Name: use of single chain mhc technology to investigate co-agonism in human cd8+ t cell activation
Uploaded: 2019-02-28T15:00:00
Duration: 12 min 9 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Use of Single Chain MHC Technology to Investigate Co-agonism in Human CD8+ T Cell Activation at JoVE.com

Diese Forschung wurde Singapur Gesundheitsministeriums National Medical Research Council unter seiner CBRG/0064/2014 zu N.R.J.G., indem erstellen unter seiner R571-002-012-592, P.A.M., National Research Foundation Investigatorship R571-000-272-281, P.A.M unterstützt. ., und durch einen Singapur translationale Forschung (Stern) Investigator Award (NMRC/Sterne/013/2012), A.B. Wir sind dankbar, Dr. Paul Hutchinson und Herr Teo Guo Hui von NUS Immunologie Programm Flow Core Facility für die kompetente Zellsortierung. Wir sind dankbar für Elijah Chen für kritische Lektüre des Manuskripts.

Hinweis: Alle Schritte mit Leben, nicht fixierten Zellen in eine biologische Sicherheit Haube durchgeführt werden sollte, und biogefährlichen Abfällen entsorgen gemäss den örtlichen Vorschriften für Sicherheit und Gesundheitsschutz.
(1) CHO Zelle Transfection und Erzeugung von stabilen CHO-Zell-Linien
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CHO Zelle Transfektion Hinweis: dieser Abschnitt beschreibt CHO Zelle Transfektion mit Polyethylenimine (PEI). Jedoch können alternative Methoden verwendet werden, da CHO-Zellen relativ leicht sind zu transfizieren, mit handelsüblichen Lipid Transfektion Reagenzien.<ol>
<li>Kultur CHO-Zellen in komplette F12 (cF12, F12 ergänzt mit 5 % FBS, 100 U/mL Penicillin, 100 μg/mL Streptomycin und 10 µg/mL Blasticidin weiterhin Ausdruck der Tetracyclin-Repressor). Durchgang der Zellen alle 3-4 Tage um eine 01:10 Verhältnis.</li>
		<li>Bereiten Sie einen Tag vor Transfektion, die Zellsuspension CHO. Waschen Sie CHO-Zellen in den Kolben mit PBS (10 mL für PBS für eine T75-Flasche 5 mL PBS für T25 Kolben). Hinzufügen von 0,05 % Trypsin/0.02% EDTA in PBS (2 mL für ein T75 Fläschchen, 1 mL für ein T25-Fläschchen) in den Kolben und inkubieren Sie für 5 bis 10 min bei Raumtemperatur (RT). Mit einem Lichtmikroskop, überprüfen Sie, dass die Zellen gelöst haben, und Trypsinization zu stoppen, indem Sie den Kolben (8 mL für eine T75 Kolben, 4 mL für ein T25-Fläschchen) cF12 hinzufügen.</li>
		<li>Übertragen der Zellsuspension CHO eine 15 mL Tube und Zentrifuge bei 300-400 X g für 5 min bei 4 ° C oder RT. Entfernen Sie überstand, neu in cF12 (10 mL für eine T75-Flasche, 5 mL für ein T25-Fläschchen) und zählen mit einem Hemocytometer.</li>
		<li>Passen Sie die Zellkonzentration bis 60.000-100.000 CHO Zellen/mL. 5 mL Zellsuspension CHO (300.000-500.000 CHO-Zellen) pro Bohrloch in einer 6-well-Platte hinzugeben. Inkubation über Nacht bei 37 ° C, 5 % CO2.</li>
		<li>Am Tag der Transfektion fügen Sie 400 μl des serumfreien F12 oder niedrigen Serum Medien eine 1,5 mL-Tube hinzu. 400 μl Medien 3 μg Plasmids hinzufügen. Mischen von pipettieren. Fügen Sie 6 μg des PEI (6 μl Lösung 1 mg/mL PEI) zu den Medien/DNA mischen und Wirbel sofort für 10 s.</li>
		<li>Inkubieren Sie Medien/DNA/PEI-Mix bei RT für 10-15 min. Während diese Inkubation ersetzen Sie CHO Zelle Medien in die 6-well-Platte mit 5 mL frischem cF12 Medien.</li>
		<li>CHO-Zellen die Medien/DNA/PEI-Lösung hinzufügen. Fügen Sie der Lösung tropfenweise und gleichmäßig über dem Brunnen. Inkubation über Nacht bei 37 ° C, 5 % CO2.</li>
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Generation von stabilen Zelllinien CHO
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<li>Einen Tag nach Transfektion, entfernen Sie Medien aus dem Brunnen und 5 mL cF12 mit der entsprechenden Auswahl Antibiotika in jede Vertiefung. Verwenden Sie 0,3 mg/mL Hygromycin für pcDNA5TO-basierte Plasmide und 1 mg/mL Geneticin für pcDNA3-basierte Plasmide.</li>
		<li>Wenn die Zellen erreichen mehr als 90 % Konfluenz bei 24 h Transfektion post, trypsinize der Zellen.</li>
		<li>Waschen Sie Brunnen mit 1 mL PBS pro Bohrloch zu, fügen Sie 1 mL 0,05 % trypsin/0.02% EDTA in PBS und inkubieren Sie 5-10 min bei RT mit einem Lichtmikroskop, überprüfen Sie, ob die Zellen gelöst haben, und Trypsinization durch Zugabe von 3-4 mL cF12 pro Bohrloch zu stoppen.</li>
		<li>Die Zellsuspension CHO eine 15 mL Tube und Zentrifuge bei 300-400 X g für 5 min bei 4 ° C oder RT entfernen des Überstands übertragen und neu in 10 mL cF12 auszusetzen. Fügen Sie 5 mL Zellsuspension pro Bohrloch in 6-well-Platte. Verwenden Sie zwei Brunnen, um Ertrag von transfizierten Zellen zu maximieren.</li>
		<li>Inkubieren Sie die 6-well-Platten bei 37 ° C, 5 % CO2. Zelltod und das Wachstum der resistenten Kolonien mit einem Lichtmikroskop zu überwachen. Entfernen Sie Medien zu und ersetzen Sie sie durch neue Medien mit den entsprechenden Antibiotika nach 4-5 Tagen, oder wenn wesentliche Zelltod beobachtet wird.</li>
		<li>Sobald die resistenten Zellen erreichen mehr als 70 % Zusammenströmen, trypsinize der Zellen, wie beschrieben im Schritt 1.2.2 und transfer zum T25 Kolben für Expansion. Die antibiotische Auswahl dauert 1-2 Wochen.</li>
		<li>Sobald der Antibiotika-resistente CHO-Zellen in den T25 Kolben Zusammenfluss von 70-80 % erreichen, führen Sie Antikörper Färbung überprüfen Zelle Oberflächenexpression der Konstrukte von Interesse. Einen Tag vor Antikörper Färbung, trypsinize der Zellen, wie in Schritt 1.2.2 beschrieben und passen Sie die Zellkonzentration bis 200.000 Zellen/mL und 12-well-Platte 1 mL Zellsuspension hinzufügen. Fügen Sie zum Testen der Tetracyclin-induzierbaren Konstrukte, 50-60 ng/mL Tetracyclin. Inkubation über Nacht bei 37 ° C, 5 % CO2.</li>
		<li>Verwenden Sie Zelle Schaber, um CHO-Zellen vom Grund des Brunnens zu lösen. Diese Methode empfiehlt sich, Trypsinization, wie es das Risiko von Epitop Schäden durch proteolytische Spaltung verringert.</li>
		<li>Übertragen Sie 1 mL der Medien, die die CHO-Zellen zu einem FACS-Schlauch. Spin-down bei 300-400 X g, 4 ° C für 5 min. wieder aussetzen in 100 μl Anti-HLA-Antikörper in FWB verdünnt. Inkubieren Sie 30 min bei 4 ° C auf dem Eis. Führen Sie diese Färbung mit Antikörper Anti-A2, insgesamt A2 Zelle Oberflächenexpression Stufen zu erkennen und TCR-ähnliche Antikörper spezifische für A2 im Komplex mit E183 Peptid Agonist pMHC erkennen-ich Zelle Oberflächenexpression Ebenen.</li>
		<li>Nach der Überprüfung MHC Ausdruck, FACS-Art der positiven Zellen und pflegen der sortierten Zellen in Medien mit Antibiotika, Transgen Verlust zu reduzieren. Für CHO-Zellen mit dem Ausdruck Agonist pMHC einzelne Zelle Sortierung empfiehlt sich vergleichbare Agonist pMHC Ausdruck mit und ohne Supertransfection mit Co-Agonist pMHC sicherzustellen. 2-3 Wochen sind für CHO Zellwachstum nach, die einzelne Zelle Sortierung erforderlich.</li>
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</ol>(2) HBV-spezifische CTL-Kultur
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Vorbereitung der PBMCs als Zubringer für die HBV-spezifische menschliche CTL Re stimulation Hinweis: für den A2-E183-spezifische CTL-Klon, erneute Stimulation mit frisch isolierte PBMCs, anstatt aufgetauten PBMCs, bietet die besten Ergebnisse. Vorsicht: Erhalten Sie alle notwendigen ethischen Genehmigungen vor der Rekrutierung von Freiwilligen für Blutspenden. Für die Zwecke dieser Arbeit wurden von gesunden Probanden unter das Protokoll genehmigt durch NUS IRB PBMC gesammelt. Die Einwilligung wurde von allen Spendern. Befolgen Sie alle notwendigen Vorsichtsmaßnahmen beim Arbeiten mit menschlichem Blut, Gefahr der Übertragung von Blut übertragbaren Krankheiten zu reduzieren.<ol>
<li>Stellen Sie bevor Sie beginnen die Temperatur der Zentrifuge bei 19-20 ° C und wärmen Sie der Dichtegradient (z. B. Ficoll), RT vor</li>
		<li>50 mL-Tube 15 mL Raumtemperatur Dichtegradient hinzufügen. Zentrifuge bei 400 X g für 5 min bei 19-20 ° C. Dies soll sicherstellen, dass es gibt keine Dichtegradient auf der Seite der Röhre.</li>
		<li>Sammeln Sie 20 mL Blut eines gesunden freiwilligen Spenders durch Venenpunktion. 20 mL Blut in eine 50 mL-Tube 15 mL PBS hinzufügen. Mischen von Pipettieren rauf und runter.</li>
		<li>Hinzugeben Sie langsam, die 35 mL Blut verdünnt mit PBS-Puffer auf die 15 mL Dichtegradient aus Schritt 2.1.2. Stellen Sie sicher, dass das Blut und die Dichtegradienten nicht mischen. Zentrifugieren Sie die Rohre bei 19 ° C, 1.200 X g für 20 min. mit den Bremsen aus.</li>
		<li>Etwa 70 % des Plasma-Schicht zu entfernen. Aspirieren Sie sorgfältig die Schicht mit der PBMC (die trübe Schicht auf der Oberseite der Verlaufsebene klar Dichte) mit einer Pasteur pipette und legen Sie sie in eine neue 50 mL Tube.</li>
		<li>PBMCs zu einem Gesamtvolumen von 50 mL fügen Sie PBS hinzu. Zentrifugieren Sie Rohr bei 4 ° C, 300-400 X g für 10 min. Entfernen Sie vorsichtig den Überstand mit dem Vakuum-Sauger und sterile Glas Pasteurpipette oder durch dekantieren.</li>
		<li>Wieder aussetzen Sie, die Zellen in 50 mL PBS. Zentrifugieren Sie Rohr bei 4 ° C, 300 X g für 10 min. Entfernen Sie vorsichtig den Überstand mit dem Vakuum-Sauger und sterile Glas Pasteurpipette oder durch dekantieren.</li>
		<li>Wieder aussetzen Sie Zellen in 2 mL der komplette menschliche T-Zelle Medien (Serum freie Medien ergänzt mit humanem Serum 2 %). Zählen Sie die Zellen mit Hemocytometer. Dieses Protokoll bietet im Durchschnitt 1-2 x 106 PBMCs pro 1 mL Blut verwendet.</li>
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CTL Re Stimulation mit PBMCs als Feeder-Zellen
