Name: x-ray diffraction of intact murine skeletal muscle as a tool for studying the structural basis of muscle disease
Uploaded: 2019-07-18T12:30:00
Duration: 8 min 26 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about X-ray Diffraction of Intact Murine Skeletal Muscle as a Tool for Studying the Structural Basis of Muscle Disease at JoVE.com

استخدم هذا البحث موارد من مصدر الفوتون المتقدم، وهو مكتب مستخدم علمي تابع لوزارة الطاقة الأميركية يعمل لمكتب العلوم التابع لوزارة الطاقة من قبل مختبر أرغون الوطني بموجب العقد رقم. DE-AC02-06CH11357. وقد تم دعم هذا المشروع بمنحة P41 GM103622 من المعهد الوطني للعلوم الطبية العامة التابع للمعاهد الوطنية للصحة. تم توفير استخدام كاشف بيلاتوس 3 1M بمنحة 1S10OD018090-01 من NIGMS. والمحتوى هو مسؤولية المؤلفين فقط ولا يعكس بالضرورة الآراء الرسمية للمعهد الوطني للعلوم الطبية العامة أو المعاهد الوطنية للصحة.

تمت الموافقة على جميع بروتوكولات التجارب الحيوانية من قبل معهد إلينوي للتكنولوجيا المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها لجنة (بروتوكول 2015-001، تاريخ الموافقة: 3 نوفمبر 2015) واتبع المعاهد الوطنية للصحة "دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية"9 .
1. التحضير قبل التجربة
<ol><li>إعداد 500 مل من حل رينجر (يحتوي على: 145 مل NaCl، 2.5 مل كيلوكل، 1.0 مليون متر م غسو 4، 1.0 مليون متر CaCl2،10.0 مليون متر HEPES، 11 مليون الجلوكوز، درجة الحموضة 7.4) طازجة لكل يوم من التجربة.</li>
	<li>ملء 200 مل من محلول رينجر في زجاجة رذاذ وتخزينها في الثلاجة 4 درجة مئوية. ملء طبق بيتري (10 سم في القطر) مع حل رينجر وperfuse مع الأكسجين 100٪ عن طريق ربط الأنبوب من اسطوانة الأكسجين إلى حجر الهواء حوض السمك. كانت أطباق بيتري ("تشريح الأطباق") مغلفة في السابق بمركب الاستومر للسماح بإدراج دبابيس أثناء التشريح.</li>
	<li>إعداد السنانير المعدنية تصاعد. قطع قطعتين من أسلاك الفولاذ المقاوم للصدأ، 0.5 ملم في القطر، إلى الطول المناسب وثني السلك في كلا الطرفين لتشكيل السنانير. ترتيب جميع أدوات تشريح، مقص، خياطة ربط ملقط، مقص صغير مفيد للاستخدام. ملاحظة: يجب أن يكون جزء هوك حوالي 3 ملم طويلة. يجب أن يكون السلك الأطول (الذي ينتهي بخطاف) بطول حوالي 5 سم، وينبغي أن يكون السلك الأقصر (الذي ينتهي أيضًا في الخطاف) بطول حوالي 1 سم من أجل احتواء الغرف المخصصة المستخدمة في BioCAT والسماح بمجموعة كافية من الحركة لذراع محول الطاقة.</li>
	<li>
قم بتوصيل جميع المعدات وتشغيله. ويشمل ذلك محول محرك/قوة مدمج، وجهاز تحكم في محول المحرك/القوة، ومحفزتيار ثنائي الطور عالي الطاقة، ونظام اكتح/تحكم في البيانات يتم التحكم فيه بالحاسوب.
	<ol>
<li>قم بتشغيل نظام الحصول على البيانات ومعايرة قبل بدء التجربة10. باختصار، معايرة القوة عن طريق إضافة مجموعة من الأوزان المعروفة، وتغطي ما يصل إلى 50٪ من القوة القصوى التي تقاس من قبل محول القوة في تطور خطي، على محول القوة وتسجيل التغييرات الجهد الناتج. معايرة طول عن طريق تطبيق مجموعة من الجهد الناتج المعروفة على ذراع رافعة وقياس تغيير طول الذراع.</li>
		<li>قم بتوصيل الخراطيم من الكتلة الحرارية على حامل العينة إلى حمام متداول مبرد وقم بتعيين درجة الحرارة للحفاظ على درجة الحرارة المطلوبة في الغرفة إلى ما بين 10 درجة مئوية و40 درجة مئوية. تحديد هذا تجريبيا في وقت مبكر عن طريق وضع الحمام تعميم لمجموعة من درجات الحرارة وقياس درجة الحرارة في الغرفة مع الحرارية.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. إعداد العضلات
<ol><li>
قتل الفأر
	<ol>
<li>قتل الفأر عن طريق استنشاق ثاني أكسيد الكربون متبوعاً بخلع عنق الرحم.</li>
		<li>رش الجلد على الطرف الخلفي مع محلول الرينجر الباردة لمنع الشعر من تهب في التحضير. إزالة الجلد عن طريق قطع بعيدا حول الفخذ باستخدام مقص تشريح غرامة وسحب الجلد بسرعة إلى أسفل باستخدام ملقط #5 لفضح العضلات.</li>
		<li>قم ببتر الطرف الخلفي ونقله إلى طبق تشريح تم ملئه بحل Ringer المؤكسد، ثم وضعه تحت مجهر تشريح يُحدث منظارًا.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
تحضير عضلة نعل
	<ol>
<li>ضع يطرف هُنا في طبق التشريح مع العضلات المعدية المعدية التي تواجه الأعلى. قطع الوتر القاصي لمجموعة العضلات الجهاز الهضمي / السولوس ورفع العضلات بلطف وببطء عن طريق قطع اللفافة على جانبي العضلات الجهاز الهضمي باستخدام مقص غرامة. عزل مجموعة العضلات المعدية/اللولبية من الطرف بعد تحرير الوتر القريب من عضلة النعل.</li>
		<li>دبوس مجموعة العضلات التي تحتوي على العضلات المعدية والأوتار البعيدة أسفل في طبق تشريح. رفع العضلات soleus بلطف عن طريق الوتر القريب وفصلها عن العضلات المعدية المعدة ترك أكبر قدر من وتر القاصي soleus سليمة قدر الإمكان.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
إعداد عضلة طول التيكونس (EDL)
	<ol>
<li>ضع يطرف هُنا في طبق التشريح مع العضلات الأمامية التي تواجه الأعلى. قطع اللفافة على طول عضلة الساقية الأمامية (TA) وسحبها واضحة باستخدام ملقط. تحديد وقطع الوتر القاصي للعضلة TA. رفع العضلات TA وقطع بها بعناية دون سحب على العضلات EDL.</li>
		<li>قطع فتح الجانب الجانبي من الركبة وفضح الأوتار اثنين. قطع الوتر القريب، وترك أكبر قدر ممكن من الوتر لا يزال تعلق على العضلات، ورفع العضلات EDL (العضلات الوسيطة) عن طريق سحب بلطف الوتر. قطع الوتر القاصي بمجرد أن يتعرض.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
تركيب العضلات
	<ol>
