الهيكل العظمي إجراءات خزعة العضلات البشرية باستخدام تقنية التعديل بيرجستروم

R. Andrew Shanely; Kevin A. Zwetsloot; N. Travis Triplett; Mary Pat Meaney; Gerard E. Farris; David C. Nieman

doi:10.3791/51812

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

Summary

The purpose of this video is to present the modified Bergström skeletal muscle biopsy technique on human subjects.

Abstract

تقنية خزعة عن طريق الجلد تمكن الباحثين والأطباء لجمع عينات أنسجة العضلات والهيكل العظمي. تقنية آمنة وفعالة للغاية. يصف هذا الفيديو تقنية خزعة عن طريق الجلد باستخدام إبرة بيرجستروم تعديل الهيكل العظمي للحصول على عينات من الأنسجة العضلية من الوحشية المتسعة من البشر. تتكون الإبرة بيرجستروم من قنية الخارجي مع فتحة صغيرة ('نافذة') على جانب طرف ومبزل الداخلي مع شفرة قطع في نهاية البعيدة. تحت التخدير والعقيم الظروف المحلية، ومتقدمة الإبرة في الهيكل العظمي والعضلات من خلال شق في الجلد والأنسجة تحت الجلد، ورباط. بعد ذلك، يتم تطبيق الشفط إلى مبزل الداخلي، يتم سحبها مبزل الخارجي مرة أخرى، يتم استخلاص الأنسجة العضلية الهيكلية في إطار من قنية الخارجي بواسطة الشفط، ويتم إغلاق مبزل الداخلي بسرعة، وبالتالي قطع أو تقليم عينة أنسجة العضلات والهيكل العظمي . يتم تدوير الإبرة 90 °60، ويتم قطع آخر. ويمكن تكرار هذه العملية ثلاث مرات. هذه التقنية قطع متعددة تنتج عادة عينة من 100-200 ملغ أو أكثر في الاشخاص الاصحاء ويمكن أن يتم مباشرة قبل وأثناء وبعد نوبة من التمارين الرياضية أو تدخل الآخرين. بعد خلع الملابس بعد خزعة من موقع شق، استئناف أنشطتها المواضيع عادة الحياة اليومية على الفور، ويمكن أن تشارك بشكل كامل في النشاط البدني القوي في غضون 48-72 ساعة. يجب تجنب المواضيع ممارسة المقاومة الثقيلة لمدة 48 ساعة للحد من مخاطر فتق في العضلات من خلال شق في اللفافة.

Introduction

يتم استخدام تقنية خزعة عن طريق الجلد أو "شبه المفتوحة" للحصول على عينات أنسجة العضلات والهيكل العظمي من المرضى من البشر والموضوعات البحثية. وينسب دوشين (1806-1875) كأول لبناء إبرة مع مبزل للحصول على العضلات والهيكل العظمي من المواضيع الحية من خلال الخزعة عن طريق الجلد ^1. في عام 1960، قدم بيرجستروم إبرة الخزعة عن طريق الجلد مماثلة لتلك التي وصفها دوشين ^2-4. بعد عشرين عاما، ايفانز وآخرون. ⁵ تعديل هذه التقنية من خلال تطبيق الشفط من خلال مبزل قطع الإبرة بيرجستروم. هذا التعديل يمكن أن تعزز العائد من الأنسجة 3- إلى 5 أضعاف ^6،7 ويعمل في إعدادات الأبحاث السريرية والطبية الحيوية. هذا الأسلوب له وسوف تستمر في تعزيز تشخيص الاعتلالات العضلية وفهمنا لبنية ووظيفة العضلات والهيكل العظمي.

تقنية خزعة العضلات عن طريق الجلد هي straightforward. عندما يتم بشكل صحيح، مع الالتزام الصارم تقنية العقيم، والمخاطر المرتبطة بها تكاد تكون معدومة. ويعتبر إجراء خزعة العضلات كأداة الفحص للمشاريع البحثية. بعض المؤسسات الأكاديمية تسمح بتدريب الباحثين أعضاء هيئة التدريس مع دكتوراه، مع وجود إشراف الطبيب مباشرة، والحصول على الخزعات العضلية والبعض الآخر يتطلب طبيب المجلس معتمدة لأداء هذه التقنية. فريق خزعة ASU كان أداء بنجاح على أكثر من 1،600 الخزعات العضلية خلال 13 عاما الماضية ^8-15. والغرض من هذا الفيديو هو وصف تعديل بيرجستروم إبرة عن طريق الجلد خزعة العضلات تقنية ⁵ الهيكل العظمي للحصول على عينات من الأنسجة العضلية من الوحشية المتسعة من البشر.

Protocol

الإجراء الهيكل العظمي والعضلات كما هو موضح يتبع المبادئ التوجيهية للمجلس المراجعة المؤسساتي جامعة ولاية الآبالاش.

ملاحظة: ويتألف الفريق من المشغل (دكتوراه أو MD تدريب في تقنية خزعة)، واحد على الأقل، ولكن من الناحية المثالية، ثلاثة أو أكثر من الفنيين. المشغل هو المسؤول عن إجراء والإشراف على جميع جوانب إجراء خزعة العضلات والهيكل العظمي. واحد فني (فني رقم 1) هي المسؤولة فورا لمساعدة المشغل مع جميع جوانب استخراج العضلات. وهذا يشمل كونها "الأيدي غير معقمة" وتطبيق الشفط مع حقنة معقمة. فني الثاني (فني # 2) تنخرط في محادثة مع الموضوع وتدليك الساق المعاكس هذا الموضوع خلال إجراء للحد من القلق في هذا الموضوع. فني الثالث (فني 3 #) هو المسؤول عن مناولة ومعالجة عينة العضلات والهيكل العظمي. الإجراءات التحليلية المصب تملي كم من additهناك حاجة الفنيين IONAL للتجهيز / إعداد عينة العضلات والهيكل العظمي.

1. موضوع التحضير

جمع وإعداد وتنظيم المواد المحددة لإجراء الخزعة العضلية (الجدول 1). تطهير وتعقيم الإبرة بيرجستروم (قنية الخارجي والداخلي مبزل) والغطاس وفقا للممارسة القياسية ^16.
مراجعة استمارة الموافقة مع هذا الموضوع. يتم توفير جزء خزعة العضلات والهيكل العظمي من الموافقة على المشاركة النموذج المستخدم في جامعة ولاية الآبالاش في الملحق 1 على الانترنت.
1. الحديث إلى موضوع حول الجوانب العامة لإجراء خزعة العضلات مع التركيز على المخاطر المحتملة للإجراء وإعداد الجلد، وتطبيق مخدر، الأحاسيس نموذجية. تعليمات لقراءة هذا الموضوع بعناية الموافقة على المشاركة النموذج والتوقيع عليه للتأكد من أن تصميم ودراسة الإجراءات مفهومة.
تأكد من أن قubject ليس حساسية من "___ كين" الأدوية من نوع (مثل يدوكائين).
تعليمات موضوع الكذب مستلق على طاولة مبطن مع الفخذ المكشوفة. وضع اثنين underpads ماص المتاح مع بدعم من البلاستيك تحت ساقه في هذا الموضوع. وضع الساق بطريقة مريحة مع لفة منشفة صغيرة تحت كعب، بحيث يتم تمديد الركبة بالكامل (مرتفعة ~ 1 سم)، وبالتالي وضع المتسعة الوحشية في موقف تقصير.
يكون المشغل تعليمات موضوع التعاقد حظات عضلة الفخذ يتعرض بحيث يمكن تصور الموقع الخزعة. ملاحظة: العضلة المتسعة الوحشية الموقع خزعة هو مجرد الأمامي لفافة العريضة (الفرقة illiotibial)، ما يقرب من ثلث المسافة بين الجزء العلوي من الرضفة وأكبر المدور ^7.
لديك علامة المشغل أدناه فقط (~ 0.5 سم) موقع شق مع علامة دائمة نقطة غرامة.
والمشغل تحديد سمك ثنية الجلد التقريبي بواسطة PINCهينج وثنية الجلد.
يكون المشغل والفنيين غسل أيديهم بالصابون والماء الدافئ وارتداء القفازات القابل للتصرف.
يكون المشغل إزالة الشعر من منطقة ~ 15 سم × 15 سم حول موقع خزعة (عبر كليبرز). ملاحظة: تقليم الشعر من موقع خزعة يمنع الشعر من الدخول في شق أثناء العملية وخلال فترة الإغلاق، وتتيح إزالة الشعر للاتصال أفضل بين إغلاق الشريط والجلد (انظر 3.4).
يكون المشغل تعقيم المنطقة مع مسحات قبل غارقة مع مطهر موضعي، (مثل اليود البوفيدون أو الكلورهيكسيدين جلوكونات عن المواضيع حساسية من اليود / المحار). تبدأ في المركز والعمل في دوائر متحدة المركز نحو الحافة الخارجية للمنطقة يثقب. كحد أدنى، كرر مرتين أكثر مع مسحة قبل غارقة جديدة في كل مرة.

2. إجراء خزعة

يكون المشغل إزالة القفازات القابل للتصرف، وغسل اليدين بالصابون والماء الدافئ، وارتداء GL الجراحية المعقمةOVES باستخدام تقنية العقيم.
لدينا فني # 1 الحاضر ثنى منوفذة معقمة للمشغل. يكون المشغل، وذلك باستخدام تقنية العقيم، وضع ثنى على الموقع خزعة للحفاظ على حقل معقمة.
لدينا فني # 1 الحاضر المشغل حقنة 5 مل مزودة إبرة 21 G مع الحفاظ على تقنية العقيم. تنظيف رأس القنينة يدوكائين مع مسحة الكحول.
1. يكون المشغل تنسحب فورا 5 مل من الليدوكائين. إزالة إبرة 21 G من الحقنة وتجاهل الإبرة في حاوية الأدوات الحادة.
2. لدينا فني # 1 الحاضر المشغل مع 1 ½ بوصة إبرة 25 G مع الحفاظ على تقنية العقيم. لديك مكان المشغل بوصة إبرة 1 ½ على حقنة وإخلاء فقاعات الهواء من الحقنة.
لدينا فني # 1 رذاذ كلوريد الإيثيل على موقع شق (~ 0.5 سم فوق علامة الحبر الذي لا يمحى على الجلد) حتى يظهر الجلد ل"بلانش".
1. هالقد المشغل إدراج الإبرة أفقية تقريبا على الجلد في الأدمة، نضح الإبرة، ومن ثم التسلل مع ~ 100 ميكرولتر من يدوكائين لإنتاج "فقاعة" 2-4 مم في القطر.
  1. لديك نضح مشغل الإبرة (سحب قليلا على المكبس من الحقنة) للتأكد من أن الإبرة لم يتم وضعها في وعاء دموي. إذا ظهر الدم في المحاقن، وسحب الإبرة، وتجاهل في حاوية الأدوات الحادة، والبدء مرة أخرى في 2.3.
  2. لديك مسبقا مشغل الإبرة في النسيج تحت الجلد، ونضح الإبرة، ومن ثم التسلل إلى الأنسجة مع ~ 1 مل من الليدوكائين لتشكيل فقاعة. بمجرد أن هدأت في فقاعة، أدخل الإبرة 1 ½ بوصة على حقنة محملة يدوكائين عموديا في موقع شق، ووقف سطحية إلى فآسيا. ملاحظة: هذا الموضوع قد يشعر ضجة كبيرة لاذع لحظة طفيف على حقن الأولي من يدوكائين (على غرار لدغة النحل).
2. تأكد من أن أبرتأو لا اختراق العضلات مع lidocoine لأنه myotoxic ^17-19.
3. لديك نضح مشغل الإبرة ثم حقن ببطء 4 مل المتبقية من يدوكائين في حين سحب الإبرة من الفخذ. وضع الشاش المعقم على موقع الحقن والسماح الموضوع إلى الاسترخاء بينما مخدر موضعي ساري المفعول.
بعد 2-3 دقائق، يكون فني # 1 الحاضر المشغل مشرط مع الحفاظ على تقنية العقيم.
1. يكون المشغل التحقيق طفيفة الموقع خزعة مع غيض من مشرط لتأكيد أن المنطقة هو تخدير. إذا لزم الأمر، حقن 3-4 مل من الليدوكائين آخر في موقع شق، انظر 2.4.1.2.
يكون المشغل جعل على التوالي 1 سم شق خلال الجلد والأنسجة تحت الجلد (~ 2-3 مم فوق علامة الحبر) موازية لعظمة الفخذ.
1. يكون المشغل إدراج مشرط أعمق إلى إجراء شق خلال اللفافة في العضلات. القيام بذلك مرة واحدة في كل اتجاه . ملاحظة: هذا الموضوع قد يشعر بوخز أو الضغط مع خفض أعمق إذا التخفيضات شفرة المشرط في العضلات.
2. لدينا فني # 2 إشراك الموضوع في محادثة وتدليك الساق المعاكس.
لديك مكان المشغل الليبرالية مبلغ من الشاش المعقم على موقع شق والخزعة وتطبيق الضغط المباشر على الجرح للحد من النزيف.
1. لدينا فني # 1 ربط 3 في اتجاه ومحبس المعادن إلى المتاح حقنة 60 مل و 30 سم تمديد أنابيب (الشكل 1).
2. لدينا فني # 1 ربط واحدة من نهاية مدبب اتصال أنابيب بلاستيكية في نهاية خالية من أنابيب التمديد وبقوة إدراج الطرف الآخر من مدبب اتصال أنابيب بلاستيكية إلى نهاية كبيرة من طرف ماصة 200 ميكرولتر مع ~ 15-18 ملم من قطع رأس قبالة.

