تسجيل وقت واحد من تخطيط كهربية الشبكية والإمكانيات البصرية مستدعى في الفئران تخدير

Summary

This protocol describes simultaneous measurement of electroretinogram and visual evoked potentials in anesthetized rats.

Abstract

The electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are commonly used to assess the integrity of the visual pathway. The ERG measures the electrical responses of the retina to light stimulation, while the VEP measures the corresponding functional integrity of the visual pathways from the retina to the primary visual cortex following the same light event. The ERG waveform can be broken down into components that reflect responses from different retinal neuronal and glial cell classes. The early components of the VEP waveform represent the integrity of the optic nerve and higher cortical centers. These recordings can be conducted in isolation or together, depending on the application. The methodology described in this paper allows simultaneous assessment of retinal and cortical visual evoked electrophysiology from both eyes and both hemispheres. This is a useful way to more comprehensively assess retinal function and the upstream effects that changes in retinal function can have on visual evoked cortical function.

Introduction

قياس مخطط كهربية (أرج) والبصرية إمكانات أثار (VEP) تقديم تقييمات كمية مفيدة من سلامة المسار البصري. وأرج يقيس الاستجابات الكهربائية للشبكية لتحفيز الضوء، في حين يقيس VEP سلامة الوظيفية المقابلة من المسارات البصرية من شبكية العين إلى القشرة البصرية الأولية التالية لنفس الحدث الضوء. توضح هذه المخطوطة بروتوكول لتسجيل وتحليل استجابات أرج وVEP في نموذج معملي يشيع استخدامها، والفئران.

يوفر أرج مؤشر على سلامة وظيفية لعدد من فئات رئيسية خلايا شبكية عن طريق قياس استجابة الكهربائية الإجمالية الشبكية لومضة من الضوء. سلسلة منسقة من التدفقات الأيونية تبدأ من بداية الخفيفة وتعويض، تنتج التغييرات التي يمكن اكتشافها في التيار الكهربائي التي يمكن قياسها باستخدام أقطاب سطح وضعت خارج العين. يمثل الموجي الناتج مزيج من حد ذاتها ريس من عناصر محددة جيدا، واختلاف في السعة، والتوقيت والتردد. وقد أظهرت مجموعة كبيرة من الأبحاث أن هذه المكونات يتم حفظها بشكل جيد نسبيا في العديد من شبكية الفقاريات وأن المكونات يمكن فصلها عن بعضها البعض. عن طريق اختيار بحكمة شروط التحفيز (التحفيز فلاش، الخلفية، الفاصل الزمني interstimulus) واختيار الخصائص المحددة للالموجي المركب لتحليل يمكن للمرء أن يكون واثقا من عودته قدرا من مجموعة معينة من خلايا الشبكية ^1،2. هذه الخصائص تكمن وراء فائدة، وبالتالي التطبيقات واسعة النطاق من أرج كإجراء غير الغازية وظيفة شبكية العين. وتركز هذه المخطوطة على منهجية لقياس أرج وتحليل معالمه لإرجاع معلومات حول بعض فئات رئيسية الخلايا في شبكية العين، وهي خلايا مستقبلة للضوء (المكون PIII)، وخلايا القطبين (المكون PII) وخلايا الشبكية العقدة (الإيجابية استجابة عتبة ظلامية أو pSTR).

= "jove_content"> وVEP يوفر فحص للاستجابة القشرية إلى النور؛ منشؤها الأول من شبكية العين وترسل بعد ذلك بشكل متسلسل عن طريق العصب البصري والجهاز البصري، المهاد (الافقي الركبي النواة، LGN) والأشعة الضوئية لمنطقة V1 من القشرة ^3. في القوارض، فإن الغالبية (90-95٪) من الألياف العصبية البصرية من كل متقاطع العين ⁴ ويعصب المقابل منتصف الدماغ. وخلافا للأرج، فمن حتى الآن لا يمكن أن تنسب مكونات مختلفة من VEP لفئات معينة من الخلايا، و ⁵ وبالتالي يتغير في أي مكان على طول المسار البصري يمكن أن تؤثر على الموجي VEP. ومع ذلك، فإن VEP هو مقياس مفيد غير الغازية من الأداء البصري وسلامة مسار البصرية. وVEP، عندما تستخدم بالاقتران مع أرج، يمكن أن توفر تقييما أكثر اكتمالا من النظام البصري (أي الشبكية / مسار بصري).

ويمكن إجراء أرج وVEP التسجيلات في عزلة أو في تركيبة، اعتمادا على تطبيق صحيفةالأيونات الموجبة. المنهجية الواردة في هذه الورقة تتيح تقييم في وقت واحد في شبكية العين والقشرية الكهربية أثار المرئية من كلتا العينين ونصفي الكرة الأرضية في الفئران تخدير. هذا هو وسيلة مفيدة لتقييم أكثر شمولا وظيفة الشبكية والآثار المنبع أن التغيرات في وظيفة الشبكية يمكن أن يكون على وظيفة البصرية القشرية أثار.

Protocol

وقد أجريت جميع الإجراءات التجريبية وفقا للقانون الاسترالي من الممارسة لرعاية واستخدام الحيوانات لأغراض العلمية، التي وضعها مجلس البحوث الصحية والطبية الوطنية في أستراليا. تم الحصول على موافقة الأخلاق من جامعة ملبورن، كلية العلوم، لجنة أخلاقيات الحيوان (موافقة عدد 0911322.1).

1. ما قبل الزرع المزمن VEP أقطاب

ملاحظة: إذا المتزامنة إشارات أرج وVEP هي التي يتعين جمعها الحيوانات يجب أن يكون مزروع جراحيا مع VEP الأقطاب لا يقل عن 1 قبل أسبوع للإشارة إلى المجموعة.

1. تعقيم مقاعد البدلاء الجراحي قبل التجريب عن طريق تنظيف مع الكلورهيكسيدين (0.5٪ في 70٪ من الإيثانول). الأوتوكلاف جميع المعدات الجراحية قبل الاستخدام. تغطية حيوان مع ثنى الجراحية المعقمة. ضمان جميع المجربون ارتداء أقنعة جراحية، العباءات وقفازات معقمة.
2. لحث التخدير مع 3-3،5٪ الأيزوفلورين مع O ₂ بمعدل تدفق من 3 لتر / دقيقة. الحفاظ على انوsthesia بنسبة 1.5٪ و 2 لتر / دقيقة طوال الجراحة. ضمان عمق كاف من التخدير بسبب عدم وجود رد فعل مخلب قرصة.
3. تطبيق 1٪ من الصوديوم كاربوكسي ميتيل سللوز على القرنية لمنع جفاف العينين.
4. حلاقة منطقة × 30 ملم 30 ملم على جبهته، الخلفي للعين والأمامي للآذان.
5. وضع الحيوان على وسادة الحرارة (37 مئوية) للحفاظ على درجة حرارة الجسم وتحقيق الاستقرار في الرأس الحيوانات مع إطار التجسيمي.
6. تطهير منطقة حلق مع بوفيدون اليود 10٪ ثلاث مرات. تجنب استخدام المطهرات التي تحتوي على الكحول لمنطقة قريبة من العين، كونها تتفق مع معيار الممارسة التي وضعتها رابطة التكنولوجيين الجراحية.
7. جعل شق-متوسط ​​سهمي على رأسه مع مشرط ومن هذه المكوس و~ 20 مم دائرة أنسجة الجلد للكشف عن عظم الجمجمة.
8. إزالة السمحاق الأساسي عن طريق كشط وتجفيف بشاش لفضح خيوط الجمجمة الاكليلية والسهمي.
9. لناجي لدغ الأسنان تعلق على الحفر، ينقب اثنين من الثقوب (0.7 مم، عمق ~ 1 مم) من خلال الجمجمة في نصفي الكرة الأرضية في التجسيمي تنسق: 7 ملم الذيلية إلى bregma، 3 مم الوحشي على خط الوسط.
10. برغي في مسامير الصلب غير القابل للصدأ (قطر 0.7 ملم، وطول 3 ملم، تعقيمها مع الكلورهيكسيدين) في اثنين من الثقوب مسبقة الصنع تصل إلى عمق ~ 1 مم (2 ملم من المسمار يتعرض) للسماح مرسى ثابت. هذه الاتصالات الجافية دون الإضرار الأنسجة القشرية الكامنة.
11. إعداد المنطقة الجراحية لالملغم السني من خلال تجفيف عظم الجمجمة مع الشاش، والتراجع الجلد فضفاض مع اثنين من 3-0 الغرز في ~ 4 و 8:00.
12. نشر الملغم السني على الجمجمة يتعرض لتأمين الأقطاب المسمار (مسامير الصلب غير القابل للصدأ هو موضح في الخطوة 1.10) في المكان. ضمان ~ 1.5 ملم من المسامير لا تزال تتعرض للتسجيل.
13. إزالة الغرز التراجع.
14. ضخ 0.5٪ تحت الجلد كاربروفين (5 ملغ / كلغ) لتسكين الألم والمالحة (كلوريد الصوديوم 0.9٪، 10.5 مل) تحت الجلد لاستبدال السوائل.
15. السماح للحيوان للتعافي في أقفاص منفصلة. لا تترك الحيوانات غير المراقب حتى استعاد وعيه كافية للحفاظ على الاستلقاء القصية.
16. لا عودة الحيوان إلى الشركة من الحيوانات الأخرى حتى أنه قد تعافى تماما من عملية جراحية (لا تقل عن 5 أيام).
17. تواصل إدارة 0.5٪ تحت الجلد كاربروفين لتسكين الألم (5 ملغ / كلغ) مرة واحدة يوميا لمدة 4 أيام.
18. سجل أرج وVEP 1 أسبوع بعد الجراحة.

2. أرج وVEP تسجيل

1. إعداد جمع البيانات
   1. استخدام برامج الكمبيوتر لتحريك وقت واحد الحوافز والحصول على البيانات ² وفقا لالإعدادات الموصى بها أدناه.
      1. تضخيم الإشارات ³ (أرج: × 1000، VEP: x10،000) مع الربح المقرر داخليا من قبل ما قبل مكبر للصوت معزولة ومكبر للصوت، ومع كلتا العينين مطابقة للمقاومة.
      2. تعيين معدل أخذ العينات لأرج إلى 4 كيلو هرتز أكثر من 650ميللي ثانية مسجلا نافذة (2560 نقطة)، للقيام بذلك، انقر فوق علامة التبويب ل "القاعدة الزمن" في برنامج الحصول على البيانات (على اسم ونسخة من الجدول البرمجيات انظر لمواد)، حدد "2560" للعينات، و "500 مللي" للمرة التي سيعود نافذة تسجيل 650 ميللي ثانية.
         1. استخدام نفس الأسلوب لضبط معدل أخذ العينات لVEP إلى 10 كيلو هرتز أكثر من 250 مللي ثانية الحقبة. السماح ل10 مللي ثانية خط الأساس قبل التحفيز لكل من أرج وVEP التسجيلات. للقيام بذلك، انقر فوق "إعداد" علامة التبويب. حدد "محفز" لإحضار نافذة حوار جديد. في هذا الإطار حدد "نبض" من الهبوط قائمة ل "وضع" أسفل؛ وتعيين قيمة "تأخير" إلى "10 مللي ثانية".
      3. 1000 هرتز (- - 3 ديسيبل) تعيين أرج تصفية إلى 0.3 الفرقة تمرير. يتم ذلك عن طريق النقر على "بيو مكبر للصوت" في برنامج الحصول على البيانات. قم بتعيين قيمة ل "السامي ممر" إلى "0.3Hz"، وقيمة ل "تمرير منخفض" إلى "1 كيلو هرتز".
      4. باستخدام طريقة المذكور في 2.1.1.3، تعيين VEP إعدادات الفرقة تمرير إلى 0.1 - 100 هرتز (- 3 ديسيبل) على النحو الموصى به من قبل الجمعية الدولية للالكهربية السريرية لرؤية (ISCEV) للتسجيلات VEP الإنسان ^6.
2. إعداد الكهربائي
   1. العرف جعل وأرج نشطة / نشطة وVEP أقطاب نشطة / نشطة عن طريق ربط أسلاك الفضة أو مقطع التمساح إلى قيادة القطب على التوالي ^2. تجاريا حصول على القطب الأرض.
   2. لالأقطاب حسب الطلب 4، وقطع نهاية الذكور من التمديد الكهربائي الرصاص. إزالة 1 سم للطلاء العزل تترافلوروإيثيلين الخارجي بشفرة مشرط ضمان السلك الداخلي غير معطوب.
   3. قبل الموضة أرج أقطاب خاملة بقطع طول 70 مم من الأسلاك الفضة (0.3 ملم سمك) وتشكيل حلقة ~ 8 ملم في القطر لتطويق العين الفئران. إعداد دائرة موحدة من خلال وضع حلقة على 1 مل ماصة.
   قبل الأزياء VEP أقطاب خاملة بقطع طول 70 ملم من الفضة وتشكيل القطع الناقص ~ 8 ملم في القطر طول الحكمة لربط على القواطع الفئران.
   4. قبل الأزياء الأقطاب أرج النشطة عن طريق قطع طول 30 مم من الأسلاك الفضة وتشكيل حلقة صغيرة في الاتصال بلطف القرنية الفئران (~ 1-2 ملم في القطر)
   5. تعلق بشكل آمن الأقطاب الكهربائية (2 أرج النشط، 2 أرج غير نشط، 1 VEP غير نشط) لزمام المبادرة الكهربائي بواسطة الضفر الفضة مع السلك الداخلي عرضة للخطر.
   6. عزل المعدنية المكشوفة الزائد مع اخفاء الشريط للحد من الأعمال الفنية الضوئية.