<li>دبوس أسفل العضلات عن طريق الأوتار، وتقليم جميع الدهون الزائدة، اللفافة والأوتار بعيدا قدر الإمكان. إدراج وتر واحد في عقدة مرتبطة مسبقا وربط خياطة بإحكام مع خياطة ربط ملقط. ربط العقدة الثانية على حول هوك المعدنية.</li>
		<li>كرر نفس الإجراء مع هوك طويلة على الطرف الآخر من الوتر. تأكد من أن لا يتم الاتصال بأي من جسم العضلات من قبل الغرز. وهذا سيلحق الضرر بالإعداد.</li>
		<li>إرفاق هوك قصيرة إلى الجزء السفلي من الغرفة التجريبية وهوك طويل إلى محول قوة الوضع المزدوج / المحرك. فقاعة الحل في الغرفة التجريبية مع الأكسجين 100٪.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
تحسين بروتوكولات التحفيز وطول العضلات
	<ol>
<li>تمتد العضلات عن طريق ضبط micromaniators تعلق على محول / المحرك لتوليد التوتر خط الأساس بين 15 إلى 20 mN قبل العثور على أفضل المعلمات التحفيز. تعيين الجهد التحفيز إلى 40 فولت. يتم زيادة التيار التحفيز بشكل منهجي حتى لا يكون هناك زيادة إضافية في قوة نشل. يتم زيادة أعلى التيار وجدت بحوالي 50٪ لضمان التنشيط فوق القصوى.</li>
		<li>العثور على الطول الأمثل، L0، يعرف باسم طول العضلات التي تعطي أقصى قوة نشل، عن طريق زيادة طول العضلات وتفعيل العضلات مع نشل واحد حتى قوة نشطة (قوة الذروة ناقص قوة خط الأساس) يتوقف عن زيادة.</li>
		<li>إجراء تقلص الكزاز القصير (1 ق التنشيط) لاختبار تصاعد وتمتد العضلات مرة أخرى إلى قوة خط الأساس الأمثل إذا لزم الأمر. تسجيل طول العضلات في مم مع الفرجار الرقمية.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. الأشعة السينية الانعراج
ملاحظة: الوصف التالي هو لتجارب الانعراج بالأشعة السينية التي أجريت باستخدام أداة انعراج الأشعة السينية الزاوية الصغيرة على خط الحزمة BioCAT 18ID في مصدر الفوتون المتقدم، مختبر أرغون الوطني ولكن يمكن استخدام أساليب مماثلة على خطوط الحزمة الأخرى مثل ID 02 في ESRF (فرنسا) وBL40XU في SPring8 (اليابان). يتم تشغيل Beamline 18ID في طاقة شعاع الأشعة السينية الثابتة من 12 كيلوفولت (الطول الموجي 0.1033 نانومتر) مع تدفق الحوادث من ~ 1013 فوتونفي الثانية في شعاع كامل.
<ol><li>اختيار عينة لمسافة كاشف (طول الكاميرا). استخدام طول الكاميرا 1.8 م للتجارب فحص 2.7 نانومتر أكتين وارتفاع ترتيب انعكاسات ميوسين مثل 2.8 نانومتر انعكاسات ميريديونال. استخدام كاميرا 4-6 م لتجارب أخرى، حيث يهتم المرء في المقام الأول بالتفاصيل الدقيقة على خطوط الطول والطبقة</li>
	<li>
تحسين موضع العينة في الحزمة
	<ol>
<li>تحديد موضع الحزمة باستخدام قطعة من الورق الحساس بالأشعة السينية التي تنتج بقعة مظلمة استجابة للأشعة السينية ("حرق"). ثم استخدام مولد الفيديو عبر الشعر لإنشاء الشعر عبر محاذاة مع علامة حرق على الورق أو ببساطة جعل علامة على شاشة الفيديو مع قلم علامة.</li>
		<li>استخدم واجهة المستخدم الرسومية التي تم توفيرها من BioCAT إلى موقع العينة لتحريك العضلات ليتم توسيطها على موضع الحزمة. تتأرجح غرفة العينة في ~ 10-20 مم / ث عن طريق تحريك مرحلة العينة من أجل نشر جرعة الأشعة السينية على العضلات أثناء التعرض. مراقبة العينة لأنها تتحرك لتجنب مناطق كبيرة من اللفافة (يحتوي على الكولاجين الذي سوف يلوث أنماط الانعراج) وضمان أن يبقى مضيئة خلال مسار كامل من السفر. ملاحظة: والخطوات الدقيقة المطلوبة في الفرعين 3-3 و3-4 لجعل الإعدادات والإجراءات المطلوبة باستخدام واجهة المستخدم الرسومية التي توفرها خطوط الحزمة ستكون محددة في خط الحزمة وكاشف. اسأل موظفي خط الحزمة عن كيفية تنفيذ هذه العمليات.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
إعداد كاشف CCD (جهاز المقترنة بالشحن) لأنماط عالية الدقة من العضلات في حالات ثابتة محددة (يستريح، أو أثناء الانكماش متساوي القياس)
	<ol>
<li>قم بإعداد وقت التعرض وفترة التعرض في واجهة المستخدم الرسومية إلى برنامج التحكم. التقاط صورة خلفية داكنة قبل اتخاذ التعرض وتكرار هذا الإجراء كل 2 ساعة أو بعد تغيير وقت التعرض لتصحيح أي الانجراف في أجهزة الكشف عن الالكترونيات القراءة.</li>
		<li>تخفيف شعاع الأشعة السينية إلى القيمة المطلوبة للتعرض. ثم التقاط صورة. ليس من الممكن التقاط تسلسل من الصور مع هذا الكاشف. كما يحتاج كاشف اتفاقية مكافحة التصحر إلى عدة ثوان ٍ لقراءة صورة فردية.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
إعداد كاشف صفيف البكسل لتجربة حل الوقت
	<ol>
<li>إعداد عدد الصور ووقت التعرض وفترة التعرض في واجهة المستخدم الرسومية. كاشف صفيف بكسل المستخدمة هنا يحتاج على الأقل 1 مللي ثانية للقراءة. الحد الأقصى لتردد الإطار للكشف عن عد الفوتون هو 500 هرتز. استخدام إشارة إخراج كاشف العد الفوتون للتحكم في مصراع الأشعة السينية.</li>
		<li>تخفيف شعاع إلى الكثافة المطلوبة. تسليح كاشف وانتظر الزناد من نظام الحصول على البيانات. مزامنة البيانات الميكانيكية والأشعة السينية عن طريق تشغيلها في نفس الوقت. يتم جمع أنماط الأشعة السينية بشكل مستمر في جميع أنحاء البروتوكول أ مع 1 مللي ثانية وقت التعرض و2 مللي ثانية فترة التعرض. ملاحظة: وينبغي تحديد وقت التعرض الدقيق وفترة التعرض على أساس كل حالة على حدة فيما يتعلق بالمعلومات المطلوبة والعمر الملاحظ للعينة في الحزمة. تخفيف الحزمة من أجل استخدام شعاع الأشعة السينية أكثر مما هو مطلوب لتوفير بيانات قابلة للتحليل في فترة التعرض المختارة.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. علاج العضلات بعد التجربة
<ol><li>استعادة ووزن العضلات بعد كل تجربة الميكانيكية والأشعة السينية. حساب المنطقة المقطعية للعضلة باستخدام طول العضلات المقاسة وكتلة العضلات11 على افتراض كثافة العضلات من 1.06 غرام / مل12.</li>
