نموذج خط خلية Murine القائم على تثبيط CDK9 المزمن لدراسة عيوب الاستطالة غير الوراثية الواسعة الانتشار (TEبالتأكيد)في السرطانات

Summary

يفصّل البروتوكول نموذج سرطان المورين في المختبر لاستطالة النسخ المعيبة غير الوراثية. هنا، يستخدم تثبيط المزمن من CDK9 لقمع استطالة الإنتاجية من RNA Pol II على طول الجينات استجابة المؤيدة للالتهابات لتقليد ودراسة ظاهرة TE المفرطة سريريا^{بالتأكيد،} موجودة في حوالي 20٪ من جميع أنواع السرطان.

Abstract

لقد سبق لنا أن أبلغنا أن مجموعة فرعية من السرطانات يتم تعريفها عن طريق إلغاء اللوائح النسخية العالمية مع أوجه القصور على نطاق واسع في استطالة النسخ mRNA (TE) - ونحن ندعو مثل هذه السرطانات كما TE^{بالتأكيد}. وتجدر الإشارة إلى أن السرطانات TE^{تتميز بالتأكيد} بالنسخ الهامشي ومعالجة الحمض النووي الريبي الخاطئ في مجموعة كبيرة من الجينات، مثل مسارات الإنترفيرون/جاك/ستات وTNF/NF-ņB، مما يؤدي إلى قمعها. وTE^{بالتأكيد} النوع الفرعي من الأورام في سرطان الخلايا الكلوية ومرضى الورم الميلانيني النقيلي ترتبط بشكل كبير مع ضعف الاستجابة والنتيجة في العلاج المناعي_. وبالنظر إلى أهمية التحقيق في سرطان TE^{بالتأكيد} - كما أنه ينذر بحاجز كبير ضد العلاج المناعي - والهدف من هذا البروتوكول هو إنشاء في المختبر TE^{بالتأكيد} نموذج الماوس لدراسة هذه واسعة النطاق، غير وراثية التشوهات النسخية في السرطانات والحصول على رؤى جديدة، والاستخدامات الجديدة للأدوية الموجودة، أو العثور على استراتيجيات جديدة ضد مثل هذه السرطانات. نحن بالتفصيل استخدام الفلافوبيريدول المزمن بوساطة CDK9 تثبيط لإلغاء الفوسفور من بقايا سيرين 2 على C-محطة تكرار المجال (CTD) من الحمض النووي الريبي بوليميراز الثاني (RNA Pol II)، وقمع الإفراج عن RNA Pol II في النسخ المنتجة استطاله. وبالنظر إلى أن السرطانات TE^{بالتأكيد} لا تصنف تحت أي طفرة جسدية محددة، نموذج الدوائية مفيد، وأفضل يحاكي العيوب النسخية والجينية على نطاق واسع لوحظ في نفوسهم. استخدام جرعة شبه قاتلة الأمثل من flavopiridol هو الاستراتيجية الفعالة الوحيدة في خلق نموذج قابل للتعميم من اضطراب غير وراثي على نطاق واسع في استطالة النسخ وعيوب معالجة الحمض النووي الريبي، وتقليد عن كثب TE لوحظ سريريا ^{بالتأكيد} الخصائص. ولذلك، فإن هذا النموذج من TE^{بالتأكيد} يمكن الاستفادة من تشريح، والعوامل الخلية المستقلة تمكنهم من مقاومة هجوم الخلايا بوساطة المناعة.

Introduction

خطوة رئيسية الحد من معدل في التعبير عن جميع الجينات النشطة تقريبا هو انتقال بوليميراز الحمض النووي الريبي الثاني (RNA Pol II) من التوقف المروج القريب إلى استطالة الإنتاجية^1،2. وبالنظر إلى أن خلل التنظيم الجيني للاستطالة النسخية يساعد في تطور الأورام الخبيثة البشرية المتعددة التي تعرف بأنها TE^{بالتأكيد}، مما يؤدي إلى إشارات دون المستوى الأمثل في مسارات الاستجابة المؤيدة للالتهابات التي تصل إلى استجابة ضعيفة والنتيجة للعلاج المناعي³، والهدف الشامل من هذا البروتوكول هو إنشاء نموذج مفيد في المختبر لدراسة هذه التشوهات غير الوراثية على نطاق واسع في السرطان. في ضوء ذلك، فإن استخدام التثبيط الدوائي المزمن لCDK9 هو استراتيجية فعالة لخلق نموذج قابل للتعميم من اضطراب غير وراثي على نطاق واسع في استطالة النسخ وعيوب معالجة الحمض النووي الريبي. الأساس المنطقي وراء استخدام تثبيط CDK9 المزمن هو أنه يلغي الفوسفور من بقايا سيرين 2 على C-محطة تكرار المجال (CTD) من RNA Pol II، وبالتالي قمع الإفراج عن RNA Pol II في استطالة النسخ المنتجة. أيضا، TE^{بالتأكيد} السرطانات، التي وصفت سابقا من قبل مجموعتنا³، لا تصنف تحت أي طفرة جسدية محددة. ولذلك، فإن النموذج غير الوراثي (الدوائي) مفيد ويحاكي على أفضل وجه العيوب النسخية والجينية المنتشرة التي لوحظت فيها. الطريقة هنا تفاصيل توليد وتوصيف نموذج العلاج المزمن فلافوبيريدول من الخلايا السرطانية المورين. هذا الأسلوب يعطل بشكل واضح استطالة النسخ على طول الجينات التي تتميز أطوال الجينوم أطول، مع المروجين تستعد والتعبيرات اللاإستطيعة مثل TNF / NF-ņB والتداخل / STAT الإشارات، تسيطر عليها بعمق على مستوى استطالة النسخ^3،4،5. بشكل عام، هذا النموذج الأمثل خط الخلية المورين من عيوب استطالة النسخ - النموذج الوحيد لمعلمتنا لدراسة الأورام TE وصفها حديثا^{بالتأكيد} - يدفع المقاومة للهجوم المناعي المضادة للورم، مما يجعل نظام مفيد لاستغلال و دراسة نقاط الضعف من العيوب غير الوراثية في آلات النسخ الأساسية في السرطانات في مواجهة هجوم الخلايا المناعية بوساطة.

Protocol

وافقت اللجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها واللجنة المؤسسية للسلامة البيولوجية التابعة لمؤسسة سينسيناتي لبحوث الأطفال على جميع الإجراءات التجريبية الحيوانية (بروتوكول IACUC #2017-0061 وبروتوكول IBC #IBC2016-0016)، وهذه الإجراءات أجريت التجارب وفقا للمعايير كما هو موضح في دليل المعاهد القومية للصحة لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية.

1. تثبيط مزمن من الحمض النووي الريبي بول الثاني عن طريق العلاج flavopiridol - الاستراتيجية الأساسية

1. البذور B16/F10 خلايا الورم الميلانيني الماوس في كثافة منخفضة (0.2 × 10⁶⁾في لوحة ثقافة 10 سم في وسطها المقابلة (دولبكو تعديل النسر المتوسط [DMEM]، 10٪ مصل البقر الجنيني [FBS]، 1٪ البنسلين والعقدية [القلم / العقدية]) وحضانة بين عشية وضحاها في حاضنة 37 درجة مئوية، 5٪ CO₂ ترطيب.
2. بعد يوم، غسل الخلايا مع 1X الفوسفات المخزنة المالحة (PBS) وإضافة دفعة جديدة من وسائل الإعلام الثقافة مع جرعة دون قاتلة (تقدر ب25 nM) من flavopiridol - مثبط اتطالية RNA Pol II عامل p-TEFb (سيكلين T / CDK9) - لمدة أسبوع واحد دون مزيد من شبه زراعة.
3. بعد أسبوع من العلاج فلافوبيريدول, إجراء الاختبارات المؤكدة لتقييم قدرة النموذج على تلخيص سمات مختلفة من عيوب استطالة النسخ ينظر في TE^{السرطان بالتأكيد.}

2. اختبار المناعية تأكيدية لتقييم خلل الحمض النووي الريبي Pol II وظيفة وضعف مسار الإنترفيرون (IFN) وعامل نخر الورم (TNF) مسار إشارة في الماوس المولدTE نموذج^{بالتأكيد}

1. ثقافة يساوي عدد (10⁵⁾من flavopiridol تعامل B16/F10 خلايا الورم الميلانيني الماوس والآباء B16/F10 خلايا الورم الميلانيني الماوس في مجموعتين مختلفتين من 12 لوحات جيدا (مجموعة واحدة لRNA Pol II توصيف وظيفي ومجموعة أخرى للسيتوكين التحفيز) في 37 درجة مئوية في 5٪ CO₂ حاضنة رطبة بين عشية وضحاها.
2. في اليوم التالي، علاج الخلايا في التحفيز السيتوكين تعيين مع الماوس IFN-γ، IFN-α (5 نانوغرام / مل)، أو TNF-α (5 نانوغرام / مل) لمدة 45 دقيقة عند 37 درجة مئوية.
3. الآن، استخراج البروتين من الخلايا في كل من السيتوكين وRNA Pol II مجموعات توصيف وظيفية باستخدام اختبار الاشعاعالمناعي الترسيب (RIPA) الليسيا العازلة بالطريقة التالية:
   1. غسل الخلايا مع 1X PBS وlyse مع 50 درجة مئوية من العازلة lysis لكل بئر. كشط، ومن ثم بيليه الخلايا lysed في 4 درجة مئوية، 21،130 × ز.
   2. قياس البروتين في الخلايا lysate supernatants باستخدام فحص قياس اللون القياسية لتركيز البروتين بعد الذوبان المنظفات (برادفورد أو فحص مماثل).
4. قم بتحميل كمية متساوية من البروتين المقاس (15 ميكروغرام) من كل عينة لتشغيلها في هلام بولي أكريلاميد بولي أكريلايد (PVDF) من كبريتات دوديسيل الصوديوم 4%-18%، وينقلها إلى أغشية ثنائي الفينيل الدين ديفيلوريد (PVDF).
5. منع أغشية PVDF في 5% من الحليب الجاف في الحليب الجاف الـ tris-buffered-polysorbate 20 (TBST) لمدة ساعة واحدة متبوعاً بحضانة بين عشية وضحاها عند درجة حرارة 4 درجة مئوية مع الأجسام المضادة الأولية (RNA Pol II 1:1000; p-SER2 RNA Pol II 1:1000; p-SER5 RNA Pol II 1:1000; H3K36me3 1:2000; مجموع H3 1:2000؛ STAT1 1:1000; p-STAT1 1:1000; NFיB 1:1000; ع-NFיB 1:1000; β-أكتين 1:5000) في 5٪ ألبوم المصل البقري.
6. بعد يوم، غسل أغشية PVDF مع 1X TBST لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة (RT)، واحتضانها مع الأجسام المضادة الثانوية المناسبة (المضادة للفئران [1:5000] لRNA Pol II، p-SER2 RNA Pol II، و p-SER5 RNA Pol II؛ المضادة للأرنب (1:5000) لH3K36me3، مجموع H3، STAT1, p-STAT1, NFיB, and p-NFיB) لمدة 50 دقيقة في RT. الكشف عن إشارات البروتين باستخدام البيروكسيداز الفجل المتاحة تجاريا (HRP) الركيزة مع chemiluminescenceence تعزيز.
   ملاحظة: β-أكتين الابتدائية المستخدمة هي HRP-مترافقة، وبالتالي فإنه يمكن تطويرها دون الثانوية.

3. اختبار تأكيدي لتقييم عيوب معالجة mRNA في نموذج TE الماوس ولدت^{بالتأكيد}

1. البذور عدد متساو (0.2 × 10⁶⁾من flavopiridol علاج B16 /F10 خلايا الورم الميلانيني الماوس والخلايا الميلانوما الماوس B16/F10 الوالدين في لوحات 6-جيدا في 37 درجة مئوية في 5٪ CO₂ حاضنة رطبة بين عشية وضحاها.
2. استخراج الجيش الملكي النيبالي الكلي من الخلايا المستزرعة في 60٪ من الملاءمة باستخدام كاشف استخراج الحمض النووي الريبي أو عدة(جدول المواد).
3. [بفور] [رنا] من ال [رنا] إجماليّة يستخرج في الطريقة تالي:
   ملاحظة: تم اختيار بروتوكول منخفض الإدخال من مجموعة متاحة تجارياً لاستنفاد rRNA
   1. تعيين حمام مائي واحد أو كتلة الحرارة إلى 70-75 درجة مئوية، وحمام مائي آخر أو كتلة الحرارة عند 37 درجة مئوية.
   2. أضف إجمالي الحمض النووي الريبي (100-500 نانوغرام في 2 ميكرولتر من المياه الخالية من النوكل) مع 1 ميكرولتر من مسبار استنفاد rRNA الانتقائي و30 ميكرولتر من حاجز التهجين في أنبوب الطرد المركزي الصغير، ومزجه بلطف عن طريق التدوام واحتضانه عند 70-75 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
   3. الآن، نقل الأنابيب إلى حمام المياه 37 درجة مئوية / كتلة الحرارة، والسماح للعينة لتبرد إلى 37 درجة مئوية على مدى فترة 30 دقيقة.
   4. إعادة تعليق الداخلية الإلكترونية الانتقائية استنفاد استنفاد الخرز المغناطيسي عن طريق الدوامة، وaliquot 75 ميكرولتر من الخرز في أنبوب الطرد المركزي خالية من RNase 1.5 مل.
   5. وضع تعليق حبة على فاصل المغناطيسي لمدة 1 دقيقة. يستنشق بلطف وتجاهل supernatant. كرر غسل الخرز مرة أخرى عن طريق إضافة 75 درجة مئوية من المياه الخالية من nuclease والتخلص من supernatant بعد فصل المغناطيسي.
   6. إعادة تعليق الخرز المغسول في 75 درجة مئوية من العازلة التهجين، وaliquot 25 ميكرولتر منه إلى أنبوب آخر والحفاظ عليه في 37 درجة مئوية للاستخدام في وقت لاحق.
   7. ضع حبات 50 ميكرولتر المتبقية على فاصل مغناطيسي لمدة دقيقة واحدة وتجاهل supernatant. إعادة تعليق الخرز في 20 درجة مئوية من العازلة التهجين والحفاظ عليه في 37 درجة مئوية للاستخدام في وقت لاحق.
   8. بعد التبريد من ال [رنا]/انتقائيّة [ررنا] استنفاد تحقيق خليط إلى 37 [ك] ل 30 دقائق, بإيجاز طارد ة جهاز دفع مركزيّ الأنبوبأن يجمع العينة إلى القعر من الأنبوبة.
   9. نقل 33 درجة مئوية من خليط مسبار استنفاد الحمض النووي الريبي/rRNA الانتقائي إلى الخرز المغناطيسي المعد من الخطوة 3-3-7. مزيج من سرعة منخفضة الدوامة.
   10. حضانة الأنبوب عند 37 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة. أثناء الحضانة، قم بخلط المحتويات بلطف في بعض الأحيان. تليها الطرد المركزي وجيزة لجمع العينة إلى الجزء السفلي من الأنبوب.
   11. وضع الأنبوب على فاصل المغناطيسي لمدة 1 دقيقة لبيليه مجمع rRNA-التحقيق. هذه المرة لا تتخلى عن الخارق. يحتوي ال [سوبرنتنت] [ررنا-درّب] [رنا].
   12. ضع أنبوب 25 ميكرولتر من الخرز من الخطوة 3.3.6 على فاصل مغناطيسي لمدة دقيقة واحدة. إضافة supernatant من الخطوة 3.3.11 إلى أنبوب جديد من الخرز. مزيج من سرعة منخفضة الدوامة.
   13. حضانة الأنبوب عند 37 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة. أثناء الحضانة، قم بخلط المحتويات بلطف في بعض الأحيان. بإيجاز الطرد المركزي الأنبوب لجمع العينة إلى الجزء السفلي من الأنبوب.
   14. وضع الأنبوب على فاصل المغناطيسي لمدة 1 دقيقة لبيليه مجمع rRNA-التحقيق. لا تتخلى عن الـ supernatant. نقل supernatant (حوالي 53 درجة مئوية) التي تحتوي على الحمض النووي الريبي المنضب rRNA إلى أنبوب جديد.
   15. قياس تركيز العائد RNA بواسطة مقياس الطيف الضوئي.
4. استخدم نصف العينات المستنفدة لـ rRNA كإدخال على الخرز المغناطيسي الذي يحتوي على القلة (dT) 25 لاستخراج بوليا⁺ RNA بالطريقة التالية:
   ملاحظة: تم اختيار هذا البروتوكول من عزل بوليا الذيل رسول RNA باستخدام تسلسل dT oligo ملزمة إلى سطح الخرز المغناطيسي من مجموعة متاحة تجاريا(جدول المواد).
   1. إعادة تعليق الخرز dT oligo في القارورة عن طريق دوامة لفترة وجيزة ل > 30 ثانية ونقل 200 درجة مئوية من الخرز dT oligo إلى أنبوب. إضافة نفس وحدة التخزين (200 μL) من المخزن المؤقت الربط وإعادة الإيقاف المؤقت.
   2. وضع الأنبوب في المغناطيس لمدة 1 دقيقة وتجاهل supernatant. الآن، إزالة الأنبوب من المغناطيس وإعادة تعليق الخرز dT oligo غسلها في 100 درجة مئوية من العازلة ملزمة.
   3. ضبط حجم المدخلات rRNA المنضب عينة RNA الكلي إلى 100 درجة مئوية مع 10 mM Tris-HCl درجة الحموضة 7.5. الآن، إضافة 100 μL من المخزن المؤقت الربط.
   4. الحرارة إلى 65 درجة مئوية لمدة 2 دقيقة لتعطيل هياكل الحمض النووي الريبي الثانوية. الآن، ضع على الفور على الجليد.
   5. إضافة 200 درجة مئوية من مجموع الحمض النووي الريبي إلى 100 ميكرولتر الخرز غسلها. يُمزج المزيج جيداً ويُسمح بالتجليد عن طريق الدوران باستمرار على الدوار لمدة 5 دقائق في RT.
   6. وضع الأنبوب على المغناطيس لمدة 1-2 دقيقة وإزالة بعناية كل supernatant وإزالة بعناية كل supernatant.
   7. إزالة الأنبوب من المغناطيس وإضافة 200 درجة مئوية من الغسيل العازلة.
5. قياس نقاء وتركيز بوليا المستخرجة⁺ RNA بواسطة مقياس الطيف الضوئي.
   ملاحظة: تعتبر نسبة 260/280 1.90-2.00 ونسبة 260/230 2.00-2.20 لجميع عينات الحمض النووي الريبي مقبولة.
6. استخدام النصف المتبقي من العينات المستنفدة لـ rRNA من القسم 3.3 كإدخال للبروتين A الأعمدة (المقدمة في مجموعة الترسيب المناعي الحمض النووي الريبي [RIP] ، جدول المواد)للتعجيل المناعي بـ RNAs ذات الخمسة أوفير باستخدام أحادي النسيلة 7-ميثيلجوانوسين الأجسام المضادة على النحو التالي:
   ملاحظة: تم اختيار هذا البروتوكول لعزل m7G متوجرسول RNA باستخدام مجموعة الترسيب المناعي RNA المتاحة تجاريا وتعديلها مرة أخرى.
   1. غسل البروتين الخرز المغناطيسي التي تم الحصول عليها من عدة RIP وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة لربط ما قبل الأجسام المضادة إلى الخرز.
   2. نقل 3 ميكروغرام من 7-methylguanosine الأجسام المضادة (أرنب IgG المقدمة في مجموعة يمكن استخدام السيطرة السلبية) إلى الخرز في أنبوب الطرد المركزي الدقيقة علقت في 100 درجة مئوية غسل العازلة من عدة.
   3. حضانة مع دوران سرعة منخفضة لمدة 30 دقيقة في RT. أنابيب الطرد المركزي لفترة وجيزة ومن ثم وضع الأنابيب على فاصل المغناطيسي، وإزالة وتجاهل supernatant.
   4. إزالة الأنابيب وإضافة 500 درجة مئوية من العازلة غسل من عدة ودوامة لفترة وجيزة. الطرد المركزي الأنابيب تليها لفترة وجيزة فصل مغناطيسي مرة أخرى، وإزالة وتجاهل supernatant.
   5. كرر الخطوة 3.6.4 مرة أخرى.
   6. إضافة حوالي 120 نانوغرام من rRNA المنضب (من القسم 3.3) إلى 7-ميثيلغوانوسين الخدوة 7-ميثيلجوانوسين الأجسام المضادة ملزمة الخرز. إضافة 1 ميكرولتر من مثبطات RNase. الحضانة في RT لمدة 1−1.5 ساعة مع التحريض خفيفة.
   7. تدور أسفل الخرز في 300 × ز لمدة 10 ق وإزالة supernatant التي تحتوي على غير متوج (غير 7-methylguanosine) mRNA إلى أنبوب جديد microcentrifuge.
   8. إضافة 100 درجة مئوية من العازلة غسل وغسلها مرتين أكثر بالمثل. تجمع supernatant التي تم جمعها في نفس أنبوب الطرد المركزي الصغير المسمى غير متوج (غير 7-ميثيلجوانوسين) mRNA. تخزين على الجليد.
   9. Elute المتوج (7-ميثيلغوانوسين) mRNA من الخرز مع 300 ميكرولتر من اليوريا الليسيه العازلة (ULB) التي تحتوي على 7 M اليوريا، 2٪ SDS، 0.35 M كلوريد مأكولات، 10 MM EDTA و 10 mM Tris، الرقم الهيدروجيني 7.5 عن طريق تسخين الخرز في 65 درجة مئوية لمدة 2−3 دقيقة.
   10. مزيج 300 ميكرولتر من العينات المعبّدة (الميرنا المتوجة وغير المتوجة) مع 300 ميكرولتر من الفينول: الكلوروفورم: كحول إيزواميل (25:24:1؛ متوفر تجارياً) (مخزن عند 4 درجة مئوية). يُخلط المزيج جيّداً بعكسه ويُترك لمدّة 10 دقائق ثمّ يُخلط مرة أخرى برفق.
   11. الطرد المركزي في 18,928 × ز لمدة 2 دقيقة وبعناية ماصة الطبقة العليا إلى أنبوب جديد وتجاهل الطبقة السفلية.
   12. إضافة 300 ميكرولتر من الفينول: الكلوروفورم: كحول isoamyl (25:24:1؛ المخزنة في 4 درجة مئوية) إلى العينات. يُمزج جيداً عن طريق الانعكاس ثم الطرد المركزي عند 18,928 × ز لمدة دقيقة واحدة.
   13. إضافة 300 درجة مئوية من 2-porpanol و 30 درجة مئوية من خلات الصوديوم 3 M (درجة الحموضة 5.2) إلى RNA متوج وغير متوج. عكس العينة عدة مرات ووضعها في -20 درجة مئوية لمدة 20 ساعة.
   14. الآن، الطرد المركزي العينات في 18،928 × ز لمدة 10 دقيقة في 4 درجة مئوية. قم بإزالة الـ supernatant بعناية وأضف 500 لتر من الإيثانول بنسبة 70%.
   15. الطرد المركزي مرة أخرى في 18,928 × ز لمدة 10 دقيقة في 4 درجة مئوية. تخلص بعناية من البيليه وجففه في RT لمدة أقل من 5 دقائق.
7. قياس نقاء وتركيز العائد RNA بواسطة مقياس الطيف الضوئي. يجب أن تكون نسبة 260/280 في حدود 1.90-2.00، ونسبة 260/230 في نطاق 2.00-2.20 لجميع عينات الحمض النووي الريبي.

4. اختبار تأكيدي لتقييم استجابة الماوس TE^{نموذج بالتأكيد} لوفاة الخلية FasL بوساطة

1. البذور يساوي عدد (30،000 خلية) من flavopiridol تعامل B16/F10 خلايا الورم الميلانيني الماوس والخلايا الميلانوما الماوس B16/F10 الوالدين في لوحة ثقافة 96 جيدا في وسطها المقابلة (DMEM)، وحضانة بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية، 5٪ CO₂ ترطيب حاضنه.
2. علاج الخلايا في غطاء محرك السيارة الثقافة مع تركيزات مختلفة من ح له 6FasL_له(0.1-1000 نانوغرام / مل) في وجود 10 ميكروغرام / مل المضادة له الجسم المضاد وحضانة لمدة 24 ساعة في 37 درجة مئوية، 5٪ CO₂ حاضنة مرطبة.
3. إزالة الخلايا الميتة عن طريق الغسيل مع 1X PBS العازلة. إصلاح الخلايا المرفقة في 4٪ paraformaldehyde لمدة 20 دقيقة في RT. تجاهل 4٪ paraformaldehyde (لا حاجة لغسل)، وصمة عار مع محلول الكريستال البنفسجي (20٪ الميثانول، 0.5٪ الكريستال البنفسجي في 1X PBS) لمدة 30 دقيقة.
4. إزالة وصمة عار الزائدة عن طريق الرينت بلطف لوحات في مياه الصنبور. الحفاظ على لوحات لتجف في RT.
5. إعادة حل البنفسج الكريستال في 100 درجة مئوية من 1X السطحي غير الأيونية المذابة في 1X PBS، وقياس كثافة الخلايا عن طريق قياس امتصاص في 570 نانومتر في قارئ لوحة ميكروت.

5. اختبار استكشافي لتقييم استجابة الماوس TE^{نموذج بالتأكيد} لمستضد هجوم الخلية T السامة للخلايا الخلوية محددة

1. عزل وتفعيل هجوم الخلايا T السامة للخلايا الخلوية OT-I CD8+ (CTL)
   1. تنقية خلايا CD8+ من طحال الفئران OT-I TCR TG RAG-1−/− عن طريق فصل الخلايا المغناطيسية باستخدام مجموعة عزل الخلايا CD8 T الماوس على النحو التالي:
      1. حصاد اثنين من الطحال من اثنين من الفئران OT-I TCR TG RAG-1−/−في وسائط RPMI كاملة.
      2. هرس الطحال في مرشح 70 ميكرومتر أبقى على أنبوب 50 مل مليئة 20 مل من RPMI، وذلك باستخدام الجزء الخلفي من حقنة حتى يتم ترك الدهون فقط وراءها في مرشح.
      3. طرد مركزي تدفق من خلال في 220 × ز لمدة 5 دقائق في 4 درجة مئوية. تجاهل الـ supernatant.
      4. إضافة 1 مل من خلايا الدم الحمراء (RBC) الليسيس العازلة إلى بيليه الطحال من الخطوة المركزية السابقة والماصة الخليط لمدة 1 دقيقة.
      5. تحييد الحل عن طريق إضافة ما يصل إلى 10 مل من RPMI.
      6. الطرد المركزي في 220 × ز لمدة 5 دقائق في 4 درجة مئوية. تجاهل supernatant وإعادة تعليق في 10 مل من RPMI.
      7. خذ aliquot صغيرة للعد. الطرد المركزي المتبقية في 220 × ز لمدة 5 دقائق في 4 درجة مئوية.
      8. لكل مليون خلية تم عدها، أعد تعليق بيليه في 1 مل من المخزن المؤقت لنظام الفصل المغناطيسي المتوفر تجارياً (موجو العازلة أو عازلة مماثلة).
      9. إعداد كوكتيل الأجسام المضادة من حجم 100 درجة مئوية لكل 1 مل من الخلايا الكريات في الخطوة 5.1.1.8. ويشمل كوكتيل الأجسام المضادة: البيوتين المضادة CD4، CD105، CD45R /B220، CD11c، CD49b، TER-119، CD19، CD11b، TCR γ/δ، وCD44.
      10. يُضاف هذا الكوكتيل إلى الخلايا الـ 1 مل البيليه ويُحفظ على الثلج لمدّة 15 دقيقة.
      11. إضافة 100 درجة مئوية من الخرز المغناطيسي (streptavidin) إلى كل 100 درجة مئوية من كوكتيل الأجسام المضادة المضافة إلى 1 مل إعادة تعليق خلايا الطحال بيليت. يُحفظ على الثلج لمدّة 15 دقيقة.
      12. إضافة 7 مل من المخزن المؤقت نظام الفصل المغناطيسي المتاحة تجاريا. الآن، aliquot حوالي 3-4 مل من الخليط إلى أنبوب جديد. مزيج جيدا وإصلاحه إلى المغناطيس لمدة 5 دقائق.
      13. Decant السائل (يحتوي على خلايا CD8 + ) إلى أنبوب جديد على الجليد. الآن، aliquot المتبقية 3-4 مل من الخليط من الخطوة 5.1.1.12 إلى الأنبوب وإصلاحه إلى المغناطيس لمدة 5 دقائق.
   2. البذور هندسيا التمسك الليفي APC-(MEC. B7. SigOVA) خط للتعبير عن ovalbumin محددة (OVA) مشتقة، H-2Kb مقيدة الببتيد EPItope OVA257-264 (SIINFEKL)، جنبا إلى جنب مع جزيء التحفيز المشترك B7.1، في 75،000 خلية في بئر في لوحات 24 جيدا، في 37 درجة مئوية، 5٪ CO₂ حاضنة رطبة.
      ملاحظة: الليفية الملتصقة المستخدمة هي هدية من مختبر الدكتور إديث يانسن في CCHMC. تم إنشاء الخط في الأصل في مختبر الدكتور ستيفن ب. شونبيرغر في معهد لا جولا للحساسية والمناعة⁶.
   3. بعد 24 ساعة، اغسل الطبقة الأحادية من APC مرة واحدة مع وسيط Dulbecco المعدل (IMDM) من Iscove المتوفر تجارياً مع عازل HEPES، وبياليومات الصوديوم، والجلوتامين والجلوكوز العالي)، وإضافة 0.5 × 10⁶ خلايا ساذجة OT-I CD8+ (من الخطوة 5.1.1.13) في 2 مل من IMDM تستكمل مع 50 مليون بيتا-ME، 2 مل EDTA، 4 مل L-الجلوتامين وHEPES و 10٪ FBS.
   4. بعد 20 ساعة، حصاد بلطف الخلايا OT-I غير الملتصقة (عن طريق جمع وسائل الإعلام في طبق الثقافة مع الخلايا العائمة OT-I وبيليه الخلايا في 191 × ز لمدة 2 دقيقة؛ عد الخلايا OT-I القابلة للحياة) ونقلها للثقافة المشتركة.
2. الثقافة المشتركة لخلايا CD8+ مع خلايا B16/F10-OVA
   1. خلايا CD8+ المشتقة من البذور OT-I بنسبة 1:1 (300,000 خلية لكل منها) في ثقافة مشتركة مع B16/F10 (تفتقر إلى مستضد أوفالبومين)، B16/F10-OVA غير المعالجة، وخلايا B16/F10-OVA المعالجة مسبقًا مع flavopiridol (25 nM) لمدة أسبوع واحد، في أطباق 6 آبار مع DMEM كاملة وسائل الإعلام لمدة 20 ساعة في 37 درجة مئوية في حاضنة CO₂ 5٪ ترطيب.
   2. بعد 20 ساعة، قم بإزالة خلايا CD8+ المشتقة من OT-I (عن طريق جمع الوسائط في طبق الثقافة مع خلايا CD8+ المشتقة من OT-I العائمة). اغسل خلايا B16/F10-OVA الملتصقة في 1x PBS.
   3. جرب المجموعات الثلاث من الخلايا المرفقة B16/F10-OVA في 0.05٪ EDTA التي تحتوي على التربسين لمدة 5 دقائق.
   4. وصمة عار الخلايا B16/F10-OVA حصادها عن طريق احتضانلهم في PBS الباردة (تحتوي على 0.5٪ FBS و 0.05٪ أزيد الصوديوم) مع صبغ البقاء والأجسام المضادة ذات الصلة المسمى (قابلة للتثبيت سلامة تلطيخ صبغ e780، AF647-المترافقة الماوس CD8 وBV421-مترافق ة الماوس CD45 ).
   5. تحليل صلاحية المجموعات الثلاث من خلايا B16/F10-OVA عن طريق قياس التدفق.