   7. على أقطاب خاملة أرج عصا قطعة صغيرة من قفل هوك وحلقة (~ 5 مم × 20 مم) لاخفاء الشريط لتمكين مرفق مستقر للحزام القوارض الرقبة.
   8. نعلق مقطع التمساح إلى السلك الداخلي من القطب يؤدي إلى جعل أقطاب VEP النشطة.
   9. قبل التسجيلات، بالكهرباء السطوح المكشوفة من الأسلاك الفضة (أي حلقة الخاملة وتشغيل إشاراتلقد غيض) مع كلوريد باستخدام مصدر DC 9 V لمدة 20 ثانية لتحسين إشارة التوصيل.
      1. للقيام بذلك، تزج غيض الفضة من سلك كهربائي أرج (بوصفها أنود خلية الأولية) في محلول ملحي. ربط الطرف الآخر من هذا السلك الكهربائي إلى الطرف الموجب للبطارية 9 فولت.
      2. قم بتوصيل سلك آخر (الكاثود) إلى الطرف السالب للبطارية، وتزج الطرف الآخر في المياه المالحة كذلك. قطع الاتصال بعد 20 ثانية، ومراقبة رأس شظية من سلك كهربائي أرج لتكون مغلفة بالتساوي في اللون الأبيض.
         ملاحظة: إعداد الأقطاب أرج جديدة لكل دورة تجريبية (~ ما يصل إلى 8 ساعة) لضمان المباح للطلاء كلوريد.
3. إعداد الحيوان
   1. داكنة تكيف الحيوانات بين عشية وضحاها (≥ 8 ساعة) قبل التسجيلات في غرفة ضيقة الخفيفة. ضمان التكيف مع الظلام الاقصى في إطفاء الأنوار الغرفة، وإغلاق جميع الأبواب والستائر. تقليل تسرب الضوء من خلال وضع مواد واقية من الضوء حولتقاطعات الأبواب / النوافذ وشاشات الكمبيوتر وضع خارج ستائر سوداء سميكة.
   2. إجراء إعداد الحيوان في غرفة مظلمة مع المعونة من خافت ينبعث منها ضوء أحمر الصمام الثنائي (LED؛ 17.4 cd.m ^-2، λ _{الحد الأقصى} = 600 نانومتر) للحفاظ على حساسية قضيب.
   3. تخدير الفئران عن طريق حقن الكيتامين / زيلازين (60: 5 ملغ / كلغ) عن طريق الحقن العضلي. تأكيد عمق كاف من التخدير بسبب عدم وجود رد فعل مخلب قرصة.
   4. للحفاظ على التخدير وإدارة جرعة أخرى من التخدير (50٪ من الجرعة الأولى) بعد 50 دقيقة إذا لزم الأمر.
   5. للتخدير الموضعي إضافية تطبيق قطرة واحدة من 0.5٪ proxymetacaine إلى كل عين، وميض من السوائل الزائدة.
   6. لاتساع حدقة العين تطبيق قطرة واحدة من 0.5٪ تروبيكاميد إلى كل عين، ثم تجف من السوائل الزائدة.
4. أرج وVEP القطب المواقع
   1. وضع الحيوان على منصة أرج أمام وعاء فريق Ganzfeld تقع في قفص فاراداي. تجنب استخدام وسادة التدفئة الكهربائية، كما جلإدخال الضجيج الكهربائي في التسجيلات الكهربية. ملاحظة: يتم إلحاق منصة الى منصة المياه تعميم ساخنة للحفاظ على درجة حرارة الجسم.
   2. حيوان آمن إلى منصة مع شريط من قفل هوك وحلقة صبت ​​لكن ليس بإحكام حول مؤخر.
   3. ربط الكهربائي VEP نشط حول القواطع السفلية من الفئران تخدير.
   4. وضع أقطاب خاملة أرج من تطويق حلقة الصلبة غير جراحية حول خط الاستواء العين. استقرار هذا عن طريق ربط كهربائي إلى قطاع قفل هوك وحلقة حول مؤخر. أكرر للعين المقابل.
   5. ربط VEP الأقطاب النشطة عن طريق ربط مقاطع التمساح إلى مسامير الفولاذ المقاوم للصدأ قبل زرعها في الجمجمة.
   6. وضع قطرة صغيرة من 1٪ من الصوديوم كاربوكسي ميتيل سللوز على القرنية قبل وضع القطب الكهربائي أرج نشط لتحسين جودة الإشارة. ملاحظة: السوائل اللزجة يساعد أيضا في الحفاظ على ترطيب القرنية في جميع أنحاء التجريب لالمصغرةاآلثار تشكيل جفاف من نوع الساد في القوارض ^7.
   7. وضع قطرة صغيرة من 1٪ كربوكسي ميثيل سلولوز الصوديوم على القواطع السفلية لتحسين الاتصال من القطب غير نشط VEP وبالتالي إشارة الجودة.
   8. وضع الأقطاب أرج نشطة لمسة خفيفة على سطح القرنية المركزي باستخدام micromanipulator تعلق على الذراع التجسيمي مبنية خصيصا.
   9. إدراج 2-5 ملم من القطب إبرة الأرض (الفولاذ المقاوم للصدأ) تحت الجلد في الذيل.
   10. إذا لزم الأمر تجف أي السوائل الزائدة من الجفن السفلي قبل تسجيل لتحسين جودة الإشارة.
   11. منصة الانزلاق أقرب إلى وعاء فريق Ganzfeld ضمان عيون الحيوان محاذاة مع افتتاح وعاء لتمكين حتى يضيء كل من شبكية العين (راجع الخطوة 2.4.1).
   12. إغلاق قفص فاراداي للحد من الضوضاء الدخيلة.
5. جمع البيانات
   1. استخدام قاتمة اختبار فلاش (- 0.52 سجل cd.sm ^-2) لتقييم ما إذا placem الكهربائيوالأنف والحنجرة مرض ^2. في ظل ظروف مراقبة هذا من شأنه أن يؤدي إلى اتساع أرج من ~ 800 μV والتباين بين عين لا يزيد عن 10٪. إذا أقطاب تغيير موضع المطلوبة.
   2. بعد اختبار فلاش سماح للحيوانات إلى dark-التكيف لمدة 10 دقيقة في الظلام الدامس قبل التسجيل.
   3. ومضات الحالية من المحفزات الضوئية باستخدام وعاء فريق Ganzfeld في حين جمع أرج وVEP اشارات وقت واحد في مللي ثانية الوقت النافذة ~ 500. التقدم من باهتة إلى أكثر إشراقا ضوء المستويات من أجل الحفاظ على ما يكفي من الظلام التكيف مع الطول الموجي معينة.
   4. جمع إشارات على مجموعة من الطاقات مضيئة للحصول STR، ب الموجة و/ الطول الموجي ب-موجة من أرج. متوسط ​​المزيد من الاشارات على الصعيدين باهتة الخفيفة (20 تكرار) وأقل في الطاقة أكثر إشراقا مضيئة (1 تكرار). تدريجيا إطالة الفاصل الزمني بين التحفيز 1-180 ثانية من الأكثر خفوت لألمع مستوى الضوء. انظر الجدول رقم 1 لبروتوكول المثال.
   5. لايزو في وقت متأخر من قضيب ومخروط الردود أرج، والاستفادة من النموذج يقترن فلاش ^8. الشروع في أربع ومضات في 1.52 سجل cd.sm ^-2 مع فاصل زمني 500 مللي ثانية بين التحفيز ² في ما بينهما. رقميا طرح الموجي مخروط (3 ^{الثالثة} أو ^عشر فلاش 4) من الموجي المختلط (1 ^{الحادي وفلاش)} للتوصل إلى استجابة قضيب المفترضة.
   6. لتسجيل إشارات VEP، متوسط ​​20 يكرر في الطاقات إشراقا مضيئة (أي - 0،52-1،52 سجل cd.sm ^-2، 5 ثانية الفاصلة بين التحفيز). لاحظ أن فلاش الأول في هذه السلسلة إرجاع استجابة الظلام تكييفها التقليدية أرج.
   7. السماح 1-3 دقيقة لإعادة التكيف بعد الاحتلالات (20) VEP قبل أكثر إشراقا أرج الخطوة التالية، اعتمادا على الطاقة مضيئة.
   8. بعد الانتهاء من جمع البيانات، والموت ببطء الحيوان تخدير مع حقن داخل القلب من الصوديوم بنتوباربيتال (325 ملغ / مل، 3 مل).

