تحديد نفقات الطاقة القاعدية وقدرة الخلايا الشحمية الحرارية على إنفاق الطاقة في الفئران البدينة

Summary

تصف هذه المخطوطة بروتوكولا لقياس معدل الأيض القاعدي والقدرة التأكسدية للخلايا الدهنية الحرارية في الفئران البدينة.

Abstract

قياسات الإنفاق على الطاقة ضرورية لفهم كيف يمكن أن تؤدي التغيرات في التمثيل الغذائي إلى السمنة. يمكن تحديد نفقات الطاقة القاعدية في الفئران عن طريق قياس استهلاك الأكسجين في الجسم كله ، وإنتاج ثاني _أكسيد الكربون ، والنشاط البدني باستخدام أقفاص التمثيل الغذائي. تساهم الخلايا الدهنية البنية/البيج الحرارية (BA) بشكل كبير في نفقات طاقة القوارض ، خاصة في درجات الحرارة المحيطة المنخفضة. هنا، يتم وصف قياسات الإنفاق على الطاقة القاعدية والقدرة الإجمالية لمكتبة الإسكندرية على إنفاق الطاقة في الفئران البدينة في بروتوكولين مفصلين: الأول يشرح كيفية إعداد المقايسة لقياس نفقات الطاقة القاعدية باستخدام تحليل التباين المشترك (ANCOVA)، وهو تحليل ضروري بالنظر إلى أن نفقات الطاقة تختلف بشكل مشترك مع كتلة الجسم. يصف البروتوكول الثاني كيفية قياس قدرة مكتبة الإسكندرية على الإنفاق على الطاقة في الجسم الحي في الفئران. هذا الإجراء ينطوي على التخدير، اللازمة للحد من الإنفاق الناجم عن النشاط البدني، تليها حقن ناهض بيتا3 الأدرينالية، CL-316،243، الذي ينشط الإنفاق على الطاقة في مكتبة الإسكندرية. يتم وصف هذين البروتوكولين وحدودهما بتفصيل كاف للسماح بتجربة أولى ناجحة.

Introduction

يمكن تعريف الأيض بأنه تكامل التفاعلات الكيميائية الحيوية المسؤولة عن امتصاص المغذيات وتخزينها وتحويلها وانهيارها الذي تستخدمه الخلايا للنمو وأداء وظائفها. تحول التفاعلات الأيضية الطاقة الموجودة في المواد الغذائية إلى شكل يمكن استخدامه من قبل الخلايا لتجميع جزيئات جديدة وتنفيذ العمل. هذه التفاعلات الكيميائية الحيوية هي بطبيعتها غير فعالة في تحويل هذه الطاقة إلى شكل قابل للاستخدام للحفاظ على ^{الحياة1}. ويؤدي عدم الكفاءة هذا إلى تبديد الطاقة في شكل حرارة، حيث يستخدم هذا الإنتاج الحراري لتحديد معدل الأيض القياسي (SMR) للكائن ^الحي1. تم تعريف الحالة القياسية كلاسيكيا على أنها إنتاج الحرارة الذي يحدث في شخص بالغ مستيقظ ولكنه يستريح ، وليس تناول الطعام أو هضمه ، في الترموكرالية ودون أي ^إجهاد1. ويشار إلى معدل الأيض القاعدي (BMR) أو نفقات الطاقة القاعدية في الفئران باسم SMR ولكن في الأفراد تناول وهضم الطعام تحت ضغط حراري خفيف (درجات الحرارة المحيطة 21-22 درجة مئوية)¹. جعلت التحديات والصعوبات التي تواجه قياس إنتاج الحرارة مباشرة قياس السعرات الحرارية غير المباشرة ، وهي حساب إنتاج الحرارة من قياسات استهلاك الأكسجين ، لتصبح النهج الأكثر شعبية لتحديد BMR. حساب BMR من استهلاك الأكسجين ممكن لأن أكسدة المواد الغذائية عن طريق الميتوكوندريا لتجميع ATP هي المسؤولة عن 72٪ من إجمالي الأكسجين المستهلكة في كائن حي، مع 8٪ من إجمالي استهلاك الأكسجين تحدث أيضا في الميتوكوندريا ولكن دون توليد ATP (التنفس غير المقترن)¹. يمكن أن يعزى معظم 20٪ المتبقية من الأكسجين المستهلكة إلى أكسدة المغذيات في مواقع أخرى دون الخلوية (أكسدة الأحماض الدهنية البيروكسيسومال)، والعمليات الابتنائية، وتشكيل أنواع الأكسجين ^{التفاعلي1}. وهكذا، في عام 1907، وضعت لوسك معادلة، استنادا إلى القياسات التجريبية، وتستخدم على نطاق واسع لتحويل استهلاك الأكسجين وإنتاج ثاني _أكسيد الكربون إلى تبديد الطاقة والحرارة. في البشر، يمثل الدماغ ~ 25٪ من BMR، والنظام العضلي الهيكلي ل ~ 18.4٪، والكبد ل ~ 20٪، والقلب ل ~ 10٪، والأنسجة الدهنية ل ~ 3-7٪². في الفئران ، ومساهمة الأنسجة في BMR مختلفة قليلا ، مع الدماغ تمثل ~ 6.5 ٪ ، والعضلات الهيكلية ~ 13 ٪ ، والكبد ~ 52 ٪ ، والقلب ~ 3.7 ٪ ، والأنسجة الدهنية ~ 5 ٪ ³.

ومن اللافت للنظر أن التفاعلات الكيميائية الحيوية التي تحدد معدل نمو الأنسجة غير ثابتة وتتغير استجابة للاحتياجات المختلفة، مثل العمل الخارجي (النشاط البدني)، والتنمية (نمو الأنسجة)، والضغوط الداخلية (مواجهة العدوى والإصابات ودوران الأنسجة)، والتغيرات في درجة الحرارة المحيطة (الدفاع البارد)¹. بعض الكائنات الحية بنشاط تجنيد العمليات لتوليد الحرارة في التعرض للبرد، مما يعني أن الحرارة الناتجة عن التمثيل الغذائي ليست مجرد نتيجة ثانوية عرضية. وبدلا من ذلك، اختار التطور آليات تنظيمية يمكن أن ترفع على وجه التحديد من إنتاج الحرارة عن طريق تغيير معدل التفاعلات ^{الأيضية1}. وهكذا، يمكن استخدام نفس قياسات استهلاك الأكسجين هذه لتحديد قدرة الكائن الحي على توليد الحرارة استجابة للبرد.

تساهم عمليتان رئيسيتان في توليد الحرارة عند التعرض للبرد. الأول هو يرتجف، الذي يولد الحرارة عن طريق زيادة الفوسفور التأكسدي الميتوكوندريا وتحلل الجليكوليسيس في العضلات لتغطية العمل البدني الذي يقوم به تقلص العضلات اللاإرادي. لذلك، فإن التعرض للبرد يزيد من استهلاك الأكسجين في ^{العضلات1}. والثاني هو توليد الحرارة غير الرجفة ، والذي يحدث من خلال زيادة في استهلاك الأكسجين في الخلايا الدهنية البني والبيج (BA). يتم التوسط تبديد الطاقة في الحرارة في مكتبة الإسكندرية عن طريق البروتين الميتوكوندريا فك 1 (UCP1)، والذي يسمح بالبروتونات العودة إلى مصفوفة الميتوكوندريا، مما يقلل من تدرج بروتون الميتوكوندريا. تبديد التدرج بروتون الميتوكوندريا من قبل UCP1 يزيد من إنتاج الحرارة من خلال الارتفاع في نقل الإلكترونات واستهلاك الأكسجين والطاقة الصادرة عن تبديد البروتون في حد ه دون توليد ATP (غير متفككة). وعلاوة على ذلك، يمكن أن BA الحرارية تجنيد آليات إضافية ترفع استهلاك الأكسجين دون التسبب في تبديد كبير في تدرج البروتون، عن طريق تفعيل التوليف التأكسدي غير مجدية ATP ودورات الاستهلاك. الأقفاص الأيضية الموصوفة هنا ، وهي نظام CLAMS-Oxymax من Columbus Instruments ، توفر إمكانية قياس نفقات الطاقة في درجات حرارة محيطة مختلفة. ومع ذلك، لتحديد قدرة BA الحرارية باستخدام قياسات استهلاك الأكسجين في الجسم كله، يحتاج المرء إلى: (1) القضاء على مساهمة الرجفة، وغيرها من العمليات الأيضية غير BA للإنفاق على الطاقة، و (2) تنشيط النشاط الحراري BA على وجه التحديد في الجسم الحي. وهكذا، يصف بروتوكول ثان كيفية تنشيط BA بشكل انتقائي في الجسم الحي باستخدام الصيدلة في الفئران المخدرة في درجة الحرارة (30 درجة مئوية)، مع التخدير والحرارة الحد من العمليات الحرارية الأخرى غير BA (أي النشاط البدني). الاستراتيجية الدوائية لتنشيط BA هو علاج الفئران مع مستقبلات β3-adrenergic ناهض CL-316,246. والسبب هو أن التعرض للبرد يعزز استجابة متعاطفة الإفراج عن النورادرينالين لتنشيط مستقبلات β الأدرينالية في BA, الذي ينشط UCP1 وأكسدة الدهون. وعلاوة على ذلك، β3-adrenergic مستقبلات التعبير هو غنية للغاية في الأنسجة الدهنية في الفئران.

Protocol

تمت الموافقة على جميع التجارب من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها في جامعة كاليفورنيا، لوس أنجلوس (UCLA). كانت تدار الفئران نظامها الغذائي والمياه الإعلانية libitum في القفص الأيضي، وتقع في بيئة تسيطر عليها درجة الحرارة (~ 21-22 أو 30 درجة مئوية) مع دورة خفيفة / مظلمة 12h. 8 الفئران الإناث الأسبوع تغذية نظام غذائي عالي الدهون أو الطعام الغذائي لمدة 8 أسابيع استخدمت لهذه الدراسة.

1. قياس معدل الأيض القاعدي (BMR)

1. قياس وزن الجسم الكلي للفأرة باستخدام مقياس الوزن بدقة في نطاق 0.1 غرام.
   ملاحظة: يجب أن يتم ذلك قبل إسكان الفئران في أقفاص التمثيل الغذائي وبعد 2-3 أيام من فترة التأقلم إلى أقفاص التمثيل الغذائي.
2. قياس تكوين الجسم، بما في ذلك الدهون والكتلة الهزيلة في الفئران غير المخدرة، وذلك باستخدام نظام تحليل تكوين الجسم المناسب (انظر جدول المواد).
   ملاحظة: هذه القياسات ضرورية لتحديد نفقات الطاقة ويتم تنفيذها بالتوازي مع إجمالي قياسات وزن الجسم (الخطوة 1.1).
3. إعداد أقفاص الأيض وبدء فترة التأقلم.
   ملاحظة: يتضمن نظام الأقفاص الأيضية حاوية تسمح للمستخدم بالتحكم في درجة حرارة السكن وضوء 12 قفصا (الشكل 1A، B). يحتوي كل قفص على زجاجة مياه، وحدة تغذية، وشبكة (الشكل 1C). تفصل الشبكة الماوس عن الجزء السفلي من القفص، مما يسمح بجمع البراز. بمجرد تثبيت القفص على كل مساحة محددة مسبقا ، يتضمن الغطاء الذي يغلق القفص فتحة زجاجة المياه ، والهواء أخذ عينات الأنابيب ، ونظام تدفق الهواء ، ومستشعر النشاط البدني (الشكل 1D).
   1. قم بتشغيل حاوية درجة الحرارة ونظام تدفق الهواء والكمبيوتر 2 ساعة قبل بدء الفحص.
   2. بعد 2 ساعة، افتح البرنامج الذي يتحكم في الحاوية (انظر جدول المواد) وتدفق الهواء والسماح للبرنامج باختبار اتصال الكمبيوتر بالمعدات.
      ملاحظة: تم استخدام برنامج Oxymax للعمل الحالي.
   3. بمجرد تأسيس الاتصال، انقر فوق ملف، ثم افتح تكوين التجربة (الشكل 2A) وحدد تكوين التجربة الذي تم تصميمها مسبقا من قبل المورد (أو إعدادها من الفحص السابق).
   4. انقر على التجربة، ثم انقر على خصائص، والتي ستفتح نافذة خصائص التجربة (الشكل 2B).
   5. في نافذة الخصائص، قم بإعداد معلمات الحاوية البيئية، بما في ذلك درجة الحرارة المحيطة (21 درجة مئوية) ودورات الإضاءة التي تبلغ 12 ساعة.
      ملاحظة: يسمح إبقاء البرنامج مفتوحا وتشغيله بتدفق الهواء إلى الأقفاص والحائمة للحفاظ على درجة الحرارة المحددة ودورات الضوء. وهكذا، يمكن للنظام بأكمله أن يعمل مع الفئران داخل الأقفاص لعدة أيام، حتى من دون قياس الأكسجين و _{ثاني أكسيد الكربون.}
   6. انقر على التجربة، ثم انقر على الإعداد، وسوف تفتح نافذة إعداد التجربة ، حيث يتم تعريف المعلمات من كل قفص الأيضية.
   7. تعيين كل معرف الماوس إلى القفص الفردية حيث يوجد الماوس (الشكل 2C).
   8. تضمين كتلة العجاف أو مجموع وزن الجسم لكل فأر فقط إذا لوحظت أي اختلافات في وزن الجسم بين المجموعات.
      ملاحظة: إن الحصول على القيم الخام لاستهلاك الأكسجين والإنفاق على الطاقة يسهل تحليلات ANCOVA.
   9. تعيين معدل تدفق الهواء إلى القفص الأيضي في 0.5-0.6 لتر / دقيقة.
   10. في إطار "إعداد التجربة"، حدد مسار حفظ الملف واسمه. حدد الدليل النسخ الاحتياطي (الشكل 2D).
   11. أضف كمية مرجحة مسبقا من الطعام إلى المغذيات التي تغطي على الأقل تناول الطعام لمدة يوم واحد.
       ملاحظة: إذا كانت الأقفاص لها مقاييس متكاملة، يمكن إضافة الطعام مباشرة، وسوف يسجل البرنامج ذلك.
   12. إضافة زجاجات المياه. تأكد من أن الزجاجة مختومة بشكل صحيح ولا تسرب.
   13. 24 ساعة بعد إضافة الطعام، وزن الطعام الذي تبقى على القفص.
       ملاحظة: سوف غرام من المواد الغذائية المضافة ناقص غرام من المواد الغذائية المتبقية قياس تناول الطعام.
   14. ابدأ قياسات _{الأكسجين، ثاني} أكسيد الكربون، والنشاط (الخطوة 1.4.10) بمجرد أن تكون قيم تناول الطعام هي نفسها قيم الفئران الموجودة في أقفاص عادية.
       ملاحظة: هنا، يتم إكمال فترة التأقلم (عادة 2-3 أيام)، ويمكن أن تبدأ قياسات نفقات الطاقة.
4. قياس السعرات الحرارية غير المباشرة وقياسات النشاط لتقييم الإنفاق على الطاقة
   1. قياس وزن الجسم والدهون والكتلة الهزيلة لجميع الفئران قبل بدء القياسات.
      ملاحظة: هذه هي وزن الجسم وقيم الكتلة الهزيلة المستخدمة لإجراء تحليلات ANCOVA.
   2. معايرة جهاز الكشف عن _O2 و _CO2 Zirconia القائم على نظام CLAMS (انظر جدول المواد) مع تركيز الأكسجين الموصى به؛ دائما إعادة معايرة الكاشف قبل البدء في تجربة جديدة.
   3. استخدم غاز معايرة من التركيبة المعروفة (20.50٪ أكسجين و0.50٪ _CO2).
      ملاحظة: غالبا ما يشير موردو الغاز إلى هذا الغاز على أنه "الدرجة القياسية الأولية".
   4. تشغيل وضمان أن ضغط إخراج الخزان هو في 5-10 psi.
   5. افتح برنامج أداة المعايرة لمعايرة واختبار مجسات الغاز (الشكل 2E). انقر على التجربة، ثم معايرة.
   6. اضغط على بدء. ثم انتظر حتى يتم اختبار أجهزة الاستشعار والبرمجيات أن يطلب من المستخدم لتحويل المقابض من جهاز استشعار الغاز (الشكل 2F) حتى قيمة هوية _O2 هو 1 (الشكل 2G-H). انقر فوق التالي عند اكتمال الخطوة.
      ملاحظة: إذا الأداة المساعدة معايرة تنفيذ كافة الخطوات الحالية، المعايرة تلقائيا متابعة إلى الخطوة التالية عند تعبئة شريط التقدم.
   7. تحقق من نتائج المعايرة عند اكتمال جميع الخطوات، ويتم عرض النتائج.
   8. قم بإيقاف تشغيل غاز المعايرة.
   9. تغيير الطعام وإضافة ما يكفي من الغذاء لمدة 48-72 ساعة.
      ملاحظة: على الرغم من أنه يمكن فتح أقفاص خلال قياسات نفقات الطاقة لمراقبة وزن الجسم وتغيير الطعام يوميا ، يمكن التأكيد على الفئران من خلال هذه التلاعبات ، ويتم فقدان القياسات عند فتح الأقفاص. وبالتالي، فمن المستحسن تجنب أي تلاعب خلال فترة القياس.
   10. في البرنامج، انقر على التجربة ثم قم بتشغيل لبدء الأكسجين، _CO2، وقياسات النشاط (الشكل 3A).
       ملاحظة: تنفيذ القياسات يمكن تعقب في الوقت الحقيقي في مربع الموجود في الجزء الأيسر السفلي من البرنامج (مستطيل أحمر الشكل 3B). يظهر المستطيل الأحمر في الشكل 3B أن النظام يقيس القفص رقم 1 عند الفاصل الزمني رقم 3 ، أي القياس الثالث. قياس واحد في قفص واحد يمكن أن يستغرق حوالي 1 دقيقة. وهكذا، مع 12 أقفاص متصلة، يمكن قياس استهلاك الأكسجين تقريبا كل 12 دقيقة. يوصى بإجراء قياسات مستمرة لمدة لا تقل عن 48 ساعة.
   11. أوقف التجربة بالنقر فوق التجربة ثم إيقاف (الشكل 3C).
   12. افتح الأقفاص، وازن الفئران والطعام. جمع البراز لحساب عدد من السعرات الحرارية والدهون تفرز على مدى فترة القياسات 48-72 ساعة.
       ملاحظة: يمكن تخزين البراز عند -20 درجة مئوية لإجراء تحليلات لاحقة. لا يمكن استخدام هذه الأقفاص بشكل فعال لجمع البول.
   13. انقر على التجارب، ثم تصدير وتصدير جميع المواضيع كملف CSV (الشكل 3D).
       ملاحظة: لتسهيل تحليلات ANCOVA، من الضروري تصدير قيم استهلاك الأكسجين الخام (_VO2) وإنتاج ثاني _أكسيد الكربون (_VCO2) دون تطبيعها من خلال وزن الجسم.
5. تحليل البيانات ومراقبة الجودة
   1. في ورقة CSV المصدرة (الشكل 3D) (من الخطوة 1.4.13)، استخدم القيم الخام لاستهلاك الأكسجين (_{VO2) وإنتاج ثاني} أكسيد الكربون (VCO2) التي تقاس كل 12 دقيقة في فترة 2-3 أيام التي يتم سردها تلقائيا من قبل البرنامج وتشمل طابع زمني، وهي الساعة والتاريخ عندما تم قياسها.
      ملاحظة: سيتم تصحيح قيم _{VO2 وVCO2} تلقائيا إذا تمت إضافة قيم وزن الجسم أو الكتلة الهزيلة.
   2. في ورقة CSV المصدرة، استخدم القيم الخام لنسبة الصرف التنفسي (RER: _VCO2/_VO2) التي يتم حسابها تلقائيا وإدراجها من قبل البرنامج وفقا لزمرتها الزمنية.
      ملاحظة: القيم القريبة من 1 إظهار الماوس أكسدة الكربوهيدرات بشكل أساسي، بينما تمثل القيم أقرب إلى 0.7 أن الماوس هو أساسا المؤأكسدة الدهون. يمكن أن يحدث RER فوق 1 أثناء ممارسة اللاهوائية ، حيث يطرد الجسم المزيد _{من ثاني أكسيد} الكربون للتعويض عن الحماض الناجم عن اللاكتات. RER أعلى من 1 يمكن أن تشير إلى الإجهاد. يحتوي ملف CSV المصدر أيضا على القيم الخام من نفقات الطاقة (EE) أو إنتاج الحرارة في السعرات الحرارية في الدقيقة لكل فأر ، ويتم قياسها كل 12 دقيقة في 2-3 أيام. هنا، تتضمن كافة القيم المسرودة طابع زمني.
   3. كما توجد حاجة إلى قيم EE واحد لكل ماوس ANCOVA متوسط قيم EE المسجلة بين 09:00-16:00 لمرحلة الضوء (اليوم) و 19:00-04:00 لمرحلة الظلام (الليل) لكل ماوس و يوم.
      ملاحظة: يمكن القيام بذلك يدويا باستخدام Excel أو لوحة الرسم البياني. اختيار هذه النوافذ مرتين يتجنب متوسط القيم EE المتوسطة، تدريجيا، وغير مستقرة المرتبطة الانتقال المرحلة ضوء الظلام.
   4. لفترة 48 ساعة، حساب متوسط قيم ضوء النهار اثنين وقيم المرحلة داكنة اثنين لكل ماوس باستخدام Excel أو لوحة الرسم البياني.
   5. لتحديد إجمالي النشاط البدني، استخدم Excel أو لوحة الرسم البياني لتلخيص عدد فاصل الحزمة x و y و z الذي تم قياسه في أقفاص التمثيل الغذائي والمدرج في ملف CSV لكل فأر.
      ملاحظة: يتم حساب النشاط الإجمالي x,y,z بواسطة القيام أولا متوسط قيمة كل X و Y و Z لكل ماوس ودورة. ثم يتم تحديد مجموع كل قيم X و Y و Z لكل ماوس ودورة لرسم البيانات كما في الشكل 5E (متوسط يومين).
   6. بدلا من ذلك، تمثل البيانات التي تظهر كل قيمة قياس مع مرور الوقت، مما يولد منحنيات توضح التغيرات في EE أثناء الانتقال من دورات الضوء إلى الظلام.
      ملاحظة: الرجاء الرجوع إلى قسم المناقشة حول كيفية ومتى يتم إجراء التحليلات ANCOVA الصيغ المختلفة المستخدمة لحساب _{VO2 VCO2} و EE يتم توفيرها في ملف التكميلية 1.

2. قياس قدرة الخلايا الدهنية الحرارية على استهلاك الطاقة

1. إعداد القياسات وعلاجات الماوس. انظر الخطوة 1 للحصول على تفاصيل حول الاستعدادات التجريبية لرصد استهلاك الأكسجين، حيث يتم تحديد القدرة الحرارية في الخلايا الدهنية بشكل غير مباشر عن طريق استهلاك الأكسجين باتباع الخطوات 2.1.1-2.2.2.
   ملاحظة: يتطلب هذا البروتوكول تخدير الماوس والعلاج الحاد مع ناهض مستقبلات بيتا-3 CL-316,243 (انظر جدول المواد)، مما يعطي تقييما سريعا لقدرة BA الحرارية.
   1. إجراء تحليل تكوين الجسم وتزن الفئران. بدوره على CLAMS، وإعداد درجة الحرارة في 30 درجة مئوية (الحرارة)، وانتظر لمدة 2 ساعة للنظام بأكمله للاحماء.
   2. إعداد بقية شروط الفحص، بما في ذلك الضوء، تعيين معرف الماوس إلى كل قفص وإضافة قيمة وزن الجسم من كل فأر في القفص المقابلة إذا لوحظ أي فرق في وزن الجسم بين المجموعات.
   3. معايرة _{كاشف الأكسجين} /ثاني أكسيد الكربون كما في الخطوات 1.4.2-1.4.7.
   4. بدء التجربة في البرنامج.
   5. حقن كل فأرة مع pentobarbital (60-120 ملغ / كغ) ووضع كل فأر في قفص الأيض المخصصة لها (الخطوة 2.1.2).
      ملاحظة: تختلف جرعة البنتوباربيتال المطلوبة للحفاظ على نوم الفئران عند درجة الحرارة (30 درجة مئوية) باختلاف سلالة الماوس والنمط الجيني. فمن المستحسن لاختبار جرعات البنتوباربيتال المختلفة من 50 إلى 120 ملغ / كغ واختار واحد الحفاظ على تخدير الماوس خلال 2-3 ساعة في 30 درجة مئوية. التخدير الفعال ضروري لإزالة مساهمة النشاط البدني في الإنفاق على الطاقة.
   6. لضمان التخدير، لاحظ الفئران بعد حقن البنتوباربيتال حتى تكون نائمة تماما وتصبح معدلات استهلاك الأكسجين المنخفضة ثابتة.
   7. انتظر للحصول على ما لا يقل عن 3 معدلات استهلاك الأكسجين مستقرة على التوالي قبل حقن CL-316,243.
      ملاحظة: أثناء انتظار استقرار استهلاك الأكسجين، قم بإعداد المحاقن باستخدام CL-316,243 لكل فأر (1 ملغم/كغ).
   8. فتح قفص # 1 وحقن CL- 316243 تحت الجلد مباشرة بعد واحد _VO2 وVCO2 قياس وقعت في قفص # 1. عودة الماوس إلى قفص # 1 مباشرة بعد الحقن.
      ملاحظة: يتم الإشارة إلى القياسات في الوقت الحقيقي في القسم السفلي الأيسر من البرنامج (الشكل 3B، مستطيل أحمر).
   9. انتظر القفص # 2 ليتم قياسها (الشكل 3B ، مستطيل أحمر) ثم المضي قدما كما هو الحال في الخطوة 2.1.8 لقفص # 2.
      ملاحظة: حقن CL-316,243 مباشرة بعد القياس يسمح بالحفاظ على الوقت الثابت بين الحقن. على سبيل المثال، إذا كان هناك 12 الفئران / أقفاص قيد التشغيل، مع القياسات التي تم جمعها في أقفاص فردية بالتسلسل وجمع دائم 55 ثانية لكل قفص، ثم يجب حقن فأرة واحدة كل دقيقة. مع معدلات الحقن هذه، سيحدث القياس الأول بعد 12 دقيقة بعد الحقن في جميع الأقفاص ال 12.
   10. مواصلة قياسات الإنفاق على الطاقة حتى الهضبة قيم الإنفاق على الطاقة لقياسات متتالية 5-6، عادة 90-180 دقيقة بعد الحقن.
       ملاحظة: يمكن أن تستيقظ الفئران من التخدير أثناء التجارب. هذه الفئران تحتاج إلى إزالتها من التحليل. لذلك، فإن اختبار جرعات البنتوباربيتال مسبقا سيزيد من كفاءة الدراسات.
   11. أوقف قياسات نفقات الطاقة، ولكن احتفظ بالفئران في أقفاصها عند 30 درجة مئوية، حتى تستيقظ.
   12. بعد الفئران مستيقظا تماما، وفحص صحة الفئران وإعادتها إلى أقفاصها الأولية.
   13. تصدير البيانات من كل ماوس كملف CSV باستخدام برنامج المعدات، كما هو موضح في القسم 1.4.13.
2. تحليل البيانات
   ملاحظة: تم إجراء تحليل البيانات بواسطة Excel أو Graphpad
   1. رسم القيم المتتالية 3-5 من _VO2، _VCO2، وEE التي هي مستقرة وثابتة مع مرور الوقت، وهذه هي القيم التي تمثل معدل الأيض عندما يتم تخدير الفئران تماما.
   2. ثم، رسم القياسات _VO2 الأولى التالية، _VCO2، وEE التي تم الحصول عليها بعد الحقن.
      ملاحظة: القيم المطلقة من EE وزيادة أضعاف في EE الناجمة عن الحقن تشير إلى BA وظيفة ^{الحرارية7}.

النتائج

ويبين الشكل 4 _VO2، _VCO2، إنتاج الحرارة / الإنفاق على الطاقة (EE)، نسبة تبادل الجهاز التنفسي (RER)، وX، Y، Z قيم النشاط البدني التي تم الحصول عليها باستخدام أقفاص التمثيل الغذائي للنظام CLAMS. _وVO2 وVCO2 التي يوفرها نظام CLAMS هو حجم الغاز (مل) في الدقيقة الواحدة، ويمكن تقسيم?...

Discussion

وقد استخدم قياس السعرات الحرارية غير المباشر لسنوات لتقييم نفقات الطاقة في كامل ^الجسم4. يوفر هذا البروتوكول الموصوف هنا طريقة مباشرة لقياس معدل الأيض القاعدي وتحديد قدرة BA الحرارية في الجسم الحي باستخدام أقفاص التمثيل الغذائي.

تؤكد طريقة قياس السعرات الح...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
CLAMS-Oxymax System	Columbus Instruments	CLAMS-center feeder-ENC	Including enviromental enclosure and Zirconia oxygen sensor
Desktop PC with Oxymax Software	HP/Columbus	N/A	PC needed to be purchased separately
Drierite jug (Calcium Sulfate with Cobalt Chloride Indicator)	Fisher Scientific	23-116681	Needed to dry the gas entering the oxygen sensor, humidity can damage the sensor
NMR for body composition	Echo-MRI	Echo-MRI 100	Measure lean and fat mass in alive mice. It is necessary for ANCOVA analyses.
CL-316-243	Sigma	C5976	Injected to the mice subcutaneously to activate thermogenesis
High fat diet	Research Diets	D12266B	Provided to the mice prior and during measurements
Pentobarbital/Nembutal	Pharmacy at DLAM	N/A	Anesthesia for the mice
Primary standard grade gas (tank and regulator)	Praxair	NI CD5000O6P-K/PRS 2012-2331-590	20.50% Oxygen, 0.50% CO2 balanced with nitrogen used for calibration