A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Method Article
يصف هذا البروتوكول ثلاث خطوات لإعداد الفصوص البصرية لليرقات وذبابة الفاكهة البالغة للتصوير: 1) تشريح الدماغ ، 2) الكيمياء الهيستولوجية المناعية و 3) التركيب. يتم التركيز على الخطوة 3 ، حيث يلزم وجود اتجاهات تركيب مميزة لتصور هياكل الفص البصري المحددة.
يتكون الفص البصري من ذبابة الفاكهة ، الذي يتكون من أربعة خلايا عصبية: الصفيحة ، النخاع ، الفصيص والصفيحة الفصيصة ، هو نظام نموذجي ممتاز لاستكشاف الآليات التنموية التي تولد التنوع العصبي وتدفع تجميع الدائرة. نظرا لتنظيمه المعقد ثلاثي الأبعاد ، يتطلب تحليل الفص البصري أن يفهم المرء كيف يتم وضع الخلايا العصبية البالغة وأسلاف اليرقات بالنسبة لبعضها البعض والدماغ المركزي. هنا ، نصف بروتوكولا لتشريح وتلوين المناعة وتركيب أدمغة اليرقات والبالغين لتصوير الفص البصري. يتم التركيز بشكل خاص على العلاقة بين اتجاه التركيب والتنظيم المكاني للفص البصري. نصف ثلاث استراتيجيات تركيب في اليرقة (الأمامية والخلفية والجانبية) وثلاثة في البالغين (الأمامي والخلفي والأفقي) ، كل منها يوفر زاوية تصوير مثالية لهيكل الفص البصري المتميز.
كان النظام البصري لذبابة الفاكهة ، الذي يتألف من العين المركبة والفص البصري الأساسي ، نموذجا ممتازا لدراسة تطور الدائرة العصبية ووظيفتها. في السنوات الأخيرة ، ظهر الفص البصري على وجه الخصوص كنظام قوي لدراسة عمليات النمو العصبي مثل تكوين الخلايا العصبية وأسلاك الدوائر1،2،3،4،5،6،7،8. وهي مكونة من أربعة الخلايا العصبية: الصفيحة ، النخاع ، الفصيص والصفيحة الفصيصة (الأخيران يشكلان مجمع الفصيصات)1،2،3،4،5،6. المستقبلات الضوئية من العين ، تستهدف الخلايا العصبية للصفيحة والنخاع ، والتي تعالج المدخلات البصرية وتنقلها إلى الخلايا العصبية لمجمع الفصيص1،2،3،4،5،6. ترسل الخلايا العصبية الإسقاطية في مجمع الفصيصات بعد ذلك معلومات مرئية إلى مراكز المعالجة العليا في الدماغالمركزي 1،5،9. إن التنظيم المعقد للفص البصري ، الذي تستلزمه الحاجة إلى الحفاظ على الشبكية ومعالجة أنواع مختلفة من المحفزات البصرية ، يجعله نظاما جذابا لدراسة كيفية تجميع الدوائر العصبية المتطورة. والجدير بالذكر أن النخاع يشترك في أوجه تشابه مذهلة في كل من تنظيمه وتطوره مع شبكية العين العصبية ، والتي كانت منذ فترة طويلة نموذجا لتطوير الدائرة العصبية الفقارية 3,8.
يبدأ تطور الفص البصري أثناء التطور الجنيني ، مع مواصفات ~ 35 خلية من خلايا الأديم الظاهر التي تشكل الشفرة البصرية2،4،5،6،7،8. بعد فقس اليرقات ، ينقسم البشارة البصرية إلى بدائيين متميزين: 1) مركز الانتشار الخارجي (OPC) ، الذي يولد الخلايا العصبية للصفيحة والنخاع الخارجي و 2) مركز الانتشار الداخلي (IPC) ، الذي يولد الخلايا العصبية للنخاع الداخلي ومجمع الفصيصات4،5،6،10. في أواخر اليرقة الثانية ، تبدأ الخلايا الظهارية العصبية في OPC و IPC في التحول إلى خلايا عصبية تولد لاحقا خلايا عصبية عبر الخلايا الأم العقدة الوسيطة4،5،11،12. يتم تصميم الخلايا العصبية للفص البصري من خلال عوامل النسخ المقيدة مكانيا وزمانيا ، والتي تعمل معا لتوليد التنوع العصبي في ذريتها11،12،13،14. في الخادرة ، يتم تجميع دوائر الخلايا العصبية للفص البصري من خلال تنسيق العديد من العمليات ، بما في ذلك موت الخلايا المبرمج11,15 ، والهجرة العصبية12,16 ، والاستهداف المحوري / التغصني 10,17 ، وتشكيل المشبك 18,19 ودورات الأعصاب10,17.
هنا ، نصف المنهجية التي يتم من خلالها تشريح أدمغة اليرقات والبالغين ، وتلطيخها بالمناعة وتركيبها لتصوير الفص البصري. نظرا لتنظيمه المعقد ثلاثي الأبعاد ، يتطلب تحليل الفص البصري أن يفهم المرء كيف يتم وضع الخلايا العصبية البالغة وأسلاف اليرقات بالنسبة لبعضها البعض والدماغ المركزي. وبالتالي ، فإننا نركز بشكل خاص على كيفية ارتباط اتجاه التركيب بالتنظيم المكاني لهياكل الفص البصري. وصفنا ثلاث استراتيجيات تركيب لأدمغة اليرقات (الأمامية والخلفية والجانبية) وثلاث لأدمغة البالغين (الأمامية والخلفية والأفقية) ، كل منها يوفر زاوية مثالية لتصوير مجموعة محددة من أسلاف الفص البصري أو neuropil.
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
1. تحضير أدمغة اليرقات للتصوير متحد البؤر
2. إعداد أدمغة البالغين للتصوير متحد البؤر
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
يتم عرض الصور متحدة البؤر لليرقات والفصوص البصرية البالغة المثبتة في الاتجاهات الموصوفة في البروتوكول في الشكل 1 والشكل 2.
يوضح الشكل 1 مخططات وشرائح متحدة البؤر تمثيلية لأدمغة اليرقات الموضوعة في الاتجاهات الأمامية والخلفي...
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
في هذا البروتوكول ، نصف طريقة لمناعة اليرقات وأدمغة ذبابة الفاكهة البالغة وتركيبها في عدة اتجاهات. في حين أن طرق تلطيخ أدمغة اليرقات والبالغين قد تم وصفها سابقا22،23،24،27،28 ، فإن استراتيجيات التر?...
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
ويعلن صاحبا البلاغ أنه ليس لهما مصالح مالية متنافسة.
نود أن نشكر كلود ديسبلان لمشاركتنا حصصا من الجسم المضاد Bsh. تم الحصول على الأجسام المضادة أحادية النسيلة DE-Cadherin و Dachshund و Eyes Absent و Seven-up و Bruchpilot من بنك الدراسات التنموية Hybridoma Bank ، الذي أنشأه NICHD التابع للمعاهد الوطنية للصحة وتم الحفاظ عليه في جامعة أيوا ، قسم علم الأحياء ، مدينة أيوا ، IA 52242. تم دعم هذا العمل من خلال منحة اكتشاف NSERC الممنوحة ل T.E. يتم دعم U.A. من خلال منحة NSERC Alexander Graham Bell Canada للخريجين. يتم دعم PV من خلال منحة أونتاريو للدراسات العليا.
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
10x PBS | Bioshop | PBS405 | |
37% formaldehyde | Bioshop | FOR201 | |
Alexa Fluor 488 (goat) secondary | Invitrogen | A-11055 | use at 1:500 |
Alexa Fluor 555 (mouse) secondary | Invitrogen | A-31570 | use at 1:500 |
Alexa Fluor 647 (guinea pig) secondary | Invitrogen | A-21450 | use at 1:500 |
Alexa Fluor 647 (rat) secondary | Invitrogen | A-21247 | use at 1:500 |
Cover slips | VWR | 48366-067 | |
Dissecting forceps - #5 | Dumont | 11251-10 | |
Dissecting forceps - #55 | Dumont | 11295-51 | |
Dissection Dish | Corning | 722085 | |
Dry wipes | Kimbery Clark | 34155 | |
Goat anti-Bgal primary antibody | Biogenesis | use at 1:1000 | |
Guinea pig anti-Bsh primary antibody | Gift from Claude Desplan | use at 1:500 | |
Guinea pig anti-Vsx1 primary antibody | Erclik et al. 2008 | use at 1:1000 | |
Laboratory film | Parafilm | PM-996 | |
Microcentrifuge tubes | Sarstedt | 72.706.600 | |
Microscope slides | VWR | CA4823-180 | |
Mouse anti-dac primary antibody | Developmental Studies Hybridoma Bank (DSHB) | mabdac2-3 | use at 1:20 |
Mouse anti-eya primary antibody | DSHB | eya10H6 | use at 1:20 |
Mouse anti-nc82 primary antibody | DSHB | nc82 | use at 1:50 |
Mouse anti-svp primary antibody | DSHB | Seven-up 2D3 | use at 1:100 |
Polymer Clay | Any type of clay can be used | ||
Rabbit anti-GFP | Invitrogen | A-11122 | use at 1:1000 |
Rat anti-DE-Cadherin primary antibody | DSHB | DCAD2 | use at 1:20 |
Slowfade mounting medium | Invitrogen | S36967 | Vectashield mounting medium ( cat# H-1000) can also be used |
Triton-x-100 | Bioshop | TRX506 |
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved