel tutma damlacıklar halinde her blastosist taşıyın. </li><li> taşı herV1 (ES) çözeltisi içine blastosist. <ol><li> V1 solüsyonu (3 uL) ile flexipette önceden doldur ve embriyo üzerine yarım içeriğini yerleştirin. </li><li> embriyo aspire ve (adım 2.1.6 anılacaktır) üç V1 yıkama damlacıklarının ilk hareket, embriyo 2 pipetle - çevresinde 3 kez, ve dışarıda (kabarcık oluşumunu kaçınarak) damlacık pipet içeriğini temizlemek veya çanak yüzey. </li></ol></li><li> Bir sonraki V1 yıkama damla ile VTF ucu doldurun ve embriyo (lar) ın aspirasyonu tekrarlayın. üçüncü kez tekrarlayın ve bireysel V1 tutma damlasına kadar blastosist (ler) hareket ettirin. seyreltme / yıkama adımları 30 ile 45 s almalıdır. Ön yük sonraki çözüme her VTF uç (örneğin, V2), rafa pipet takın ve bir sonraki pipet (adım 2.1.7 kuruluma göre) (Şekil 1B) kullanın. Not: V1 ve V2 çözümleri içeren olmayan dimetil sülfoksit içinde toplam maruz kalma süresi (DMSO) için, Indivi pipet 5 dakika her biriÇift blastosist eşit nihai V3 adımı gerçekleştirmek için blastokist başına en az 1 dakika gerektirdiğini düşünüyor, bu aralık içinde sendeleyerek edilmelidir. Örneğin, bir camlaştırma grubunda 4 blastosistleri, blastosist pipetle 75-S aralıklarla # 1-2-3-4 varsa. Not: Yenilikçi Cryo Enterprises (ICE) seyreltme protokolü yukarıda açıklanan genel DMSO içeren çözümler içeren diğer birçok ticari vitrifikasyon işlemleri, daha farklı. Bu protokoller yıkama solüsyonu (yani, izotonik ortam) birleşmesi, kademeli yoluyla aynı kademeli dilüsyonları elde, ancak daha az kontrollü, ES, ve VS. </li><li> Tekrarlama V2 (IS) çözümlerini kullanarak 2.3.4 ve 2.3.5 adımları. </li><li> Tekrarlayın 2.3.4 ve 2.3.5 kullanarak V3 (VS) çözümleri yineleyin. </li><li> V3 tutan damlacık her blastosist koyarak üzerine, (damlacık dışında) VTF ucundan artık çözüm ve kabarcıklar temizleyin ve sonra embriyo etrafında temiz V3 ile tamamen ucu doldurun. UzmEl, yaklaşık hacmi (1 uL) üçte biri tamamen VTF ucu içine blastosist (ler) ve geri kalan V3 pipetle. </li><li> , Pipetle VTF ucu çıkarın steril bir gazlı bez ile dış yüzeyinde kalan V3 ucu kuru silin ve önceden etiketlenmiş saman açık ucunu sonu ilk ucu takın. Bir &quot;kuru ipucu&quot; olası iç saman yapışmasını önleyerek için çok önemlidir. </li><li> (Etiket aşağı sonunda) saman haricindekileri iç fiş veya mühür de ucu gözlemlemek ve güvenli bir şekilde hava sahasını 1 cm açık ucunu mühür. Tercihen, (örneğin, Syms I) teknik varyasyonu ortadan kaldırmak için bir otomatik yapıştırma cihazı kullanın. Not: Bir iyonomerik reçine plastik oluşan payet kullanmanın avantajı (örneğin, HSV veya uS-VTF) adım 2.1.3.1 de belirtildiği gibi cihazı sızdırmazlık herhangi düzgün çalışan ısıyı kullanarak, güvenilir &quot;kaynak&quot; mührü yaratmasıdır. </li><li> Bir kez mühürlenmiş, bir stainl içinde LN 2 doğrudan kapalı saman dalmaess çelik Dewar şişesi ve depolama için hastanın baston bağlı açık kadehine içine saman (ler) yerleştirin. Not: uS-VTF çörek hava dolu saman yüzdürme dengelemek için 40 mm ağırlıklı kimlik çubuklar kullanmak için, ters kadehler veya boş cryovials kullanımı ulaşım dahil sürece gerekli değildir numune (ler) kapsayacak. </li></ol></li><li> Isınma ve Cryo-çözüm Elüsyon / Sulandırma <ol><li> Hekimlerin Sevk vitrifiye embriyo transfer tarihine ilişkin Formu, planlanan zaman ve embriyo ayrıntıları (PGS test eğer çözülmeye sayı / transferi, özel embriyo sayısı, vs.) onaylayın. </li><li> ticari bir kaynak taze ısınma çözümleri (1.0 M sükroz stok çözelti) ve / hazırlayın veya kullanmak (bir kez raf ömrü 1 hafta-1 ay kullanımda, 4 ° C depolama önerilir). <ol><li> Nedeniyle sakaroz gra endotoksin birikimi risklere ilk açılışında (örneğin, haftalık arz kaynağı) üzerine 50 ml steril şişeler içine sakaroz Kısım 17.1 grtekrar oda maruziyet üzerine Nules. </li><li> çözelti içine önceden tartılmış zerre sukroz karıştırın (1.0 M stok = 3.42 g / 10 ml HEPES-tamponlu insan tuba sıvısı [lH-HTF]) ve granüller çözünürlüğünü geliştirmek için 37 ° C&#39;ye kadar çözüm ısıtın. Tekrar tekrar hız yukarı yardım ve nihai karıştırma tamamlamak için konteyner ters. Not: filtrasyonu (0.22 mikron filtre) pozitif basınçlı filtrasyon birimi kullanılarak yerine yapışkan çözeltilerine (&gt; 0.5 M sukroz) veya yüksek hacimli için önerilir. El basınç pompaları elektrik pompa gürültülü ise, titreşimleri neden olur ve sadece gerekli değildir, yeterli ve ucuz. </li></ol></li><li> Sıcak (37 ° C) bir 10 ml tüp uS-VTF ısıtma banyosu kullanım için hasta başına 1.0 M sukroz çözeltisi ve H-HTF bir maddenin her birinden. </li><li> hasta adı ve çözüm kimlikleri ile kapak yüzeyi etiketleme taze çözülme yemekleri (6-plaka) hazırlayın. Not: Bu durumda, kullanılan: (1) T1, yıkama (200 uBir yağ kaplaması olmayan L yağı yağ yağ 1 ml (2) T1 (100 uL), (3), T2 (100 uL), (4) T3 (100 uL), (5), T4 (100 uL) bir yağ kaplaması olmayan bir yağ, ve% 10 insan serumu albümini (HSA) ya da% 20, serum yerine (6) T5 / 200 uL izotonik HEPES-tamponlu ortam ile. Evrensel bir sakaroz çözüm adım aşağı protokol-T1 = 1.0 M, T2 = 0.5 M, T3 = 0.25 M ve uygulamak T4 = 0.125 M-eğer yavaş dondurulmuş embriyoların 22 için önerildiği gibi ICE veya başka bir ticari kaynak mevcut değildir . Bundan başka, ilk T1 yıkama ve son T5 equilibrations 30 mm Petri tabaklarda gerçekleştirilebilir ve 4 oyuklu yemeğin bir yağ kaplamayı kapsayan, yukarıdaki adımları 2-5 için kullanılan unutmayın. </li><li> Bir seferde sadece bir hastanın embriyo (lar) çözülme. <ol><li> Hekimlerin Sevk Formu kontrol edin ve belirtilen sayıda (yani 1 ya da 2 blastosist) ısınma önce döngüsünü teyit; shr, yani (ozmotik değişimleri gözlemleyerek hayatta kalma / muhtemel canlılığını değerlendirmekinkage ve rehidrasyon) ve bozulmamış membranlar ve sorgulanabilir eğer, başka bir blastosist ısınma önce doktor ve / veya hasta başvurun. </li></ol></li><li> Bir meslektaş ile hasta / örnek tanımlama onaylayın (örneğin, ikincil bir kaynak tarafından tanık). </li><li> LN 2 ile dolu bir Dewar şişesi hasta baston yerleştirin ve ılık olan saman belirlemek izole eder. </li><li> stereomikroskopta sahnenin merkezine 6-kuyu seyreltme yemek getirmek. Bir tarafta bir 60 mm Petri kabı kapalı yerleştirme (yani sol-el ya da teknisyen sağ tercihine göre), ısıtılmış sükroz (1.0 M) ekleyin ve H-HTF çözümleri 0.5 M sükroz ısınma oluşturmak için banyo (ortaya). Not: VTF ipuçları bir embriyo hızlı ısınma 22 üzerine atılır nadir olay embriyo canlılığı tutulmasını sağlamak için, bir QC koruma olarak 0.5 M sükroz çözümleri ısındı. </li><li> Sıvı seviyesinin üzerinde üst saman mühür tutunkimliğini doğrulamak ve sonra kavramak ve Mayo makas kullanarak iç kapağın altında saman sabitlemek için (VTF ucu hala LN 2 batık olmalıdır). <ol><li> Sıkıca bir QC önlemi olarak iç saman yan duvarından VTF ucu kaldırmak için Dewar şişesi üzerinde makas (birkaç kez) dokunun; VTF ucu yapışık ise, dinleme ucu taban böylece fiş sonuna yakın bir hava alanı sağlayan, etiketli sonunda karşısındaki kapalı sonuna kadar düşer sağlar. </li></ol></li><li> (Bir sonraki stereoskop yüzeyine veya altında) bir yatay konumda ortam havaya makas ile saman kaldırın ve olmayan etiketli ucunu (sağ tarafına etiket) kavramak. İç fiş de saman kesmek veya mühür ve ısınma banyo çanak üzerinde kaldırın. tamamen haddelenmiş ve (&gt; 6.000 ° C / dak) hızla olmuştur ısınıncaya kadar 60 ° açıyla sıcak sakaroz banyoya VTF ucu dökün; flexipette taban çanak yan duvarına üzerinde duracaktır. <ol><li> VTF ti izinp-ücretsiz sonbahar banyosu içine kadar. ucu hemen ortaya değilse hafifçe üst saman yüzeyini hafifçe vurun. sadece kısmen yol belirirse, makas ya da ince forseps ile flexipette milini tutarak ekstrüzyon yardımcı olur. </li></ol></li><li> 5 Sonra - 10 s, pipet tabanını kavramak ve tek kullanımlık pipet cihaza takın; ampul bir delik ekleme üzerine baskı serbest bırakmak için hareket eder. T1 yıkama içine vitrifiye blastosist serbest bırakmak için ampul sıkmak hafifçe bir parmağı ile ampul deliği kapatın ve (# 1) stereomikroskobi ile izlerken. Bir kez doğruladı, iyi, merkezi haline içeriğini tahliye, pozitif basınç kullanılmayan imha edilmesini artık V3 (VS) solüsyonu ve kabarcıklar temizleyin. 5 dk Sayacı başlat. Not: Tüm sükroz seyreltme aşamalar oda sıcaklığında (21 ± 2 ° C) gerçekleştirilir. </li><li> VTF ucunu çıkarın ve bir pipet üzerine yerleştirin. (- 4 dak yaklaşık 3) kalan süre için yağ altında T1 2. içine embriyo hareket ettirerek devam edin. &lt;ol&gt; <li> adım 2.4.12 başlatmadan önce hastadan - ikinci blastosist transferi için gerekli ise, derhal (2.4.11 adım 2.4.9 yineleyerek) ikinci bir saman ve VTF ucu sıcak. en az 3 dakika T1 minimum elüsyon (1.0 M sükroz) birlikte her iki blastosist taşıyın. </li></ol></li><li> bir sonraki çözüme flexipette ön doldurun ve sonra taşımak ve 3 dakikalık aralıklarla T2, T3 ve T4 blastosist (ler) seyreltin. Pellusida önce lazer ablasyon olmamıştır zona (yani, yumurtadan), T4 Bunu yaparsanız. ters bir mikroskop ve görüntü bir bilgisayar monitöründe embriyo sahnesine çanak yerleştirin. Belirlenmiş bir kırmızı daire içinde zona hizalayın ve bir diyot lazer (perivitelline alanı kenarında başlayan ve dışa hareketli) bir açıklık 2, 19 oluşturmak için 2 veya 3 dürtüleri etkinleştirin. </li><li> Sıcak bir yüzeye (37 ° C) 5 dakika süre ile T5 (örneğin, izotonik ortamı) blastosistler dengelenmesi.</li><li> piknotik koyulaşması yoksun bile, saydam sitoplazmalı sağlam hücre zarlarının baskın varlığına dayalı ilk embriyo hayatta değerlendirin. Embriyo transferi öncesi 6 saat, hangi zamanda, embriyo gelişimi / hayatta kalma yeniden değerlendirilmeli ve dokümante edilmelidir - 2 kültürüne embriyo (lar) yerleştirin. Not: 1&#39;den fazla yaşayabilir blastosist transferi sırasında mevcut ve hasta adımları 2.3.3 tekrarlayarak sadece 1 blastosist, ek blastosist sonra başarıyla yeniden vitrifiye edilebilir (rVTF) ile devam etmek seçerse - 2.3.11. Biz tek rVTF olaylarından sonra birkaç doğruladı canlı doğum var. Not: rVTF deneysel olarak meta kararlı gliserol tabanlı çözelti içinde vitrifiye Anöploidi de insan blastosistleri, hayatta kalma / canlılığı üzerinde önemli bir etkisi olmaksızın 5 kez gerçekleştirilmiştir. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Edgar, D. H., Gook, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+critical+appraisal+of+cryopreservation+(slow+cooling+versus+vitrification)+of+human+oocytes+and+embryos.">A critical appraisal of cryopreservation (slow cooling versus vitrification) of human oocytes and embryos.</a> Hum. Reprod. Update. 16, 536-554 (2012).</li><li>Schiewe, M. C., Whitney, J. B., Anderson, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Potential+risk+of+monochorionic+dizygotic+twin+blastocyst+formation+associated+with+early+laser+zona+dissection+of+group+cultured+embryos.">Potential risk of monochorionic dizygotic twin blastocyst formation associated with early laser zona dissection of group cultured embryos.</a> Fertil. Steril. 103, 417-421 (2015).</li><li>Schiewe, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+historic+development+and+incorporation+of+four+assisted+reproductive+technologies+shaping+today's+IVF+industry.">The historic development and incorporation of four assisted reproductive technologies shaping today's IVF industry.</a> J. Fertil. In Vitro Reprod. Med. Genet. 4, 2-9 (2016).</li><li>Rall, W. F., Fahy, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ice-free+cryopreservation+of+mouse+embryos+at+-196+degrees+C+by+vitrification.">Ice-free cryopreservation of mouse embryos at -196 degrees C by vitrification.</a> Nature. 313, 573-575 (1985).</li><li>Rall, W. F., Wood, M. J., Kirby, C., Whittingham, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+mouse+embryos+cryopreserved+by+vitrification.">Development of mouse embryos cryopreserved by vitrification.</a> J. Reprod. Fertil. 80, 499-504 (1987).</li><li>Schiewe, M. C., Rall, W. F., Stuart, L. D., Wildt, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+cryoprotectant,+cooling+rate+and+in+situ+straw+dilution+using+conventional+freezing+or+vitrification+for+cryopreserving+sheep+embryos.">Analysis of cryoprotectant, cooling rate and in situ straw dilution using conventional freezing or vitrification for cryopreserving sheep embryos.</a> Theriogenology. 36, 279-293 (1991).</li><li>Lane, M., Schoolcraft, W. B., Gardner, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vitrification+of+mouse+and+human+blastocysts+using+a+novel+cryoloop+container-less+technique.">Vitrification of mouse and human blastocysts using a novel cryoloop container-less technique.</a> Fertil. Steril. 72, 1073-1078 (1999).</li><li>Mukaida, T., Oka, C., Goto, T., Takahashi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+shrinkage+of+blastocoeles+using+either+a+micro-needle+or+a+laser+pulse+prior+to+the+cooling+steps+of+vitrification+improves+survival+rate+and+pregnancy+outcome+of+vitrified+human+blastocysts.">Artificial shrinkage of blastocoeles using either a micro-needle or a laser pulse prior to the cooling steps of vitrification improves survival rate and pregnancy outcome of vitrified human blastocysts.</a> Hum. Reprod. 21, 3246-3252 (2006).</li><li>Kuwayama, M., Vatja, G., Ieda, S., Kato, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+open+and+closed+methods+for+vitrification+of+human+embryos+and+elimination+of+potential+contamination.">Comparison of open and closed methods for vitrification of human embryos and elimination of potential contamination.</a> Reprod. Biomed. Online. 11, 608-614 (2005).</li><li>Vanderzwalmen, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Births+after+vitrification+at+morula+and+blastocyst+stages:+effect+of+artificial+reduction+of+the+blastocoelic+cavity+before+vitrification.">Births after vitrification at morula and blastocyst stages: effect of artificial reduction of the blastocoelic cavity before vitrification.</a> Hum. Reprod. 17, 744-751 (2002).</li><li>Schiewe, M. C., Marco-Jim&#233;nez, F., AkdemirKo&#231;, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quality+control+factors+influencing+the+successful+and+reliable+implementation+of+oocyte+and+embryo+vitrification.">Quality control factors influencing the successful and reliable implementation of oocyte and embryo vitrification.</a> Cryopreservation. , (2016).</li><li>Stachecki, J. J., Garrisi, J., Sabino, S., Caetano, J. P. J., Wiemer, K., Cohen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+safe,+simple,+and+successful+vitrification+method+for+bovine+and+human+blastocysts.">A new safe, simple, and successful vitrification method for bovine and human blastocysts.</a> Reprod. Biomed. Online. 17, 360-367 (2008).</li><li>Panagiotidis, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Open+versus+closed+vitrification+of+blastocysts+from+an+oocyte-donation+programme:+a+prospective+randomized+study.">Open versus closed vitrification of blastocysts from an oocyte-donation programme: a prospective randomized study.</a> Reprod. Biomed. Online. 26, 470-476 (2013).</li><li>Papatheodorou, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Open+versus+closed+oocyte+vitrification+system:+a+prospective+randomized+study.">Open versus closed oocyte vitrification system: a prospective randomized study.</a> Reprod. Biomed. Online. 26, 595-602 (2013).</li><li>Schiewe, M. C., Zozula, S., Anderson, R. E., Fahy, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validation+of+microSecure+vitrification+(&#181;S-VTF)+for+the+effective+cryopreservation+of+human+embryos+and+oocytes.">Validation of microSecure vitrification (&#181;S-VTF) for the effective cryopreservation of human embryos and oocytes.</a> Cryobiology. 71, 264-272 (2015).</li><li>Schiewe, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroSecure+vitrification+for+oocytes+and+embryos:+optimum+simplicity,+security+and+cost+and+effectiveness+combining+FDA-approved+products.">MicroSecure vitrification for oocytes and embryos: optimum simplicity, security and cost and effectiveness combining FDA-approved products.</a> J. Clin. Embryol. 13, 33-51 (2010).</li><li>Rall, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Factors+affecting+the+survival+of+mouse+embryos+cryopreserved+by+vitrification.">Factors affecting the survival of mouse embryos cryopreserved by vitrification.</a> Cryobiology. 24, 387-402 (1987).</li><li>Seki, S., Mazur, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+warming+rate+on+the+survival+of+vitrified+mouse+oocytes+and+on+the+recrystallization+of+intracellular+ice.">Effect of warming rate on the survival of vitrified mouse oocytes and on the recrystallization of intracellular ice.</a> Biol. Reprod. 79, 727-737 (2008).</li><li>Schiewe, M. C., Stringfellow, D. A., Givens, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=General+hygiene+and+quality+control+practices+in+an+embryo-production+laboratory.">General hygiene and quality control practices in an embryo-production laboratory.</a> Manual of the International Embryo Transfer Society: A Procedural Guide and General Information for the Use of Embryo Transfer Technology, Emphasizing Sanitary Precautions. , (2008).</li><li>Whitney, J. B., Nugent, N. L., Anderson, R. E., Schiewe, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single+center+validation+of+routine+blastocyst+biopsy+implementation.">Single center validation of routine blastocyst biopsy implementation.</a> J. Asst. Reprod. Genet. , (2016).</li><li>Liebermann, L., Conaghan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+collapse+prior+blastocyst+vitrification:+improvement+of+clinical+outcomes.">Artificial collapse prior blastocyst vitrification: improvement of clinical outcomes.</a> J. Clin. Embryol. 16, 107-118 (2014).</li><li>Parmegiani, L., Tatone, C., Cognigni, G. E., Bernardi, S., Troilo, E., Arnone, A., Maccarini, A. M., Di Emidio, G., Vitti, M., Filicori, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+warming+increases+survival+of+slow-frozen+sibling+oocytes:+a+step+towards+a+single+warming+procedure+irrespective+of+the+freezing+protocol.">Rapid warming increases survival of slow-frozen sibling oocytes: a step towards a single warming procedure irrespective of the freezing protocol.</a> Reprod Biomed Online. , (2014).</li></ol>

