المراقبة في الوقت الحقيقي وتعديل ضغط الدم في نموذج أرنب للسكتة الدماغية الإقفارية

Summary

يسمح تسجيل ضغط الدم الشرياني المستمر بالتحقيق في تأثيرات معلمات الدورة الدموية المختلفة. يوضح هذا التقرير تطبيق المراقبة المستمرة لضغط الدم الشرياني في نموذج حيواني كبير للسكتة الدماغية لتحديد الفيزيولوجيا المرضية للسكتة الدماغية ، وتأثير عوامل الدورة الدموية المختلفة ، وتقييم مناهج العلاج الجديدة.

Abstract

يؤثر التحكم في ضغط الدم ، من حيث القيم المطلقة وتقلباته ، على النتائج في مرضى السكتة الدماغية. ومع ذلك، لا يزال من الصعب تحديد الآليات التي تؤدي إلى نتائج سيئة أو تقييم التدابير التي يمكن من خلالها التخفيف من هذه الآثار بسبب القيود الباهظة المتأصلة في البيانات البشرية. في مثل هذه الحالات ، يمكن استخدام النماذج الحيوانية لإجراء تقييمات صارمة وقابلة للتكرار للأمراض. نبلغ هنا عن تحسين نموذج تم وصفه سابقا للسكتة الدماغية الإقفارية في الأرانب والذي يتم تعزيزه بتسجيل ضغط الدم المستمر لتقييم آثار التعديل على ضغط الدم. تحت التخدير العام ، تتعرض الشرايين الفخذية من خلال عمليات القطع الجراحية لوضع الأغماد الشريانية بشكل ثنائي. تحت التصور بالمنظار الفلوري وتوجيه خارطة الطريق ، يتم تطوير القسطرة الدقيقة في شريان الدورة الدموية الخلفية للدماغ. يتم إجراء تصوير الأوعية الدموية عن طريق حقن الشريان الفقري المقابل لتأكيد انسداد الشريان المستهدف. مع بقاء القسطرة الانسدادية في موضعها لفترة محددة ، يتم تسجيل ضغط الدم باستمرار للسماح بمعايرة ضيقة للتلاعب بضغط الدم ، سواء من خلال الوسائل الميكانيكية أو الدوائية. عند الانتهاء من فترة الانسداد ، تتم إزالة القسطرة الدقيقة ، ويتم الحفاظ على الحيوان تحت التخدير العام لمدة محددة من التروية. بالنسبة للدراسات الحادة ، يتم بعد ذلك القتل الرحيم للحيوان وقطع رأسه. يتم حصاد الدماغ ومعالجته لقياس حجم الاحتشاء تحت المجهر الضوئي وتقييمه بشكل أكبر باستخدام بقع نسيجية مرضية مختلفة أو تحليل النسخ المكاني. يوفر هذا البروتوكول نموذجا قابلا للتكرار يمكن استخدامه لإجراء دراسات قبل سريرية أكثر شمولا حول تأثيرات معلمات ضغط الدم أثناء السكتة الدماغية. كما أنه يسهل التقييم قبل السريري الفعال للتدخلات العصبية الجديدة التي قد تحسن رعاية مرضى السكتة الدماغية الإقفارية.

Introduction

السكتة الدماغية الإقفارية (IS) هي السبب الرئيسي للوفاة والإعاقة طويلة الأجل في جميع أنحاء العالم ، ومن المتوقع أن يزداد انتشارها مع تقدم المجتمع في سن¹. في حين تم إحراز تقدم كبير في التدخلات الحادة واستراتيجيات الوقاية الثانوية ، فإن العلاجات العصبية المساعدة لم تتبع بسرعة²،³،⁴،⁵،^6،7. هناك حاجة إلى مزيد من البحث في علم الأحياء المرضي للسكتة الدماغية لأن الآليات التي قد تثبت أو لا تثبت العلاجات فعاليتها غير مفهومة بشكل جيد. ويرجع ذلك إلى حد كبير إلى الطبيعة غير المتجانسة لمرضى السكتة الدماغية ، وكثير منهم يعانون من العديد من الأمراض المصاحبة التي تربك التحليل¹. أحد محركات القيود في البحث هو عدم وجود بيانات على مستوى الأنسجة - المعيار الذهبي في البحوث الطبية الحيوية - بسبب المراضة المانعة لأخذ عينات من الأنسجة من الجهاز العصبي المركزي البشري. على وجه التحديد ، فإن حصاد الأنسجة الوعائية في الإنسان الحي قد يسبب سكتة دماغية ، لذلك لا يتم الحصول على أنسجة الأوعية الدموية عادة إلا عند تشريح الجثة ، والتي لا تمثل عامة السكان بشكل كاف وتميل نحو مرض أكثر تقدما في المرضى المسنين الذين يعانون من تشخيصات مصاحبة.

في مثل هذه الحالات ، عندما لا يمكن استخدام بيانات بشرية كافية ، يمكن للنماذج الحيوانية سد فجوات البيانات. النماذج الحيوانية الكبيرة للسكتة الدماغية محدودة لأن معظم الحيوانات الكبيرة المستخدمة في البحث هي ذوات الحوافر التي لديها ريت ميرابيل يمنع الوصول المباشر داخل الأوعية الدموية إلى الشرايين الدماغية⁸،⁹،¹⁰،^11،12،13،14،15،^16،17. الأرانب لها تاريخ طويل من الاستخدام للتحقيق في أمراض القلب والأوعية الدموية ، بما في ذلك الأمراض داخل الجمجمة⁸،⁹،10،11،¹²،¹³،14،¹⁵،^16،17. تقدم الأرانب نموذجا مثاليا للأمراض الدماغية الوعائية لأنها كبيرة بما يكفي لقسطرة الأوعية الدموية وتفتقر إلى rete mirabile الذي يمنع الوصول داخل الجمجمة في الثدييات الكبيرة الأخرى⁹،¹⁵،^16،17. وقد تم استخدامها سابقا خصيصا للتحقيق في IS من خلال انسداد دقيق وجيد التحكم في الشريان داخل الجمجمة باستخدام قسطرة دقيقة¹⁸.

يعد التحكم في ضغط الدم (BP) ، سواء من خلال تعديل BP المطلق أو تقلب ضغط الدم (BPV) ، وهي الدرجة التي يتقلب بها ضغط الدم الشرياني حول متوسط ضغط الدم ، هدفا علاجيا محتملا ناشئا لمرضى IS بعد تقارير عن نتائج أسوأ في أولئك الذين يعانون من ضعف التحكم في ضغط الدم أو BPV¹⁹،²⁰،^21،22. لا يوجد تحقيق ميكانيكي في كيفية تؤدي التغييرات إلى نتائج سيئة في مرضى IS. ويرجع ذلك جزئيا إلى صعوبة الحصول على بيانات على مستوى الأنسجة وإجراء تحليلات جيدة التحكم في البشر. لاختبار التدخلات التي تعدل BP أو BPV ، يجب استخدام النماذج الحيوانية للتغلب على هذه القيود. يصف هذا التقرير الاقتران الناجح لنموذج أرنب تم التحقق من صحته مسبقا من IS باستخدام انسداد متحكم فيه للشريان الدماغي الخلفي بالتزامن مع القياس المستمر داخل الشرايين ل BP¹⁸. تعمل الطريقة المعروضة هنا على تحسين الأساليب السابقة للفيزيولوجيا المرضية للسكتة الدماغية من خلال تطبيق نموذج السكتة الدماغية الذي تم التحقق من صحته وقابليته للتكرار على نظام يمكن من خلاله تحقيق قياس دقيق ومراقبة ضغط الدم. في هذا النموذج المكرر ، يمكن تقييم عبء الاحتشاء من خلال تلطيخ نسيجي مرضي لاحق للدماغ المحصود ، وهو أيضا قابل للبقع المختلفة والتحليلات الأكثر تقدما مثل النسخ المكاني. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن أيضا اختيار شريان الدورة الدموية الخلفي المسدود ليتم تقييمه لتحليل المراضة بعد إجراءات البقاء على قيد الحياة.

Protocol

تمت الموافقة على هذا البروتوكول من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام الحيوان (رقم بروتوكول IACUC بجامعة يوتا 21-09021). نيوزيلندا الناضجة يتم الحصول على الأرانب البيضاء من البائعين التجاريين.

1. اقتناء الحيوانات

1. تأقلم الحيوانات للمدة المطلوبة بعد وصولها وفقا للبروتوكول المؤسسي ، وإيواء الحيوانات اجتماعيا في حظيرة مع وجبات الطعام القياسية. فترة التأقلم في مؤسستنا هي 2 أسابيع.

