Method Article
ووصف إعداد التصور والأنسجة لمعالجة التجريبية للدوران الأوعية الدقيقة الحية. في الفئران الذكور تخدير ، يتم إعداد رقيقة ، والعضلات المشمرة أوعية دموية للغاية لintravital المجهري لدراسة شبكات الاوعية الدموية الدقيقة بما في ذلك الشرايين والشعيرات الدموية والأوردة. ويتم تكييف بسهولة التحضير لهذه الجرذان والفئران البيضاء.
في جميع أنحاء الجسم ، والحفاظ على التوازن يتطلب امدادات ثابتة من الأوكسجين والمواد المغذية يصاحب ذلك مع إزالة الأيضية والمنتجات. ويتحقق هذا التوازن عن طريق حركة الدم من خلال دوران الأوعية الدقيقة ، والذي يشمل فروع أصغر من إمدادات الأوعية الدموية في جميع الأنسجة والأعضاء. الشرينات فرع من الشرايين على شكل شبكات للتحكم في توزيع وحجم الدم المؤكسج تصب في العديد من الشعيرات الدموية المرتبطة ارتباطا وثيقا مع خلايا متنية. الشعيرات الدموية توفر مساحة كبيرة لتبادل diffusional بين خلايا الأنسجة والدم. الوريدات جمع النفايات السائلة الشعرية وتتلاقى مع عودتهم امؤكسج الدم نحو القلب. لمراقبة هذه العمليات في الوقت الحقيقي يتطلب نهجا تجريبيا لتصور والتلاعب دوران الأوعية الدقيقة الحية.
وقد استخدم لأول مرة في عضلة المشمرة الجرذان كنموذج لدراسة التهاب الأنسجة باستخدام المجهر والإلكترون 1،2 آخر بعد الوفاة. التحقيق الأول في تقرير المجراة من الفئران المعرضة سليمة العضلات المشمرة ردود الاوعية الدموية الدقيقة على الأدوية فعال في الأوعية باستخدام الضوء ينعكس 3. مهما كانت محدودة انحناء في العضلات وعدم وجود إنارة ركزت على فائدة من هذا الإعداد. واستتبع فتح فتحا كبيرا في العضلات ، وفصلها من الخصية وانتشاره شعاعيا كورقة للشقة تضوء تحت المجهر المركب 4. في حين أظهرت أن يكون إعداد قيمة لدراسة علم وظائف الأعضاء للدوران الأوعية الدقيقة في الجرذان والفئران البيضاء 5 6 ، وقد ثبت في العضلة المشمرة الفئران 7 مفيدة بشكل خاص في تشريح مسارات الخلوية تشارك في تنظيم وظيفة الاوعية الدموية الدقيقة 11/08 في الوقت الحقيقي والتصوير من بين الخلايا إشارات 12.
مشتق من العضلة المشمرة عضلات البطن الداخلية المائل والعرضي والخصيتين ينزل من خلال القناة الإربية 13. إنه يساعد على دعم (باليونانية : المشمرة = رباط الجورب) والحفاظ على درجة حرارة الخصيتين. كما هو موضح هنا ، هو إعداد ورقة والعضلات المشمرة شقة رقيقة لقرار الضوئية المعلقة. مع الحفاظ على الماوس في درجة حرارة الجسم ثابتة وطائرة من التخدير ، وإعداد الجراحية ينطوي على تحرير العضلات من الأنسجة المحيطة بها ، والخصيتين ، ونشر ذلك على قاعدة التمثال من المطاط silastic شفافة وتأمين الحواف مع دبابيس الحشرات بينما لري بشكل مستمر مع محلول ملحي الفسيولوجية . ويستخدم هذا البروتوكول الفئران المعدلة وراثيا في التعبير عن GCaMP2 الخلايا البطانية تصلب. GCaMP2 المرمزة وراثيا هو مؤشر الكالسيوم الفلورسنت 12 الجزيء. Widefield التصوير والكاميرا كثف الجهاز المسؤول إلى جانب تمكين في الدراسة المجراة من إشارات الكالسيوم في بطانة تصلب.