MC Schiewe Yenilikçi Cryo İşletmelere bilimsel danışma kurulu üyesi olarak ve Kaliforniya Cryobank bir Teknik Direktör olarak görev yapmaktadır. Bu video-makale üretimi Ovation Doğurganlık tarafından ödenmiştir. Yazarlar gamet ve embriyoların vitrifikasyon ile ilgili açıklama hiçbir rakip mali anlaşmalar veya çıkar çatışmalarını var.

Bugün, tam blastosist sağkalım (&gt;% 95) elde ve taze embriyo benzer implantasyon başarı elde yüksek bir beklenti var. Bazı gruplar vitrifiye embriyo transfer döngülerinin canlı doğum oranları bozulmamış Kriyoprezerve embriyo sağlıklı olmayan hormonal uyarılan rahim içine nakledilen taze blastokist daha yüksektir belki olduklarını ileri sürmüşlerdir. Bizim verilerimiz açıkça vitrifikasyon etkin ve güvenilir taze embriyo canlılığını koruduğunu göstermektedir. Ayrıca, MicroSecure Vitrifikasyon (uS-VTF) denilen aseptik kapalı yöntem, IVF endüstrisinde kullanılan ticari standartlara (yani, açık cihaz sistemleri) daha karşılaştırılabilir veya daha fazla optimal sonucu elde edebilirsiniz kanıtlamıştır. Varyasyon vitrifikasyon cihazları / bir sürü yöntem kullanan bireyler arasında teknik tekrarlanabilirlik ve güvenilirlik ile ilişkilidir. Buna karşılık, bu inconsi sonuçlandıvitrifikasyona uygulama programları arasındaki stencies. Nedenle, cihaz aşinalık laboratuvar yeterlilik ve başarılı sonuçlar ile ilgili önemli bir faktör olması şaşırtıcı değildir. Bu programlar arasında tekrarlanabilirlik sorunlu olabilir açıklıyor &quot;teknik imza&quot; 11 Bu kavramdır. Sadece ticari cihazlar bu fenomeni karmaşık bir düzineden fazla bir gelişme var, bu kalite kontrol kaygıları yarattı. Neyse ki, mS-VTF, Rapid-I gibi, vitrifikasyon kapalı sistemler ve VitriSafe, şimdi cihaz sistemleri 12, 13, 14 açmak için eşit derecede etkili olduğunu kanıtlamaktadır. MicroSecure VTF akılda teknik kolaylığı, güvenilirlik ve cryo-güvenlik ile geliştirilen bir roman, aseptik vitrifikasyon tekniktir. İki önceden onaylanmış, FDA uyumlu cihazların kullanımını birleştirerek, ticari olmayan bir vitrifikasyon sistemi wözel cihazların aksine, kurulu bir düşük maliyetli olan ve ayrı bir avantajı i. Buna ek olarak, eşsiz ulaşılamaz ve içselleştirilmiş çift renkli etiketleme sistemi, yanı sıra çok sayıda diğer kalite kontrol avantajları, yapmış mS-VTF çekici küresel seçenek 11. ticari olmayan bir VTF aygıtı olarak, ancak, onun yaygın sanayi uygulama yavaş yavaş gelişmektedir. Sadece emniyet, güvenlik ve klinik etkinliğinin sürekli yayın yoluyla kullanımı uS-VTF kazanç büyüyen olacaktır. 2014 yılının Ağustos ayında, zaman bir iç olmayan esneklik hidrofobik fişi ile üretilen orijinal 0.3 mL embriyo saman elde etmek için yetersizlik ile karşı karşıya, biz güvenilir uS-VTF yöntemini değiştirmek başardık. Kısacası, kendi pamuk-PVP fişleri ile yeni 0.3 mL meni / embriyo çörek etkin bir şekilde adapte edilmiştir. Bu sadece bu şekilde, pamuklu bir tıkaç önce bir iç yalıtım elde temasın önlenmesi ve sıvı ile emme ile elde edilmiştiraçık uçlu VTF ucu (yani, embriyo veya yumurta içeren flexipette). 40-mm ID çubuklar erişilebilir değilse Dahası, hafif 30 mm çubuklar ile ilişkili yüzdürme sorunu iki rulman kullanılarak Karşı ağırlıklı olabilir. Bu ek adımlar hala son derece etkili bir tekniktir biraz daha az basit yaptık ama. onların euploidy durumu genetik raporunda teyit edilene kadar biyopsi blastosist tipik bireysel vitrifiye gibi Günümüzde, ekonomi ve etkinliği, giderek daha önemli kaygıları haline gelmektedir. bir teyit cansız anöploidi durumu ile blastosist genellikle hafta içinde, hasta onayı ile atılır olsun. Böylece, VTF cihazların bir çoğunluğu (&gt;% 50) ticari cihazlar kullanarak tırmanan yıllık maliyeti neden kısa süreli depolamadan sonra atılır. Genel olarak, uS-VTF de insan blastosistleri, kriyokorunması için bir, yüksek etkili, güvenilir ve tekrarlanabilir bir işlemdir. üstün kalite-kontrol tasarımı securelkurtarma hatasını ortadan kaldırılması ve embriyo vitrifikasyon evrensel bir yaklaşım olarak sistemin kullanımını haklı sonrası ısınma sağkalım ve canlılığı, optimize ederken güvenle y etiketleri ve embriyolar / oosit saklar.

Vitrifikasyon intrasitoplazmik sperm enjeksiyonu gelişiminde beri in vitro fertilizasyon (IVF) sektöründe tek ve en etkili yardımcı üreme teknolojidir. Bugün, blastosist önceden geleneksel yavaş dondurma yöntemleriyle 1 ile ilişkili embriyo canlılığı kaybı olmadan kriyoprezerve vardır. Güvenilir sonrası ısınma embriyo sağkalım, infertilite sanayi geleneksel taze embriyo transferi daha benzer veya daha yüksek gebelik sonuçlarını verim Kriyoprezerve embriyo transfer döngüleri, tercih edilen kullanım dönüşüyor. Blastosist biyopsisi ve preimplantasyon genetik tarama (PGS) ile birlikte, vitrifikasyon öploid tek embriyo transferi 2, 3 üzerinden sağlıklı canlı doğum sonuçlarını optimize etmek için hayati bir klinik araç haline gelmiştir. Murin embriyo vitrifikasyon, 1980&#39;lerin ortalarında 4 geliştirildi </sup&gt; 5 ve 1990 6 ile hayvan tarıma adapte. vitrifikasyon çözümleri buz kristali oluşumunu zarar ücretsiz metastabil glasseous devlet oluşturacak öncül dayanarak, daha verimli embriyoların tam hücresel bütünlüğünü korumak için kanıtlanmıştır. İlginçtir ki, insan embriyoloji içine vitrifikasyon umut verici kabul 21. yüzyıla kadar gerçekleştirilecek başlamadı. Vitrifikasyon kullanımını teşvik Erken yayınlar benzersiz &quot;açık&quot; sistem cihazlarının 7, 8, 9 gelişimi ile çakıştı. Yavaş blastosist donma gelişmeler de meydana ne zaman bir anda geldi Ancak, klinik uygulamaya vitrifikasyon benimsenmesi, yavaştı. Başarılı konvansiyonel yavaş donma hızı vitrifikasyon ek olarak, hem de Incorporat sahip embriyo kültürü sistemlerinde iyileştirmeler ile hizalandısonradan, ilkel trofoblast hem genel sağkalım gelişmiş ve blastokol-çöken yaklaşımların iyon implantasyon 10. Son on yılda, vitrifikasyon teknoloji hızla geleneksel dondurma uygulamalarını üstlenilmekle. büyük ölçüde, bu özel vitrifikasyon cihazlarının geliştirilmesine nedeniyle oldu. Bu cihazların bazıları IVF endüstrisinde 11 kullanılan cihazlara doğasında tasarım kusurları getirerek klinik vitrifikasyon genel güvenlik, etkinlik ve verimliliğinin engelli var. Nitekim, farklı cihazlar nüansları genellikle &quot;teknik imzalar&quot; 12 olarak adlandırılan programlar arasında önemli teknik varyasyon, tanıtmak. Böylece, bilimsel dergiler, Visualized Deney Journal (vallahi) gibi, sonuç farklılıkları azaltmak için yardımcı olacak teknik ayrıntıları, göstermek için değerli bir kaynak olarak hizmet verebilir. Başka devam eden bir sorun olduğunu s olduğuome embriyolog bir &#39;açık vitrifikasyon sistemi&#39; içinde embriyoların veya oosit &quot;ultra-hızlı soğutma (yani, sıvı azot (LN 2) ile doğrudan embriyo temas) optimize için bir ön koşul olduğunu iddia dayalı, bugün bile, yanlış bilgilendirilmiş devam başarı oranları. &quot; Açıkçası, bu inanç sistemleri 13, 14, 15 kapalı aseptik kanıtlanmış başarı dayalı, yanlıştır. Vitrifikasyon kriyobiyolojik ilkelerine dayanarak, vitrifikasyon etkinliği oranları 16, 17, 18, soğutma ziyade ısınma oranları üzerine daha çok bağlıdır. Genel olarak, kullanılan vitrifikasyon cihazdan bağımsız, ısınma oranı yüksek hayatta kalma oranlarını sağlamak için soğutma hızını aşması gerekmektedir. Yüksek ısınma oranları herhangi bir buz büyüme (yani recr için fırsat aza indirmekısınma devitrifikasyon aşamasında cryo çözümler çekirdekli kirliliklerin) ve ystallization. Verilen vitrifikasyon solüsyonu (yani, tipi ve kullanılan donmaya karşı koruyucu ajanların konsantrasyonu) kararlılığı bir karıştırıcı etkisi olabilir, ama bu ayrı bir yayın 11 ele alınmaktadır. Soğutma ısınma oranı sorunları göz önüne alındığında, MicroSecure Vitrifikasyon (uS-VTF) vitrifikasyon kalite kontrol yönlerini optimize ucuz, ticari olmayan, FDA uyumlu bir yöntem olarak 2008 yılında geliştirilmiştir. O kurcalamaya dayanıklı, içselleştirilmiş, çift renkli etiketleme teklif benzersiz oldu. Ayrıca, yükleme ve (ikincil aygıt yüzeyine pipetleme olmadan, yani) pipetleme için kullanılan steril flexipette doğrudan embriyoların saklayarak ve otomatik macunu kullanarak tamamen kaynak mühür, teknik varyasyon etkili bir şekilde ortadan kalkmıştır iyonomerik reçine çörek kullanarak. c değerlendirilirken1) Etiketleme potansiyel misin etiketler güvenli uyulması: potansiyel kullanım için vitrifikasyon cihazları ompleteness dahil olmak üzere dikkate alınması gereken birçok kalite kontrol faktörleri vardır? Onlar kurcalanmamasmı mı? Onlar iki renkli kimlik potansiyeli sunuyor musunuz? Bir ikincil etiket gerektirmez ve etiket kolayca kayıt tutma amacıyla (örneğin, hastanın doğrulama) sonrası ısınma için çıkarılabilir? 2) Teknik kolaylığı misin embriyolar kolayca zamanında cihaza üstüne / yüklenen ve sadece tespit ve post-ısınma izlenebilir? 3) Usul basitlik / Tekrarlanabilirlik teknisyenleri (iç) ve programlar (harici) arasındaki değişimini en aza indirir kolayca tekrarlanabilirlik sağlayan vitrifikasyon yöntemi teklif basitlik ve güvenilirlik, -Öyle? 4) LN 2 depolama kapasitesi kolayca ve güvenli bir şekilde ele ve tespit cihazları olmak misin? onların sto mıpotansiyel boşluk verimli öfke? aseptik kapalı sistem olarak fiziksel hasar veya olası kirletici cihaz teklif güvenlik ve emniyet mu? 5) Kurtarma potansiyeli / Beka -Bu cihaz embriyoların garantili kurtarma potansiyel sorunlara eğilimli tasarım ve güvenilir bir vitrifiye ve tam hücresel bütünlüğü sonrası ısınma koruyacaktır? İkincisi özel kalite kaygısı, geri kazanım oranı, aslında şaşırtıcı yayınlanan raporlarda minimize edilmiştir; Bu genellikle tipik-iyi sağkalım oranları olumsuz sonuç (yani, kayıp embriyo veya yumurta) gizleyerek yapılır. tutarsız kurtarma (&lt;% 99) eğilimli herhangi bir cihaz ciddi kusurlu ve bir usul yükümlülüğü oluşturmaktadır. Bizim aseptik, uS-VTF yöntemi stratejik her kalite kontrol önlemi açıklamak için geliştirilmiştir kapattı. Ancak, üstün klinik başarı ve doğrulama 14 5 yıl sonra, prosedür t vardıo modifiye olacak. (Hidrofobik fişi sahip) orijinal 0.3 mL embriyo çörek IVF sanayi kaldırılır ve standart bir pamuk / PVP fişini sahip bir 0.3 mL meni saman (yani, bir meni / embriyo saman gibi relabeled) ile değiştirilmiştir. Bu usul kağıt güvenle, sadece, ve etkili mS-VTF uygulamak için gereken belirli adımlar ve stratejileri özetlenir. Alternatif İdeal saman konteyner klinik laboratuvar geri yeniden ortaya çıkar Dahası, biz bu zamana kadar, güvenilir tedarik sınırlamaları hesaba gerekli değişiklik (ler) vurgulayın.

<table><tbody><tr><td>Aluminum Cane</td><td>IVM</td><td>XC055</td><td></td></tr><tr><td>Ball bearings, 3/32&quot;</td><td>VXB.com</td><td>KIT15977</td><td>stainless steel</td></tr><tr><td>CBS semen/embryo straw, 0.3 mL</td><td>CryoBioSystems</td><td>25292</td><td>individual sterile</td></tr><tr><td>Color, ID rods, 30 mm</td><td>CryoBioSystems</td><td>019021-26</td><td>weighted</td></tr><tr><td>Culture tubes, 15 mL</td><td>Falcon</td><td>352099</td><td>Conical</td></tr><tr><td>Culture tubes, 10 mL</td><td>Falcon</td><td>352057</td><td>Snap-cap</td></tr><tr><td>Cryosleeves</td><td>Nalgene</td><td>5016-001</td><td></td></tr><tr><td>Filter, 250 mL</td><td>Fisher Sci.</td><td>09-740-2A</td><td>0.22 &amp;mu;m</td></tr><tr><td>Flasks, Tissue Culture 50 mL</td><td>Falcon</td><td>353014</td><td></td></tr><tr><td>Flexipettes, 300 &amp;mu;m ID</td><td>Cook Med.</td><td>K-FPIP-1300-10BS-5</td><td>Sterile, 20/pack</td></tr><tr><td>Forcep, Large</td><td>Miltex</td><td>6-30TC</td><td></td></tr><tr><td>Forcep, Splinter - fine</td><td>Miltex</td><td>17-305</td><td></td></tr><tr><td>Goblet</td><td>IVM</td><td>PA003</td><td></td></tr><tr><td>Heat Sealer, SYMS 1</td><td>CryoBioSystems</td><td>16399</td><td>110 V or 220 V with adapter</td></tr><tr><td>Hepes-buffered media&amp;nbsp;</td><td>Life Global or</td><td>LGGH-100; 100&amp;nbsp;mL, or</td><td>stored at 2 - 8 &amp;ordm;C</td></tr><tr><td></td><td>Irvine Scientific</td><td>H-HTF; 90126; 100 mL</td><td>with non-essential AA&#039;s</td></tr><tr><td>Labels, Cryo</td><td>GA International</td><td>CL-23T1</td><td>Various colors</td></tr><tr><td>Liquid Nitrogen Tank, 40&amp;nbsp;L</td><td>MVE or Taylor Warton</td><td>various</td><td>liquid storage&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>LN&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;; Dewar flask, 0.5&amp;nbsp;L</td><td>Hampton Research</td><td>HR4-695</td><td>Stainless steel</td></tr><tr><td>6-well Custer Dishes</td><td>Biogenics</td><td>015/020</td><td>plasticware by case</td></tr><tr><td>Pipette Bulb, Micro Cap</td><td>Drummond</td><td>Fisher#13681451</td><td>Hole on bulb apex</td></tr><tr><td>Petri Dishes, 35 mm</td><td>Falcon</td><td>351006</td><td></td></tr><tr><td>Petri Dishes, 58 mm</td><td>Nunc</td><td>150288</td><td></td></tr><tr><td>Petri Dishes, 100 mm</td><td>Falcon</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>Pipette Tips, ART long</td><td>Fisher Sci.</td><td>02-707-80</td><td>10 - 100 &amp;mu;L</td></tr><tr><td>Pipet Aid</td><td>Drummond or Falcon</td><td>various</td><td>rechargeable</td></tr><tr><td>Pipetting Device, Stripper</td><td>Cooper Surgical</td><td>MXL3-STR</td><td></td></tr><tr><td>Pipettes, Serological 1&amp;nbsp;mL</td><td>Falcon</td><td>357521</td><td></td></tr><tr><td>Pipettes, Serological 2&amp;nbsp;mL</td><td>Falcon</td><td>357507</td><td></td></tr><tr><td>Pipettes, Serological 5&amp;nbsp;mL</td><td>Falcon</td><td>357543</td><td></td></tr><tr><td>Pipettes, Serological 10&amp;nbsp;mL</td><td>Falcon</td><td>357551</td><td></td></tr><tr><td>Scissors, Surgical Mayo</td><td>Miltex</td><td>5-SC-16</td><td></td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Nikon, Olympus, Leica</td><td>various</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Gauze pads, 4&quot; x 4&quot;</td><td>Kendall Healthcare</td><td>6939</td><td></td></tr><tr><td>Synthetic serum</td><td>Life Global, or</td><td>LGPS-20; 20 mL, or</td><td>stored at 2 - 8 &amp;ordm;C</td></tr><tr><td></td><td>Irvine Scientific</td><td>SS-99193; 12 x 10 mL</td><td>purchase low endotoxin lot</td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma Chemical Co.</td><td>#S9378</td><td>Aliquot into 50&amp;nbsp;mL flasks, 1 year;&lt;br/&gt;
17.1 g/flask + Medium to 50 mL;&lt;br/&gt;
makes a 1 M solution;&lt;br/&gt;
Filter with 0.22 &amp;micro;m unit</td></tr><tr><td>Timer</td><td>Nalgene</td><td>5016-001</td><td></td></tr><tr><td>Thawing Solution</td><td>Innovative Cryo Enterprises</td><td>BL-TS (&amp;le;1.0 M Sucrose)</td><td>T1, T2, T3, T4; tored at 2 - 8 &amp;ordm;C for &amp;le;1 month after opening</td></tr><tr><td>Vitrification Solution*,**</td><td>Innovative Cryo Enterprises</td><td>BL-VS (&amp;ge;7.9 M [Glycerol/EG])</td><td>V1, V2, V3; stored at 2 - 8 &amp;ordm;C for &amp;le;1 month after opening</td></tr><tr><td colspan="4">* Non-permeating cryoprotective additives may include: sucrose, ficoll and sodium hyaluronate&amp;nbsp;</td></tr><tr><td colspan="4">** Other commercial preparations are typically ethylene glycol (EG)/dimethyl sulfoxide (DMSO; 30% v/v; 4.8 M), but could be EG/propylene glycol (32% v/v; 5.2 M). Mixed solutions are typically used to reduce cryo-toxicity concerns of a high molar solution. Commercial solutions typically include an ES and VS solution. The formulation of commercial preparation is typically proprietary property.</td></tr></tbody></table>

modified microsecure vitrification: a safe, simple and highly effective cryopreservation procedure for human blastocysts

Klinik embriyo vitrifikasyon &quot;açık&quot; sistemi (yani, direkt LN 2 kişi) ultra-hızlı soğutma vitrifikasyon başarı optimize etmek için bir zorunluluk olduğunu 21. yüzyılda ve yanlış kanı ile benzersiz vitrifikasyon cihazlarının gelişimi ile gelişti. Soğutma oranları önemini çevreleyen dogması önemli kalite kontrol faktörlerini (örneğin, kullanım kolaylığı, tekrarlanabilirlik, güvenilirlik, etiketleme, güvenlik ve depolama güvenliği) gözardı teknik varyasyon ve vitrifikasyon cihazların yaratılmasına tabi güvenli olmayan uygulamalara yol açmıştır. içi ve arası teknisyen varyasyonu en aza indirmek amaçlanmıştır güvenli, güvenli, tekrarlanabilir ve güvenilir mS-VTF yönteminin geliştirilmesi için izin verilen diğer cihazların kalite kontrol kusurları anlama. içselleştirilmiş, çift renkli, sabotaj p 1) 0.3 mL&#39;lik iyonomerik reçine embriyo saman: Aynı derecede önemli, iki var olan FDA uyumlu cihazların kullanılabilirliğini kombinetekrarlanabilir kaynak mühür potansiyeline sahip çatı etiketleme; ve 2) doğrudan çok etkili küresel vitrifikasyon cihazı yaratmak için embriyo (lar) yüklemek için, 300 mikron kimliği steril flexipettes sık kullanılan, kısaltılmış. Diğer aseptik gibi, vitrifikasyon sistemleri (örneğin, Yüksek Güvenlikli Vitrifikasyon (HSV), Rapid-i ve VitriSafe) etkin bir şekilde üreme tıbbında kullanılan, microSecure Vitrifikasyon (uS-VTF) yüksek sonrası ısınma sağkalım ve gebelik elde edebilirsiniz kanıtlamıştır kapalı sadeliği dikkat ve düşük teknik varyasyon sonuçları. dahili hidrofobik fiş ihtiva eden 0.3 mL&#39;lik bir embriyo, saman, ticari olarak pamuk, polivinil pirolidon (PVP) fişler sahip olan bir standart semen saman ile değiştirildi, ancak, bu, kaynak sızdırmazlığı sağlamak için onun iyonomerik reçine bileşimini muhafaza. Ancak, pamuk fişler temas üzerine flexipettes sıvı-embriyo içeriğini fitil olabilir. Bir modifiye mS-VTF yöntemi ek iç kaynak içerecek şekilde adapte olduCihaz yükleme tarafında fiş önce mühür. mS-VTF prosedürüne ilave teknik adım başarılı bir uygulama, yüksek sağkalım oranları (&gt;% 95) etkilenmez ve gebelik oranları bugün devam ediyor.

1316 (98.1%) hayatta iken 1341 vitrifiye blastosist Haziran 2014 2012 arasında ısıtılmış ve 1341 embriyolar (% 100) elde edildi. Biyopsi blastosist% 99.5 hayatta kalma üzerine yaşadı. Ağırlıklı olarak tek genetik test, öploid, vitrifiye embriyolar transfer üzerine, biz Merkezi tarafından bildirilen son ulusal istatistiklere göre, (Şekil 3) 20, en yüksek implantasyon oranları ve ABD&#39;de canlı doğum oranları, yaştan bağımsız bazı ulaşmak için başardık Hastalık Kontrol ve Yardımcı Üreme Teknolojileri Derneği (Tablo 1 ve 2) için. Yalnız Kriyoprezerve döngüleri (Tablo 1) (az 35 yaşında) iyi bir prognoz hasta popülasyonu değerlendiren laboratuvar hem implantasyon oranları (yani, bir embriyonun verimliliği gebelik kurmak) için ulusal ortalamasının üzerinde bir performansla ve sonuçta doğum oranları canlı<html> üzerinde% 30 oranında. Buna ek olarak, 70 araştırma-rıza gösterilen, yeniden vitrifiye anöploid blastokist kullanarak ortalarında 2014 yılında Modifiye depolama payet ilk geçerlilik / doğrulama% 100 geri kazanım ve% 100 sağkalım sonuçlandı. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/54871/54871fig1.jpg" /> 1. MicroSecure VTF Kur rakam. VTF çanak (A) farklı numaralı tutma damlacıkları yerleştirme önce 3 yıkama damlacıkları kullanan vitrifikasyon çözümleri 3 ayrı satırlar ile monte edilir. Ayrıca, kısaltılmış VTF ipuçları (yani 300 mikron kimliği flexipettes) ile bireysel pipetler güvenli ve düzenli kullanım için döndürülebilir bir strafor tüp raf (B) düzenlenir. temsili bir tek kullanımlık mikropipet ampul pipet montaj strafor raf üzerinde duran unutmayın.<html> arget = &quot;_ blank&quot;&gt; bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız. <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/54871/54871fig2.jpg" /> Şekil 2. Blastosist Değerlendirme Sistemi Modifiye. Bizim modifiye Gardner blastosist derecelendirme sistemi blastosist biyopsisi kolaylaştırmak için TE hücrelerinin neden olduğu herniasyonu oluşturmaktadır. Bir tarama blastosist (C)% 50&#39;den daha fazla herniasyonu sahipken, (derece 4 = Yukarı herniasyonu% 50 B) (Sınıf 3 =% 10&#39;dan daha az herniasyonu A) ve genişletilmiş blastosist modifikasyonu tam blastosistlerin erken taramayı dikkate 16. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54871/54871fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> 54871fig3.jpg &quot;/&gt; 3. Karşılaştırmalı Gebelik Çıktıları rakam. kümülatif 1,5 yıllık bir zaman aralığında, gebelik verileri vitrifiye ısıtılmış öploid blastokist transferi etkilerini değerlendirmek için karşılaştırılmıştır olmayan PGS döngülerine göre (n = 172 devir / 144 transferler) ağırlıklı olarak taze tutan (n = 160 devir / 153 transferler) 18 aktarır. Deneysel amaçlı, bu veriler açıkça uS-VTF prosedürü ile vitrifiye biyopsi blastosist canlılığını korumak olduğunu ortaya koymaktadır. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54871/54871fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Veri kaynağı </td><td> # döngüleri </td><td> transfer edilen embriyo # ortalama </td><td> İmplantasyon Oranı (%) </td><td> Canlı Doğum Oranı (%) </td></tr><tr><td> NB Lab * </td><td> 144 </td><td> 1.2 </td><td> 74.00% </td><td> 74.50% </td></tr><tr><td> Ulusal ortalama </td><td> 20.423 </td><td> 1.7 </td><td> 39.60% </td><td> 44.10% </td></tr><tr><td colspan="5"> * Veri Orange County Doğurganlık, Güney Kaliforniya Fertility Center ve 2008 yılında microSecure vitrifikasyon prosedürü kurdu geçerli Ovation Doğurganlık laboratuvarı (NB Lab) kullanarak Üreme Tıbbı klinikler için Southern California Merkezi&#39;nin 2014 performansa dayalı ortalaması alınmıştır. </td></tr></tbody></table> Tablo 1. 2014 CDC Üreme İstatistikleri Destekli. üç ila 35 yaş altı kadınların dondurulmuş embriyo transferi gebelik verileri 450&#39;den fazla raporlama kliniklerinde ABD 2013 Ulusal ortalamaya göre bizim NB Lab kullanarak hekim klinikleri raporlama. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td colspan="2"> SART Ulusal Ortalamalar </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Klinik - Devlet </td><td> Kadınlar </td><td> Kadınlar </td><td> Kadınlar </td><td> Kadınlar </td></tr><tr><td></td><td> &lt;35 yıl </td><td> 35-37 yıl </td><td> 38-40 yıl </td><td> 41-42 yıl </td></tr><tr><td> SCCRM-CA * </td><td> % 63.1 </td><td> % 58.3 </td><td> % 40.6 </td><td> 32.3% </td></tr><tr><td> CCRM-CO * </td><td> 64.7% </td><td> % 61.5 </td><td> % 40.4 </td><td> % 32.2 </td></tr><tr><td> RMA-NJ * </td><td> % 63.2 </td><td> % 59.7 </td><td> % 34.6 </td><td> % 18.7 </td></tr><tr><td> Ulusal ortalama </td><td> % 48.6 </td><td> % 38.3 </td><td> % 24.3 </td><td> % 12.3 </td></tr><tr><td colspan="5"> Üreme Tıbbı SCCRM-Güney California Merkezi; Üreme Tıbbı için CCRM-Colorado Merkezi; ve RMA-REPRODuctive Tıp Associates </td></tr><tr><td colspan="5"> * Bu önde gelen klinikler hepsi ağırlıklı olarak nakledilen embriyo başına canlı doğum başarısını optimize etmek için hasta bakımının standart uygulamaya, preimplantasyon genetik testler ile birlikte, vitrifiye embriyo transferi döngüleri hayata geçirdik. </td></tr></tbody></table> Tablo 2. 2014 Kümülatif canlı doğum oranları, diğer bazı saygın programlar yanı sıra, SART ile tezat Newport Beach, CA, bizim Ovation Doğurganlık Lab kullanarak SCCRM Kliniği için Yardımcı Üreme Teknolojileri Derneği (SART), tarafından bildirilen ulusal ortalamalar.

Watch this Scientific Journal Video about Modified MicroSecure Vitrification: A Safe, Simple and Highly Effective Cryopreservation Procedure for Human Blastocysts at JoVE.com

Modified MicroSecure Vitrification: A Safe, Simple and Highly Effective Cryopreservation Procedure for Human Blastocysts

MicroSecure Vitrification was developed as a non-commercial, aseptic closed vitrification device system that is compliant with FDA good manufacturing and tissue-handling practices. Due to the withdrawal of hydrophobic plugged embryo straws from the industry, the vitrification procedure was modified to include an inner seal before the standard internal cotton plug.

Modifiye MicroSecure Vitrifikasyon: İnsan Blastosistlerinin A, Güvenli Basit ve Etkili Kryoprezervasyon Prosedürü

Clinical embryo vitrification evolved with the development of unique vitrification devices in the 21st century and with the misconception that ultra-rapid ...

modified-microsecure-vitrification-safe-simple-highly-effective

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

11.9K Görüntüleme.  Ovation Fertility. MicroSecure Vitrification was developed as a non-commercial, aseptic closed vitrification device system that is compliant with FDA good manufacturing and tissue-handling practices. Due to the withdrawal of hydrophobic plugged embryo straws from the industry, the vitrification procedure was modified to include an inner seal before the standard internal cotton plug.

Video: Modified MicroSecure Vitrification: A Safe, Simple and Highly Effective Cryopreservation Procedure for Human Blastocysts

Minimally Invasive Embryo Transfer and Embryo Vitrification at the Optimal Embryo Stage in Rabbit Model

Assisted reproductive techniques (ARTs), such as in vitro embryo culture or embryo cryopreservation, affect natural development patterns with perinatal and postnatal consequences. To ensure the innocuousness of ART applications, studies in animal models are necessary. In addition, as a last step, embryo development studies require evaluation of their capacity to develop full-term healthy offspring. Here, embryo transfer to the uterus is indispensable to perform any ARTs-related experiment.
The rabbit has been used as a model organism to study mammalian reproduction for over a century. In addition to its phylogenetic proximity to the human species and its small size and low maintenance cost, it has important reproductive characteristics such as induced ovulation, a chronology of early embryonic development similar to humans and a short gestation that allow us to study the consequences of ART application easily. Moreover, ARTs (such as intracytoplasmic sperm injection, embryo culture, or cryopreservation) are applied with suitable efficiency in this species.
Using the laparoscopic embryo transfer technique and the cryopreservation protocol presented in this article, we describe 1) how to transfer embryos through an easy, minimally invasive technique and 2) an effective protocol for long-term storage of rabbit embryos to provide time-flexible logistical capacities and the ability to transport the sample. The outcomes obtained after transferring rabbit embryos at different developmental stages indicate that morula is the ideal stage for rabbit embryo recovery and transfer. Thus, an oviductal embryo transfer is required, justifying the surgical procedure. Furthermore, rabbit morulae are successfully vitrified and laparoscopically transferred, proving the effectiveness of the described techniques.

Assisted reproductive techniques (ARTs) are in continuous evaluation to improve outcomes and reduce the associated risks. This manuscript describes a minimally invasive embryo transfer procedure with an efficient cryopreservation protocol that allows the use of rabbits as an ideal animal model of human reproduction.

En düşük Invaziv embriyo transferi ve tavşan modelinde optimum embriyo aşamasında embriyo vitrifikasyon

Assisted reproductive techniques (ARTs), such as in vitro embryo culture or embryo cryopreservation, affect natural development patterns with perinatal ...

Gelişim Biyolojisi

Human Blastocyst Biopsy and Vitrification

Blastocyst biopsy is performed to obtain a reliable genetic diagnosis during IVF cycles with preimplantation genetic testing. Then, the ideal workflow entails a safe and efficient vitrification protocol, due to the turnaround time of the diagnostic techniques and to transfer the selected embryo(s) on a physiological endometrium in a following natural cycle. A biopsy approach encompassing the sequential opening of the zona pellucida and retrieval of 5-10 trophectoderm cells (ideally 7-8) limits both the number of manipulations required and the exposure of the embryo to sub-optimal environmental conditions. After proper training, the technique was reproducible across different operators in terms of timing of biopsy (~8 min, ranging 3-22 min based on the number of embryos to biopsy per dish), conclusive diagnoses obtained (~97.5%) and live birth rates after vitrified-warmed euploid blastocyst transfer (&#62;40%). The survival rate after biopsy, vitrification and warming was as high as 99.8%. The re-expansion rate at 1.5 h from warming was as high as 97%, largely dependent on the timing between biopsy and vitrification (ideally &#8804;30 min), blastocyst morphological quality and day of biopsy. In general, it is better to vitrify a collapsed blastocyst; therefore, in non-PGT cycles, laser-assisted artificial shrinkage might be performed to induce embryo collapse prior to cryopreservation. The most promising future perspective is the non-invasive analysis of the IVF culture media after blastocyst culture as a putative source of embryonic DNA. However, this potential avant-garde is still under investigation and a reliable protocol yet needs to be defined and validated.

Blastocyst biopsy and vitrification are required to efficiently conduct preimplantation genetic testing. An approach entailing the sequential opening of the zona pellucida and retrieval of 7-8 trophectoderm cells in day 5-7 post-insemination limits both the number of manipulations required and the exposure of the embryo to sub-optimal environmental conditions.

İnsan blastosist biyopsisi ve vitrifikasyon

Blastocyst biopsy is performed to obtain a reliable genetic diagnosis during IVF cycles with preimplantation genetic testing. Then, the ideal workflow ...

Minimum Volume Vitrification of Immature Feline Oocytes

In wild animals&#8217; conservation programs, gamete banking is crucial to safeguard genetic resources of valuable individuals and rare species and to promote biodiversity preservation. In felids, most species are threatened with extinction, and domestic breeds are used as a model to increase the efficiency of protocols for germplasm banking. Among oocyte cryopreservation techniques, vitrification is more and more popular in human and veterinary assisted reproduction. Cryotop vitrification, which was at first developed for human oocytes and embryos, has demonstrated to be well-suited for cat oocytes. This method offers several advantages, such as the feasibility in field conditions and the speed of the procedure, which can be helpful when several samples need to be processed. However, the efficiency is strongly dependent on the operator&#8217;s skills, and intra- and inter-laboratory standardization are needed, as well as personnel training. This protocol describes minimum volume vitrification of immature feline oocytes on a commercial support in a step by step field-friendly protocol, from oocyte collection to warming. Following the protocol, preservation of oocyte integrity and viability at warming (as high as 90%) can be expected, although there is still room for improvement in post-warming maturation and embryonic development outcomes.

This manuscript describes a protocol for the minimum volume vitrification of immature cat oocytes with laboratory-made media on commercial supports. It covers every step from oocyte isolation from ex vivo gonads to vitrification and warming.

Olgunlaşmamış Kedi Yumurtalarının Minimum HacimVitrifikasyonu

In wild animals&#8217; conservation programs, gamete banking is crucial to safeguard genetic resources of valuable individuals and rare species and to ...

Vitrification of In Vitro Matured Oocytes Collected from Adult and Prepubertal Ovaries in Sheep

In livestock, in vitro embryo production systems can be developed and sustained thanks to the large number of ovaries and oocytes that can be easily obtained from a slaughterhouse. Adult ovaries always bear several antral follicles, while in pre-pubertal donors the maximal numbers of oocytes are available at 4 weeks of age, when ovaries bear peak numbers of antral follicles. Thus, 4 weeks old lambs are considered good donors, even if the developmental competence of prepubertal oocytes is lower compared to their adult counterpart. 
Basic research and commercial applications would be boosted by the possibility of successfully cryopreserving vitrified oocytes obtained from both adult and prepubertal donors. The vitrification of oocyte collected from prepubertal donors would also allow shortening the generation interval and thus increasing the genetic gain in breeding programs. However, the loss of developmental potential after cryopreservation makes mammalian oocytes probably one of the most difficult cell types to cryopreserve. Among the available cryopreservation techniques, vitrification is widely applied to animal and human oocytes. Despite recent advancements in the technique, exposures to high concentrations of cryoprotective agents as well as chilling injury and osmotic stress still induce several structural and molecular alterations and reduce the developmental potential of mammalian oocytes. Here, we describe a protocol for the vitrification of sheep oocytes collected from juvenile and adult donors and matured in vitro prior to cryopreservation. The protocol includes all the procedures from oocyte in vitro maturation to vitrification, warming and post-warming incubation period. Oocytes vitrified at the MII stage can indeed be fertilized following warming, but they need extra time prior to fertilization to restore damage due to cryopreservation procedures and to increase their developmental potential. Thus, post-warming culture conditions and timing are crucial steps for the restoration of oocyte developmental potential, especially when oocyte are collected from juvenile donors.

The protocol aims at providing a standard method for the vitrification of adult and juvenile sheep oocytes. It includes all the steps from the preparation of the in vitro maturation media to the post-warming culture. Oocytes are vitrified at the MII stage using Cryotop to ensure the minimum essential volume.

Koyunlarda Erişkin ve Prepubertal Yumurtalıklardan Toplanan In Vitro Olgunlaşmış Oositlerin Vitrifikasyonu

In livestock, in vitro embryo production systems can be developed and sustained thanks to the large number of ovaries and oocytes that can be easily ...

Morphometric Protocol for the Objective Assessment of Blastocyst Behavior During Vitrification and Warming Steps

This article describes the noninvasive method of blastocyst morphometry based on time-lapse microphotography for the accurate monitoring of a blastocyst&#39;s volume changing during individual phases before and after vitrification. The method can be useful in searching for the most optimal timing of blastocyst exposure to different concentrations of cryoprotectants by observing blastocyst shrinkage and re-expansion in different pre- and post-vitrification phases. With this methodology, the blastocyst vitrification protocol can be optimized. For a better demonstration of the usefulness of this morphometric method, two different blastocyst preparation protocols for vitrification are compared; one with using an artificial blastocoel collapsing and one without this intervention before vitrification. Both blastocysts&#39; volume changes are followed by time-lapse microphotography and measured by photo-editing software tools. The measurements are taken every 20 seconds in previtrification phases and every 5 minutes in the post-warming period. The changes of the blastocyst dimensions per time unit are presented graphically in line diagrams. The results show a long equilibration previtrification phase in which the intact blastocyst first shrinks and then slowly refills the blastocoel, entering vitrification with a fluid-filled blastocoel. The artificially collapsed blastocyst remains in its shrunken stage through the entire equilibration phase. During the vitrification phase, it also does not change its volume. Since the blastocyst morphometry shows a constant volume of the artificially collapsed blastocysts during the previtrification step, it seems that this stage could be shorter. The described protocol provides many additional comparative parameters of blastocyst behavior during and after cryopreservation on the basis of the speed and intensity of the volume changes, the number of partial blastocoel contractions or total blastocyst collapses, and the time to a total blastocoel re-expansion or the time to hatching.

Here we present a time-lapse morphometric protocol to follow the intensity of blastocyst shrinkage and re-expansion during previtrification interventions and post-warming recovery. The application of the protocol is possible in in vitro fertilization laboratories equipped with time-lapse microscopes and is recommended in the development of an optimal blastocyst vitrification method.

Blastosist davranış objektif değerlendirme Vitrifiye ve ısınma adımları sırasında için xarakteristikaları Protokolü

This article describes the noninvasive method of blastocyst morphometry based on time-lapse microphotography for the accurate monitoring of a ...

Biyomühendislik

Cryopreservation of Mouse Embryos by Ethylene Glycol-Based Vitrification

Cryopreservation of mouse embryos is a technological basis that supports biomedical sciences, because many strains of mice have been produced by genetic modifications and the number is consistently increasing year by year. Its technical development started with slow freezing methods in the 1970s1, then followed by vitrification methods developed in the late 1980s2. Generally, the latter technique is advantageous in its quickness, simplicity, and high survivability of recovered embryos. However, the cryoprotectants contained are highly toxic and may affect subsequent embryo development. Therefore, the technique was not applicable to certain strains of mice, even when the solutions are cooled to 4&deg;C to mitigate the toxic effect during embryo handling. At the RIKEN BioResource Center, more than 5000 mouse strains with different genetic backgrounds and phenotypes are maintained3, and therefore we have optimized a vitrification technique with which we can cryopreserve embryos from many different strains of mice, with the benefits of high embryo survival after vitrifying and thawing (or liquefying, more precisely) at the ambient temperature4.
Here, we present a vitrification method for mouse embryos that has been successfully used at our center. The cryopreservation solution contains ethylene glycol instead of DMSO to minimize the toxicity to embryos5. It also contains Ficoll and sucrose for prevention of devitrification and osmotic adjustment, respectively. Embryos can be handled at room temperature and transferred into liquid nitrogen within 5 min. Because the original method was optimized for plastic straws as containers, we have slightly modified the protocol for cryotubes, which are more easily accessible in laboratories and more resistant to physical damages. We also describe the procedure of thawing vitrified embryos in detail because it is a critical step for efficient recovery of live mice. These methodologies would be helpful to researchers and technicians who need preservation of mouse strains for later use in a safe and cost-effective manner.

An ethylene glycol-based vitrification method for mouse embryos is described. It is advantageous to other methods in its simplicity and low embryonic toxicity, and therefore can be broadly applicable to many strains of mice, including inbred and gene-modified mice.

Etilen Glikol Tabanlı Vitrifikasyon Fare Embriyolar Kriyoprezervasyon

Cryopreservation of mouse embryos is a technological basis that supports biomedical sciences, because many strains of mice have been produced by genetic ...

Biyoloji

Bulk Droplet Vitrification for Primary Hepatocyte Preservation

Vitrification is a promising ice-free alternative for classic slow-freezing (at approximately 1 &#176;C/min) cryopreservation of biological samples. Vitrification requires extremely fast cooling rates to achieve transition of water into the glass phase while avoiding injurious ice formation. Although pre-incubation with cryoprotective agents (CPA) can reduce the critical cooling rate of biological samples, high concentrations are generally needed to enable ice-free cryopreservation by vitrification. As a result, vitrification is hampered by CPA toxicity and restricted to small samples that can be cooled fast. It was recently demonstrated that these inherent limitations can be overcome by bulk droplet vitrification. Using this novel method, cells are first pre-incubated with a low intracellular CPA concentration. Leveraging rapid osmotic dehydration, the intracellular CPA is concentrated directly ahead of vitrification, without the need to fully equilibrate toxic CPA concentrations. The cellular dehydration is performed in a fluidic device and integrated with continuous high throughput generation of large sized droplets that are vitrified in liquid nitrogen. This ice-free cryopreservation method with minimal CPA toxicity is suitable for large cell quantities and results in increased hepatocyte viability and metabolic function as compared to classical slow-freezing cryopreservation. This manuscript describes the methods for successful bulk droplet vitrification in detail.

This manuscript describes an ice-free cryopreservation method for large quantities of rat hepatocytes whereby primary cells are pre-incubated with cryoprotective agents at a low concentration and vitrified in large droplets.

Primer Hepatosit Korunması için Dökme Damlacık Vitrifikasyon

Vitrification is a promising ice-free alternative for classic slow-freezing (at approximately 1 &#176;C/min) cryopreservation of biological samples. ...

Fertility Preservation Through Oocyte Vitrification: Clinical and Laboratory Perspectives

Preserving female fertility is crucial in a multifunctional healthcare system that takes care of patients' future quality of life. Oocyte cryopreservation is recognized by several international scientific societies as the gold standard for fertility preservation in postpubertal women, for both medical and non-medical indications. The main medical indications are oncologic diseases, gynecologic diseases such as severe endometriosis, systemic diseases compromising the ovarian reserve, and genetic conditions involving premature menopause. This paper describes the whole clinical and laboratory work-up of a fertility preservation treatment by outlining recommendations for objective and evidence-based counseling. Furthermore, it focuses on the effectiveness of the procedure and describes the most appropriate strategies to fully exploit the ovarian reserve and maximize the number of oocytes retrieved in the shortest possible time. The evaluation of the ovarian reserve, the definition of an ideal stimulation protocol, as well as oocyte retrieval, denudation, and vitrification procedures have been detailed along with approaches to maximize their efficacy, efficiency, and safety.

Oocyte cryopreservation is recognized by several international scientific societies as the gold standard for fertility preservation in postpubertal women. Appropriate clinical and laboratory strategies ensure maximum efficacy, efficiency, and safety of fertility preservation treatments.

Oosit Vitrifikasyonu ile Doğurganlığın Korunması: Klinik ve Laboratuvar Perspektifleri

Preserving female fertility is crucial in a multifunctional healthcare system that takes care of patients' future quality of life. Oocyte cryopreservation ...

Tıp

Single Cell Collection of Trophoblast Cells in Peri-implantation Stage Human Embryos

Human implantation, the apposition and adhesion to the uterine surface epithelia and subsequent invasion of the blastocyst into the maternal decidua, is a critical yet enigmatic biological event that has been historically difficult to study due to technical and ethical limitations. Implantation is initiated by the development of the trophectoderm to early trophoblast and subsequent differentiation into distinct trophoblast sublineages. Aberrant early trophoblast differentiation may lead to implantation failure, placental pathologies, fetal abnormalities, and miscarriage. Recently, methods have been developed to allow human embryos to grow until day 13 post-fertilization in vitro in the absence of maternal tissues, a time-period that encompasses the implantation period in humans. This has given researchers the opportunity to investigate human implantation and recapitulate the dynamics of trophoblast differentiation during this critical period without confounding maternal influences and avoiding inherent obstacles to study early embryo differentiation events in vivo. To characterize different trophoblast sublineages during implantation, we have adopted existing two-dimensional (2D) extended culture methods and developed a procedure to enzymatically digest and isolate different types of trophoblast cells for downstream assays. Embryos cultured in 2D conditions have a relatively flattened morphology and may be suboptimal in modeling in vivo three-dimensional (3D) embryonic architectures. However, trophoblast differentiation seems to be less affected as demonstrated by anticipated morphology and gene expression changes over the course of extended culture. Different trophoblast sublineages, including cytotrophoblast, syncytiotrophoblast and migratory trophoblast can be separated by size, location, and temporal emergence, and used for further characterization or experimentation. Investigation of these early trophoblast cells may be instrumental in understanding human implantation, treating common placental pathologies, and mitigating the incidence of pregnancy loss.

Here, we describe a method for warming vitrified human blastocysts, culturing them through the implantation period in vitro, digesting them into single cells and collecting early trophoblast cells for further investigation.

Peri-implantasyon Aşamasında Trophoblast Hücrelerinin Tek Hücre Li Hücre Koleksiyonu İnsan Embriyoları

Human implantation, the apposition and adhesion to the uterine surface epithelia and subsequent invasion of the blastocyst into the maternal decidua, is a ...

<meta charset="utf8"></head><body>Vitrifiye İnsan Yumurtalık Korteks Dokularında Foliküler Canlılık Değerlendirmesi

Vitrification of Ovarian Cortex Tissue to Achieve a Glassy State of Aggregation

Ovarian tissue cryopreservation (OTC) is an important option for fertility preservation. For patients whose gonadotoxic treatments cannot be postponed or for pre-pubertal girls, it is often the only option for fertility protection. Cryopreservation can be performed either by vitrification or by slow freezing. Slow freezing is currently the standard approach. An increasing number of studies indicate that vitrification can replace slow freezing in the state-of-the-art in vitro fertilization (IVF) laboratories, significantly improving thawing survival rates and simplifying the technical aspects of cryopreservation. A metal grid-based, high-throughput protocol for rapid vitrification of ovarian cortex tissue, suitable for clinical routine, is described. The sterilization of metal grids and liquid nitrogen ensures high quality, meeting good manufacturing practice (GMP) standards. Vitrification was conducted to ensure ultra-rapid cooling rates. Instead of slowly thawing, samples were rapidly warmed. To assess follicular viability, calcein staining was performed both prior to cryopreservation and after rapid warming. The successful application of vitrification and rapid warming using metal grids is reported. No significant differences in follicular viability were observed prior to vitrification and after rapid warming. These results substantiate the high capacity of tissue vitrification for clinical routine applications as a potential substitute for the widely used slow-freezing method.

<meta charset="utf8"></head><body>Yazar Spotlight: Yumurtalık Dokusu Vitrifikasyonu ve İn Vitro Foliküler Büyüme Yoluyla Genç Kadın Kanser Hastalarında Doğurganlığın Korunmasının İlerletilmesi

A protocol for the vitrification of ovarian tissue, as an alternative cryopreservation method to the widely used slow freezing protocol, is presented.

Camsı bir agregasyon durumu elde etmek için yumurtalık korteks dokusunun vitrifikasyonu

Ovarian tissue cryopreservation (OTC) is an important option for fertility preservation. For patients whose gonadotoxic treatments cannot be postponed or ...