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<li>Bestrahlen PBMCs bei 30 Gy, Verbreitung in Reaktion auf die nachfolgende Stimulation zu hemmen. Achtung: Gewährleisten Sie angemessene Ausbildung und Compliance mit dem Labor Sicherheitsanforderungen bei der Moorpackung.</li>
		<li>Wieder aussetzen der bestrahlten PBMCs in vollständige menschliche T-Zelle Medien bei 2 x 106 Zellen/mL. Zytokine und Lektin für die CTL Re Stimulation bei 2 X-Konzentration in der PBMC Suspension aus Phaseolus Vulgaris (PHA) hinzufügen. Die endgültige Cytokine und PHA-Konzentrationen sind: 20 U/mL rekombinanten menschlichen Il-2, 10 ng/mL rekombinantes IL-7, 10 ng/mL rekombinanten menschlichen IL-15 und 1,5 mg/mL-PHA.</li>
		<li>Tauen Sie das gefrorene CTL-Fläschchen in einem 37 ° C-Wasserbad. Übertragen Sie die aufgetauten Zellen in eine 15 mL-Tube mit 10 mL der komplette menschliche T-Zelle Medien. Spin-down bei 300-400 X g bei 4 ° C für 5 min. Entfernen Sie vorsichtig den Überstand mit dem Vakuum-Sauger und sterile Glas Pasteurpipette oder durch dekantieren.</li>
		<li>Wieder aussetzen CTLs in 2 mL des kompletten menschlichen T-Zell-Medien. Zählen Sie die Zellen mit Hemocytometer. Hinzufügen von Medien vollständige menschliche T-Zelle um Zellkonzentration von 106 Zellen/mL zu erhalten.</li>
		<li>In einer 24-well-Platte hinzufügen 0,5 mL der bestrahlten PBMCs (106 Zellen) mit 2 X cytokines und PHA (Schritt 2.2.2) und 0,5 mL der CTLs (0,5 x 106 Zellen) pro Bohrloch. Anzahl der Bohrungen verwendet hängt von der Gesamtzahl der CTLs oder PBMCs zur Verfügung. Inkubation bei 37 ° C, 5 % CO2.</li>
		<li>Nach 4-5 Tagen, wann CTL Blasten sind sichtbar und die Medien werden gelb, die Kulturen in 6-well-Platten, und ergänzen Sie die ersten 1 mL Volumen mit 4 mL des kompletten menschlichen T-Zell-Medien mit 20 U/mL IL-2, 10 ng/mL IL-7 und 10 ng/mL IL-15 (keine PHA).</li>
		<li>Nach 2-3 Tagen die Kulturen in einem T75 Kolben übertragen, 40 mL der komplette menschliche T-Zelle Medien mit Zytokinen (Schritt 2.2.2, keine PHA) hinzufügen und Kultur in einer aufrechten Position.</li>
		<li>Halten Sie CTLs in einer Konzentration von 1-2 x 106 Zellen/mL durch Zugabe von frischen Medien ergänzt durch Zytokine (Schritt 2.2.2, keine PHA) ein Volumen entspricht derjenigen der bestehenden Kulturvolumen an jedem anderen Tag. CTLs können 7-14 Tage nach der erneuten Stimulation für Experimente verwendet werden.</li>
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</ol>3. T-Zell-Aktivierung-Experimente
Hinweis: Ein typisches Experiment erfordert verschiedene T-RExCHO Linien: untransfected T-REx-CHO-Zellen (Negativkontrolle), T-REx CHO-Zellen mit dem Ausdruck ihrer nicht-stimulierende pMHC nur (scA2-GAG; Negativkontrolle), T-REx CHO-Zellen mit dem Ausdruck ihrer geringe Mengen an Agonist pMHC-ich () scA2-ENV ohne Tetracyclin, experimentelle Probe), T-REx CHO Zellen auszudrücken, geringe Mengen an Agonist pMHC und hohe Mengen an nicht-stimulierende Co-Agonist pMHC (scA2-ENV und scA2-GAG, ohne Tetracyclin, experimentelle Probe) und T-REx CHO-Zellen hohe Mengen an Agonist pMHC zum Ausdruck zu bringen-ich scA2-ENV mit Tetracyclin, Positivkontrolle), wie auf Abbildung 1Dgezeigt.
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Plattieren CHO-Zellen als antigenpräsentierende Zellen
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<li>Kultur-CHO-Zellen in T75 Kolben, wie in Schritt 1.1.1 beschrieben. Verwenden Sie Zellen am Zusammenfluss von 70-90 %, für beste Ergebnisse. Einen Tag vor der T-Zell-Aktivierung zu experimentieren, die Zellen trypsinize, wie im Abschnitt 1.1.2 beschrieben. Übertragen Sie nach Trypsinization die Zellsuspension in einem 15 mL-Tube, Zentrifuge bei 400 X g für 5 min bei 4 ° C oder RT, entfernen Sie überstand durch Pipettieren oder dekantieren.</li>
		<li>Wieder aussetzen der Zelle Pellet in 5 mL cF12. CHO-Zellen mit einem Hemocytometer zu zählen.</li>
		<li>Passen Sie die Zellkonzentration, 2 x 105/mL mit cF12. Fügen Sie 50-60 ng/mL Tetracyclin, Agonisten nur Proben, um hohe Mengen an Agonist pMHC induzieren-ich Ausdruck als Positivkontrolle (Abbildung 1). CHO-Zellen werden in 15 mL-Tuben, niederlassen daher unbedingt durch Pipettieren oder aufschütteln vor Beschichtung vermischen.</li>
		<li>Für T-Zell-Aktivierung-Assay U-Boden-96-well-Platte 100 μL der CHO-Zellsuspension pro Bohrloch hinzu, und verwenden Sie Triplicates pro CHO-Zell-Linie. Für CHO Zelle Anti-MHC Färbung, 12-well-Platte 1 mL Zellsuspension hinzu, und verwenden Sie Triplicates pro Zell-Linie. Inkubation über Nacht bei 37 ° C, 5 % CO2.</li>
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T-Zell-Aktivierung-assay Hinweis: dieser T-Zell-Aktivierung-Assay ermöglicht gleichzeitige Quantifizierung der T-Zelle Degranulation (CD107a Färbung, ein Maß für die T-Zell-Zytotoxizität) und Produktion von Zytokinen.<ol>
<li>Am Tag vor dem Experiment Zentrifugieren Sie CTLs Zellen bei 400 X g bei 4 ° C für 5 min, zählen Sie mit Hemocytometer und wieder auszusetzen Sie, die Zellen 106 Zellen/ml in vollständige menschliche T-Zelle Medien ohne Zytokine oder PHA. Inkubation bei 37 ° C, 5 % CO2. Dieser Rest Schritt dient CTL Empfindlichkeit reduziert wie wir maximale Aktivierung als Reaktion auf geringe Mengen an Antigen ohne diesen Schritt beobachten konnten.</li>
		<li>Am Tag des Experiments, Zentrifuge T-Zellen bei 400 X g bei 4 ° C für 5 min, entfernen Sie den Überstand durch Dekantieren oder pipettieren und wieder auszusetzen Sie, die Zellen in 2 mL komplette serumfreie Medien (ohne Zytokine oder PHA). Live T-Zellen unter Verwendung einer Hemocytometer zählen, und T-Zell-Konzentration bis 106 live Zellen/mL mit kompletten menschlichen T-Zell-Medien (ohne Zytokine oder PHA) anpassen.</li>
		<li>Fügen Sie Anti-Human CD107a Antikörper bei einer Verdünnung von 1: 100 (Endkonzentration von 2,5 μg/mL hinzu), fügen Sie Brefeldin A bei einer Verdünnung von 1: 1000 (Endkonzentration von 1 μg/mL).</li>
		<li>Entfernen Sie Medien aus den CHO-Zellen in der 96-well-Platte, durch Absaugen mit Glas Pasteurpipette oder durch Streichen der Plattenrandes. Pro Well fügen Sie 200 μL der T-Zelle Aussetzung (0,2 x 106 Zellen) mit Anti-CD107a und Brefeldin A. Kokultur T-Zellen mit CHO-Zellen für 3-4 h.</li>
		<li>Am Ende der Kokultur durchführen Sie T Zelle Oberflächenantigen Färbung. Spin-down 96 well-Platte bei 300-400 X g, 5 min bei 4 ° C, und den Überstand durch Absaugen oder streichen entfernen. Fügen Sie 2,5 μL der CD3 und 2,5 μL der CD8-Antikörper in 50 μL von 0,5 % BSA mit PBS-Puffer (Fluss Waschpuffer, FWB) pro Bohrloch für Zelle Oberflächenantigen Färbung. Inkubieren Sie Proben für 30 min in der Dunkelheit auf Eis.</li>
		<li>Waschen Sie Proben durch Zugabe von 150 μL der FWB pro Bohrloch. Spin-down 96 well-Platte bei 300-400 X g, 5 min bei 4 ° C, und den Überstand durch Absaugen oder streichen entfernen.</li>
		<li>Fixierung/Permeabilisierung Schritte mit einer Fixierung/Permeabilisierung Kit. Fügen Sie 100 µL Fixierung/Permeabilisierung Lösung (von der Fixierung/Permeabilisierung Kit) pro Bohrloch hinzu, mischen Sie, indem Sie pipettieren. Inkubieren Sie für 20 min auf Eis.</li>
		<li>Zentrifugieren bei 300-400 X g und 4 ° C für 5 min, und den Überstand durch Absaugen oder streichen zu entfernen. Fügen Sie 200 μl 1 x Perm/Waschpuffer (10 x Perm/Waschpuffer Lager aus dem Kit vor dem Gebrauch verdünnen) pro Bohrloch. Wiederholen Sie diesen Schritt.</li>
		<li>Wieder aussetzen der Zelle Pellet in 50 μl 1 X Perm/Waschpuffer mit Anti-IFN-γ-Antikörper bei 0,3 μg/mL. Inkubation für 30 min in Dunkelheit auf Eis.</li>
		<li>Fügen Sie 150 μl 1 X Perm/Waschpuffer. Bei 300-400 X g für bei 4 ° C für 5 min Zentrifugieren und Entfernen des Überstands durch Absaugen oder streichen. Fügen Sie 200 μl 1 x Perm/Waschpuffer, 300-400 X g bei 4 ° C für 5 min Zentrifugieren und entfernen den Überstand durch Absaugen oder streichen.</li>
		<li>Wieder aussetzen Sie, jede Probe in 200 μL der FWB. Mit durchflusszytometrischen Analyse fortfahren.</li>
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CHO Zelle MHC Klasse I Färbung Hinweis: ist es wichtig, ScMHC zu überprüfen-ich Zelle Oberfläche Ebenen auf Zellen, die auf jedes Experiment verwendeten Zelllinien Transgene Ausdruck verlieren können. Bei der Vorbereitung von 96-well-Platte für T-Zell-Stimulation eingerichtet 12-well-Platte für CHO Zelle Färbung, wie in Abschnitt 3.1.4 beschrieben.<ol>
<li>Verwenden Sie einen Zelle Schaber, um CHO-Zellen von der Unterseite des Brunnens zu lösen. Diese Methode empfiehlt sich, Trypsinization, wie es das Risiko von Epitop Schäden durch proteolytische Spaltung verringert.</li>
		<li>Übertragen Sie 1 mL der Medien, die die CHO-Zellen mit dem FACS-Rohr. Spin-down bei 300-400 X g bei 4 ° C für 5 min. wieder aussetzen in 100 μl Anti-HLA-Antikörper in FWB verdünnt. Inkubieren Sie für 30 min bei 4 ° C auf dem Eis.<ol>
<li>Führen Sie diese Färbung mit Antikörper Anti-A2, insgesamt A2 Zelle Oberflächenexpression Stufen zu erkennen und TCR-ähnliche Antikörper spezifische für A2 im Komplex mit E183 Peptid32 Agonist pMHC erkennen-ich Zelle Oberflächenexpression Ebenen.</li>
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		<li>Jede CHO-Probe 1 mL der FWB hinzu, spin-down bei 300-400 X g, 4 ° C, 5 min, und dann wieder die Probe in 0,3 mL FWB auszusetzen. Mit Flow-Zytometrie Analyse fortfahren.</li>
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Die Autoren erklären keinen Interessenkonflikt.

Die vorgestellte Protokoll sieht ein robustes Werkzeug für die Untersuchung der molekularen Wechselwirkungen während menschliche CD8 + T-Zell-Aktivierung. Ein entscheidender Schritt für die Untersuchung der co-Agonismus während menschliche T-Zell-Aktivierung ist die Kontrolle der Agonist pMHC Zelle Oberflächenexpression gleich Agonist pMHC Vortrag über die APCs mit oder ohne Co-Agonist pMHC Ausdruck sicherzustellen. In unserem experimentellen System ist dies erreicht, indem eine einzelne Zelle Klon mit dem Ausdruck geringer Mengen an Agonist pMHC, gefolgt von Supertransfection mit einem Co-Agonist pMHC Konstrukt und Agonist pMHC Quantifizierung mit TCR-ähnliche Antikörper10, 32. als Agonist sc pMHC Ausdruck im Laufe der Zeit ändern kann, ist es wichtig, Agonist pMHC Oberflächenexpression auf APCs verwendet in jedem Experiment mit TCR-ähnliche Antikörper zu quantifizieren. Wenn keine spezifischen TCR-ähnliche Antikörper verfügbar ist Agonist-ScMHC-ich als fluoreszierende Protein Fusion ausgedrückt werden kann, und seine Zelle Oberflächenexpression kann dann mit einer sensiblen Mikroskopie-Methode, wie Totalreflexion Fluoreszenzmikroskopie quantifiziert werden 35 , 36. Darüber hinaus Zelle Oberflächenexpression von Co-Agonist pMHC verringert sich im Laufe der Zeit durch Methylierung-abhängige und -unabhängig von CMV Promotor37, zum Schweigen zu bringen und sollte überwacht werden, Antikörper Färbung und Flow Cytometry-Analyse, mit wiederholte FACS-Sortierung bei Bedarf. Wir haben für bis zu 5 Wochen mit relativ begrenzten Verlust des sc pMHC Ausdrucks CHO-Zellen kultiviert. Wir empfehlen die CHO-Zellen bald nach der Auswahl/Sortierung zu gewährleisten einen zuverlässigen Bestand von Zellen mit bekannten sc MHC Ausdruck einfrieren.
Mehrere Schritte der vorgestellten Protokolle können geändert werden, abhängig von der Verfügbarkeit von Geräten, oder je nach der spezifischen Forschungsziele. Z. B. PBMC Verbreitung potenzieller kann gehemmt (Schritt 3.2.1) verwenden alternative Methoden, die keine Gamma (oder X) benötigen Brutapparat, wie Behandlung mit Mitomycin C38. Ein nicht-enzymatische Zelle Dissoziation Puffer mit Metall Chelatoren39 können statt Kratzen im Schritt 3.3.1 Zelle verwendet werden. Darüber hinaus kann die antigenpräsentierende System geändert werden, um machen es besser geeignet für menschliche CTL-Klone, die mit dem Ausdruck verschiedener TCR. CHO Zellen ausdrückliche Hamster MHC Klasse I Moleküle, und obwohl diese sind irrelevant für die CTL-Linie hier studiert (Abb. 2A und Abbildung 3A, wir beobachteten keine T-Zell-Antworten zu untransfected CHO-Zellen), besteht die Möglichkeit, dass andere menschlichen TCRs einige Xenoreactivity zeigen können. In, dass Fall Hamster MHC Klasse I Ausdruck durch Ausschlagen Hamster β2-Microglubulin reduziert werden kann, oder tippen Sie auf mit CRISPR/Cas9; oder eine menschliche APC-Linie eingesetzt werden, nachdem CRISPR/Cas9-vermittelten β2-Microglubulin oder TAP ausknocken.
Die hier vorgestellten Experimentiersystem ermöglicht präzise Kontrolle des TCR und CD8 Interaktionen mit MHC-Molekülen präsentiert vordefinierten Peptide. Zum Beispiel haben wir bereits gezeigt, dass Mutationen, die Abschaffung der CD8 Bindung40 bis Coagonist pMHC Coagonist-vermittelte Aktivierung Verbesserung in murinen und menschliche CD8 + T Zellen9,10, beseitigt während TCR Aufhebung Interaktion mit Co-Agonist pMHC hatte keinen Einfluss auf Coagonist-vermittelte Aktivierung Erweiterung10. Die Verwendung von einzelnen Kette MHC Konstrukte hat jedoch einige Einschränkungen. Zum Beispiel, es ist Zeit und Arbeit verzehrenden testen Sie mehrere Co-Agonist Peptid Sequenzen mit diesem experimentellen System, da dies mehrere Plasmide Codierung sc MHC mit verschiedenen Peptiden und anschließende Transfektionen und Zellsortierung-Generation beinhaltet. Früher wir murine TAP-defizienten Zelllinie RMA-S verwendet, um mehrere Co-Agonist Peptide in Maus T-Zell-Aktivierung8,9testen, aber dieser Ansatz war nicht erfolgreich mit dem TAP-defizienten menschlichen T2 Zelle Zeile10, am ehesten durch Darstellung der TAP-unabhängige Peptide41. Eine weitere Einschränkung unseres experimentellen Systems ist bietet eine schnelle Methode zum Ändern der Anzahl der Co-Agonist pMHC Moleküle zum Zwecke der Bestimmung der kritischen Höhe der Co-Agonist pMHC erforderlich, um T-Zell-Aktivierung auszulösen. Darüber hinaus erlaubt das Tetracyclin-induzierbaren System verwendet Titration der Agonist pMHC Menge der Ebene der einzelnen Zelle nicht durch Ändern der Tetracyclin-Konzentration, wie unterschiedliche Tetracyclin-Konzentration ändert sich den Anteil der positiven Zellen HLA-A2, eher als HLA-A2-Level pro Zelle. Ein alternativer Ansatz, den wir derzeit untersuchen soll mithilfe von unterstützten Lipid Bilayer42, früher co-Agonismus während der murinen CD4 + T Zelle Aktivierung4 untersuchen oder Perlen präsentiert Festbetrag von Agonist pMHC in der Vorhandensein von unterschiedliche Mengen an Co-Agonist pMHC. Bei Verwendung in Verbindung mit UV-spaltbaren Peptid-Technologie4,43sollte diese alternative experimentelle Systeme ermöglichen schnelle Prüfung von mehreren Co-Agonist Peptid Sequenzen sowie unterschiedliche Mengen an Co-Agonist pMHC .
Die sc-MHC-Technologie kann auch auf Untersuchung der co-Agonismus in menschlichen oder murine CD4-T-Zellen, anwendbar, wie einzelne Kette MHC Klasse II-Moleküle präsentieren vorbestimmt, dass Peptide erfolgreich auf Säugetier-Zelle Oberflächen44zum Ausdruck gebracht wurden. Darüber hinaus die Verwendung von sc MHC-Technologie zur Untersuchung der nicht-klassischen MHC-Moleküle wie HLA-E. erweiterbar SC HLA-E vor beschrieben worden, und seinen Ausdruck hat gezeigt, dass menschliche T-Zelle Aktivierung45hemmen. Ein weiterer nicht-klassischen MHC-Molekül des Interesses ist CD1, die Lipide statt Peptide46präsentiert. SC-Konstrukte bestehend aus CD1 schwere Kette und β2-Mikroglobulin wurde gezeigt, auf der Zelloberfläche ausgedrückt werden und relevante Lipid Liganden47zu binden. Einzelne Kette MHC-Technologie hat ein großes Potenzial als Recherche-Tool für die Untersuchung von molekularer Interaktionen während der T- und NK-Zell-Aktivierung.

MHC Klasse I (MHC-ich) Moleküle präsentieren kurz (8 bis 10 Aminosäuren) Peptide Proteine synthetisiert durch jede Zelle abgeleitet. MHC-ich Moleküle auf gesunden Zellen präsentieren selbst Peptide von endogenen Proteinen abgeleitet. Virale Infektion führt zur Präsentation des nicht-ich Virus-abgeleitete Peptide auf MHC-ich, aber auch infizierte Zellen anwesend nicht-ich Peptide in Anwesenheit von großen Mengen an selbst-Peptid-MHC (pMHC). MHC-ich von der T-Zell-Rezeptor (TCR) und den CD8-Co-Rezeptor auf T-Zellen erkannt wird. TCR Bindungsaffinität zu Peptid pMHC ist stark abhängig von der Reihenfolge der präsentierten Peptide, während CD8 Bindung Peptid-unabhängig ist. TCR Bindung an nicht-ich Agonist pMHC Komplex führt zu T-Zell-Aktivierung und Effektor-Funktionen. Non-stimulierende selbst pMHC komplexe kein T-Zell-Aktivierung und Effektor-Funktionen auslösen, aber T-Zell-Antworten zu Agonist pMHC, durch einen Prozess bezeichnet co-Agonismus1,2,3verbessern können. Co-Agonismus ist beobachtet worden, in Maus CD4 + T Zellen4,5,6 sowie Maus und menschliche CD8 + T Zellen7,8,9,10, 11 , 12 , 13. unter physiologischen Bedingungen müssen T-Zellen erkennen, begrenzte Mengen von Agonist pMHC auf antigenpräsentierende Zellen (APCs) hohes Maß an nicht-stimulierende pMHC komplexe, was darauf hindeutet, dass co-Agonismus trägt zur optimalen T Co präsentieren in-vivo-Zell-Antworten. Gesamten Zelle Oberfläche MHC Klasse ich Ebenen sind häufig herunterreguliert bei Virusinfektionen14 und auf Tumoren15. Diese immun ausweichen Strategie verringert Agonist pMHC Präsentation, sondern verringert auch die Menge an Co-Agonist pMHC ich für T-Zell-Aktivierung-Erweiterung zur Verfügung. Darüber hinaus Klasse hohe Zelle Oberflächenexpression Ebenen des MHC I Molekül HLA-C haben gezeigt, dass korrelieren mit verbesserten HIV Control16, was eine kritische Rolle für total MHC Klasse ich Ausdruck in T-Zell-Aktivierung. Trotz die physiologische Bedeutung von co-Agonismus ist seine molekulare Mechanismus noch nicht vollständig verstanden. Dies ist vor allem auf technische Herausforderungen die Menge der dargestellten Co-Agonist pMHC experimentell zu kontrollieren, während Agonist pMHC konstant zu halten.
Wir entwickelten ein experimentelles System, co-Agonismus während menschliche CD8 + T-Zell-Aktivierung zu untersuchen, zum Ausdruck bringen menschliche MHC Klasse I Moleküle präsentieren vorab festgelegten Peptid als einzigen Polypeptid (einzelne Kette MHC-I, Abb. 1A) in einer xenogene Zelle Linie9,10. Einzelne Kette (sc) Agonist pMHC drückte sich unter Kontrolle von Tetracyclin-induzierbaren Promoter in die Hamster abgeleitet T-REx CHO Zellinie Tetracyclin Repressor zum Ausdruck zu bringen; Dies ermöglicht sehr geringe "undichte" Expression sc Agonist pMHC in Abwesenheit von Tetracyclin und hohe sc Agonist pMHC Ausdruck nach Zugabe von Tetracyclin (Abbildung 1 bC). Sc-Agonist pMHC exprimierenden T-REx CHO-Zellen wurden dann Supertransfected mit stimulierende, Co-Agonist-sc-pMHC-ich unter Kontrolle eines konstitutiv aktiven Promotors (Abbildung 1 bC). Dieses experimentelle System erlaubt uns CD8 + T-Zell-Antworten zu Agonist pMHC auf das Vorhandensein oder Fehlen der hohen nicht-stimulierende pMHC vergleichen. Kritisch, da Peptid und MHC-ich schwere Kette sind kovalent verknüpft, in der ScMHC-I-format, so dass Einführungen von Mutationen in MHC-Moleküle, die vorher festgelegten Peptide präsentieren. Verwendung von ScMHC-ich Technologie erlaubt uns, speziell TCR oder CD8-bindenden Eigenschaften der Agonist oder Co-Agonist pMHC modulieren so.
Co-Agonismus in CD8 + T-Zell-Aktivierung ist beobachtet worden, mit gereinigten MHC-ich komplexe Darstellung von Agonist und Co-Agonist Peptiden in Form von Heterodimere11,17 oder vorgestellt auf Quantum dots12,13. Frühwerk auf co-Agonismus in CD8 + T-Zell-Aktivierung im Rahmen der Agonist pMHC Anerkennung auf APC verwendet TAP2-defizienten Zelllinien als APCs. TAP ist erforderlich für Peptid-Transport von Zytoplasma nach dem endoplasmatischen Retikulum und TAP-Mangel stark reduziert den Pool der verfügbaren MHC-Klasse-Bindung Peptide. In Ermangelung von Peptiden, die im Entstehen begriffenen Anlage des MHC Klasse I schwere Kette und β2- Mikroglobulin ist instabil, was zu sehr geringen MHC-ich Zelle Oberflächenexpression. Zunächst, ergab Vergleich der T-Zellen stimuliert mit Antigen auf TAP-ausreichend und - mangelhaft Maus RMA und RMA-S Zelllinien, geladen bzw. als APCs, keine Beweise für das co-Agonismus während Maus T-Zell-Aktivierung-18. Dieses experimentelle System erlaubte jedoch nicht präzise Kontrolle über die Menge der Agonist pMHC unabhängig von nicht-stimulierende selbst pMHC vorgestellt. Darüber hinaus können diese beiden Zelllinien unterscheiden sich auch in andere Moleküle, die T-Zell-Aktivierung, wie Liganden an T-Zell-co-stimulatory oder hemmenden Rezeptoren modulieren oder Adhäsionsmoleküle Ausdruck.
Daraufhin entwickelten wir ein Protokoll für das Laden von RMA-S TAP2-defizienten Zellen mit exogenen Peptide, Präsentation eines Festbetrags Agonist pMHC in das Vorhandensein oder Fehlen von nicht-stimulierende pMHC zuzulassen. Wurde dies durch die folgenden: Inkubation von TAP2-defizienten RMA-S Zellen bei niedrigeren Temperaturen (28 ° C, statt der üblichen 37 ° C) zur Stabilisierung der leere MHC Klasse I schwere Kette/β2 Mikroglobulin komplexe19; Inkubation bei 28 ° C mit exogenen Agonisten Peptid; Inkubation bei 28 ° C in das Vorhandensein oder Fehlen von exogenen nicht-stimulierende Peptid; und Inkubation bei 37 ° C zu Zelle Oberflächenexpression von leere MHC Klasse I komplexe8,9. Verwendung von dieser Versuchsanordnung ergab, dass das Vorhandensein von nicht-stimulierende pMHC Aktivierung der Maus Thymozyten, naive peripheren CD8 + T-Zellen und CTLs8verbessert. Mechanistisch, das Vorhandensein von nicht-stimulierende pMHC CD8-Einstellung auf der T-Zelle: APC immun Synapse auch in Abwesenheit von Agonist pMHC auslösen kann, und nicht-stimulierende pMHC kann TCR Interaktion mit CD8 Coreceptor7,8erhöhen. Jedoch erlaubt dieses experimentelle System nicht die relativen Beiträge der TCR und CD8 Coreceptor Bindung an Agonist und Co-Agonist pMHC bei der Vermittlung der Aktivierung Erweiterung, als Änderungen verändern TCR oder CD8 Bindung an MHC-Klasse würde ich testen beeinflussen Sie alle MHC-Moleküle, unabhängig davon das präsentierte Peptid. Wir nutzten daher MHC Klasse ich einzelne Kette-Technologie, um dieses Problem zu überwinden.
Die einzige Kette (sc) MHC-Klasse, die ich formatieren wurde bevor zur Antigen pMHC Präsentation für therapeutische Strategien zu verbessern und beantworten grundlegende Fragen zu Mechanismen des TCR und NK-Zell-Rezeptor-Aktivierung und Funktion20,21 . ScMHC-I besteht aus Peptid, β2- Mikroglobulin und MHC-ich schweren Kette zusammen mit zwei flexiblen Serin, Glycin-reiche linker (Abbildung 1A), mehrere unterschiedliche Linker Sequenzen wurden entwickelt und getestet von22. ScMHC-ich kann unabhängig von den Hahn komplexe Falten und chaperone Proteine, die für konventionelle pMHC komplexen Baugruppe20erforderlich. ScMHC-ich habe, richtig, wie über Konformation-spezifischen Antikörper Färbung22 ermittelt und durch das lösen von sc-Struktur mit Röntgen-Kristallographie23Falten gezeigt wurde. Die grundlegende ScMHC-ich Design wurde geändert, um die Bindung geringe Affinität Peptide24,25zu verbessern.
Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung von menschlichen ScMHC-I, co-Agonismus während menschliche CTL zu untersuchen-Klon Aktivierung. Das Protokoll ist für menschliche CTL-Klon, die spezifisch für ein Epitop des Hepatitis B-Virus (HBV) optimiert worden. HBV ist eine schwere medizinische Belastung weltweit, da gibt es 350 Millionen Menschen infiziert mit HBV und chronische HBV-Infektion zur Entwicklung eines hepatozellulären Karzinoms (HCC) führen können. HCC-Zellen infolge der HBV-Infektion können in der Regel HBV-abgeleitete Epitope präsentieren und durch bestimmte menschliche T-Zellen erkannt werden. HBV und HCC Clearance stützt sich auf die menschlichen T-Zell-Antworten26, aber HCC-Patienten leiden oft an T-Zell-Erschöpfung und reduzierte T-Zell-Antworten-27. Einführung von HBV-spezifische TCR in T-Zellen der HBV ist als mögliche Immuntherapie Strategie, chronische HBV-Infektion28zu beseitigen versucht worden. Es ist jedoch unbekannt, ob diese Methode in einer klinischen Einstellung, aufgrund der geringen Oberfläche MHC wirksam sein wird-ich in humanen Hepatozyten29. Daher kann Verständnis des Mechanismus der Coagonism alternative Perspektiven Immuntherapie des HBV, möglicherweise vorsehen, durch die Verbesserung der Präsentation des endogenen pMHC, co-Agonismus-vermittelten T-Zell-Antworten zu induzieren. Das Protokoll umfasst alle notwendigen Schritte für die Forschung an menschlichen co-Agonismus: Transfektion von T-REx CHO-Zellen mit Agonist und Co-Agonist sc pMHC, Erzeugung von stabilen T-REx CHO-Zell-Linien, Kultur der HBV-spezifische menschliche CTL CD8 + T-Zell-Linie und CTL-Aktivierung Experimente, die Produktion von Zytokinen und Degranulation in Reaktion auf T-REx CHO-Zellen zu quantifizieren. Obwohl wir konzentrieren uns auf mit der sc-MHC Klasse I Technologie, co-Agonismus bei HBV T-Zell-Aktivierung zu untersuchen, ist darauf hinzuweisen, dass die vorgestellten Methoden leicht in menschliche T-Zelle Systeme mit bekannten pMHC für Forschung zu anderen Aspekten der T-Zell-Aktivierung angepasst werden können-ich Spezifität.
Dieses Protokoll verwendet eine menschliche CD8 + CTL-Linie speziell für HBV-abgeleitete Peptide E183-91 (FLLTRILTI: "E183")30 auf HLA-A2 vorgestellt. SC HLA-Moleküle bestehend aus einer Signalsequenz von menschlichen β2-Mikroglobulin, synthetisiert eine HLA-A2-Bindung-Peptid, Glycin/Serin Linker, ein menschlicher β2-Mikroglobulin, Glycin/Serin Linker und eine schwere Kette kommerziell sein kann A2 (Abbildung 1A ). Plasmide, die Codierung scA2 Konstrukte mit Agonist E183 Peptid oder Coagonist HIV GAG (SLYNTVATL)31 Peptide sind von den Autoren auf Anfrage erhältlich. Der Peptidsequenz kann mit Website gerichtet-Mutagenese geändert werden. PcDNA5/TO diente ein Tetracyclin-induzierbaren Vektor Agonist einzelne Kette HLA-A2 mit E183 Peptid (sc E183-HLA-A2) zum Ausdruck bringen. In Anwesenheit von Tetracyclin Repressor, der pcDNA5/TO Plasmid ermöglicht nur eine sehr geringe, "undichte" Ausdruck des Proteins des Interesses; hohen Ausdruck kann durch die Zugabe von Tetracyclin (Abbildung 1 bC) induziert werden. Verwendung von Tetracyclin-induzierbaren Expressionssystems ermöglicht Kontrolle über die Höhe der Zelle Oberfläche Agonist pMHC Ausdruck. Eine konstitutive Expression Plasmid pcDNA3.1 wurde verwendet, um auszudrücken Coagonist scA2 mit Knebel Peptid (sc GAG-HLA-A2). Der Tetracyclin-regulierten Ausdruck (T-REx) CHO Zelllinie (Hamster Zelllinie, keine endogenen menschlichen MHC) wurde verwendet, um auszudrücken Agonist und Co-Agonist sc-HLA-A2-Konstrukte. Dieses experimentelle System ermöglicht präzise Kontrolle über pMHC Präsentation (Abbildung 1): keine pMHC-Präsentation (untransfected T-REx), ein hohes Maß an Co-Agonist pMHC Präsentation (konstitutive sc GAG-HLA-A2 Ausdruck), eine geringe Menge an Agonist pMHC Präsentation (sc E183-HLA-A2 in Ermangelung von Tetracyclin), ein hohes Maß an Agonist pMHC Präsentation (sc E183-HLA-A2 in Anwesenheit von Tetracyclin), eine geringe Menge an Agonist pMHC Darstellung und hohe Ausdruck der Co-Agonist pMHC (sc E183-HLA-A2 in die Abwesenheit von Tetracyclin und konstitutive sc GAG-HLA-A2 Ausdruck). Dieses experimentelle System ermöglicht präzise Kontrolle der Zelle Oberfläche Mengen von Agonist und Coagonist pMHC.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Aim-V (serum free media)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>12055091</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>blasticidin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>R21001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cytofix/Cytoperm (fixation/permealibisation kit)</td>
			<td>BD</td>
			<td>554714</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>F12</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10565-018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>HyClone</td>
			<td>SH3007103</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>geneticin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10131035</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GolgiPlug (Brefeldin A)</td>
			<td>BD</td>
			<td>555029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human serum</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H4522</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hygromycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10687010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lectin from Phaseolus vulgaris (PHA)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L4144</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Opti-MEM (low serum media)</td>
			<td>Bibco</td>
			<td>31985070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 X PBS</td>
			<td>Vivantis</td>
			<td>PB0344 &#8211; 1L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin/Streptomycin</td>
			<td>HyClone</td>
			<td>SV30010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>polyethylenimine (PEI)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>408727</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>recombinant human IL2</td>
			<td>R&#38;D Systems</td>
			<td>202-IL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>recombinant human IL7</td>
			<td>R&#38;D Systems</td>
			<td>207-IL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>recombinant human IL15</td>
			<td>R&#38;D Systems</td>
			<td>247-ILB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tetracycline</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T7660</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T-REx CHO cell line</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>R71807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 x Trypsin/EDTA</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15400054</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antibodies</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CD3</td>
			<td>BD</td>
			<td>347347</td>
			<td>Clone SK7, RRID:AB_400287</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CD8&#945;</td>
			<td>BD</td>
			<td>563795</td>
			<td>Clone RPA-T8, RRID:AB_2722501</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CD107a</td>
			<td>BD</td>
			<td>566261</td>
			<td>Clone H4A3, RRID:AB_2739639</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HLA-A2</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>17-9876-41</td>
			<td>Clone BB7.2, RRID:AB_11151522</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IFN-&#947;</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>12-7319-41</td>
			<td>Clone 4S.B3, RRID:AB_1311250</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

use of single chain mhc technology to investigate co-agonism in human cd8+ t cell activation

Selbst nicht-stimulierende Peptid-MHC (pMHC)-komplexe kein T-Zell-Aktivierung und Effektor-Funktionen auslösen, aber T-Zell-Antworten zu Agonist pMHC, durch einen Prozess bezeichnet co-Agonismus verbessern können. Dieses Protokoll beschreibt ein experimentelles System, co-Agonismus während menschliche CD8 + T-Zell-Aktivierung zu untersuchen, zum Ausdruck bringen menschliche MHC Klasse I Moleküle präsentieren vorab festgelegten Peptide als einziges Polypeptide (einzelne Kette MHC) in eine xenogene Zelllinie. Wir drückten einzelne Kette MHCs unter Bedingungen, wo niedrige Agonist einzelne Kette p-MHC-komplexe und hohes Maß an nicht-stimulierende einzelne Kette p-MHC-komplexe zum Ausdruck gebracht wurden. Dieses experimentelle System erlaubt uns CD8 + T-Zell-Antworten zu Agonist pMHC auf das Vorhandensein oder Fehlen von nicht-stimulierende pMHC vergleichen. Das Protokoll beschreibt Zelle Zeile Transfektion mit einzelnen Kette MHC-Konstrukten, Erzeugung von stabilen Zelle Linien, Kultur des Hepatitis B Virus-spezifische menschliche CD8 + T-Zellen und T-Zell-Aktivierung Experimente gleichzeitig quantifizieren Produktion von Zytokinen und Degranulation. Die vorgestellten Methoden können für die Forschung zu verschiedenen Aspekten der CD8 + T-Zell-Aktivierung in menschliche T-Zelle Systeme mit bekannten Peptid MHC Spezifität verwendet werden.

Der sc MHC Klasse I hier verwendete Technologie ermöglicht präzise Kontrolle der Zelle Oberflächenexpression von MHC Klasse I mit bekannten, kovalent verknüpfte Peptide induzieren T-Zell-Aktivierung. Wir haben eine veränderte xenogene APC-System (Abb. 1A, B, C) generiert, die Präsentation von geringen Mengen Agonist pMHC in das Vorhandensein oder Fehlen von Co-Agonist pMHC (Abbildung 1, E) ermöglicht. Entscheidend ist, haben wir ein TCR-ähnliche Antikörper spezifisch für HLA-A2 präsentiert E183 Peptid verwendet, die Präsentation des Agonisten sc zeigen die E183-HLA-A2 nicht von Co Ausdruck Co-Agonist sc GAG-HLA-A2 (Abbildung 1E) geändert wird. Beachten ist jedoch, dass die E183-HLA-A2 spezifische TCR-ähnliche Antikörper einige Bindung an HLA-A2 präsentiert GAG Peptid (Abbildung 1E) zeigt. Ähnliche veränderter antigenpräsentierende Zellsysteme kann mit verschiedenen Peptiden oder MHC-Moleküle, um molekularen Anforderungen für TCR und/oder Coreceptor Wechselwirkungen im menschlichen T-Zellen mit verschiedenen Besonderheiten zu untersuchen konstruiert werden.
Wir haben diese veränderter APCs um einen E183-HLA-A2-spezifische menschliche CD8 + T-Zell-Klon zu stimulieren. Drei negative Kontrollen dienten: T-Zellen nur, untransfected T-REx CHO-Zellen und T-REx CHO-Zellen, die mit dem Ausdruck hoher Mengen an Co-Agonist sc GAG-HLA-A2 für potenzielle T testen Zelle Aktivierung durch alle Moleküle ausgedrückt auf T-REx CHO-Zellen (untransfected T-REx-CHO Zellen im Vergleich zu T-Zellen), und für die T-Zell-Aktivierung von sc-GAG-HLA-A2 (T-REx CHO-Zellen mit dem Ausdruck hohes Maß an sc-GAG-HLA-A2 im Vergleich zu untransfected T-REx CHO-Zellen). Untransfected T-REx CHO-Zellen oder T-REx CHO-Zellen, die mit dem Ausdruck sc-GAG-HLA-A2 nicht Aktivierung des E183-HLA-A2-spezifische CD8 + CTL-Klon, induzieren wie durch Quantifizierung der IFN-γ Produktion und Ausdruck der Degranulation Marker CD107a als Maß für die T-Zelle Zytotoxizität (Abb. 2AB). Ausdruck der hohen Agonist sc E183-HLA-A2, als Positivkontrolle, induzierte sehr effizient IFN-γ Produktion und Degranulation (Abbildung 2AB), was zeigt, dass das sc HLA-A2 Konstrukt durch eine spezifische TCR erkannt werden kann, aktivieren T-Zell-Effektor-Funktionen. Ausdruck eines niedrigen Niveaus des sc E183-HLA-A2 untere Ebenen der IFN-γ Produktion und Degranulation induziert, und dieser wurde verstärkt durch Anwesenheit von Co-Agonist sc GAG-HLA-A2 (Abb. 2AB). Beachten ist, dass sehr hohe Anteile an CD107a + T-Zellen selbst als Reaktion auf ein niedriges Niveau der Antigene pMHC (Abbildung 2 b), konsistent mit früheren Berichten über relativ geringe Anforderungen für die Höhe der Agonist pMHC für die Induktion von T-Zellen beobachtet wurden Zytotoxizität33. Die CD107a MFI, Angabe der Degranulation auf eine einzelne Zelle-Basis bietet einen besseren Dynamikumfang (Abb. 2 b). Die T-Zell-Aktivierung-Assay verwendet ermöglicht gleichzeitige Quantifizierung von zwei großen Effektor-Funktionen: Cytokine Produktion und Zytotoxizität, und sehr sensible auslesen mit guten Dynamikumfang bietet.
Wir verwendet die einzige Kette-Technologie um zu testen, ob TCR zu Co-Agonist pMHC Binding für Co-Agonist pMHC-abhängige Aktivierung Erweiterung erforderlich ist. Wir mutierte Valin an der Position 152 am Rande der HLA-A2 Peptid verbindlichen Nut (Abb. 3 b) zu Glutaminsäure V152E Mutant, erstellen, wie diese Mutation berichtet wurde, TCR Bindung an HLA-A234abzuschaffen. Wir testeten dann, wenn die V152E-Mutation TCR Bindung für den E183-HLA-A2 CTL-Klon verwendet, durch die Einführung dieser Mutation in Agonist sc E183-HLA-A2 und mit dem Ausdruck der mutierten Agonist sc Konstrukt in T-REx CHO-Zellen abschaffen kann. Wild-Typ, aber nicht V152E, sc E183-HLA-A2 induzierte Aktivierung des E183-HLA-A2-spezifische CTL Klons verwendet (Abb. 3A). Beachten ist, dass jeder TCR-Bindung-Mutation auf MHC-Klasse muss ich separat getestet werden, für jeden einzelnen TCR/T-Zellklon verwendet, da die Wirkung der Mutation die genauen molekularen Wechselwirkungen zwischen TCR und pMHC Komplex hängt, und diese zwischen unterscheiden werden verschiedenen TCR. Zum Beispiel wir testeten acht Mutationen, entweder bereits berichtet TCR-Bindung Mutationen oder Mutationen vorhergesagt, um TCR Bindung zu stören, ohne Aufhebung Peptid-Bindung in HLA-A2. Von diesen war V152E die einzige Mutation, die Aktivierung des E183-spezifischen T-Zell-Klons abgeschafft10verwendet. Wir dann die V152E-Mutation in der Co-Agonist sc GAG-HLA-A2 eingeführt und Co ausgedrückt WT oder V152E sc GAG-HLA-A2 mit niedrigem Agonist sc E183-HLA-A2. WT und V152E sc verbesserte GAG-HLA-A2, IFN-γ Produktion und Degranulation (Abbildung 3D), darauf hindeutet, dass TCR zu Co-Agonist pMHC Binding nicht für Co-Agonist pMHC-abhängige CD8 + T Zelle Aktivierung Erweiterung erforderlich ist. Einzelne Kette MHC Klasse I-Technologie, wie hier dargestellt, kann zur TCR und/oder Coreceptor Bindung an MHC Klasse ich mit bekannten Peptid untersuchen die molekularen Voraussetzungen für T-Zell-Antigen-Erkennung und Aktivierung zu ändern.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59126/59126fig1.jpg"> Abbildung 1: einzelne Kette HLA-A2 Konstrukte verwendet, um Co-Agonist in menschliche CD8 + T-Zell-Aktivierung zu untersuchen. (A) schematische Darstellung eines ScHLA-A2-Konstrukts, bestehend aus kovalent Signalsequenz aus verschmolzenen menschlichen β2 Mikroglobulin, Peptid der Wahl, flexible Glycin Serin Linker (GGGGSGGGGS GGGGS), menschliche β-2 -Mikroglobulin, flexibel Glycin Serin Linker und HLA-A2 schwere Kette. (B) schematische Darstellung der Plasmide, die zur Erzeugung von veränderter antigenpräsentierende Zellen untersuchen co-Agonismus in menschliche CD8 + T-Zell-Aktivierung: Tetracyclin Repressor, Agonist sc E183-HLA-A2 unter Kontrolle von Tetracyclin-induzierbaren Promoter nicht-stimulierende Co-Agonist sc GAG-HLA-A2 unter Kontrolle des konstitutiv aktiven Promotors. (C) schematische Darstellung der technischen antigenpräsentierende Zellen verwendet, um co-Agonismus untersuchen: T-REx CHO-Zellen (keine menschliche MHC-Ausdruck), T-REx CHO-Zellen, die mit dem Ausdruck konstitutiv hohe sc GAG-HLA-A2 (nicht-stimulierende Co-Agonist pMHC), Mit dem Ausdruck "undichte" niedrige sc E183-HLA-A2 in Ermangelung von Tetracyclin (low-Pegel von Agonist Peptid) T-REx CHO-Zellen, Zellen T-REx CHO-Zellen, die mit dem Ausdruck hoher sc E183-HLA-A2 in Anwesenheit von Tetracyclin (hohe Agonist Peptid), T-REx CHO niedrige Konzentrationen von sc E183-HLA-A2 und hohes Maß an sc GAG-HLA-A2 (low-Pegel von Agonist Peptid) und hohes Maß an Co-Agonist Peptid auszudrücken. (D) Zelle Oberfläche Färbung von veränderter antigenpräsentierende Zelllinien mit Anti-HLA-A2-Antikörper. Die Zahlen bezeichnen MFI Werte für MHC Fleck im Leben Zelle Tor. Von 5 unabhängigen Experimenten (E) Zelle Oberfläche Färbung von veränderter antigenpräsentierende Zelllinien TCR-ähnliche Antikörper spezifisch gegen HLA-A2 präsentiert E183 Peptid mit repräsentativen Daten. Die Zahlen bezeichnen MFI Werte für MHC Fleck im Leben Zelle Tor. 5 unabhängige Experimente repräsentativen Daten. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59126/59126fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59126/59126fig2v3.jpg"> Abbildung 2: Anwesenheit von Co-Agonist pMHC verstärkte Produktion von Zytokinen und Degranulation der E183-HLA-A2-spezifische menschliche CD8 + CTL Klon. (A) intrazellulären IFN-γ antigenpräsentierende Zellen entwickelt Färbung der HLA-A2-spezifische menschliche CD8 + CTL-Klon nach 3 h Stimulation mit der angegebenen. Die Zahlen bezeichnen den Prozentsatz positiv für IFN-γ Färbung. 3 unabhängige Experimente repräsentativen Daten, jeweils mit technischen Triplicates durchgeführt. (B) Zelle Oberfläche CD107a Färbung der HLA-A2-spezifische menschliche CD8 + CTL-Klon nach 3 h Stimulation mit der angegebenen antigenpräsentierende Zellen entwickelt. Die Zahlen bezeichnen den Prozentsatz positiv auf die Färbung der CD107a oder der CD107a MFI für CD8 + T-Zell-Population. 3 unabhängige Experimente repräsentativen Daten, jeweils mit technischen Triplicates durchgeführt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59126/59126fig2v3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59126/59126fig3.jpg"> Abbildung 3: Co-Agonist – vermittelte T-Zell-Aktivierung-Erweiterung erfordert keine TCR Bindung an die Co-Agonist pMHC komplexe. (A) V152E Mutation im sc E183-HLA-A2 abschafft Aktivierung des E183-HLA-A2-spezifische menschliche CD8 + CTL Klons. T-REx CHO-Zellen, die mit dem Ausdruck hoher WT oder V152E mutierte sc E183-HLA-A2 (Tetracyclin Induktion) wurden verwendet, um E183-HLA-A2-spezifische menschliche CD8 + CTL-Klon für 3 h zu stimulieren. T-Zell-Aktivierung wurde quantifiziert mit intrazellulären IFN-γ Färbung. Die Zahlen bezeichnen den Prozentsatz positiv für IFN-γ Färbung. 3 unabhängige Experimente repräsentativen Daten, jeweils mit technischen Triplicates durchgeführt. (B) Lage der V152E-Mutation innerhalb der Peptid-Bindung-Nut der HLA-A2. (C) V152E Mutation auf sc GAG-HLA-A2 Co-Agonist pMHC Komplex ist agonist-abhängige Aktivierung Erweiterung nicht abschaffen. Intrazelluläre IFN-γ Färbung der HLA-A2-spezifische menschliche CD8 + CTL-Klon nach 4h Stimulation mit der angegebenen entwickelt antigenpräsentierende Zellen. Die Zahlen bezeichnen den Prozentsatz positiv für IFN-γ Färbung. 3 unabhängige Experimente repräsentativen Daten, jeweils mit technischen Triplicates durchgeführt. (D) V152E Mutation auf sc GAG-HLA-A2 Co-Agonist pMHC Komplex ist agonist-abhängige Aktivierung Erweiterung nicht abschaffen. Zelle Oberfläche CD107a Färbung der HLA-A2-spezifische menschliche CD8 + CTL-Klon, nach 3h Stimulation mit der angegebenen antigenpräsentierende Zellen entwickelt. Die Zahlen bezeichnen den Prozentsatz positiv auf die Färbung der CD107a oder der CD107a MFI für CD8 + T-Zell-Population. 3 unabhängige Experimente repräsentativen Daten, jeweils mit technischen Triplicates durchgeführt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59126/59126fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>

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Use of Single Chain MHC Technology to Investigate Co-agonism in Human CD8+ T Cell Activation

Einzelne Kette MHC-Technologie zur Co-Agonismus in menschliche CD8 + T-Zell-Aktivierung zu untersuchen

Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung der einzelnen Kette MHC Klasse I komplexe molekulare Interaktionen in menschliche CD8 + T-Zell-Aktivierung zu untersuchen: Generation von veränderter antigenpräsentierende Zellen mit dem Ausdruck einzelne Kette konstruiert, Kultur der menschlichen CD8 + T Zelle Klon und T-Zell-Aktivierung-Experimenten.

Non-stimulatory self peptide MHC (pMHC) complexes do not induce T cell activation and effector functions, but can enhance T cell responses to agonist ...

Nichtsimulatorische Peptid-MHC-Komplexe aktivieren keine T-Zellen, sondern können die T-Zell-Antworten auf agonistischePeptid MHC verbessern. Dieses Protokoll beschreibt ein experimentelles System zur Untersuchung des Co-Agonismus während der Aktivierung menschlicher CD8-T-Zellen. Wir exprimierten MHC-Moleküle als einkettige Komplexe mit kovalent-verknüpfter schwerer Kette, Beta-2-Mikroglobulin und dem Peptid.Dies ermöglicht die Einführung von Mutationen in MHC-Moleküle, die vorbestimmte Peptide aufweisen. Dieses Protokoll verwendet den menschlichen CTN-Klon, ein spezifisches Epitop des Hepatitis-B-Virus. Das Verständnis des Mechanismus des Koagonismus während der Reaktion von T-Zellen gegen Hepatitis kann zur Entwicklung von Immuntropika gegen diese Virusinfektion beitragen.Die vorgestellten Methoden können in der Forschung und anderen grundlegenden Aspekten der T-Zellaktivierung in menschlichen T-Zellsystemen mit bekannter Peptid-MHC-Spezifität eingesetzt werden. Dieses Protokoll verwendet einkettige menschliche MHC-Moleküle der Klasse I, bestehend aus Signalsequenz, Peptid von Interesse, Linker, humanem Beta-2-Mikroglobulin-Linker und MHC-Schwerkette. E1A3-Peptid von Hepatitis B wird als agonistes Peptid verwendet.Gag von HIV wird als nichtstimulatorisches Peptid verwendet. Die einkettigen menschlichen MHC-Moleküle werden in einer Hamsterzelllinie exprimiert, die Tetracyclin-Repressor enthält. Agonist einkettiges MHC wird mit Tetracyclin-induziblem Plasmid exprimiert, was zu sehr niedrigen Expressionswerten in Abwesenheit von Tetracyclin und hohen Expressionswerten in Gegenwart von Tetracyclin führt.CHO-Zellen, die niedrige Konzentrationen von agonistischem Peptid MHC exprimieren, werden mit konstitutiv exprimierendem nichtstimulatorischem Peptid MHC transfiziert. Die Verwendung dieses experimentellen Systems ermöglicht den Vergleich von T-Zell-Antworten auf agonistische Peptid MHC in Gegenwart oder Abwesenheit von nichtstimulatorischem Peptid MHC. Um mit diesem Verfahren zu beginnen, kultivieren Sie CHO-Zellen in einem T-75-Kolben, wie im Textprotokoll beschrieben.Waschen Sie am Tag vor dem T-Zell-Aktivierungsexperiment die Zellen im Kolben mit PBS. Fügen Sie eine Lösung hinzu, die 05%Trypsin und 2%EDTA in PBS enthält, und brüten sie fünf bis zehn Minuten bei Raumtemperatur. Beobachten Sie die Zellen mit einem Lichtmikroskop, um sicherzustellen, dass sie sich gelöst haben.Fügen Sie dann vollständige F12 in den Kolben, um die Trypsinisierung zu stoppen. Übertragen Sie die Zellsuspension in ein 15-Milliliter-Rohr. Zentrifugieren Sie bei 400G für fünf Minuten, und entfernen Sie den Überstand durch Pipettieren oder Dekantieren.Setzen Sie das Zellpellet in fünf Millilitern vollständiger F12 wieder auf. Verwenden Sie ein Hämozytometer, um die Zellen zu zählen, und passen Sie die Zellkonzentration auf 200.000 Zellen pro Milliliter in CF12 an. Fügen Sie den agonistischen Proben 50 bis 60 Nanogramm pro Milliliter Tetracyclin hinzu, um hohe Mengen an agonistischer pMHC-Klasse I-Expression als positivzusteuern.Danach mischen Sie die CHO-Zellen entweder durch Wirbeln oder Pipettieren. Fügen Sie 100 Mikroliter der Zellsuspension zu jedem Brunnen einer U-Boden 96-Well-Platte hinzu. Über Nacht bei 37 Grad Celsius mit 5% Kohlendioxid inkubieren.Am Tag vor dem Experiment zentrifugieren CTLS-Zellen bei 400 mal G und bei vier Grad Celsius für fünf Minuten. Verwenden Sie ein Hämozytometer, um die Zellen zu zählen, und setzen Sie sie mit einer Dichte von einer Million Zellen pro Milliliter in vollständigen menschlichen T-Zellmedien ohne Zytokine oder PHA wieder aus. Inkubieren Sie die CTLs über Nacht bei 37 Grad Celsius mit 5% Kohlendioxid.Am nächsten Tag zentrifugieren Sie die T-Zellen bei 400 mal G und bei vier Grad Celsius für fünf Minuten. Entsorgen Sie den Überstand, und setzen Sie die Zellen in 2 Millilitern vollständiger serumfreier Medien wieder aus. Verwenden Sie ein Hämozytometer, um die T-Zellen zu zählen, und passen Sie ihre Dichte auf eine Million lebende Zellen pro Milliliter in vollständigen menschlichen T-Zellmedien an.Fügen Sie antihumane CD107a-Antikörper bei einer einbis 100 Verdünnung und Brefeldin A bei einer verdünnten Eins bis 1000 hinzu. Rufen Sie als Nächstes die 96-Well-Platte ab, die die CHO-Zellen enthält. Mit einer gläsernen Pasteurpipette die Medien aus den CHO-Zellen ansaugen.Fügen Sie 200 Mikroliter der T-Zellsuspension zu jedem Brunnen hinzu. Kokultur ieren die T-Zellen mit CHO-Zellen bei 37 Grad Celsius mit 5% Kohlendioxid für drei bis vier Stunden. Am Ende der Co-Kultur zentrieren Sie die 96-Well-Platte bei 400 mal G und vier Grad Celsius für fünf Minuten.Entfernen Sie den Überstand, indem Sie ihn anheben oder streicheln. Dann fügen Sie 2,5 Mikroliter CD3-Antikörper und 2,5 Mikroliter CD8-Antikörper in 50 Mikroliter 5%BSA in PBS zu jedem Brunnen, für Zelloberflächen-Antigenfärbung, und mischen durch Pipettieren. Inkubieren Sie die Proben im Dunkeln und auf Eis, für 30 Minuten.Danach 150 Mikroliter Waschpuffer zu jedem Brunnen hinzufügen, um die Proben zu waschen. Zentrifugieren Sie die Proben bei 400 mal G und bei vier Grad Celsius für fünf Minuten. Entfernen Sie den Überstand, indem Sie ihn anheben oder streicheln.Legen Sie ein Fixierungs-/Permeabilisierungskit fest und fügen Sie jedem Brunnen 100 Mikroliter Fixierungs-/Permeabilisierungslösung hinzu, und Pipette zum Mischen. 20 Minuten auf Eis bebrüten. Dann zentrifugieren Sie die Platte bei 400 mal G bei vier Grad Celsius für fünf Minuten.Entsorgen Sie den Überstand und fügen Sie 200 Mikroliter 1X Perm/Waschpuffer zu jedem Brunnen hinzu. Wiederholen Sie diesen Vorgang aus der Zentrifugation, indem Sie einmal den Perm/Waschpuffer hinzufügen. Danach setzen Sie die Zellen in 50 Mikroliter Perm/Waschpuffer, der Anti-Interferon-Gamma enthält, in einer Konzentration von 3 Mikrogramm pro Milliliter wieder aus.30 Minuten auf Eis im Dunkeln bebrüten. Als nächstes fügen Sie 150 Mikroliter 1X Perm/Waschpuffer hinzu. Zentrifuge bei 400G, vier Grad Celsius, für fünf Minuten.Entfernen Sie den Überstand und fügen Sie 200 Mikroliter 1X Perm/Waschpuffer hinzu. Zentrifugieren Sie die Platte wieder bei 400 mal G, vier Grad Celsius, für fünf Minuten, und entfernen Sie den Überstand durch Anheben oder Streichen. Setzen Sie die Probe in 200 Mikroliter Waschpuffer wieder aus und fahren Sie mit der zytometrischen Analyse fort.Mischen Sie die CHO-Zellen einen Tag vor dem Experiment entweder durch Wirbeln oder Pipettieren. Als nächstes fügen Sie einen Milliliter der Zellsuspension zu jedem Brunnen einer 12-Well-Platte hinzu. Über Nacht bei 37 Grad Celsius mit 5% Kohlendioxid inkubieren.Verwenden Sie am Tag des Experiments einen Zellschaber, um die CHO-Zellen von der Unterseite jedes Brunnens zu lösen. Übertragen Sie den einen Milliliter Medien, der die Zellen von jedem Brunnen enthält, in FACS-Röhren. Zentrifuge bei 400 mal G und bei vier Grad Celsius für fünf Minuten.Re-suspend in 100 Mikroliter Anti-HLA-Antikörper im Waschpuffer verdünnt. 30 Minuten auf Eis bebrüten. Fügen Sie dann jeder CHO-Probe einen Milliliter Waschpuffer hinzu.Zentrifugieren Sie bei 400 mal G und bei vier Grad Celsius für fünf Minuten, und entsorgen Sie den Überstand. Setzen Sie jede Probe in 3 Milliliter Waschpuffer wieder aus, und führen Sie die Analyse der Zytometrie durch. In dieser Studie wird ein robustes Werkzeug zur Untersuchung der molekularen Interaktion während der positiven T-Zellaktivierung durch humanes CD8 vorgestellt.Es wird ein technisch entwickeltes xenogenes System erzeugt, das in Gegenwart oder Abwesenheit von Co-Agonist enpHC niedrige Konzentrationen von agonistischem pMHC darstellt. Diese konstruierten APCs werden dann verwendet, um einen E183-spezifischen menschlichen CD8-positiven T-Zellklon zu stimulieren. Untransfizierte CHO-Zellen und CHO-Zellen, die den nichtstimulatorischen einkettigen Gag-MHC-Komplex exprimieren, induzieren keine Aktivierung.Die Expression des agonistischen einkettigen E183-MHC-Komplexes, der die positive Kontrolle ist, ist die Art und Weise, dass eine sehr effiziente Interferon-Gamma-Produktion und Degranulation induziert wird, was zeigt, dass das einkettige E183-Konstrukt von einer bestimmten TCR erkannt werden kann, um T-Zell-Effektor-Funktionen zu aktivieren. Die Expression niedriger Einketten-E183-MHC-Komplexe induziert ein geringeres Maß an Interferon-Gamma-Produktion und Degranulation, was durch das Vorhandensein eines nichtstimulatorischen Gag-MHC-Komplexes verstärkt wurde. Beachten Sie, dass sehr hohe Prozentsätze von CD107a+T-Zellen auch als Reaktion auf niedrige Konzentrationen von antigenen pMHC beobachtet werden, was mit früheren Studien übereinstimmt.Jedoch, Vorhandensein von nichtstimulatory Gag-MHC-Komplex erhöht CD107a MFI. Während dieses Verfahrens ist es wichtig, agonistische Peptid-MHC-Expression zu kontrollieren, um eine gleichberechtigte agonistische Darstellung mit oder ohne nicht-stimulatorisches Peptid zu gewährleisten. Es ist wichtig, die agonistische Peptid-MHC-Expression mit TCR-ähnlichen Antikörpern in jedem Experiment zu quantifizieren.Ein alternativer Ansatz ist die Verwendung von unterstützten Lipid-Bilayern oder Perlen, die eine feste Menge an agonistischem Peptid MHC in Gegenwart von nichtstimulatorischem Peptid MHC darstellen. Dieses experimentelle System sollte das Testen mehrerer nichtstimulatorischer Peptidsequenzen auf Co-Agonismus ermöglichen. Die einkettige MHC-Technologie kann zur Untersuchung molekularer Wechselwirkungen bei der CD4-T-Zellaktivierung sowie zur Untersuchung nicht-klassischer MHC-Moleküle eingesetzt werden.Dieses Protokoll verwendet menschliches Blut und menschliche Zellen. Befolgen Sie alle notwendigen Vorsichtsmaßnahmen bei der Arbeit mit menschlichem Blut, um das Risiko der Übertragung von blutübertragenen Krankheiten zu reduzieren.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Retroviral Transduction of T-cell Receptors in Mouse T-cells

Retrovirale Transduktion von T-Zell-Rezeptoren in Maus-T-Zellen

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen ...

Forschung

Immunologie und Infektion

Use of Interferon-&gamma; Enzyme-linked Immunospot Assay to Characterize Novel T-cell Epitopes of Human Papillomavirus

Use of Interferon-ÃƒÅ½Ã‚Â³ Enzyme-linked Immunospot Assay to Characterize Novel T-cell Epitopes of Human Papillomavirus

Verwendung von Interferon-γ enzyme-linked immunospot Assay zur Novel T-Zell-Epitope des humanen Papillomvirus Charakterisieren

A protocol has been developed to overcome the difficulties of isolating and characterizing rare T cells specific for pathogens, such as human ...

Induction of Graft-versus-host Disease and In Vivo T Cell Monitoring Using an MHC-matched Murine Model

Induction of Graft-versus-host Disease and In Vivo T Cell Monitoring Using an MHC-matched Murine Model

Induktion der Graft-versus-Host-Krankheit und<em&gt; In Vivo</em&gt; T-Zell-Überwachung mit einem MHC-matched Mausmodell

Graft-versus-host disease (GVHD) is the limiting barrier to the broad use of bone marrow transplant as a curative therapy for a variety of hematological ...

piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells

piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells

piggyBac Transposon-System Modifikation von primären menschlichen T-Zellen

The piggyBac transposon system is naturally active, originally derived from the cabbage looper moth1,2. This non-viral system is plasmid based, most ...

The Use of Fluorescent Target Arrays for Assessment of T Cell Responses In vivo

The Use of Fluorescent Target Arrays for Assessment of T Cell Responses In vivo

Die Verwendung von fluoreszierenden Ziel Arrays zur Beurteilung der T-Zell-Antworten<em&gt; In-vivo-</em

The ability to monitor T cell responses in vivo is important for the development of our understanding of the immune response and the design of ...

Flow Cytometric Analysis of Natural Killer Cell Lytic Activity in Human Whole Blood

Durchflusszytometrische Analyse von natürlichen Killerzellen lytische Aktivität in menschlichem Vollblut

NK cell cytotoxicity is a widely used measure to determine the effect of outside intervention on NK cell function. However, the accuracy and ...

Analysis of Simian Immunodeficiency Virus-specific CD8+ T-cells in Rhesus Macaques by Peptide-MHC-I Tetramer Staining

Analysis of Simian Immunodeficiency Virus-specific CD8+ T-cells in Rhesus Macaques by Peptide-MHC-I Tetramer Staining

Analysis of Simian Immunodeficiency Virus-spezifischen CD8<sup&gt; +</sup&gt; T-Zellen in Rhesusaffen von Peptid-MHC-I Tetramerfärbung

Peptide-major histocompatibility complex class I (pMHC-I) tetramers have been an invaluable tool to study CD8+ T-cell responses. Because these reagents ...

Highly Multiplexed, Super-resolution Imaging of T Cells Using madSTORM

Hochmultiplexed, Super-Auflösung Bildgebung von T-Zellen mit madSTORM

Imaging heterogeneous cellular structures using single molecule localization microscopy has been hindered by inadequate localization precision and ...

In Situ MHC-tetramer Staining and Quantitative Analysis to Determine the Location, Abundance, and Phenotype of Antigen-specific CD8 T Cells in Tissues

In Situ MHC-tetramer Staining and Quantitative Analysis to Determine the Location, Abundance, and Phenotype of Antigen-specific CD8 T Cells in Tissues

In Situ MHC-Tetramer Färbung und Quantitative Analyse zur Bestimmung der Lage, Fülle und Phänotyp der Antigen-spezifische CD8-T-Zellen in den Geweben

T cells are critical to many immunological processes, including detecting and eliminating virus-infected cells, preventing autoimmunity, assisting in ...