2. التخدير والمراقبة

1. يتم تحفيز التخدير الرغامي العام بالحقن العضلي للبوبرينورفين (0.03 ملغ/كغ) متبوعا بحوالي 30 دقيقة بعد حقن الكيتامين (25-35 ملغ/كغ) والزيلازين (3 ملغ/كغ) الحقن العضلي. الحفاظ على التخدير مع 1٪ -5٪ إيزوفلوران في الأكسجين الذي يتم إعطاؤه عن طريق أنبوب القصبة الهوائية. أثناء الحث ، استخدم 100٪ FiO 2 ، ثم قم بالمعايرة لأسفل إلى أدنى FiO 2 الذي يحافظ على 100٪ SpO₂.
   ملاحظة: التخدير المتواصل ضروري لمنع حركة الحيوان بحيث تكون السكتة الدماغية هي الاضطراب الوحيد لعملية تحريض السكتة الدماغية. هذا يمنع أيضا الطفرات في ضغط الدم التي قد تنتج عن الهياج الذي قد ينشأ عن التخدير غير الكافي. الأوكسجين المتسق مهم أيضا للتحكم في تحقيق ضربات مماثلة. وترد جميع هذه التدابير في النتائج التمثيلية المبينة أدناه.
2. تأكيد عمق التخدير الكافي عن طريق تطبيق المحفزات الضارة على إصبع القدم. تطبيق مرهم العين البيطرية على العينين لمنع الجفاف.
3. راقب تشبع الأكسجين بواسطة مقياس التأكسج النبضي الموجود على الأذن. الحصول على الوصول عن طريق الوريد مع قسطرة وعائية في الوريد الأذني. تأكد من تأمينه بخياطة أو ضمادة لاصقة شفافة. للتخفيف من التشنج الوعائي ، ضع 0.25 بوصة من النتروجليسرين عبر الجلد داخل الأذن بعد تحريض التخدير.
4. توفير سوائل الصيانة مع المياه المالحة العادية بمعدل 1 سم مكعب / كجم / ساعة. ضع مسبار درجة حرارة المريء لمراقبة درجة حرارة الجسم. الحفاظ على الحرارة العادية (33-37 درجة مئوية) حسب الحاجة مع وضع البطانيات الدافئة تحت الحيوان.

3. التحضير الجراحي

1. ضع الأرنب في وضع ضعيف على طاولة جراحية متوافقة مع التنظير الفلوري. قم بتمديد الرأس لأنه يحسن الوضع لمناظر تصوير الأوعية اللاحقة. الأرانب لديها شرايين حساسة بشكل رائع عرضة للتشنج الوعائي بعد الأجهزة.
2. إزالة الفراء من كل من المناطق الأربية باستخدام كليبرز الكهربائية. بعد ذلك ، قم بجس النبضات الشريانية الفخذية الثنائية لتأكيد الخلوص الكافي عن طريق التشذيب الثنائي. تحضير الجلد مع الدعك من الكلورهيكسيدين والكحول ، ثم ثني الجلد بالطريقة المعقمة المعتادة.
3. تطبيق التخدير الموضعي عن طريق حقن 2 مل من الليدوكائين 1٪ تحت الجلد في المناطق الأربية الثنائية. قم بعمل شق جراحي 5 سم بشفرة رقم 10 في الموقع الذي تم فيه حقن الليدوكائين. استخدم التشريح الحاد لفضح الحزمة الوعائية العصبية (الشكل 1 أ). إذا لزم الأمر ، قم بتمديد الشق لكشف جزء شرياني كبير بما يكفي للوصول إليه.
4. عند عزل الحزمة الوعائية العصبية ، قم بالتنقيط عدة قطرات من يدوكائين 1٪ على الشريان لمنع التشنج الوعائي. افصل الشريان برفق عن الوريد والعصب المجاور باستخدام الملقط. التعرف على الشريان من خلال المظهر المميز لجداره العضلي مقارنة بالجدران الرقيقة للوريد. سيكون للشريان دم أكثر إشراقا ، بينما يحتوي الوريد على دم أغمق.

4. الوصول الشرياني

1. بعد عزل الشريان ، مرر ملقط الزاوية اليمنى أسفل الوعاء. أمسك حلقتين من الوعاء باستخدام الأداة وقم بتمريرهما برفق تحت الشريان. ضع واحدا في كل من نهايات المنبع والمصب للسفينة المكشوفة.
2. إخضاع الشريان لجر لطيف عن طريق سحب حلقات الوعاء. في هذه المرحلة ، افحص الوعاء بحثا عن أي نسيج متبقي ، وقم بإزالته بتشريح لطيف (الشكل 1 ب). هذا يزيد من فرص الوصول الناجح.
3. استخدم قسطرة وعائية 22 جم للوصول. قم بدفع القسطرة نفسها قليلا فوق الإبرة الداخلية لأنها غالبا ما تلتصق عند الجلوس تماما ويمكن أن تزيح الجهاز أثناء محاولات الوصول.
4. بعد تشريح الوعاء وإعداد قسطرة الأوعية الدموية ، يقطر يدوكائين على الوعاء مرة أخرى. سوف يتمدد الشريان بشكل واضح ، مما يزيد من فرص الوصول الناجح ووضع غمد باستخدام تقنية Seldinger.
5. قم بتطبيق الجر اللطيف على حلقة الوعاء السفلي لامتصاص الشريان عن طريق تقليل التدفق الخارجي. هذا أيضا يستقر السفينة لمحاولة الوصول. تقدم ببطء إبرة قسطرة وعائية في منتصف الجزء الشرياني المكشوف (الشكل 1C). عندما يظهر وميض من الدم في القسطرة الوعائية والغرفة في محورها ، ادفع القسطرة فوق الإبرة إلى تجويف الشرايين.
6. إذا لم تنجح محاولة الوصول ، فقم بتحقيق الإرقاء عن طريق تطبيق الجر على حلقة الوعاء المنبع. اغسل القسطرة الوعائية بمحلول ملحي واستبدلها على إبرة الإدخال الخاصة بها لإجراء محاولات إضافية.
7. عندما يتم وضع القسطرة الوعائية بنجاح في الوعاء إلى محوره ، قم بدفع سلك Cope الدقيق عبر تجويف قسطرة الأوعية الدموية إلى الشريان الأورطي (الشكل 1 د). قم بإزالة القسطرة الوعائية فوق السلك واستبدلها بغمد نحيف 5 فرنسي محب للماء (الشكل 1E).
8. تأكد من عودة الدم الشرياني من خلال أنبوب الذراع الجانبي عن طريق فتح الصمام الثلاثي. اغسل الغمد بمحلول ملحي بنسبة 0.9٪ وأغلق الصمام أثناء التنظيف.
9. ثبت محور الغمد على الجلد المجاور بخيط حرير إضافي 3-0. كرر هذه العملية للشريان الفخذي المقابل. لتحقيق كفاءات أعلى ، يمكن لمشغلين العمل في وقت واحد مع التركيز على شريان واحد لكل منهما.