.jpg و"العرض =" 500 "/>
الشكل 1. إبرة بيرجستروم. (A) الإبرة بيرجستروم (5 ملم) ويتكون من (أ) قنية الخارجي و (ب) مبزل الداخلي، وتشمل المكونات المرتبطة بها (ج) الغطاس، (د) 200 ميكرولتر ماصة مع ~ 15-18 ملم تقطع ، (ه) مدبب موصل البلاستيك، (و) 3 في اتجاه ومحبس المعادن، (ز) 30 سم تمديد الأنابيب، و (ح) المتاح حقنة 60 مل (B) الإبرة بيرجستروم (5 ملم) والمكونات المرتبطة بها تجميعها. ( C) ومبزل الداخلي للإبرة بيرجستروم (5 ملم) سحب حوالي 1 سم يفتح نافذة قنية الخارجي.

بعد أن هدأت النزيف، يكون فني # 1 فتح الحقيبة الأوتوكلاف تعقيم وعرض 5 ملم خزعة الإبرة ومبزل الداخلي (الشكل 1) إلى المشغل مع الحفاظ على الأسلوب العقيم.
1. والمشغل التجمع الإبرة (قنية الخارجي والداخلي مبزل)، تحقق المواءمة والعمل انزلاق.
2. يكون المشغل اعتقادا راسخا الجمعية إبرة (قنية الخارجي والداخلي مبزل) بكلتا يديه لمنع مبزل الداخلي من الدورية. وقد فني # 1 إدراج بحزم غيض قطع ماصة في الجزء العلوي من الجزء الداخلي من مبزل إبرة الخزعة مع حركة هبوطية طفيفة التواء. ضمان فني # 1 لا تلمس المشغل أو إبرة الخزعة، سوى غيض ماصة.
3. يكون المشغل إدخال إبرة الخزعة في الأنسجة من خلال شق. تحديد موقع شق في اللفافة (مكتسب "يشعر") مع رأس الإبرة الخزعة. دفع الإبرة الماضي فقط اللفافة ثم زاوية الإبرة في اتجاه نزولي الكلمة كما هو متقدمة الإبرة في العضلات. ملاحظة: قد تواجه بعض المواضيع انزعاج خفيف (على سبيل المثال، "الضغط الشديد"، أو معتدل التشنج ضجة كبيرة) حيث يقع شق طريق لفافة مع غيض من إبرة الخزعة ومتقدمة الإبرة في العضلات.
4. مرة واحدة إبرة الخزعة هي في الموقف، يكون إشارة المشغل فني # 1 لفتح المتاح حقنة 60 مل.
  1. لدينا فني # 1 سحب بسرعة التخلص منها 60 مل حقنة مفتوحة للعلامة 40-50 سم مكعب لخلق الشفط داخل إبرة الخزعة.
  2. يكون المشغل سحب مبزل الداخلي من حوالي 1 سم لفتح نافذة قنية الخارجي مع الحفاظ على موقف مبزل الخارجي داخل العضلات. يكون المشغل تغلق بسرعة مبزل الداخلي لخفض (كليب) وجمع عينة العضلات. لديك إشارة المشغل فني # 1 لاطلاق سراح الشفط.
  3. لدينا فني # 1 فتح محبس إلى غرفة للافراج عن الشفط.
  4. يكون المشغل تدوير إبرة الخزعة 90 درجة وتكرار هذه العملية. إذا لزم الأمر، لديها مشغل repeaر الإجراء دوران يصل إلى 3x (ليصبح المجموع 4 مقاطع).
5. يكون المشغل تنطبق المباشر مكافحة ضغط لموقع شق بشاش معقم أثناء إزالة إبرة خزعة من الفخذ، والحرص على عدم قبض فآسيا أو الجلد. إذا شعرت مقاومة كبيرة، وإعادة قطع أثناء تطبيق حركة التواء الى مبزل الداخلي.
6. على إزالة إبرة خزعة من الفخذ، يكون المشغل سحب مبزل الداخلي الخلفي 1 سم لتفقد البصر تجويف قنية الخارجي لتقدير إذا تم جمع كمية كافية من الأنسجة.
  1. لها اليد مشغل إبرة الخزعة لفني # 1. للحفاظ على تقنية العقيم تضمن فني # 1 يمس فقط الإبرة، وليس المشغل. لدينا فني # 1 اليد إبرة الخزعة لفني # 3.
7. لدينا فني # 3 إزالة الأنسجة من إبرة الخزعة.
  1. لدينا فني # 3 استخدام المكبس (الشكل 1) وزوج من ملقط غيض غرامةلضمان أن تتم إزالة جميع الأنسجة العضلية من مبزل الداخلي والخارجي قنية.
  2. لدينا فني # 3 بسرعة تزن عينة للتأكد من أن كمية كافية من الأنسجة العضلية تم جمع العينات ووضع على كتلة تشريح الجليد الباردة.
8. لدينا فني # 3 تشريح بعناية النسيج الضام والدهون المرئية من عينات العضلات. وقد فني # 3 تحضير عينات العضلات لتخزين وفقا لتحليلات المصب. على سبيل المثال، ضع على الفور العينات في cryovial والمفاجئة التجميد في النيتروجين السائل، وجبل لتجميد الأنسجة، أو مكان في cryovial مع المانع ريبونوكلياز، الخ
9. إذا لزم الأمر، كرر الإجراء مع الثانية إبرة الخزعة تعقيمها مع الحفاظ على تقنية العقيم.
3. إغلاق
1. يكون المشغل تنطبق الضغط المباشر على الموقع خزعة مع شاش معقم ووضع كيس من الثلج لمدة 10-15 دقيقة.
2. مرة واحدة ويتم تحقيق الإرقاء، يكون المشغل تعاطي الكحول والعلاقات العامةمنصات الجيش الشعبي لإزالة الدم المجفف من المنطقة حول شق.
3. لدينا فني # 1 الحاضر أنبوب لاصقة الجراحي الموضعي وقضيب للمشغل. يكون المشغل تجميع أنبوب لاصقة الجراحية وقضيب دون لمس طرف قضيب أو الجزء العلوي من الأنبوب.
4. يكون المشغل سحب إغلاق شق بيد واحدة أثناء تطبيق طبقة واحدة من لاصق جراحي فوق الجزء العلوي من شق الجاف مع جهة أخرى. بعد علاج لاصقة (~ 90 ثانية)، وتطبيق الشريط closuresperpendicular إلى شق. بدلا من ذلك، إغلاق شق مع اثنين من الغرز 4-0 معقمة.
5. يكون المشغل تنطبق الضغط المباشر عن طريق وضع 03-04 فبراير "س 2" قطع من الشاش غير معقمة على موقع شق وآمنة مع الذات التمسك التفاف اللصق.
6. يكون المشغل يوفر هذا الموضوع اللفظي وتعليمات مكتوبة حول العناية بالجروح المناسبة، ردود فعل طبيعية وغير طبيعية، والمبادئ التوجيهية للنشاط 1-4 أيام التالية (انظر على الانترنت سوpplement 2).

النتائج

إجراء خزعة العضلات كما هو موضح أعلاه يسمح للباحث بسرعة وباستمرار لجمع عينات أنسجة العضلات والهيكل العظمي. العائد نموذجي في صحية، والموضوعات الرياضية هو 200 ملغ أو أكثر في مسار واحد مع مقاطع 3-4. يأخذ الإجراء 15-20 دقيقة، ومعظمها ينفق استعدادا لشق. في الدراسات القائمة على ?...

Discussion

يوفر هذا الفيديو ملخص خطوة بخطوة لإجراء خزعة العضلات الهيكلية المستخدمة في مختبر الأداء الإنسان ASU. هذا الإجراء، مع تعديلات صغيرة، وقد استخدمت لجمع ما يقرب من 1600 الخزعات العضلية خلال السنوات ال 13 الماضية. وقد وفرت عينات الخزعة العضلية البيانات الهامة في التحقيقات ال...

Disclosures

The authors have no conflicts of interest.

Acknowledgements

أي تمويل لإعلان.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Bergström biopsy needle, 5 x 100 mm	Stille Surgical Inc.	119-29187-50	1 ea
Durasorb blue pad	Fisher	22-031-340	case of 300
Prep razor disposable	Moore Medical	89760	1 ea
Shave cream	Moore Medical	92869	1 can
Alcohol swab	Moore Medical	98721	box/200
Povidone-iodine swabsticks (3 pack)	Moore Medical	90691	pack of 50
Face masks	Fisher	19-039-690	case of 50
Sterile gloves; sz 6.5	Moore Medical	68128	box of 50 pairs
Sterile gloves; sz 7.0	Moore Medical	68129	box of 50 pairs
Sterile gloves; sz 8.5	Moore Medical	68132	box of 50 pairs
Fenestrated towel drape	Moore Medical	92712	case of 50
Lidocaine (1% HCl, w/o Epi)	Dealmed	427902	30 cc vial
Ethyl chloride spray	Dealmed	386020	3.5 fl. Oz. bottle
5 ml syringe w/ 21 G needle	Fisher	14-827-48	case of 100
25 G 5/8" needle	Fisher	14-826AA	case of 100
25 G 1 1/2" needle	Fisher	14-826-49	case of 100
Single-use scalpels w/ #11 blade	Fisher	0-8927-5B	box of 20
60 ml Syringe	Fisher	13-689-8	case of 40
~30 inch extension tubing	Fisher	14-169-7A	roll of 50 ft
Metal stopcock	Fisher	01-290-38	each
Polypropylene tubing connector w/ tapered ends, 3.2 to 5.5 mm	Fisher	15-315-28A	case of 100
Yellow pipette tips (1-200 µl)	Fisher	02-681-2	cut off ~15-18 mm of the tip
Topical surgical adhesive	Medline	MSC091076	case of 36 tubes
Topical surgical adhesive	Medline	MSC091076Z	box of 6 tubes
Butterfly stitches (adhesive strips) 1/2" x 4" (6 per pack)	Moore Medical	93050	box/300
Bandadge, Strip, 3/4 x 3 in.	Fisher	19-027-202	pack of 100
Adhesive bandage (5 m rolls)	Fisher	19-027-768	case of 36
1" paper surgical tape	Fisher	19-027-761	case of 12
Sutures (4-0 reverse cutting, FS2)	Moore Medical	82926	box of 36
4 x 4 Sterile gauze pads	Moore Medical	66949	pkg/50
2 x 2 Non-sterile gauze pads	Moore Medical	37336	pkg/200
3 x 4 Non-adherent pads	Moore Medical	74389	bx/100
Autoclave bags 3.5 x 9	Moore Medical	40390	box of 200
Autoclave bags 5.25 x 10	Moore Medical	40391	box of 200
Autoclave indicator tape	Moore Medical	31608	box of 250
Lab coats—small	Fisher	23-900-520A	10/pk
Lab coats—medium	Fisher	23-900-520B	10/pk
Lab coats—large	Fisher	23-900-520C	10/pk
Germicidal Disposable Cloth Wipes	Moore Medical	62879	Can/160

References

Duchene, G. B. A. Recherches sur la paralysie musculaire pseudohypertrophique ou paralysie myo-sclerosique. Arch Gen Med. 11 (30), (1868).
Bergstrom, J. Muscle electrolytes in man. Determined by neutron activation analysis on needle biopsy specimens. Scand J Clin Lab Invest (England). 14, (1962).
Bergstrom, J. Percutaneous needle biopsy of skeletal muscle in physiological and clinical research). Scand J Clin Lab Invest. 35, 609-616 (1975).
Bergstrom, J., Hultman, E. A study of the glycogen metabolism during exercise in man. Scand J Clin Lab Invest. 19, 218-228 (1967).
Evans, W. J., Phinney, S. D., Young, V. R. Suction applied to a muscle biopsy maximizes sample size. Med Sci Sports Exerc. 14, 101-102 (1982).
Hennessey, J. V., Chromiak, J. A., Della Ventura, S., Guertin, J., MacLean, D. B. Increase in percutaneous muscle biopsy yield with a suction-enhancement technique. J Appl Phys. 82, 1739-1742 (1997).
Tarnopolsky, M. A., Pearce, E., Smith, K., Lach, B. Suction-modified Bergstrom muscle biopsy technique: experience with 13,500 procedures. Muscl., & Nerve. 43, 717-725 (2011).
Nieman, D. C., et al. Carbohydrate ingestion influences skeletal muscle cytokine mRNA and plasma cytokine levels after a 3-h run. J Appl Physiol. 94, 1917-1925 (2003).
Nieman, D. C., et al. Influence of carbohydrate ingestion on immune changes after 2 h of intensive resistance training. J Appl Physiol. 96, 1292-1298 (2004).
Utter, A. C., et al. Carbohydrate supplementation and perceived exertion during prolonged running. Med Sci Sports Exerc. 36, 1036-1041 (2004).
Nieman, D. C., et al. Muscle cytokine mRNA changes after 2.5 h of cycling: influence of carbohydrate. Med Sci Sports Exerc. 37, 1283-1290 (2005).
Nieman, D. C., et al. Effects of quercetin and EGCG on mitochondrial biogenesis and immunity. Med Sci Sports Exerc. 41, 1467-1475 (2009).
Nieman, D. C., et al. Quercetin's Influence on Exercise Performance and Muscle Mitochondrial Biogenesis. Med Sci Sports Exerc. 42, 338-345 (2010).
Dumke, C. L., et al. Quercetin's effect on cycling efficiency and substrate utilization. Appl Physiol Nut Metab. 34, 993-1000 (2009).
Nieman, D. C., et al. Quercetin's influence on exercise-induced changes in plasma cytokines and muscle and leukocyte cytokine mRNA. J Appl Physiol. 103, 1728-1735 (2007).
. Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities. http://www.cdc.gov/hicpac/Disinfection_Sterilization/toc.html. , (2008).
Faria, F. E., et al. The onset and duration of mobilization affect the regeneration in the rat muscle. Histol Histopath. 23, 565-571 (2008).
Carlson, B. M., Shepard, B., Komorowski, T. E. A histological study of local anesthetic-induced muscle degeneration and regeneration in the monkey. J Ortho Res. 8, 485-494 (1990).
Yagiela, J. A., Benoit, P. W., Buoncristiani, R. D., Peters, M. P., Fort, N. F. Comparison of myotoxic effects of lidocaine with epinephrine in rats and humans. Anesth Analg. 60, 471-480 (1981).
Coyle, E. F., Coggan, A. R., Hemmert, M. K., Ivy, J. L. Muscle glycogen utilization during prolonged strenuous exercise when fed carbohydrate. J Appl Physiol. 61, 165-172 (1986).
Gibala, M. J., et al. Brief intense interval exercise activates AMPK and p38 MAPK signaling and increases the expression of PGC-1alpha in human skeletal muscle. J Appl Physiol. 106, 929-934 (1985).
Phillips, S. M., Tipton, K. D., Ferrando, A. A., Wolfe, R. R. Resistance training reduces the acute exercise-induced increase in muscle protein turnover. Am J Physiol. 276, 118-124 (1999).
Davis, J. M., Murphy, E. A., Carmichael, M. D., Davis, B. Quercetin increases brain and muscle mitochondrial biogenesis and exercise tolerance. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 296, 1071-1077 (2009).
Vissing, K., Andersen, J. L., Schjerling, P. Are exercise-induced genes induced by exercise. FASEB J. 19, 94-96 (2005).
Lundby, C., et al. Gene expression in human skeletal muscle: alternative normalization method and effect of repeated biopsies. Eur J Appl Physiol. 95, 351-360 (2005).
Coyle, E. F., Coggan, A. R., Hemmert, M. K., Ivy, J. L. Muscle glycogen utilization during prolonged strenuous exercise when fed carbohydrate. J Appl Physiol. 61, 165-172 (1985).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

This article has been published

Video Coming Soon

Keep me updated: