Takdir Dr. T. Taki ve Dr. M. Funamoto ve teknik destek için genişletilir.

Deney öncesinde tüm rats bir hafta alışmana verilmesi gerekir. Hayvanlar üzerinde tüm cerrahi işlemler Kılavuzu uygun olarak bakım ve laboratuvar hayvanlarının kullanımı (www.nap.edu/catalog/5140.html) veya diğer uygun etik kurallar için yapılmalıdır. İletişim kuralları hayvan refahı Komitesi devam etmeden önce uygun Kurumu tarafından onaylanması. Tüm sonraki yordamlar aseptik koşullar altında gerçekleştirilmelidir.
1. CPB devre hazırlama
Not: kişisel koruyucu ekipman eldiven, gözlük ve temiz kat veya tek kullanımlık elbisesi giymek.
<ol><li>Set-up KPB devre<ol>
<li>Polivinil klorür tüpler KPB devre ve şekil 1' de gösterildiği gibi bir değiştirilmiş yenidoğan membran oxygenator için önceden tasarlanmış bir Venöz rezervuar bağlanmanız gerekir. Tüm bağlantıları sıkı ve su sızıntısı değil olun.</li>
		<li>CPB devre silindir pompa aygıt üreticinin iletişim kuralları göre ayarlayın.</li>
		<li>Silindir pompa yüksekliği ayarlanabilir bir tabloda tutmak ve deneysel masanın altına 10 cm için tablonun yüksekliğini ayarla.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Astar KPB devre<ol>
<li>Hydroxyethyl nişasta çözüm mix 12 mL 0.1 mL heparin ve 0.5 mL KPB devre priming için % 7 karbonat çözeltisi ile.</li>
		<li>11 mL astar çözeltisi ile devre yavaşça dönen pompa bezi ile Başbakan. Bir 18'lik havalandırma iğne hava havalandırma için rezervuar içine koymak.</li>
		<li>Membran oxygenator deair, oxygenator devirme ile birkaç kez vurdu. Hava hava embolisi ve yetersiz oksijen önlemek için tamamen gizlenmiş olmalı. Devre astar sırasında tarafından havzanın ayarla bir elektrikli ısı lamba devre ısı.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. CPB önce yordamı
Not: Cerrahi alan ve aygıtları % 70 alkol veya dördüncül amonyum bileşik kullanmadan önce dezenfekte.
<ol><li>Anestezi ve hayvan ayarı<ol>
<li>Bir sıçan bir Buharlaştırıcı %3.0 isoflurane karışık hava soluma ile anestezi. 16 lik kanül nefes borusu entübe ve fare çalışma kürsüye ayarlayın. (Örn: analjezi dozaj ve sıklığı ile ilgili senin yerel hayvan bakımı yönergeleri izleyin buprenorfin 0.005 mg/kg SC) Not: Sıçan derin anestezi olmalı ve refleksleri kaybetmek. Solunum ritmik olmalı ama değil tutuklandı.</li>
		<li>Fareyi bir elektrikli Isıtma yastığı ile donatılmış bir işletim masa aktarın. Mekanik havalandırma 8 mL/kg tidal hacim, 70 devir/dk solunum ve oksijen sensörü tarafından izlenen ilham oksijen kesir % 30'u ile başlar.</li>
		<li>Anestezi ile 1.5-%2.0 isoflurane ve ketamin/xylazine KPB başlatma adlı ek bir yönetim ile koruyun.</li>
		<li>Rektal sıcaklık rektal sonda kullanarak izlemek. Normothermic vücut ısısını 37 ° c sıcaklık pedi sıcaklığını ayarlama ve ısı lamba devre yerleştirerek korumak.</li>
		<li>Fareyi sırtüstü pozisyonda ayarla ve dört bacaklarda iğne sabitleme ile germek. Kalp atışı ikili omuz ve sol karın ECG elektrot iğne ayarlayarak monitör. Nemli gazlı bez yerleştirin veya kuruluk önlemek için gözleri oftalmik merhem uygulamak.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Cannulation<ol>
<li>Tüm vücut yüzeyinin % 70 etanol veya başka bir antiseptik çözüm püskürtme sprayingby tarafından dezenfekte sonra saç bilateral inguinal bölge ve şu servikal bölge üzerinde bir ustura ile tıraş ederim. Yerel Anestezi (örneğin lidokain) Cilt kesi yapmadan önce kullanılmalıdır. Gibi alternatif bir cerrahi bodur kesi sitenin tüm vücut yerine kullanılabilir Not: vücut ısısı bir düşüş önlemek için % 70 etanol sprey.</li>
		<li>Cilt (yaklaşık 5 mm) bilateral inguinal bölge ve şu servikal bölge makas tarafından deşmek ve açık açık sağ ana femoral arter ortaya çıkarmak için doku incelemek. Atardamar damar ve sinir yakın dikkatlice ayırın. Ortak femoral arter sonunda 4-0 ipek ve pozlama gerginliği ligate.</li>
		<li>Şu ortak femoral arter arter duvarına (yaklaşık 1 mm) arter için dikey yönde mikro makas kesilmiş ve dikkatli--dan belgili tanımlık kesme 24'lik intravenöz kateter sistemik arter izlemek için 1 cm derinliğe cannulate basınç ve arteriyel kan gazı kısmi basınç analiz.</li>
		<li>Heparin sodyum (500 IU/kg) kateter üzerinden yönetmek.</li>
		<li>2.2.2 ve 24'lik intravenöz kateter sol ortak femoral arter KPB devre için bir Arteryel infüzyon çizgisiyle cannulate 2.2.3 adımları izleyin.</li>
		<li>17'lik çoklu delik angiocatheter şu iç juguler ven yerleştirin ve sağ Kulakçık ve inferior vena kava (IVC) önceden. Kateter itmeyin kabaca gemi kolayca zarar verebilir. CPB devre Venöz drenaj için kateter takın.</li>
		<li>Her cannulated bölgesinin kirlenmesini önlemek için nemli bir gazlı bez ile kapak.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. işlem CPB sırasında
<ol><li>CPB sırasında 0, 8 L/dk oxygenator % 100 oksijen gazı sunmak ve 30 devir/dk solunum oranını düşürmek. Arteryel oksijen kısmi basıncı 200 ile 400 mmHg için gereklidir.</li>
	<li>CPB başında KPB başlatma sonra vücut ısısı hemen damla azaltmak için en fazla, 42 ° c ısı ped sıcaklık ayarını yükseltin. Vücut sıcaklığı 36 ° C'ye döndüğünde 37 ° c ayar sıcaklığı ayarlayın</li>
	<li>Dikkatle KPB akışını başlatmak ve havzanın kan kan hacmi göz kulak. Boş bir rezervuar hava embolisi neden olabilir. Havzanın kan kan hacmi azalır Eğer pompa akış tablo yüksekliğini ayarlayıp veya drenaj kateter konumunu değiştirerek düşürebilir. Kolayca delikli sağ atriyumu ve/veya kalp ritim bozukluğu neden olabilir Venöz drenaj kateter yeniden konumlandırmak değil.</li>
	<li>Artırmak ve 100 mL/kg pompa akışı tutmak/min, ise ortalama kan basıncı 70 mmHg korunur. Uygun kan basınç korunur, en az 1 ml rezervuar içinde küçük bir birim kabul edilebilir olur. Az 1 mL rezervuar kanında ise, organlarda bir hava embolisi neden olabilir.</li>
	<li>Kan basıncı sabit değil, 2-3 mL astar çözeltisi (KPB sonra anemi neden) devre ekleyin.</li>
</ol>4. işlem KPB sonrası
<ol><li>Venöz drenaj boru kelepçe ve devre kaldırın. Yavaş yavaş arter kan basıncı korumak için devre içinde kalan kan süzülür.</li>
	<li>70 devir/dk solunum hızı artırın.</li>
	<li>Venöz drenaj kateter ve sol atardamar kateter kaldırın ve sonra proksimal ve distal sitedeki gemi ligate.</li>
	<li>Arteryel satırını doğru femoral arterin 60 dk KPB bitiminden sonra kaldırın.</li>
	<li>Her yara serum fizyolojik ile temiz ve yaranın dikiş ile kapatın.</li>
	<li>Anestezi ve tüpü boğaza tüp hayvan spontan solunum kontrol ettikten sonra son bulur.</li>
	<li>Isıtılan steril izotonik sıvılar yönetmek ve ısı mat ve elektrik ısı lamba hayvanlar sıcak tutmak için kullanın. Koşulları hayvanın anestezi kurtarma kadar sık sık kontrol edin. Ne zaman gerekli solunum desteği sağlar. Not: hayvan hareket başladığında, ısı kaynağı sıcak veya soğuk tarafı seçmek hayvan izin vermek belgili tanımlık kafes bölümünden çıkarılmalıdır.</li>
	<li>Tam olarak solunum tekrar yerine geleceğinden hayvan şirketin diğer hayvanların dışında tutmak. Hayvan kadar tam kurtarma şirkete iade etmeyin.</li>
	<li>Anestezi kurtarma sonra yiyecek ve su alımını kontrol ve uygun beslenme desteği sağlar. Analjezikler yönetmek ve rahatsızlık veya ağrı belirtileri kontrol.</li>
</ol>

<ol><li>Gibbon, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+a+mechanical+heart+and+lung+apparatus+to+cardiac+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Minn+Med%22%5BJournal%5D)">Application of a mechanical heart and lung apparatus to cardiac surgery.</a> Minn Med. 37 (3), 171-185 (1954).</li>
<li>Apostolakis, E., Filos, K. S., Koletsis, E., Dougenis, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lung+dysfunction+following+cardiopulmonary+bypass%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiac+Surg%22%5BJournal%5D)">Lung dysfunction following cardiopulmonary bypass.</a> J Cardiac Surg. 25 (1), 47-55 (2010).</li>
<li>Popovic, P., Horecky, J., Popovic, V. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Instrumental+responses+in+rats+after+hypothermic+cardiopulmonary+by-pass%5BTitle%5D)+AND+%22P+Soc+Exp+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Instrumental responses in rats after hypothermic cardiopulmonary by-pass.</a> P Soc Exp Biol Med. 126 (1), 225-228 (1967).</li>
<li>Fabre, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+recovery+model+of+partial+cardiopulmonary+bypass+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Perfusion%22%5BJournal%5D)">A recovery model of partial cardiopulmonary bypass in the rat.</a> Perfusion. 16 (3), 215-220 (2001).</li>
<li>Hirao, S., Masumoto, H., Minatoya, K. <a target="_blank" href="https://www.clinicsinsurgery.com/pdfs_folder/cis-v2-id1509.pdf">Rat cardiopulmonary bypass models to Investigate multi-organ injury.</a> Clin Surg. 2, 1-6 (2017).</li>
<li>Jungwirth, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurologic+outcome+after+cardiopulmonary+bypass+with+deep+hypothermic+circulatory+arrest+in+rats%3A+description+of+a+new+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiov+Sur%22%5BJournal%5D)">Neurologic outcome after cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest in rats: description of a new model.</a> J Thorac Cardiov Sur. 131 (4), 805-812 (2006).</li>
<li>de Lange, F., Yoshitani, K., Podgoreanu, M. V., Grocott, H. P., Mackensen, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+survival+model+of+cardioplegic+arrest+and+cardiopulmonary+bypass+in+rats%3A+a+methodology+paper%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">A novel survival model of cardioplegic arrest and cardiopulmonary bypass in rats: a methodology paper.</a> J Cardiothorac Surg. 3, 51(2008).</li>
<li>Peters, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+experimental+model+of+myocardial+infarction+and+controlled+reperfusion+using+a+miniaturized+cardiopulmonary+bypass+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Interact+Cardiovasc+Th%22%5BJournal%5D)">An experimental model of myocardial infarction and controlled reperfusion using a miniaturized cardiopulmonary bypass in rats.</a> Interact Cardiovasc Th. 19 (4), 561-564 (2014).</li>
<li>Engels, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+cardiopulmonary+bypass+with+deep+hypothermic+circulatory+arrest+rat+model+for+the+investigation+of+the+systemic+inflammation+response+and+induced+organ+damage%5BTitle%5D)+AND+%22J+Inflamm%22%5BJournal%5D)">A cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest rat model for the investigation of the systemic inflammation response and induced organ damage.</a> J Inflamm. 11 (26), (2014).</li>
<li>Pinto, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+extracellular+isoform+of+superoxide+dismutase+has+a+significant+impact+on+cardiovascular+ischaemia+and+reperfusion+injury+during+cardiopulmonary+bypass%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cardio-Thorac%22%5BJournal%5D)">The extracellular isoform of superoxide dismutase has a significant impact on cardiovascular ischaemia and reperfusion injury during cardiopulmonary bypass.</a> Eur J Cardio-Thorac. 50 (6), 1035-1044 (2016).</li>
<li>Zhang, Z., Wu, Y., Zhao, Y., Xiao, X., Liu, J., Zhou, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+changes+in+HMGB1+levels+correlate+with+inflammatory+responses+during+cardiopulmonary+bypass%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Ther+Med%22%5BJournal%5D)">Dynamic changes in HMGB1 levels correlate with inflammatory responses during cardiopulmonary bypass.</a> Exp Ther Med. 5 (5), 1523-1527 (2013).</li>
<li>Kohno, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+serum+high-mobility+group+box+1+protein+elevation+on+oxygenation+impairment+after+thoracic+aortic+aneurysm+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Vessels%22%5BJournal%5D)">Impact of serum high-mobility group box 1 protein elevation on oxygenation impairment after thoracic aortic aneurysm repair.</a> Heart Vessels. 26 (3), 306-312 (2011).</li>
<li>Tseng, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+serum+biomarkers+and+clinical+factors+on+intensive+care+unit+mortality+and+6-month+outcome+in+relatively+healthy+patients+with+severe+pneumonia+and+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Markers%22%5BJournal%5D)">Impact of serum biomarkers and clinical factors on intensive care unit mortality and 6-month outcome in relatively healthy patients with severe pneumonia and acute respiratory distress syndrome.</a> Dis Markers. 2014, (2014).</li>
<li>Paparella, D., Yau, T. M., Young, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiopulmonary+bypass+induced+inflammation%3A+pathophysiology+and+treatment.+An+update%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cardio-Thorac%22%5BJournal%5D)">Cardiopulmonary bypass induced inflammation: pathophysiology and treatment. An update.</a> Eur J Cardio-Thorac. 21 (2), 232-244 (2002).</li>
<li>Hirao, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+human+soluble+thrombomodulin+prevents+acute+lung+injury+in+a+rat+cardiopulmonary+bypass+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiov+Sur%22%5BJournal%5D)">Recombinant human soluble thrombomodulin prevents acute lung injury in a rat cardiopulmonary bypass model.</a> J Thorac Cardiov Sur. , In Press. (2017).</li>
<li>Yamazaki, S., Inamori, S., Nakatani, T., Suga, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activated+protein+C+attenuates+cardiopulmonary+bypass-induced+acute+lung+injury+through+the+regulation+of+neutrophil+activation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiov+Sur%22%5BJournal%5D)">Activated protein C attenuates cardiopulmonary bypass-induced acute lung injury through the regulation of neutrophil activation.</a> J Thorac Cardiov Sur. 141 (5), 1246-1252 (2011).</li>
<li>Wang, C. T., Zhang, L., Wu, H. W., Wei, L., Xu, B., Li, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doxycycline+attenuates+acute+lung+injury+following+cardiopulmonary+bypass%3A+involvement+of+matrix+metalloproteinases%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Clin+Exp+Patho%22%5BJournal%5D)">Doxycycline attenuates acute lung injury following cardiopulmonary bypass: involvement of matrix metalloproteinases.</a> Int J Clin Exp Patho. 7 (11), 7460-7468 (2014).</li>
<li>Liu, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Curcumin+attenuates+cardiopulmonary+bypass-induced+lung+oxidative+damage+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiovasc+Pharm+T%22%5BJournal%5D)">Curcumin attenuates cardiopulmonary bypass-induced lung oxidative damage in rats.</a> J Cardiovasc Pharm T. 17 (4), 395-402 (2012).</li>
<li>Taki, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fetal+mesenchymal+stem+cells+ameliorate+acute+lung+injury+in+a+rat+cardiopulmonary+bypass+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiov+S%22%5BJournal%5D)">Fetal mesenchymal stem cells ameliorate acute lung injury in a rat cardiopulmonary bypass model.</a> J Thorac Cardiov S. 153 (3), 726-734 (2017).</li>
<li>Zhu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+a+novel+rat+model+without+blood+priming+during+normothermic+cardiopulmonary+bypass%5BTitle%5D)+AND+%22Perfusion%22%5BJournal%5D)">Establishment of a novel rat model without blood priming during normothermic cardiopulmonary bypass.</a> Perfusion. 29, 63-69 (2014).</li>
<li>Inoue, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deep+anesthesia+worsens+outcome+of+rats+with+inflammatory+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Inflamm+Res%22%5BJournal%5D)">Deep anesthesia worsens outcome of rats with inflammatory responses.</a> Inflamm Res. 65 (7), 563-571 (2016).</li>
<li>Bradfield, J. F., Schachtman, T. R., McLaughlin, R. M., Steffen, E. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+and+physiologic+effects+of+inapparent+wound+infection+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Behavioral and physiologic effects of inapparent wound infection in rats.</a> Lab Anim Sci. 42 (6), 572-578 (1992).</li>
</ol>

Tüm yazarlar ile ilgili ticari destek ifşa gerek yok.

Bu sıçan KPB modelde, inflamatuar sitokinlerin ve HMGB-1, inflamatuar yanıt düzenleyen bir anahtar transkripsiyon faktörü serum ve akciğer ifade düzeyleri önemli ölçüde KPB sonra arttı. HMGB-1 düzeyine serum salgılanmasını kalp damar cerrahisi11geçiren hastalarda yükselmiş ve en yüksek serum HMGB-1 seviye CPB sırasında daha ağır sistemik inflamatuar yanıt sendromu ile ilişkili olduğu önceki klinik çalışmalar gösterdi ve akciğer oksijenasyonu bozulma KPB<sup class=...

1953 yılında Dr. John H. Gibbon Jr. başarıyla KPB1kullanarak ilk kalp cerrahisi yapılan ve daha sonra temel bir modalite kardiyovasküler cerrahi oldu. CPB için ilgili çoklu organ komplikasyonlar hala teknikleri ve cihazlar önemli ölçüde rafine edilmiş iken, kalp damar ameliyatları sonucu güvenliğini aşmasına ve ameliyat sonrası morbidite ve mortalite2etkileyebilir. KPB ile ilgili organ hasarı bağışıklık sistemi harekete geçirmek ve sentez proinflamatuar sitokinler, iltifat harekete geçirmek ve üretim oksijen serbest radikallerin2neden olur. Onun patofizyolojisi, ancak, tam aydınlatılmamıştır değil.
Hayvan modelleri KPB klinik kullanımı recapitulating ve KPB sonrası açıklama patofizyolojik süreçlerin etkinleştirmek; Bu stratejileri bu komplikasyonları önlemek için gelişmekte olan önceden klinik çalışmaları kolaylaştırabilir. Beri Popovic ve ark. ilk KPB rat sıçan KPB manken 19673' te rapor modelleri rafine edilmiş ve yavaş yavaş daha fazla maliyet-etkililik, uygun deneysel süreç ve yöntemleri test bir bolluk nedeniyle büyük hayvan modellerin genetik meydana gelmiş ve protein düzeyleri. Buna ek olarak, doğuştan farelerin genetik olarak özdeş, olası biyolojik önyargıları azaltmak olabilir.
Fabre ve ark. ilk kurulan birden fazla organ sekel KPB4uzun süreli çalışma izin bir kurtarma modeli. Bu basit hayatta kalma model avantajları esneklik (KPB akışı ve süre), hayati durumu ve tekrarlanabilirlik sistemik inflamasyon vardır. Sıçan KPB modelleri KPB5sırasında çoklu organ yaralanması önlemek amacı tedavi stratejileri incelenmesi için çok önemli hale gelmiştir ve son zamanlarda klinik durumlar CPB sırasında simülasyonu için çeşitli modeller geliştirilmiştir. De Lange ve ark. Miyokard hasarı7için ilgili enzimatik, genetik ve histolojik yanıt tanımlamak için kullanılan bir kardiyak arrest modeli geliştirdi. Engin ve ark. Miyokard İnfarktüsü ve kontrollü reperfüzyon kalp disfonksiyonu odak iskemi ve reperfüzyon hasarı8üzerinden analiz etmek için kırılan bir KPB modeli kullanılarak düzenlenmiştir. Jungwirth ve ark. ilk kurulan global iskemi ve reperfüzyon hasarı DHCA ve destekler potansiyel nöroprotektif stratejileri6tarafından aydınlatmak derin hipotermik dolaşım tutuklama (DHCA) modeli. DHCA kullanarak çalışmalar hipotermi, reperfüzyon ve/veya hemoliz tetikleyen sinyal olaylar9etkisini araştırmak. Derin hipotermi harekete geçirmek ve çeşitli enzim inactivation etkileyebilir ve yollar ve mekanizmaları bilinmeyen10kalır. Öte yandan, kardiyak arrest modelleri veya kalp iskemi modelleri iskemi ve reperfüzyon kalp yaralanması araştırmak için kullanılmalıdır. Son derece insan KPB özetlemek çeşitli bu sıçan KPB modeller patolojik süreçler için KPB ile ilgili açığa vurmak ve KPB ile ilgili komplikasyonlar etkisinin azaltılmasına yardımcı olur.
Bu iletişim kuralı kan nakli ya da bir fare inotropic ajanlar olmadan basit bir KPB modeli gösterir. Bu modeli birden fazla organ sekel KPB ile uzun süreli çalışma için verir.

<table><tbody><tr><td>Rodent Ventilator 7025</td><td>Ugo Basile</td><td>7025</td><td>Ventilator</td></tr><tr><td>OxiQuant B</td><td>ENVITEC</td><td>46-00-0023</td><td>Oxygen Sensor</td></tr><tr><td>CMA 450 Temperature Controller</td><td>CMA</td><td>8003759</td><td>Temperature Controller</td></tr><tr><td>CMA 450 Heating Pad</td><td>CMA</td><td>8003763</td><td></td></tr><tr><td>CMA 450 Rectal Probe</td><td>CMA</td><td>8003761</td><td></td></tr><tr><td>DIN(8) to Disposable BP Transducer</td><td>ADInstruments</td><td>MLAC06</td><td></td></tr><tr><td>Disposable BP Transducer</td><td>ADInstruments</td><td>MLT0670</td><td></td></tr><tr><td>IX-214 Data Recorder</td><td>iWorx Systems</td><td>IWX-214</td><td>amplifier</td></tr><tr><td>LabScribe software</td><td>iWorx Systems</td><td></td><td>software</td></tr><tr><td>Roller pump</td><td>Furue Science</td><td>Model RP-VT</td><td>pump</td></tr><tr><td>Happy Cath</td><td>Medikit</td><td>EB 19G 4HCLs PP</td><td>17-gauge multiorifice angiocatheter</td></tr><tr><td>SURFLO ETFE I.V. Catheter</td><td>Terumo</td><td>SR-OX2419CA</td><td>24-gauge angiocatheter</td></tr><tr><td>Oxygenator</td><td>Mera</td><td>HPO-002</td><td></td></tr><tr><td>CPB circuit</td><td>Mera</td><td>custom-made</td><td></td></tr><tr><td>Hespander fluid solution</td><td>Fresenius Kabi</td><td>3319547A4035</td><td>Hydroxyethyl starch</td></tr></tbody></table>

a recovery cardiopulmonary bypass model without transfusion or inotropic agents in rats

Kardiyopulmoner bypass (KPB) kardiyovasküler cerrahide vazgeçilmezdir. CPB tekniği ve aygıtları, çoklu organ komplikasyonlar dramatik arıtma rağmen ilgili uzun süreli KPB hala kalp damar ameliyatları sonucu güvenliğini aşmasına ve ameliyat sonrası morbidite ve mortalite daha da kötüye gidebilir. Hayvan modelleri KPB klinik kullanımı recapitulating açıklama CPB sırasında meydana patofizyolojik süreçlerin etkinleştirin ve bu komplikasyonlar karşı koruma stratejileri geliştirmek için önceden klinik çalışmalar kolaylaştırmak. Sıçan KPB onların daha fazla maliyet-etkililik, uygun deneysel süreçler, genetik, bol test yöntemleri veya protein düzeyleri ve genetik tutarlılık nedeniyle avantajlı modellerdir. Bunlar bağışıklık sistemi harekete geçirmek ve sentez proinflamatuar sitokinler, iltifat harekete geçirmek ve üretim oksijen serbest radikallerin araştırılması için kullanılabilir. Fare modelleri rafine edilmiş ve yavaş yavaş büyük hayvan modelleri meydana gelmiş. Burada, kan nakli ve/veya bir sıçan inotropic ajanlar olmadan basit bir KPB modeli açıklar. Bu kurtarma modeli birden fazla organ sekel KPB ile uzun vadeli bir çalışma sağlar.

Tüm KPB devre şekil 1 gösterir. Bu modelde fizyolojik değişkenler Şekil 2' de gösterilen ve rektal ısı dahil, arteryel kan basıncı ve kalp hızı demek. Şekil 3 arteryel kan gazı analizleri de dahil olmak üzere kısmi basınç Arteryel oksijen, Arteryel karbon dioksit, Hematokrit, temel aşırı, serum potasyum ifadesidir ve potansiyel hidrojenin kısmi basınç CPB sırasında gösteri...

Watch this Scientific Journal Video about A Recovery Cardiopulmonary Bypass Model Without Transfusion or Inotropic Agents in Rats at JoVE.com

A Recovery Cardiopulmonary Bypass Model Without Transfusion or Inotropic Agents in Rats

Kan nakli veya Sıçanlarda Inotropic ajanlar olmadan kurtarma Kardiyopulmoner Bypass modeli

Burada, kan nakli ya da bir fare inotropic ajanlar olmadan basit kurtarma Kardiyopulmoner bypass modeli tanımlamak için bir iletişim kuralı mevcut. Bu model birden fazla organ sekel Kardiyopulmoner baypas uzun vadeli bir çalışma sağlar.

Cardiopulmonary bypass (CPB) is indispensable in cardiovascular surgery. Despite the dramatic refinement of CPB technique and devices, multi-organ ...

a-recovery-cardiopulmonary-bypass-model-without-transfusion-or

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

7.8K Görüntüleme.  Kyoto University. Burada, kan nakli ya da bir fare inotropic ajanlar olmadan basit kurtarma Kardiyopulmoner bypass modeli tanımlamak için bir iletişim kuralı mevcut. Bu model birden fazla organ sekel Kardiyopulmoner baypas uzun vadeli bir çalışma sağlar.

Video: A Recovery Cardiopulmonary Bypass Model Without Transfusion or Inotropic Agents in Rats

Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach

As prolonged cardiopulmonary bypass becomes more essential during cardiac interventions, an increasing clinical demand arises for procedure optimization and for minimizing organ damage resulting from prolonged extracorporal circulation. The goal of this paper was to demonstrate a fully functional and clinically relevant model of cardiopulmonary bypass in a mouse. We report on the device design, perfusion circuit optimization, and microsurgical techniques. This model is an acute model, which is not compatible with survival due to the need for multiple blood drawings. Because of the range of tools available for mice (e.g., markers, knockouts, etc.), this model will facilitate investigation into the molecular mechanisms of organ damage and the effect of cardiopulmonary bypass in relation to other comorbidities.

This paper describes how to perform cardiopulmonary bypass in mice. This novel model will facilitate the investigation of the molecular mechanisms involved in organ damage.

Kardiyopulmoner baypas gerektirmeyen bir fare modeli: yeni bir yaklaşım

As prolonged cardiopulmonary bypass becomes more essential during cardiac interventions, an increasing clinical demand arises for procedure optimization ...

Tıp

Pre-clinical Model of Cardiac Donation after Circulatory Death

Cardiac transplantation demand is on the rise; nevertheless, organ availability is limited due to a paucity of suitable donors. Organ donation after circulatory death (DCD) is a solution to address this limited availability, but due to a period of prolonged warm ischemia and the risk of tissue injury, its routine use in cardiac transplantation is seldom seen. In this manuscript we provide a detailed protocol closely mimicking current clinical practices in the context of DCD with continuous monitoring of heart function, allowing for the evaluation of novel cardioprotective strategies and interventions to decrease ischemia-reperfusion injury.
In this model, the DCD protocol is initiated in anesthetized Lewis rats by stopping ventilation to induce circulatory death. When systolic blood pressure drops below 30 mmHg, the warm ischemic time is initiated. After a pre-set warm ischemic period, hearts are flushed with a normothermic cardioplegic solution, procured, and mounted onto a Langendorff ex vivo heart perfusion system. Following 10 min of initial reperfusion and stabilization, cardiac reconditioning is continuously evaluated for 60 min using intraventricular pressure monitoring. A heart injury is assessed by measuring cardiac troponin T and the infarct size is quantified by histological staining. The warm ischemic time can be modulated and tailored to develop the desired amount of structural and functional damage. This simple protocol allows for the evaluation of different cardioprotective conditioning strategies introduced at the moment of cardioplegia, initial reperfusion and/or during ex vivo perfusion. Findings obtained from this protocol can be reproduced in large models, facilitating clinical translation.

This protocol shows a simple and flexible approach for the evaluation of new conditioning agents or strategies to increase the feasibility of cardiac donation after circulatory death.

Dolaşım ölümünden sonra kardiyak bağış öncesi klinik model

Cardiac transplantation demand is on the rise; nevertheless, organ availability is limited due to a paucity of suitable donors. Organ donation after ...

A Rat Lung Transplantation Model of Warm Ischemia/Reperfusion Injury: Optimizations to Improve Outcomes

From our experience with rat lung transplantation, we have found several areas for improvement. Information in the existing literature regarding methods for choosing appropriate cuff sizes for the pulmonary vein (PV), pulmonary artery (PA), or bronchus (Br) are varied, thus making the determination of proper cuff size during rat lung transplantation an exercise of trial and error. By standardizing the cuffing technique to use the smallest effective cuff appropriate for the size of the vessel or bronchus, one can make the transplantation procedure safer, faster, and more successful. Since diameters of the PV, PA, and Br are related to the body weight of the rat, we present a strategy to choosing an appropriate size using a weight-based guide. Since lung volume is also related to body weight, we recommend that this relationship should also be considered when choosing the proper volume of air for donor lung inflation during warm ischemia as well as for the proper volume of PBS to be instilled during bronchoalveolar lavage (BAL) fluid collection. We also describe methods for 4th intercostal space dissection, wound closure, and sample collection from both the native and transplanted lobes.

Here, we present optimizations to a rat lung transplantation model that serve to improve outcomes. We provide a size guide for cuffs based on body weight, a measurement strategy to ascertain the 4th intercostal space, and methods of wound closure and BAL (bronchoalveolar lavage) fluid and tissue collection.

Sıcak iskemi / reperfüzyon hasarının bir sıçan akciğer transplantasyon modeli: sonuçları iyileştirmek için optimizasyonlar

From our experience with rat lung transplantation, we have found several areas for improvement. Information in the existing literature regarding methods ...

A New Model of Heart Failure Post-Myocardial Infarction in the Rat

Ligation of the left anterior descending (LAD) coronary artery has been widely used to establish the rat model of heart failure (HF) post myocardial infarction (MI). However, the disadvantages of this model include high mortality rate after ligation and larger variations both in the infarct size and the degree of impaired cardiac function. In addition, a ventilator or exteriorization of the heart is indispensable for the previous models, which complicates the procedure during the ligation. In this study, we developed a reliable and reproducible model without the ventilator or exteriorization of the heart by ligating the LAD coronary artery. Four weeks after the procedure, we found that the serum concentrations of CK-MB, NT-proBNP, and Renin, which were used to assist diagnoses of MI and HF, were significantly higher in the MI group compared to the sham group. In contrast, the value of left ventricle ejection fraction (LVEF) in the MI group was obviously less than in the sham group. Furthermore, the infarct size and cardiac fibrosis area were individually confirmed and quantitatively analyzed by TTC staining and Masson's trichrome staining. Smaller variations were found in either infarct size or fibrosis area in the MI group, which helped to develop a reliable and reproducible model of HF post-MI. This new model of HF post-MI in the rat is vital for studying the potential mechanisms of MI and HF. This new method can be used to develop the new drug for treatment of MI and HF in rats by using pharmacological strategies.

<meta charset="utf8"></head><body>Sıçanlarda Miyokard Enfarktüsü Sonrası Yeni Bir Kalp Yetmezliği Modeli

We successfully developed a reliable and reproducible model of heart failure post-myocardial infarction in the rat without ventilation or exteriorization of the heart. This simplifies the procedure and benefits the further studies about the potential mechanisms behind the heart failure.

Sıçanlarda Miyokard Enfarktüsü Sonrası Yeni Bir Kalp Yetmezliği Modeli

Ligation of the left anterior descending (LAD) coronary artery has been widely used to establish the rat model of heart failure (HF) post myocardial ...

Large-Animal Model of Donation after Circulatory Death and Normothermic Regional Perfusion for Cardiac Assessment

The increase in demand for cardiac transplantation throughout the years has fueled interest in donation after circulatory death (DCD) to expand the organ donor pool. However, the DCD process is associated with the risk of cardiac tissue injury due to the inevitable period of warm ischemia. Normothermic regional perfusion (NRP) allows for an in situ organ assessment, allowing the procurement of hearts determined to be viable. Here, we describe a clinically relevant large-animal model of DCD followed by NRP. Circulatory death is established in anesthetized pigs by stopping mechanical ventilation. After a preset warm ischemia period, an extracorporeal membrane oxygenator (ECMO) is used for a NRP period lasting at least 30 min. During this reperfusion period, the model allows the collection of various myocardial biopsies and blood samples for initial cardiac evaluation. Once NRP is weaned, biochemical, hemodynamic, and echocardiographic assessments of cardiac function and metabolism can be performed before organ procurement. This protocol closely simulates the clinical scenario previously described for DCD and NRP in heart transplantation and has the potential to facilitate studies aimed at decreasing ischemia-reperfusion injury and enhance cardiac functional preservation and recovery.

The protocol describes a large-animal (porcine) model of donation after circulatory death, followed by thoracoabdominal normothermic regional perfusion that closely simulates the clinical scenario in heart transplantation, and has the potential to facilitate therapeutic studies and strategies.

Dolaşım Ölümü Sonrası Büyük Hayvan Bağış Modeli ve Kardiyak Değerlendirme için Norannemik Bölgesel Perfüzyon

The increase in demand for cardiac transplantation throughout the years has fueled interest in donation after circulatory death (DCD) to expand the organ ...

Rat Model of Normothermic Ex-Situ Perfused Heterotopic Heart Transplantation

Heart transplantation is the most effective therapy for end-stage heart failure. Despite the improvements in therapeutic approaches and interventions, the number of heart failure patients waiting for transplantation is still increasing. The normothermic ex situ preservation technique has been established as a comparable method to the conventional static cold storage technique. The main advantage of this technique is that donor hearts can be preserved for up to 12 h in a physiologic condition. Moreover, this technique allows resuscitation of the donor hearts after circulatory death and applies required pharmacologic interventions to improve donor function after implantation. Numerous animal models have been established to improve normothermic ex situ preservation techniques and eliminate preservation-related complications. Although large animal models are easy to handle compared to small animal models, it is costly and challenging. We present a rat model of normothermic ex situ donor heart preservation followed by heterotopic abdominal transplantation. This model is relatively cheap and can be accomplished by a single experimenter.

Here, we present an assessment protocol of a heterotopically implanted heart after normothermic ex situ preservation in the rat model.

Normotermik Ex-Situ Perfüze Heterotopik Kalp Transplantasyonunun Sıçan Modeli

Heart transplantation is the most effective therapy for end-stage heart failure. Despite the improvements in therapeutic approaches and interventions, the ...

Kardiyak Arrest Sonrası Hayvan Modelinde Ekstrakorporeal Kardiyopulmoner Resüsitasyon

Pediatric Animal Model of Extracorporeal Cardiopulmonary Resuscitation After Prolonged Circulatory Arrest

Congenital heart disease (CHD) is the most prevalent congenital malformation, with about one million births impacted worldwide per year. Comprehensive investigation of this disease requires appropriate and validated animal models. Piglets are commonly used for translational research due to their analogous anatomy and physiology. This work aimed to describe and validate a neonatal piglet model of cardiopulmonary bypass (CPB) with circulatory and cardiac arrest (CA) as a tool for studying severe brain damage and other complications of cardiac surgery. In addition to including a list of materials, this work provides a roadmap for other investigators to plan and execute this protocol. After experienced practitioners performed several trials, the representative results of the model demonstrated a 92% success rate, with failures attributed to small piglet size and variant vessel anatomy. Furthermore, the model allowed practitioners to select from a wide variety of experimental conditions, including varying times in CA, temperature alterations, and pharmacologic interventions. In summary, this method uses materials readily available in most hospital settings, is reliable and reproducible, and can be widely employed to enhance translational research in children undergoing heart surgery.

Yazar Spotlight: Yenidoğan Domuz Yavrusu Modeli Kullanarak Pediatrik Kalp Cerrahisini Simüle Etme

This protocol describes a neonatal porcine model of cardiopulmonary bypass (CPB), with circulatory and cardiac arrest as a tool for studying severe brain damage and other complications secondary to CPB.

Uzun Süreli Dolaşım Durması Sonrası Ekstrakorporeal Kardiyopulmoner Resüsitasyonun Pediatrik Hayvan Modeli

Congenital heart disease (CHD) is the most prevalent congenital malformation, with about one million births impacted worldwide per year. Comprehensive ...

Kan nakli veya Sıçanlarda Inotropic ajanlar olmadan kurtarma Kardiyopulmoner Bypass modeli

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Kardiyopulmoner baypas gerektirmeyen bir fare modeli: yeni bir yaklaşım

Dolaşım ölümünden sonra kardiyak bağış öncesi klinik model

Sıcak iskemi / reperfüzyon hasarının bir sıçan akciğer transplantasyon modeli: sonuçları iyileştirmek için optimizasyonlar

Sıçanlarda Miyokard Enfarktüsü Sonrası Yeni Bir Kalp Yetmezliği Modeli

Sıçanlarda Miyokard Enfarktüsü Sonrası Yeni Bir Kalp Yetmezliği Modeli

Dolaşım Ölümü Sonrası Büyük Hayvan Bağış Modeli ve Kardiyak Değerlendirme için Norannemik Bölgesel Perfüzyon

Normotermik Ex-Situ Perfüze Heterotopik Kalp Transplantasyonunun Sıçan Modeli

Uzun Süreli Dolaşım Durması Sonrası Ekstrakorporeal Kardiyopulmoner Resüsitasyonun Pediatrik Hayvan Modeli

Uzun Süreli Dolaşım Durması Sonrası Ekstrakorporeal Kardiyopulmoner Resüsitasyonun Pediatrik Hayvan Modeli

Uzun Süreli Dolaşım Durması Sonrası Ekstrakorporeal Kardiyopulmoner Resüsitasyonun Pediatrik Hayvan Modeli