5. تصوير الأوعية الدماغية العنقية والوصول داخل الجمجمة

1. تحت التصور بالمنظار الفلوري ، قم بدفع قسطرة انزلاقية فرنسية 4 عبر سلك منزلق مقاس 0.035 بوصة يتم إدخاله عبر غمد الفخذ الأيسر. ضع طرف القسطرة المنزلقة في الشريان الفقري الأيسر القريب. قم بإزالة السلك واغسل القسطرة بمحلول ملحي بنسبة 0.9٪ من الهيبارين.
2. إجراء تصوير الأوعية عن طريق حقن الشريان الفقري الأيسر باليد مع التباين المعالج باليود تحت التكبير المنخفض لتصور الرأس والرقبة بالكامل (الشكل 2 أ). قم بتعديل حقن محلول التباين عن طريق البدء بحقن الضغط المنخفض الذي يتصاعد لتصور الأوعية الدموية بأكملها.
   ملاحظة: هناك حاجة إلى حقن كافية لتصور الارتجاع أسفل الشريان الفقري الأيمن ، حيث سيتم استخدام هذه الصورة الوعائية لتوجيه خارطة الطريق لتحديد الشريان الفقري الأيمن بكفاءة. هناك حاجة إلى حقن لطيف لتقليل التشنج الوعائي أو إصابة أكثر عمقا. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن أن تؤدي القوة المفرطة أو الحجم إلى حركة عابرة من الحيوان حتى تحت التخدير العميق.
3. لحقن العمود الفقري الأيسر ، قم بحقن تباين 50٪ مخفف في محلول ملحي طبيعي مع تصعيد لطيف من حقنة 3 سم مكعب. عادة ما يكون حقن 1-2 سم مكعب من التباين المخفف كافيا. تحديد كمية كافية من الحقن عن طريق فحص الارتجاع أسفل الشريان الفقري الأيمن وإلى الشريان تحت الترقوة الأيمن. خلال هذا الحقن ، لاحظ أيضا الشرايين الدماغية الخلفية والشرايين المخيخية العلوية ، والتي سيكون أحدها هو الهدف الذي يجب إغلاقه بالقسطرة الدقيقة.
4. قم بإعداد قسطرة دقيقة موجهة بالتدفق الفرنسي 2.4 باستخدام سلك دقيق مقاس 0.010 بوصة. اصنع شكل c على طرف السلك الصغير. تحت إرشادات خارطة الطريق ، قم بدفع القسطرة الدقيقة داخل قسطرة انزلاقية فرنسية 4 عبر غمد الفخذ الأيمن وعبر السلك إلى الشريان الفقري الأيمن. نظرا للميل إلى التشنج الوعائي الناجم عن القسطرة ، قلل من وقت معالجة الجهاز وعدد محاولات القسطرة التي يتم إجراؤها.
5. تقدم القسطرة الدقيقة عبر الجزء العنقي من الشريان الفقري الأيمن. لتمرير المنعطف الحاد بشكل أفضل من مقطع V2 إلى V3 ، قم بدفع القسطرة الدقيقة بمفردها بينما يعود السلك الدقيق بالقرب من طرفه. غالبا ما يؤدي السلك الدقيق في هذه المرحلة إلى اختيار فروع جانبية صغيرة من الشريان الفقري ويمكن أن يكون مصدرا للتشنج الوعائي الكبير.
6. بعد اجتياز المنعطف الحاد من V2 إلى V3 ، غالبا ما تمر القسطرة الدقيقة بسهولة إلى الشريان القاعدي القريب. في هذه المرحلة ، قم بدفع السلك الصغير وحدد الشرايين الدماغية الخلفية أو المخيخية العلوية المطلوبة. لا ينصح بحقن القسطرة الدقيقة نظرا للطبيعة الهشة للشرايين داخل الجمجمة.
7. دفع القسطرة الدقيقة عبر السلك الدقيق إلى الشريان المستهدف. اختر الموضع القريب لأنه عادة ما يكون الأكثر أمانا في الخلف للتواصل بسبب توجهه في أصله. من الممكن وجود موضع أعمق في الشريان المخيخي العلوي (الشكل 2 ب).
8. كرر تصوير الأوعية الدموية عن طريق حقن قسطرة الشريان الفقري الأيسر بتكبير عال فوق الرأس لتأكيد انسداد الشريان المستهدف (الشكل 2B-C). للحصول على التصوير الأمثل ، قم بحقن تباين القوة الكاملة في حقنة 3 سم مكعب. عادة ، لن تكون هناك حاجة إلى أكثر من 1 سم مكعب من أجل التعتيم الكافي لجميع الشرايين داخل الجمجمة.
9. قم بإزالة السلك الدقيق برفق من القسطرة الدقيقة تحت التصور الفلوري لتأكيد وضع مستقر. ضع محبس على محور القسطرة الدقيقة وأغلق المحبس لمنع فقدان الدم من تدفق الدم إلى الوراء. قم بإزالة القسطرة الفقرية اليسرى لجعل غمد الوصول إلى الفخذ الأيسر متاحا.
10. خلال فترة الانسداد التالية ، احصل على صور متقطعة بالمنظار لتأكيد وضع مستقر للقسطرة الدقيقة الانسدادية. تم نشر نتائج فترات انسداد الشريان الدماغي الخلفي التي تتراوح بين 60-240 دقيقة سابقا¹⁸.

6. قياس ضغط الدم وتعديله

1. بينما يتم استخدام موقع وصول فخذي واحد للقسطرة الدقيقة داخل الجمجمة ، استخدم الغمد المقابل لقياس ضغط الدم.
2. سجل قراءات ضغط الدم الشرياني المستمرة باستخدام مستشعر مقاوم للضغط من 3 مقاييس فرنسية ، يتم وضعه من خلال غمد الفخذ ويتقدم حتى يصبح طرف المستشعر في الشريان الأورطي الصدري السفلي. قم بتوصيل هذا المستشعر بأجهزة الحصول على البيانات وتصور الضغوط المقاسة مع البرامج المرتبطة به. مراقبة ضغط الدم في نافذة تصور الضغط. يمكن تصدير تسجيلات BP إلى جدول بيانات للتصور في برنامج الإحصاءات.
3. بدلا من ذلك ، إذا كان التلاعب الميكانيكي لضغط الدم مطلوبا باستخدام قسطرة بالون ، فقم بدفع قسطرة بالون فوغارتي الفرنسية 4 5 مم من خلال غمد الفخذ المتاح. ضع البالون في الشريان الأورطي تحت الكلوي. استخدم التجويف الداخلي مقاس 0.025 بوصة لتتبع الضغط لمراقبة BP باستمرار في اتجاه المنبع للبالون وقطر 4 فرنسي للبالون لخط تتبع BP ثان ليتم توصيله بالغلاف للمراقبة المستمرة ل BP في اتجاه مجرى البالون.

7. القتل الرحيم وحصاد الأنسجة

1. قم بإزالة القسطرة الدقيقة الإطباقية بعد 3 ساعات ، ثم استمر في قياس ضغط الدم الشرياني وتعديله للفترة الإضافية المطلوبة. يتم استخدام فترة استرداد قياسية تبلغ 3 ساعات لتصور احتشاء مكتمل على الأنسجة اللاحقة.
2. بعد الانتهاء من أوقات الانسداد والشفاء الموصوفة ، تأكد من أن الحيوان في مستوى جراحي للتخدير وإجراء القتل الرحيم (تثبيت التروية بمحلول الفوسفات المخزن ، يليه قطع الرأس بعد تأكيد عدم وجود نشاط قلبي). بدلا من ذلك ، قم بإجراء تثبيت التروية عن طريق غرس البيرفوسات من خلال غمد الفخذ ، ثم عبور الوريد الوداجي أو الوريد الأجوف السفلي أو الأذين الأيمن.
   ملاحظة: قد يكون التروية مفضلا لبعض تحليلات ما بعد الوفاة لأن التعبير الجيني أو قيم العلامات الحيوية قد تتأثر بالمحلول. تم تنفيذ كلتا التقنيتين بنجاح من قبل مجموعتنا.
3. في الإجراءات الحادة مع الحصاد الفوري للدماغ ، تأكد من القتل الرحيم وقطع رأس الحيوان. إزالة calvarium بطريقة مجزأة مع rongeurs ، بدءا من التلال القذالي والعمل من الأمام حتى يمكن حصاد الدماغ سليمة. ضع الدماغ في الفورمالين أو محلول درجة حرارة القطع الأمثل وتجميد الفلاش ، اعتمادا على نوع تحليل الأنسجة المطلوب.

النتائج

في التجارب الأولية مع هذا النموذج ، نجحت مجموعتنا في تحقيق النتيجة المرجوة من انسداد الشريان الدماغي الخلفي أو المخيخي العلوي في 12 من أصل 14 حيوانا (85.7٪). للتجربة ، تمت دراسة سبعة ذكور وسبع إناث. كان متوسط وزن الحيوان 3.6 كجم (± 0.46 كجم). في الحيوانين اللذين لم يتحقق فيهما النجاح ، حال التشنج الو?...

Discussion

وقد أحرز تقدم كبير في إدارة نظم المعلومات، لا سيما بالنظر إلى التقدم المحرز في استراتيجيات التدخل الحاد والوقاية الثانوية. ومع ذلك، يمكن القيام بالمزيد من العمل لتحسين الرعاية لمرضى داعش. من المحتمل أن يكون التقدم المحدود في جوانب أخرى من علاج IS ، لا سيما في مجال الحماية العصبية ، ناتجا عن...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
3-0 Silk Suture	Ethicon	A184H
Buprenorphine	Sigma-Aldrich	B9275
Catheter	Terumo	CG415	4F glide catheter
Endovascular Pressure Sensor	Millar	SPR-524
Euthasol	Virbac	PVS111
Guidewire	Terumo	GR1804
Iohexol	ThermoFisher	466651000	Iodinated Contrast
Ketamine	Biorbyt	orb61131
LabChart Software	ADInstruments
Lidocaine	Spectrum	LI102
Microcatheter	Medtronic	EV3 105-5056	Marathon Microcatheter
Microwire	Medtronic	EV3 103-0608	Mirage Microwire
PowerLab	ADInstruments
Rabbit Brain 2mm Coronal Cutting Matrix	Ted Pella	15026
Saline	FisherScientific	23-535435
Sheath	Merit Medical	PSI-5F-11
Xylazine	ThermoFisher	J61430.14