النتائج

هنا، ونحن نقدم خطة مفصلة (الشكل 1)لإنشاء نموذج خلية TE^{بالتأكيد} التي تم الحصول عليها من قبل المزمنة شبه القاتلة (الشكل 2)العلاج مع flavopiridol في 25 nM. في الشكل 3، في 3 أيام من العلاج مع flavopiridol ، B16 خلايا OVA تظهر خصائص جزئية من TE^...

Discussion

وقد ظهرت السيطرة على استطالة RNA Pol II كرافعة حاسمة لتنظيم التعبير الجيني استجابة التحفيز لصالح الخلايا الخبيثة^5،7،8. التغلب على التوقف المروج القريب استطالة وإنتاج mRNA اللاحقة يتطلب نشاط كيناز من P-TEFb^9،10،

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
hhis6FasL	Cell Signaling	5452
10X TBS	Bio-Rad	170-6435
12 well plates	Falcon	353043
20% methanol	Fisher Chemical	A412-4
24-well plates	Falcon	351147
4–18% SDS polyacrylamide gel	Bio-Rad	4561086
4% Paraformaldehyde	Thermo Fisher Scientific	AAJ19943K2
5% dry milk	Bio-Rad	170-6404
7-Methylguanosine antibody	BioVision	6655-30T
96-well plates	Cellstar	655180
AF647-conjugated mouse CD8	Biolegend	100727
antibiotic and antimycotic	Gibco	15240-062
anti-His antibody	Cell Signaling	2366 P
Anti-Rabit	Cell Signaling	7074	Dilution 1:5000
Anti-Rat	Cell Signaling	7077S	Dilution 1:5000
Bradford assay Kit	Bio-Rad	5000121
BSA	ACROS Organics	24040-0100
BV421-conjugated mouse CD45	Biolegend	109831
crystal violet	Sigma	C3886-100G
DMEM	Gibco	11965-092
Dynabeads Oligo (dT)25	Ambion	61002
FBS	Gibco	45015
Fixable Live/Dead staining dye e780	eBioscience	65-0865-14
Flavopiridol	Selleckchem	S1230
H3k36me3	Abcam	ab9050	Dilution 1:2000
IFN-α	R&D systems	12100-1
IFN-γ	R&D systems	485-MI-100
IMDM	Gibco	12440053
Immobilon Western Chemiluminescent HRP Substrate	Millipore	WBKLS0500
MojoSort Mouse CD8 T Cell Isolation Kit	Biolegend	480007
NF-κB	Cell Signaling	8242s	Dilution 1:1000
PBS	Gibco	14190-144
p-NF-κB	Cell Signaling	3033s	Dilution 1:1000
p-Ser2-RNAPII	Active Motif	61083	Dilution 1:500
p-Ser5-RNAPII	Active Motif	61085	Dilution 1:1000
p-STAT1	Cell Signaling	7649s	Dilution 1:1000
RiboMinu Eukaryote Kit	Ambion	A10837-08
RIPA buffer	Santa Cruz Biotechnology	sc-24948
RNAPII	Active Motif	61667	Dilution 1:1000
STAT1	Cell Signaling	9175s	Dilution 1:1000
TNF-α	R&D systems	410-MT-010
total H3	Cell Signaling	4499	Dilution 1:2000
Tri reagent	Sigma	T9424
Triton	Sigma	T8787-50ML
Tween 20	AA Hoefer	9005-64-5
β-Actin	Cell Signaling	12620S	Dilution 1:5000
β-ME	G Biosciences	BC98