	<li>تمتد العضلات إلى الطول التجريبي وإصلاح العضلات في 10٪ فورمالين لمدة 10 دقيقة. فصل العضلات الثابتة إلى سلسلة من حزم الألياف المختارة من المواقع في جميع أنحاء كامل العضلات المقطع العرضي3.</li>
	<li>قياس طول sarcomere باستخدام نظام قياس طول sarcomere الفيديو.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Ma, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thick-Filament+Extensibility+in+Intact+Skeletal+Muscle.">Thick-Filament Extensibility in Intact Skeletal Muscle.</a> Biophysical Journal. 115 (8), 1580-1588 (2018).</li><li>Ma, W., Gong, H., Irving, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myosin+Head+Configurations+in+Resting+and+Contracting+Murine+Skeletal+Muscle.">Myosin Head Configurations in Resting and Contracting Murine Skeletal Muscle.</a> International Journal of Molecular Sciences. 19 (9), (2018).</li><li>Kiss, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nebulin+stiffens+the+thin+filament+and+augments+cross-bridge+interaction+in+skeletal+muscle.">Nebulin stiffens the thin filament and augments cross-bridge interaction in skeletal muscle.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (41), 10369-10374 (2018).</li><li>Ochala, J., Gokhin, D. S., Iwamoto, H., Fowler, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pointed-end+capping+by+tropomodulin+modulates+actomyosin+crossbridge+formation+in+skeletal+muscle+fibers.">Pointed-end capping by tropomodulin modulates actomyosin crossbridge formation in skeletal muscle fibers.</a> Federation of American Societies for Experimental Biology Journal. 28 (1), 408-415 (2014).</li><li>Lindqvist, J., Iwamoto, H., Blanco, G., Ochala, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+fraction+of+strongly+bound+cross-bridges+is+increased+in+mice+that+carry+the+myopathy-linked+myosin+heavy+chain+mutation+MYH4(L342Q).">The fraction of strongly bound cross-bridges is increased in mice that carry the myopathy-linked myosin heavy chain mutation MYH4(L342Q).</a> Disease Models &amp; Mechanisms. 6 (3), 834-840 (2013).</li><li>Huxley, H. E., Stewart, A., Sosa, H., Irving, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=X-ray+diffraction+measurements+of+the+extensibility+of+actin+and+myosin+filaments+in+contracting+muscle.">X-ray diffraction measurements of the extensibility of actin and myosin filaments in contracting muscle.</a> Biophysical Journal. 67 (6), 2411-2421 (1994).</li><li>Wakabayashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=X-ray+diffraction+evidence+for+the+extensibility+of+actin+and+myosin+filaments+during+muscle+contraction.">X-ray diffraction evidence for the extensibility of actin and myosin filaments during muscle contraction.</a> Biophysical Journal. 67 (6), 2422-2435 (1994).</li><li>Anderson, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mavacamten+stabilizes+a+folded-back+sequestered+super-relaxed+state+of+&#946;-cardiac+myosin.">Mavacamten stabilizes a folded-back sequestered super-relaxed state of &#946;-cardiac myosin.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , (2018).</li><li>National Research Council. Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guide+for+the+care+and+use+of+laboratory+animals.">Guide for the care and use of laboratory animals.</a> Institute for Laboratory Animal Research (U.S.) &amp; National Academies Press (U.S.). , (2011).</li><li>. How to Calibrate Your Dual-Mode Lever System Using DMC Available from: <a target="_blank" href="https://aurorascientific.com/how-to-calibrate-your-dual-mode-lever-system-using-dmc/">https://aurorascientific.com/how-to-calibrate-your-dual-mode-lever-system-using-dmc/</a> (2017)</li><li>Alexander, R. M. V. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+dimensions+of+knee+and+ankle+muscles+and+the+forces+they+exert.">The dimensions of knee and ankle muscles and the forces they exert.</a> Journal of Human Movement Studies. 1, 115-123 (1975).</li><li>Burkholder, T. J., Fingado, B., Baron, S., Lieber, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Relationship+between+Muscle-Fiber+Types+and+Sizes+and+Muscle+Architectural+Properties+in+the+Mouse+Hindlimb.">Relationship between Muscle-Fiber Types and Sizes and Muscle Architectural Properties in the Mouse Hindlimb.</a> Journal of Morphology. 221 (2), 177-190 (1994).</li><li>Jiratrakanvong, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> MuscleX: software suite for diffraction X-ray imaging V1.13.1. , (2018).</li><li>Reconditi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myosin+filament+activation+in+the+heart+is+tuned+to+the+mechanical+task.">Myosin filament activation in the heart is tuned to the mechanical task.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (12), 3240-3245 (2017).</li></ol>

ويعلن صاحبا البلاغ أنهما ليس لديهما مصالح مالية متنافسة.

وأظهرت المنشورات الأخيرة من مجموعتنا أن أنماط الأشعة السينية من العضلات الهيكلية الماوس يمكن استخدامهالتسليط الضوء على المعلومات الهيكلية ساركوميريك من العضلات في الصحة والمرض 1،2،3 خاصة مع زيادة توافر نماذج الماوس المعدلة وراثيا لمختلف اعتلال عضلة الوثاث. الدراسات الميكانيكية عالية الدقة على ألياف واحدة أو حزم صغيرة جنبا إلى جنب مع انعراج الأشعة السينية هو أفضل القيام به من قبل الخبراء. ومع ذلك، إذا كانت المعلومات الميكانيكية أكثر تواضعا ً تكفي لأغراضك، فإن إعداد العضلات بأكملها يسمح بجمع أنماط الأشعة السينية التفصيلية من إعداد بسيط.
تشريح نظيفة هو المفتاح لنجاح تجربة الميكانيكية والأشعة السينية مجتمعة. من المهم جداً عدم سحب على العضلات المستهدفة، فضلا عن العضلات الأخرى المرتبطة عضلات النعل أو EDL أثناء تشريح لأن هذا يمكن أن تمزق أجزاء من العضلات وتؤدي إلى انخفاض القوة. كما يمكن أن يؤدي إلى تلف الهيكل الداخلي الذي سيحط من أنماط الأشعة السينية. منذ كل شيء سوف مبعثر في شعاع الأشعة السينية، فمن المهم لتنظيف بعيدا أي الدهون الزائدة، والكولاجين في اللفافة، فضلا عن أي الشعر أو بت فضفاضة من الأنسجة أثناء القيام البروتوكول التالي. للحد من الامتثال إضافية في إعداد العضلات, من المهم أيضا لربط الأوتار بشكل آمن إلى السنانير, أقرب ما يمكن إلى جسم العضلات دون الإضرار به.
يمكن أن توفر أوقات التعرض بالأشعة السينية المختلفة أنواعًا مختلفة من المعلومات من نفس العضلات. باستخدام الحزمة الكاملة على 18ID، يمكن الحصول على نمط استوائي قابل للتحليل في التعرض 1 مللي ثانية (انظر الشكل 2D). للحصول على انعكاس خط طبقة الموسين الأول القابل للتحليل، يلزم عادةً وقت تعرض إجمالي 10 مللي ثانية. لجمع انعكاسات ميريديونالأعلى الترتيب مثل M15 (2.8 نانومتر myosin meridional انعكاس) و2.7 نانومتر الأكتين الانعكاس meridional، وعادة ما يكون هناك حاجة إلى التعرض الكلي 1 ق على الأقل ولكن ينصح أكثر من 2 ق التعرض الكلي لدقة عالية القياسات.
ومن المهم اختيار كاشف الأشعة السينية الأمثل للتجربة. بالنسبة لأنماط الأشعة السينية الأكثر تفصيلاً، يمكن لكاشف CCD المخصص، مثل الموجود في BioCAT مع 40 ميكروبكسل تقريبًا وحوالي 65 ميكرومتر من وظائف الانتشار في الفوسفور، أن يوفر أنماطًا ذات نطاق ديناميكي عالي ودقة مكانية جيدة ولكن يمكن أن يستغرق إطارًا واحدًا فقط في كل مرة. بالنسبة للتجارب التي تم حلها في الوقت، يمكن للكشف عن صفيف بكسل العد بالفوتون في BioCAT جمع أنماط الأشعة السينية عند 500 هرتز. حجم بكسل 172 ميكرومتر مع هذا الكاشف، ومع ذلك، لا يوفر دقة مكانية كافية للدراسات التفصيلية للجزء الداخلي من خط الطول ولكن يكفي لمعظم الأغراض الأخرى. وحصلت شركة BioCAT على كاشف عد فوتوني عالي الاستبانة يوفر دقة حقيقية قدرها 75 ميكرومتر بمعدل إطار أقصى قدره 000 9 هرتز، ومن المتوقع أن تحل أجهزة الكشف المماثلة من هذا النوع محل أجهزة الكشف الحالية لدراسات العضلات على مدى السنوات القليلة القادمة.
مع التدفقات عالية جدا من الأشعة السينية في synchrotrons الجيل الثالث، والضرر الإشعاعي هو مصدر قلق خطير. هو دائما خيار جيّدة أن يئن الشعاع أن يسلّم [نو مور] شعاع من يكون لازمة أن يلاحظ ال برغب إنعراج سمات. ويمكن تحقيق نفس التعرض الكلي للأشعة السينية عن طريق إطالة وقت التعرض من شعاع مخفف. ميزة من الفوتون عد كاشفات صفيف بكسل هو أن الإطارات الفردية يمكن تلخيصها جنبا إلى جنب مع عدم وجود عقوبة الضوضاء. وحتى في هذه المثل، يمكن أن يكون الضرر الإشعاعي ممكناً. وتشمل علامات الضرر الإشعاعي انخفاض القوة القصوى للانكماش، وتلطيخ انعكاسات خط الطبقة، وحتى تغيير لون العضلات.
واحدة من القيود على إعداد العضلات الهيكلية الماوس سليمة هو صعوبة في الحصول على طول sarcomere من العضلات سليمة خلال التجارب. العضلات سميكة جداً لميكروسكوب الفيديو وانعراج الليزر. بينما مع التطورات المستقبلية قد يكون من الممكن تقدير طول sarcomere مباشرة من أنماط الانعراج14، في المدى القريب الخيار الوحيد هو قياسه بعد التجربة كما هو موضح هنا.

Synchrotron زاوية صغيرة الأشعة السينية الانعراج هو الأسلوب المفضل لدراسة هيكل نانومتر مقياس من التعاقد بنشاط الاستعدادات العضلات في ظل الظروف الفسيولوجية. الأهم من ذلك، يمكن الحصول على المعلومات الهيكلية من الاستعدادات العضلات الحية أو البشرة في تزامن مع البيانات الفسيولوجية، مثل قوة العضلات والتغيرات طول. كان هناك اهتمام متزايد في تطبيق هذه التقنية لدراسة الأساس الهيكلي لأمراض العضلات الموروثة التي لها أساسها في الطفرات نقطة في البروتينات ساركوميريك. وكان مجتمع الفيزياء الحيوية العضلات نشطة جدا في توليد نماذج الماوس المعدلة وراثيا لهذه الظروف الأمراض البشرية التي يمكن أن توفر أسرة اختبار مثالية للدراسات الهيكلية. وقد أشارت المنشوراتالأخيرة من مجموعتنا 1،2،3 وغيرها4،5 أن أنماط الأشعة السينية من الماوس الموسعة رقمي longus (EDL) وعضلات السولوس يمكن أن توفر جميع معلومات الانعراج المتاحة من الكائنات الحية النموذجية أكثر تقليدية مثل الضفدع والأرنب psoas العضلات الهيكلية. ميزة إعداد العضلات الهيكلية الماوس هو سهولة تشريح وأداء الأغشية الأساسية سليمة، والتجارب الفسيولوجية العضلات كلها. أبعاد العضلات تشريح لديها كتلة كافية لإنتاج أنماط العضلات مفصلة للغاية في أوقات التعرض الأشعة السينية قصيرة جدا (~ مللي ثانية لكل إطار) على الجيل الثالث من شعاع الأشعة السينية.
تتكون أنماط انعراج الأشعة السينية العضلية من الانعكاسات الاستوائية، والانعكاسات الميرية، فضلا ً عن انعكاسات خط الطبقة. نسبة الكثافة الاستوائية (نسبة كثافة انعكاسات 1,1 و1,0 الاستوائية، I 11/I10)،ترتبط ارتباطا وثيقا بعدد الجسور المتقاطعة المرفقة، وهو ما يتناسب مع القوة المتولدة في العضلات الهيكلية للماوس 2.يمكن استخدام الانعكاسات meridional التي تقرير الدورات داخل خيوط سميكة ورقيقة لتقدير خيوط القابلية للتوسعة 1،3،6،7. دعات إنعراج سمات لا على ال [مووند] والاتّلاو الاستواء طبقة خطوط, أيّ ينشأ من ال تقريبا [هلّيكلّي] يؤمر [موسين] رؤوس على السطح من سميكة خيوط عمود فقريّ [أس ولّ س] ال تقريبا [هلّيكلّي] يؤمر خيوط رقيقة. كثافة خطوط طبقة الموسين ترتبط ارتباطا وثيقا بدرجة ترتيب رؤساء myosin في ظل ظروف مختلفة2،8. كل هذه المعلومات يمكن استخدامها دراسة سلوكيات البروتينات الساركوميريك في الموقع في الصحة والمرض.
وقد تم تاريخيا أنعراج الأشعة السينية Synchrotron من العضلات من قبل فرق من الخبراء المتخصصين للغاية ولكن التقدم في التكنولوجيا وتوافر أدوات جديدة للحد من البيانات تشير إلى أن هذا ليس دائما هو الحال. وBioCAT Beamline 18ID في مصدر الفوتون المتقدم، مختبر أرغون الوطني لديها الموظفين وأجهزة الدعم المخصصة لإجراء تجارب الانعراج بالأشعة السينية العضلات التي يمكن أن تساعد الوافدين الجدد إلى الميدان البدء في استخدام هذه التقنيات. يختار العديد من المستخدمين التعاون رسميا مع موظفي BioCAT، ولكن عددا متزايدا من المستخدمين يجدون أنهم يستطيعون القيام بالتجارب وتحليل أنفسهم مما يقلل من العبء على موظفي خط الحزمة. الهدف الرئيسي من هذه الورقة هو توفير التدريب الذي يوفر للتجارب المحتملة مع المعلومات التي يحتاجونها لتخطيط وتنفيذ التجارب على نظام العضلات الهيكلية الماوس إما في خط الحزمة BioCAT أو في غيرها من خطوط الحزم تدفق عالية حول العالم حيث هذه التجارب سيكون من الممكن.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:793px;" width="793">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:240px;">#5 forceps</td>
			<td style="width:131px;">WPI</td>
			<td style="width:87px;">500342</td>
			<td style="width:336px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:240px;">4/0 surgical suture</td>
			<td style="width:131px;">Braintree Sci</td>
			<td>SUT-S 108</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">aquarium air stone</td>
			<td>uxcell</td>
			<td></td>
			<td>a regular air stone from a pet store would be fine</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">CaCl2</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C5670</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">CCD detector</td>
			<td>Rayonix Inc</td>
			<td>MAR 165 CCD</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">data accquisition system</td>
			<td>Aurora Scientific Inc</td>
			<td>610A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:240px;">elastomer compound</td>
			<td style="width:131px;">Dow Corning</td>
			<td>Sylgard 184</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Glucose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G8270</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">HEPES</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H3375</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:240px;">High resolution photon counting detector</td>
			<td>Dectris Inc</td>
			<td>EIGER X 500K</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">high-power bi-phasic current stimulator</td>
			<td>Aurora Scientific Inc</td>
			<td>701</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Iris Scissors</td>
			<td style="width:131px;">WPI</td>
			<td>501263-G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">KCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P9541</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">MgSO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M7506</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:240px;">micro scissor</td>
			<td style="width:131px;">WPI</td>
			<td>503365</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">motor/force transducer</td>
			<td>Aurora Scientific Inc</td>
			<td>300C-LR</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">NaCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S9888</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:240px;">petri-dish</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>CLS430167</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">photon counting detector</td>
			<td>Dectris Inc</td>
			<td>Pilatus 3 1M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Stainless Steel wire</td>
			<td style="width:131px;">McMaster-carr</td>
			<td>8908K21</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Suture Tying Forceps</td>
			<td style="width:131px;">WPI</td>
			<td>504498</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Video sarcomere length measuring system</td>
			<td>Aurora Scientific Inc</td>
			<td>900B</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

x-ray diffraction of intact murine skeletal muscle as a tool for studying the structural basis of muscle disease

وكانت نماذج الماوس المعدلة وراثيا أدوات هامة لدراسة العلاقة بين النمط الجيني والنمط الظاهري للأمراض البشرية بما في ذلك أمراض العضلات الهيكلية. وقد ثبت أن العضلات الهيكلية للماوس تنتج أنماط انعراج عالية الجودة بالأشعة السينية على خطوط الحزمة المتزامنة من الجيل الثالث مما يوفر فرصة لربط التغييرات على مستوى النمط الجيني بالأنماط الظاهرية الوظيفية في الصحة والمرض عن طريق تحديد العواقب الهيكلية للتغيرات الوراثية. ونقدم بروتوكولات مفصلة لإعداد العينات، وجمع أنماط الأشعة السينية، واستخراج البارامترات الهيكلية ذات الصلة من أنماط الأشعة السينية التي قد تساعد في توجيه التجارب الراغبة في إجراء مثل هذه التجارب لأنفسهم.

تقلص الكزاز متساوي القياس. أي نوع من التجارب الميكانيكية العضلات الكلاسيكية، مثل تقلصات متساوي القياس أو متساوي التوتر، يمكن أن يؤديها مع اكتساب في وقت واحد من أنماط الأشعة السينية. الشكل 1 A يظهر الإعداد التجريبي للتجارب الميكانيكية والأشعة السينية. ويرد في الشكل 1باءأثر قوة مثال لتقلص الكزاز متساوي القياس. عقدت العضلات في يستريح لمدة 0.5 s قبل تفعيلها لمدة 1 s. يتوقف التسجيل الميكانيكي 1 s بعد التحفيز. تم جمع أنماط الأشعة السينية بشكل مستمر في جميع أنحاء البروتوكول في وقت التعرض 1 مللي ثانية في 500 هرتز.
أنماط انعراج الأشعة السينية. يمكن لنمط انعراج الأشعة السينية للعضلات أن يعطي معلومات هيكلية عن دقة النانومتر من الهياكل الموجودة داخل الساركومر. تتكون أنماط انعراج الأشعة السينية العضلية من أربعة أرباع مكافئة مقسومة على خط الاستواء وخط الطول. وينشأ النمط الاستوائي من التعبئة الخيوط العضلية داخل السركومر عمودي على محور الألياف، في حين أن الأنماط الميرية تقرير المعلومات الهيكلية من خيوط العضلات على طول محور العضلات. وتسمى الانعكاسات المتبقية ليست على خط الاستواء أو خط الطول خطوط الطبقة. خطوط طبقة (على سبيل المثال، ملامح المسمى MLL4 و ALL6 في الشكل 2A)تنشأ من الترتيب شبه حلزوني من الوحدات الفرعية الجزيئية داخل myosin التي تحتوي على خيوط سميكة والأكتين التي تحتوي على خيوط رقيقة. خطوط الطبقة المستندة إلى myosin قوية وحادة في أنماط من العضلات يستريح (الشكل 2A)، في حين خطوط طبقة المستندة إلى الأكتين هي أكثر بروزا في أنماط من العضلات المتعاقدة (الشكل 2B). أنماط الفرق التي تم الحصول عليها عن طريق طرح نمط يستريح من نمط التعاقد (الشكل2C)يمكن تسليط الضوء على التغيرات الهيكلية أثناء تطوير القوة في العضلات صحية ومريضة. باتباع هذه التغيرات الهيكلية على مقياس الوقت الملي ثانية من الأحداث الجزيئية أثناء تقلص العضلات، وأنماط الانعراج بالأشعة السينية يمكن أن تكشف عن معلومات هيكلية كبيرة (الشكل2D).
تحليل البيانات باستخدام MuscleX. وفيما يلي مثال على تحليل الانعكاسات الاستوائية باستخدام روتين "خطالاستواء" في حزمة MuscleX (الشكل 3). MuscleX هو حزمة برامج تحليل مفتوحة المصدر تم تطويرها في BioCAT13. نسبة الكثافة الاستوائية (I1,1/I1,0)هي مؤشر على قرب الموسين من الأكتين في العضلات يستريح (الشكل3A)، في حين أنها ترتبط ارتباطا وثيقا بعدد الجسور المتقاطعة المرفقة في التعاقد ( الشكل 3B)مورين العضلات والهيكل العظمي2. نسبة الكثافة, أنا1,1/I1,0, حوالي 0.47 في العضلات يستريح وحوالي 1.2 في تقلص العضلات. المسافة بين انعكاس 1,0 اثنين (2 * S1,0) يرتبط عكسيا إلى تباعد بين خيوط. الوثائق التفصيلية وكتيبات MuscleX متاحة على الانترنت13.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59559/59559fig1.jpg"> الشكل 1 إعداد التجارب الميكانيكية والأشعة السينية والبروتوكول. (أ) يتم تركيب العضلات على نهاية واحدة إلى هوك داخل الغرفة التجريبية والطرف الآخر إلى محرك مزدوج وضع / قوة محول. هو أمسكت بين اثنان [كبتون] فيلم نافذات أن يسمح ال [إكس-ريس] أن يمرّ كلّيّا. تمتلئ الغرفة مع حل رينجر مع الأكسجين 100٪ طوال التجربة. (ب) البروتوكول الميكانيكي لتجارب الأشعة السينية على العضلات أثناء تقلص الكزاز. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59559/59559fig1large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59559/59559fig2.jpg"> الشكل 2 أنماط انعراج الأشعة السينية EDL. EDL العضلات نمط الانعراج بالأشعة السينية من يستريح (أ) والتعاقد (B) العضلات. (ج) نمط الفرق بين نمط الراحة والتعاقد. المنطقة الزرقاء تشير إلى كثافة عالية في نمط الراحة، في حين أن المنطقة الصفراء تمثل كثافة عالية في نمط التعاقد. (D) نمط انعراج الأشعة السينية من التعرض 1 مللي ثانية مع عضلة EDL. MLL1 = أول خط طبقة myosin من الدرجة الأولى; MLL4 = خط طبقة myosin من أجل رابع; ALL1 = خط طبقة أكتين من الدرجة الأولى ALL6 = خط طبقة أكتين من الدرجة السادسة؛ ALL7 = خط طبقة أكتين الترتيب السابع; Tm = انعكاس تروبوموسين (المشار إليه من قبل مربع أبيض)؛ M3 = انعكاس meridional من الدرجة الثالثة؛ M6 = انعكاس meridional النظام السادس. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59559/59559fig2large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59559/59559fig3.jpg"> الشكل 3 تحليل البيانات من الأنماط الاستوائية باستخدام MuscleX. وطرحت الخلفية لمحة عن نسبة الكثافة الاستوائية (في حين أن المنطقة) والطلبات الخمسة الأولى (الخطوط الخضراء) كانت مناسبة لحساب كثافة كل ذروة. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59559/59559fig3large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>

Watch this Scientific Journal Video about X-ray Diffraction of Intact Murine Skeletal Muscle as a Tool for Studying the Structural Basis of Muscle Disease at JoVE.com

X-ray Diffraction of Intact Murine Skeletal Muscle as a Tool for Studying the Structural Basis of Muscle Disease

الأشعة السينية الانعراج من العضلات الهيكلية Murine سليمة كأداة لدراسة الأساس الهيكلي لأمراض العضلات

نقدم بروتوكولات مفصلة لإجراء تجارب انعراج الأشعة السينية ذات الزاوية الصغيرة باستخدام عضلات العضلات الهيكلية للماوس سليمة. مع توافر نماذج الماوس المعدلة وراثيا على نطاق واسع للأمراض البشرية، يمكن لهذه المنصة التجريبية أن تشكل سرير اختبار مفيد لتوضيح الأساس الهيكلي لأمراض العضلات الوراثية

Transgenic mouse models have been important tools for studying the relationship of genotype to phenotype for human diseases including those of skeletal ...

يمكن أن تنتج العضلات الهيكلية للماوس سليمة من الناحية الفسيولوجية عالية الجودة أنماط الحيود الأشعة السينية التي تحتوي على الكثير من المعلومات الهيكلية التي يمكن أن توفر نظرة ثاقبة في العمليات الفسيولوجية. إنعراج الأشعة السينية هو الأسلوب الوحيد الذي يسمح بالحصول على معلومات هيكلية عالية الدقة من أنسجة العضلات الحية في ظل ظروف فسيولوجية حقيقية في الوقت الفسيولوجي الحقيقي. ورثت العديد من أمراض العضلات.ومع زيادة التوافر لتعديل معظم نماذج المواشعة وراثياً، يمكن أن يوفر الحيود بالأشعة السينية رؤى هيكلية في آليات المرض ويشير إلى الاستراتيجيات العلاجية. معظم الاكستينسور لونجوس والعضلات سوليوس مريحة بشكل خاص لهذا الغرض. ولكن يمكن تشريح العديد من العضلات الأخرى في الحيوانات الصغيرة سليمة والتعامل معها بطريقة مماثلة.قبل البدء في الإجراء، بدوره على محول القوة الحركية المشتركة، وقوة المحرك محول تحكم مع قوة عالية ثنائي الطور الحالي محفز، والتحكم في نظام التحكم في البيانات الكمبيوتر. بعد ذلك، رش الجلد على الطرف الخلفي من الماوس مع حل رينجر الباردة واستخدام مقص تشريح غرامة لقطع الجلد حول الفخذ. باستخدام عدد خمسة ملقط، وسحب الجلد بسرعة إلى أسفل لفضح العضلات وبتر الطرف الخلفي.ضع الطرف في طبق تشريح مغلف بالمستوم يحتوي على محلول رينغر المُكسجِم ووضع الطبق تحت مجهر تشريح منظار. لحصاد العضلات سولس, دبوس الطرف الخلفي مع العضلات gastrocnemius التي تواجه صعودا. استخدام مقص غرامة لقطع وتر القعد من مجموعة العضلات gastrocnemius / soleus.قطع بعيدا اللفافة على جانبي العضلات المعدة للسماح للعضلات أن ترفع بلطف وببطء بعيدا عن العظام. ثم حرر وتر قريب من العضلات وحيد. دبوس أسفل مجموعة العضلات التي تحتوي على العضلات gastrocnemius وتر القعد في الطبق.رفع العضلات soleus بلطف عن طريق وتر قريب لفصله عن العضلات gastrocnemius, ترك أكبر قدر من وتر وحيد وحيد سليمة قدر الإمكان. لحصاد مُنْفَضُ الزّنَم المُمَتَلّع أو عضلة EDL، ثبّت الطرف الخلفي في الطبق مع العضلة الأمامية التي تواجه صعودًا وتقطع اللفافة على طول العضلة الأمامية الصدّية. استخدام ملقط لسحب اللفافة واضحة وقطع وتر قات من العضلات الأمامية tibialis.رفع العضلات الأمامية tibialis وقطع بها بعناية دون سحب على العضلات EDL، وقطع فتح الجانب الجانبي من الركبة لفضح الأوتار اثنين. قطع وتر قريب، وترك لنا الكثير من وتر ممكن لا تزال تعلق على العضلات وسحب بلطف على وتر لرفع العضلات EDL. ثم قطع وتر القاصي مرة واحدة هو يتعرض.لتركيب العضلات المحصودة، دبوس أسفل العضلات عن طريق الأوتار وتقليم أكبر قدر من الدهون الزائدة، اللفافة وتر ممكن. إدراج وتر واحد في عقدة قبل تعادل واستخدام خياطة ربط ملقط لربط خياطة بإحكام. ربط العقدة الثانية حول الخطاف المعدني وكرر الإجراء على الطرف الآخر من الوتر.ثم نعلق ربط قصيرة إلى الجزء السفلي من الغرفة التجريبية، وربط طويل إلى محرك محول القوة مزدوجة الوضع. فقاعة الحل في غرفة التجريبية مع 100٪ من الأوكسجين. لتحسين بروتوكول التحفيز وطول العضلات ضبط المتلاعبين الصغيرة تعلق على المحرك محول لتوليد التوتر خط الأساس بين 15 إلى 20 millinewtons للعثور على أفضل المعلمات التحفيز لتمتد العضلات.تعيين الجهد التحفيز إلى 40 فولت. سيتم زيادة تيار التحفيز بشكل منهجي حتى لا تكون هناك زيادة إضافية في قوة الارتعاش. للعثور على الطول الأمثل، قم بزيادة طول العضلات وتنشيط العضلات مع نشلة واحدة حتى تتوقف القوة النشطة عن الزيادة.تنفيذ انكماش tetanic ثانية واحدة لاختبار تصاعد وتمتد العضلات مرة أخرى إلى القوة الأساسية الأمثل حسب الضرورة. ثم سجل طول العضلات في ملليمتر مع الفرجار الرقمية. لتحديد موضع الحزمة، استخدم قطعة من ورق حساس للأشعة السينية تنتج بقعة داكنة استجابة للأشعة السينية ومولد شعرة مقطعي لإنشاء مرمى متقاطعة تتماشى مع علامة الحرق على الورق.باستخدام واجهة المستخدم الرسومية BioCAT التي تم توفيرها إلى موضع العينة ، مركز العضلات على موضع الحزمة ونقل مرحلة العينة لتتأرجح غرفة العينة في 10 إلى 20 ملليمترا في الثانية لنشر جرعة الأشعة السينية في جميع أنحاء العضلات أثناء التعرض. مراقبة العينة لأنها تتحرك لتجنب مناطق كبيرة من اللفافة التي تحتوي على الكولاجين وضمان أن يبقى مضيئة خلال كامل مسار سفرها. اسلح الكاشف وانتظر الزناد من نظام الحصول على البيانات.ثم تشغيل البيانات الميكانيكية والأشعة السينية في نفس الوقت لمزامنتها. وسيتم جمع أنماط الأشعة السينية بشكل مستمر في جميع أنحاء البروتوكول مع وقت التعرض 10 مللي ثانية وفترة تعرض 50 مللي ثانية. في هذا الانكماش tetanic متساوي القياس تمثيلية عقدت العضلات EDL في بقية لمدة 0.5 ثانية قبل أن يتم تنشيطه لثانية واحدة، تليها 1.5 ثانية الاسترخاء.يمكن أن يعطي نمط الحيود بالأشعة السينية العضلية معلومات هيكلية عن دقة النانومتر من الهياكل داخل الساركومير. خطوط طبقة الميوسين القائمة على خيوط سميكة قوية وحادة في أنماط من العضلات يستريح, في حين أن خطوط طبقة actin القائم على شعيرات رقيقة هي أكثر بروزا في أنماط من العضلات التعاقد. يمكن أن أنماط الاختلاف التي تم الحصول عليها عن طريق طرح نمط الراحة من نمط التعاقد تسليط الضوء على التغيرات الهيكلية خلال تطوير القوة في العضلات الصحية والمامراضة.باتباع هذه التغيرات الهيكلية في مقياس ميلي ثانية من الأحداث الجزيئية خلال تقلص العضلات والاسترخاء، يمكن أن تكشف أنماط الحيود بالأشعة السينية معلومات هيكلية كبيرة. في هذا التحليل التأملات الاستوائية تمثيلية باستخدام روتين خط الاستواء في حزمة MuscleX مفتوحة المصدر, نسبة كثافة الاستوائية يشير إلى قرب من myosin إلى actin في العضلات يستريح ويرتبط ارتباطا وثيقا إلى عدد من الجسور عبر المرفقة في التعاقد مورين الهيكل العظمي العضلات. المسافة بين انعكاس 1، 0 هما ذات صلة عكسية إلى التباعد بين الفواصل.تشريح نظيف هو المفتاح لنجاح تجربة الأشعة السينية العضلات سليمة، وذلك في محاولة لتجنب أي ضرر الميكانيكية أثناء إعداد العضلات. يمكن تنفيذ أي بروتوكول الفسيولوجية القياسية مع العضلات كلها في هذه التجارب، ويمكن استخدامها لدراسة تنشيط العضلات والاسترخاء والسلوك عبر الجسر خلال عبور الميكانيكية السريعة. التلاعب الوراثي للفئران أصبحت متطورة على نحو متزايد.وسوف تسمح نماذج جديدة الماوس المعدلة وراثيا تجارب أكثر تحديدا والثاقبة أن تكون مصممة للإشارة إلى الاتجاهات العلاجية الجديدة لالمبات المياة الإنسان.

Education

Research

JoVE Core

JoVE Journal

Cell Biology

Developmental Biology

Unit 1

The Cytoskeleton I: Actin and Microfilaments

Analyzing Cells and Proteins

SCIENTISTS IN ACTION

Analysis of Zebrafish Larvae Skeletal Muscle Integrity with Evans Blue Dye

تحليل الزرد اليرقات الهيكل العظمي النزاهة العضلات مع ايفانز الأزرق صبغ

The zebrafish model is an emerging system for the study of neuromuscular disorders.  In the study of neuromuscular diseases, the integrity of the muscle ...

Using Isolated Mitochondria from Minimal Quantities of Mouse Skeletal Muscle for High throughput Microplate Respiratory Measurements

عن طريق عزل الميتوكوندريا من كميات الحد الأدنى من الفأر العضلات الهيكلية لارتفاع صفيحة ميكروسكوبية الإنتاجية قياسات الجهاز التنفسي

Skeletal muscle mitochondria play a specific role in many disease pathologies. As such, the measurement of oxygen consumption as an indicator of ...

Induction of Acute Skeletal Muscle Regeneration by Cardiotoxin Injection

تحريض الحاد الهيكل العظمي تجديد العضلات التي Cardiotoxin حقن

Skeletal muscle regeneration is a physiological process that occurs in adult skeletal muscles in response to injury or disease. Acute injury-induced ...

Preparation and Culture of Myogenic Precursor Cells/Primary Myoblasts from Skeletal Muscle of Adult and Aged Humans

إعداد والثقافة من الخلايا عضلي السلائف / Myoblasts الابتدائية من العضلات الهيكلية من الكبار والمسنين البشر

Skeletal muscle homeostasis depends on muscle growth (hypertrophy), atrophy and regeneration. During ageing and in several diseases, muscle wasting ...

Evaluation of Injury-induced Senescence and In Vivo Reprogramming in the Skeletal Muscle

Evaluation of Injury-induced Senescence and In Vivo Reprogramming in the Skeletal Muscle

تقييم الضرر الناجم عن الشيخوخة و في فيفو إعادة برمجة في العضلات الهيكلية

Cellular senescence is a stress response that is characterized by a stable cellular growth arrest, which is important for many physiological and ...

Application of Chronic Stimulation to Study Contractile Activity-induced Rat Skeletal Muscle Phenotypic Adaptations

تطبيق التحفيز المزمن لدراسة التعديلات المظهرية الهيكل العظمى والعضلات الهوس الفئران التي يسببها النشاط

Skeletal muscle is a highly adaptable tissue, as its biochemical and physiological properties are greatly altered in response to chronic exercise. To ...

Identification of Skeletal Muscle Satellite Cells by Immunofluorescence with Pax7 and Laminin Antibodies

تحديد خلايا الهيكل العظمى والعضلات الأقمار الصناعية قبل الفلورة مع Pax7 والأجسام المضادة لامينين

Immunofluorescence is an effective method that helps to identify different cell types on tissue sections. In order to study the desired cell population, ...

In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

في فيفو تصوير Morphogenesis وتر العضلات في المورفولوجية الخوادر

Muscles together with tendons and the skeleton enable animals including humans to move their body parts. Muscle morphogenesis is highly conserved from ...

Isolation, Culture, Characterization, and Differentiation of Human Muscle Progenitor Cells from the Skeletal Muscle Biopsy Procedure

العزلة والثقافة والتوصيف والتمايز بين خلايا ذرية العضلات البشرية من إجراء خزعة العضلات الهيكلية

The use of primary human tissue and cells is ideal for the investigation of biological and physiological processes such as the skeletal muscle ...

Performing Human Skeletal Muscle Xenografts in Immunodeficient Mice

أداء العضلات الهيكلية البشرية Xenografts في الفئران نقص المناعة

Treatment effects observed in animal studies often fail to be recapitulated in clinical trials. While this problem is multifaceted, one reason for this ...