الموجي	الطاقة ضوء التحفيز (تسجيل cd.sm -2)	عدد التكرارات	فترة interstimulus (ثانية)
STR	-6.24	20	2
STR	-5.93	20	2
STR	-5.6	20	2
STR	-5.33	20	2
قضيب ب الموجة	-4.99	10	2
قضيب ب الموجة	-4.55	10	2
قضيب ب الموجة	-4.06	5	5
قضيب ب الموجة	-3.51	5	5
قضيب ب الموجة	-3.03	1	15
قضيب ب الموجة	-2.6	1	15
قضيب ب الموجة	-1.98	1	15
أ- مختلطة / ب الموجة	-1.38	1	30
أ- مختلطة / ب الموجة	-0.94	1	30
فلاش 1: مختلط متوسط ​​أ / ب الموجة من 20: VEP	-0.52	20	5
			(90 ثانية قبل التالي)
فلاش 1: مختلط متوسط ​​أ / ب الموجة من 20: VEP	0.04	20	5
			(120 ثانية قبل التالي)
فلاش 1: مختلط متوسط ​​أ / ب الموجة من 20: VEP	0.58	20	5
			(180 ثانية قبل التالي)
إف إل أي إسح 1: مختلط متوسط ​​أ / ب الموجة من 20: VEP	1.2	20	5
			(180 ثانية قبل التالي)
فلاش 1: مختلط متوسط ​​أ / ب الموجة من 20: VEP	1.52	20	5
			(180 ثانية قبل التالي)
مخروط أ / ب الموجة	1.52	4	0.5

المحافظة على مع next.within صفحة = "دائما">

الجدول 1. أرج وبروتوكول تسجيل VEP باستخدام مجموعة من الحوافز للطاقة. العروض التحفيز التقدم من خافت (أعلى) إلى (أسفل) ومضات مشرقة، مع ما يكفي من الفاصل الزمني بين التحفيز لضمان التكيف الظلام. في نهاية المراسم، ويرد تكرار أربع ومضات مع فترة قصيرة للحصول على استجابة مخروط بوساطة.

3. تحليل أرج الطول الموجي

ملاحظة: وقد وصفت أرج وVEP تحليل بالتفصيل سابقا ^3،9،10 و.توفر الأقسام التالية لمحة موجزة.

1. إشارات التصدير في شكل لمرة والجهد الرقمي لبرنامج جداول البيانات لتحليل البيانات.
2. قضيب وظيفة photoreceptoral
   1. نموذج من الحافة الأمامية من على بعد موجة PIII مع تأخر التمويه (المعادلة 1) ^11.
      PIII (ط، ر) = رو _PIII ∙ [1 - إكسب (- ط • وS (ر - ر _د) ^2)] لر> ر _د (المعادلة 1)
   2. تحسين تناسب أكثر من فرقة اثنين من الطاقات ألمع مضيئة ^12،13 (أي 1.22 و 1.52 سجل cd.sm ^-2).
   3. نموذج تصل إلى 90٪ من السعة على بعد موجة لتجنب الاختراقات بعد receptoral ^14.
      ملاحظة: النموذج إرجاع السعة المشبعة (روم _PIII، μV)، حساسية (S، M ² .cd ^-1 .S ^-3) وتأخير (ر _د، ميللي ثانية) للاستجابة photoreceptoral.
3. قضيب القطبين وظي خليةأيون
   1. رقميا طرح نموذج PIII (انظر أعلاه) من الطول الموجي مختلطة لإعادة PII مختلطة مع إمكانات متذبذبة الفوقية.
   2. لاستخراج PII قضيب من PII المختلط، رقميا طرح استجابة مخروط (3 ^{الثالثة} أو فلاش ^عشر 4 في 1.52 سجل cd.sm ^-2) من مختلطة PII (1 ^ش فلاش في cd.sm 1.52 سجل ^-2).
   3. ثم، وتطبيق مرشح تمرير منخفض إلى الموجي (46.9 هرتز، -3 ديسيبل، بلاكمان نافذة) لإزالة إمكانات متذبذبة. الموجي المتبقي هو استجابة PII قضيب ^10.
   4. استخراج قضيب PII الذروة السعة ومؤامرة ضد كل شدة التحفيز (أقل من -2 PII سجل cd.sm ^-2 وقضيب معزولة في 1.52 سجل cd.sm ^{-2) 10.}
   5. نموذج هذه البيانات باستخدام وظيفة القطعي (المعادلة 2)، الذي يوفر قدرا من الداخلية سلامة خلايا شبكية.
      V _(ط) = V _ماكس (ط ^ن / (ط ^ن+ ك ^ن)) (المعادلة 2)
      ملاحظة: هذه المعادلة ترجع استجابة PII القصوى (V _{كحد أقصى،} μV)، 1 / الحساسية (ك، تسجيل cd.sm-2) والمنحدر من وظيفة (ن) ^15.
4. مخروط وظيفة الخلية القطبين
   ملاحظة: كما يتم أخذ استجابة مخروط في كثافة واحدة (1.52 سجل cd.sm ^-2) وعاد السعة وتوقيت على هذا المستوى الضوء.
   1. استخراج مخروط القصوى استجابة PII ^2،16.
   2. استخراج الوقت الضمني الذي هذه الاستجابة القصوى يتوافق ^2،16.
5. وظيفة الخلايا العقدية
   1. وبما أن STR هو إشارة صغيرة، وتطبيق مرشح تمرير منخفض مع درجة 50 هرتز إلى الموجي للقضاء على الترددات العالية والضوضاء خط (46.9 هرتز، -3 ديسيبل، بلاكمان الإطار).
   2. استخراج استجابة pSTR القصوى ^3،17.
   3. استخراج الوقت الضمني الذي هذه الاستجابة القصوى يتوافق ^3،17.

4. آناتحلل من VEP الطول الموجي

1. استخراج مكونات القصوى والدنيا للVEP (P1، P2 N1 و). لمزيد من التفاصيل انظر المراجع ^3،6.
2. سعة صريحة كما حوض إلى الذروة سعة من ذروتها السابقة أو الحوض الصغير (P1N1 وN1P2) ^3،6.
3. استخراج الوقت الضمني _(هو) الذي يتوافق مع هذه الاستجابة القصوى (P1 _ذلك، N1 _ذلك، P2 _عليه) ^3،6.

النتائج

وأرج على الموجة (> -1.38 سجل cd.sm ^-2)، ب-موجات (> - 4.99 سجل cd.sm ^-2) تقارير المعاملات المشبوهة (<- 4.99 سجل cd.sm ^-2) وVEPs (> - 0.52 تسجيل cd.sm ^-2) سجلت في وقت واحد (الشكل 1 و 3). في ومضات خافتة جدا، وشهدت STR الإيجابي (pSTR) في حوالي 110 ميللي ثانية ...

Discussion

وأرج وVEP هي مقاييس موضوعية من وظيفة البصرية من شبكية العين والقشرة، على التوالي. ميزة تسجيل في وقت واحد هو أن تتاح له نظرة أشمل للمسار البصري بأكمله. على وجه التحديد، يمكن للمعلومات تكميلية من تقييمهم المتزامنة توفر تحديد أوضح للموقع الإصابة في المسار البصري (على س?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Alligator clip	generic brand	HM3022	Stainless steel 26 mm clip for connecting VEP screw electrodes to cables
Bioamplifier	ADInstruments	ML 135	For amplifying ERG and VEP signals
Carboxymethylcellulose sodium 1.0%	Allergan	CAS 0009000-11-7	Viscous fluid for improving signal quality of the active ERG electrode
Carprofen 0.5%	Pfizer Animal Health Group	CAS 53716-49-7	Proprietary name: Rimadyl injectable (50 mg/ml). For post-surgery analgesia, diluted to 0.5% (5 mg/ml) in normal saline
Chlorhexadine 0.5%	Orion Laboratories	27411, 80085	For disinfecting surgical instruments
Circulating water bath	Lauda-Königshoffen	MGW Lauda	For maintaining body temperature of the anesthetized animal during surgery and electrophysiological recordings
Dental amalgam	DeguDent GmbH	64020024	For encasing the electrode-skull assembly to make it more robust
Dental burr	Storz Instruments, Bausch and Lomb	#E0824A	A miniature drill head of ~ 0.7 mm diameter for making a small hole in the skull over each hemisphere to implant VEP screws
Drill	Bosch	Dremel 300 series	An automatic drill for trepanning
Electrode lead	Grass Telefactor	F-E2-30	Platinum cables for connecting silver wire electrodes to the amplifier
Faraday Cage	custom-made		Ensures light proof to maintain dark adaptation. Encloses the Ganzfeld setup to improve signal to noise ratio
Gauze swabs	Multigate Medical Products Pty Ltd	57-100B	For drying the surgical incision and exposed skull surface during surgery
Ganzfeld integrating sphere	Photometric Solutions International		Custom designed light stimulator: 36 mm diameter, 13 cm aperture size
Velcro	VELCRO Australia Pty Ltd	VELCRO Brand Reusable Wrap	Hook-and-loop fastener to secure the electrodes and the animal on the recording platform
Isoflurane 99.9%	Abbott Australasia Pty Ltd	CAS 26675-46-7	Proprietary Name: Isoflo(TM) Inhalation anaaesthetic. Pharmaceutical-grade inhalation anesthetic mixed with oxygen gas for VEP electrode implant surgery
Ketamine	Troy Laboratories	Ilium Ketamil	Proprietary name: Ketamil Injection, Brand: Ilium. Pharmaceutical-grade anesthetic for electrophysiological recording
Luxeon LEDs	Phillips Lighting Co.		For light stimulation twenty 5 W and one 1 W LEDs.
Micromanipulator	Harvard Apparatus	BS4 50-2625	Holds the ERG active electrode during recordings
Needle electrode	Grass Telefactor	F-E2-30	Subcutaneously inserted in the tail to serve as the ground electrode for both the ERG and VEP
Phenylephrine 2.5% minims	Bausch and Lomb	CAS 61-76-7	Instilled with Tropicamide to achieve maximal dilation for ERG recording
Povidone iodine 10%	Sanofi-Aventis	CAS 25655-41-8	Proprietory name: Betadine, Antiseptic to prepare the shaved skin for surgery 10%, 500 ml
Powerlab data acquisition system	ADInstruments	ML 785	Controls the LEDs
Proxymetacaine 0.5%	Alcon Laboratories	CAS 5875-06-9	For corneal anaesthesia during ERG recordings
Saline solution	Gelflex		Non-injectable, for electroplating silver wire electrodes
Scope Software	ADInstruments	version 3.7.6	Simultaneously triggers the stimulus via the Powerlab system and collects data
Silver (fine round wire)	A&E metal	0.3 mm	Used to make active and inactive ERG electrodes, and the inactive VEP electrode
Stainless streel screws	MicroFasterners		0.7 mm shaft diameter, 3 mm in length to be implanted over the primary visual cortex and serve as the active VEP electrodes
Stereotaxic frame	David Kopf	Model 900	A small animal stereotaxic instrument for locating the primary visual cortices according to Paxinos & Watson's 2007 rat brain atlas coordinates
Surgical blade	Swann-Morton Ltd.	0206	For incising the area of skin overlaying the primary visual cortex to implant the VEP electrodes
Suture	Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co.,Ltd		3-0 silk braided suture non-absorbable, for skin retraction during VEP electrode implantation surgery
Tobramycine eye ointment 0.3%	Alcon Laboratories	CAS 32986-56-4	Proprietary name: Tobrex. Prophylactic antibiotic ointment applied around the skin wound after surgery
Tropicamide 0.5%	Alcon Laboratories	CAS 1508-75-4	Proprietary name: 0.5% Mydriacyl eye drop, Instilled to achieve mydriasis for ERG recording
Xylazine	Troy Laboratories	Ilium Xylazil-100	Pharmaceutical-grade anesthetic for electrophysiological recording
Pipette tip	Eppendorf Pty Ltd	0030 073.169	Eppendorf epTIPS 100 - 5,000 ml, for custom-made electrodes
Microsoft Office Excel	Microsoft	version 2010	spreadsheet software for data analysis
Lethabarb Euthanazia Injection	Virbac (Australia) Pty Ltd	LETHA450	325 mg/ml pentobarbital sodium for rapid euthanazia