1. الماوس متنها ، رمى العضلات ، إسفين الجسم وحل superfusion
2. التخدير والتحضير لعملية جراحية
3. الجراحية إعداد العضلات المشمرة فتح
4. Intravital التصوير للدوران الأوعية الدقيقة العضلات المشمرة
5. ممثل النتائج
مجلس ماوس الرقم 1. التصوير intravital إعداد المشمرة الماوس. أ) وتد مع الهيئة منصة الألومنيوم (معزول بالبلاستيك الصفراء) ينظر إليها من الأسفل. المقاومات التدفئة المضمون على الجانب السفلي من المنصة التي أجريت توفير الحرارة. ب) وتقع على منصة التدفئة اسفين البلاستيك. ج) يتم وضع إسفين الجسم على لوح زجاجي لعملية جراحية ونقل لاحقا إلى مرحلة intravital المجهر. يشار Sylgard رمى مع السهم الأحمر. ألف حبة من السيليكون ماء يحيط إعداد كامل لاحتواء أي حل قد تسرب أثناء إجراء intravital ، ومنعه من يقطر على المجهر.
الرقم مخصص MacroZoom 2. مجهر لتصوير widefield. أ) MVX10 الجسم المجهر (أوليمبوس) مع الكاميرا ICCD XR/Mega-10 (ستانفورد الضوئيات) التي شنت على منفذ trinocular. ب) عن قرب عرض للجسم المجهر. (أ) التكبير السيطرة (0.63 إلى 6.3X) ، (ب) عجلة التصفية ، (ج) مضاعف صورة (NA = 0.50 مع التكبير البصري 25X). C) رف المجهر المكثف للإنارة (كولر) brightfield (NA = 0.55 المكثف ، المسافة العامل = 27 ملم).
اكتمل الشكل 3. المشمرة إعداد الماوس. تخدير الماوس في موقف ضعيف في الحارة منصة الألمنيوم البلاستيكية المغلفة (الصفراء). يتم تأمين موقف الجسم مع الشريط. وينتشر في عضلة المشمرة شعاعيا على قاعدة التمثال المطاط silastic شفافة ويعلق على الحواف. الحل هو عرض Superfusion في نهاية الداني من خلال المنقط البلاستيك (السهم الأبيض). خط فراغ (أبيض رأس السهم) يزيل الحل عبر Kimwipe الفتيل. وترد اثنين micropipettes المتمركزة مع نصائح في الأنسجة. هو المضمون والإلكترود المرجعي (سلك الفضة) في الحافة السفلية للعضلة المشمرة.
الشكل 4. يوضح مدى التكبير للتعبير عن تصور شبكات شريني GCaMP2 في البطانة. أ) نيون وباء) brightfield صورة اتخذت في التكبير البصري 3.2X التكبير لمجموع = 42X على شاشة فيديو. [مجال الرؤية (FOV) = 4375 X 3470 ميكرومتر]. مقياس بار = 500 ميكرومتر. يعمل في هذا التكبير يسهل وضع micropipettes في الأماكن المطلوبة. C) ونيون D صورة brightfield) المتخذ في التكبير البصري 6.4X التكبير لمجموع = 83X (FOV = 2200 X 1759 ميكرون). مقياس بار = 200 ميكرومتر. E) ونيون صورة brightfield F) الذي اتخذ في التكبير البصري 12.6X التكبير لمجموع = 165X (FOV = 1100 X 885 ميكرون). مقياس بار = 100 ميكرومتر. G) ومضاعف الصورة ، التكبير البصري = 25.2X. مقياس بار = 50 ميكرومتر.
نحن هنا وصف العضلة المشمرة فتح في إعداد الماوس لرصد دوران الأوعية الدقيقة في الجسم الحي. وعلى غرار هذا الإجراء بعد "فتح" إعداد المشمرة وصف لأول مرة في الفئران 4. ويمكن أن يكتمل مع الممارسة العملية الجراحية بالكامل في أقل من 1 ساعة. وبراعة هذا الإعداد يسمح لمجموعة متنوعة من المعالجات التجريبية وتكييفها بسهولة للهامستر وكذلك الفئران ، وتمكين مجموعة متنوعة من نماذج تجريبية لدراستها بطريقة مماثلة. ويقتصر إعداد للحيوانات من الذكور ، وينبغي إجراء قياسات نحو وسط النسيج ، وتجنب المناطق المتضررة بالقرب من حواف العضلات 14. وينبغي أيضا أنه يجب الاعتراف بأنه ، في حين يتم تغيير توزيع الضغط والتدفق عندما يتم قطع الأوعية ربط عضلة المشمرة 16 ، microvessels تظل استجابة ومناسبة لجمع البيانات استنساخه. القيد الرئيسي على الرؤية ودوران الأوعية الدقيقة في العضلات المشمرة هو تراكم النسيج الضام مثل الحيوانات الناضجة وزيادة في الحجم ، ولا سيما في الفئران ولكن أيضا في الهامستر. كذلك ، الحيوانات الحصول على الدهون ، فإنه يصبح من الصعب السيطرة عليها بسبب التخدير بنتوباربيتال محبة للدهون ويمكن استيعابها في الأنسجة الدهنية. أفضل طريقة للمضي قدما هو من خلال التحلي بالصبر مع ضمان الحفاظ على درجة حرارة جسم الحيوان ° ~ في 37 درجة مئوية بينما المروية الأنسجة تتعرض باستمرار مع PSS.
تمت الموافقة على كافة الإجراءات والبروتوكولات التي تنطوي على الحيوانات من قبل لجنة رعاية الحيوان ، واستخدم من جامعة ميسوري والتي أجريت في الاتفاق مع المرشد لمعاهد الصحة الوطنية لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية.
وقد رعت الإنتاج من هذه المادة عن طريق الفيديو بواسطة الضوئيات ستانفورد.
ويدعم البحوث في المختبر المؤلفين من المعاهد الوطنية للصحة منح R37 - HL041026 ، R01 - R01 HL086483 وHL056786 - (SSS) وHL097463 - F32 و- T32 AR048523 (PB) من خدمة الولايات المتحدة الصحة العامة.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
اسم أو جهاز كاشف | شركة | فهرس العدد | تعليقات |
---|---|---|---|
كلوريد الصوديوم | الصياد | S642 - 212 | |
كلوريد البوتاسيوم | سيغما | P9541 | |
سلفات المغنيزيوم | سيغما | M2643 | |
كلوريد الكالسيوم | سيغما | C1016 | |
بيكربونات الصوديوم | الصياد | S233 | |
Nembutal الصوديوم الحل | Lundbeck | NDC 67386-501-55 | كما يشار إلى الصوديوم بنتوباربيتال |
درجة الحرارة المراقب المالي | نذير الآلات | TC - 344B | البديل : تعديل التيار المستمر 12V العرض |
سلسلة سخان منصة 20 طقم RH - 2 | نذير الآلات | 64-0274 | يتطلب مبنية خصيصا لوحة الألمنيوم |
كاميرا 10 ميجا | ستانفورد الضوئيات | XR/Mega-10 | |
MVX10 | اوليمبوس | ||
MV PLAPO 2XC العدسة | اوليمبوس | ||
MVX10 الوقوف الهجين | ليدز | LBX الهجين | |
مزمر مراقبة البرامج | ستانفورد الضوئيات | برنامج للكاميرا 10 ميجا | |
مجهر ستيريو | نيكون | SMZ645 | |
سيليكون مانع التسرب للماء (واضح) | جنرال الكتريك | 47970-72643 - LW5000 | مانعات التسرب سيليكون أخرى واضحة تعمل أيضا |
60 × طبق بيتري 15mm | الصياد | 08-757 - 13A | |
Sylgard | داو كورننغ | 184 | |
Microdissection مقص | أدوات العلوم غرامة | 15003-08 | |
دومون الملقط | أدوات العلوم غرامة | # 5 / 45 | |
GP ميليبور اكسبريس PLUS الغشائية | ميليبور | SCGPT05RE | |
دبابيس Minutiens الحشرات | أوسترليتز | M حجم 0،15 ملم | |
المضغوط الحيوانات الأليفة المتقلب | فاهل شركة كليبر | نموذج 9966 | نظيفة بعد كل استعمال |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved