JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

يوضح البروتوكول طريقة تشريح بسيطة وسهلة ، مناسبة للحشرات الإناث المهاجرة من النوع البري التي يتم التقاطها باستخدام مصائد الكشافات. يمكن لهذه التقنية توضيح نفس النوع بشكل كبير من خلال مقارنة كل من الأنسجة التناسلية ، أي كيس التزاوج وتطور المبيض للحشرات الأنثوية من النوع البري.

Abstract

تشكل الآفات الحشرية المهاجرة تحديات خطيرة لإنتاج الأغذية وأمنها في جميع أنحاء العالم. يمكن رصد الآفات المهاجرة والتقاطها باستخدام مصائد الكشاف. واحدة من أهم التقنيات للتنبؤ بالآفات المهاجرة هي تحديد الأنواع المهاجرة. ومع ذلك ، في معظم الحالات ، من الصعب الحصول على المعلومات بمجرد المظهر. لذلك ، فإن استخدام المعرفة المكتسبة عن طريق التحليل المنهجي للجهاز التناسلي للأنثى يمكن أن يساعد في فهم التشكل التشريحي المشترك لكيس تزاوج المبيض وتدرج نمو المبيض للحشرات المهاجرة من النوع البري التي يتم التقاطها باستخدام مصائد الكشافات. لإثبات قابلية تطبيق هذه الطريقة ، تم تقييم حالة نمو المبيض ومراحل تطور حبوب البيض بشكل مباشر في Helicoverpa armigera و Mythimna separata و Spodoptera litura و Spodoptera exigua لتشريح المبيض ، وتمت دراسة أكياس تزاوج المبيض في Agrotis ipsilon و Spaelotis valida و Helicoverpa armigera و Athetis lepigone و Mythimna separata و Spodoptera litura و Mamestra brassicae و Spodoptera exigua، لاستكشاف علاقاتهم. يوضح هذا العمل طريقة التشريح المحددة للتنبؤ بالحشرات المهاجرة من النوع البري ، ومقارنة الجهاز التناسلي الفريد للحشرات المهاجرة المختلفة. بعد ذلك ، تم إجراء مزيد من التحقيق في كلا النسجين ، وهما أكياس المبيض والتزاوج. تساعد هذه الطريقة على التنبؤ بالديناميات والتطور الهيكلي للأنظمة التناسلية في الحشرات المهاجرة من النوع البري.

Introduction

تلعب هجرة الحشرات دورا حيويا في ديناميات السكان لتوزيع الحشرات العالمية للحشرات مثل Helicoverpa armigera - دودة اللوز القطنية ، Mythimna منفصلة - دودة الحشد الشرقية ، Spodoptera litura - كاتربيلر القلقاس ، Spodoptera exigua - دودة الحشد البنجر ، التي تم الإبلاغ عنها كآفات خطيرة في الصين1،2،3،4. جلبت مسافات السفر الطويلة ، والحركات الموسمية ، والخصوبة العالية للآفات المهاجرة ، والعوامل البيئية صعوبات كبيرة في التنبؤ بهذه الآفات والتنبؤ بها ومكافحتها5. مطلوب مراقبة هجرة الآفات للكشف عن القدرة على التكيف والتغيرات السلوكية التي تسهل الآفات المهاجرة وفقا للتغيرات المناخية أو الدورات6. للحفاظ على نموها وتكاثرها وبقائها ، اكتسبت الحشرات قدرة متسلسلة على التكيف أثناء التطور. ولدت هذه السلسلة من الحياة التكيفية العديد من التغييرات في الجهاز التناسلي ، مثل استراتيجية الهجرة التي تؤدي إلى السيطرة على نمو المبيض في عملية الهجرة الطويلة.

تطور المبيض شائع في الآفات المهاجرة ، مما يؤثر على نمو سكانها7. لذلك ، كان تطور المبيض موضوعا ساخنا لأبحاث الآفات المهاجرة لفترة طويلة. أدت سلسلة من الدراسات إلى العديد من مؤشرات نمو المبيض واستراتيجيات التصنيف. حتى الآن ، تم استخدام عدة طرق لتحليل تطور المبيض ، على سبيل المثال ، Loxostege sticticalis - عثة المرج - تطور المبيض الذي يتضمن مرحلة الريش الأولية ، وفترة التفريخ المبكرة ، وفترة التفريخ ، ونهاية وضع البيض8. يقسم بعض الباحثين مستويات المبيض على أساس تطور لون صفار البيض في آفات حرشفيات الأجنحة المهاجرة ، مثل S. exigua - دودة الحشد البنجر ، Pseudaletia unipuncta - دودة الحشد الحقيقية ، و Cnaphalocrocis medinalis - مجلد أوراق الأرز ، إلخ.9،10،11،12. في الدراسات السابقة ، تم تقسيم مستويات تطور المبيض للآفات ، مثل دودة اللوز القطنية وأسطوانة أوراق الأرز ، إلى خمس مراحل: مرحلة ترسب صفار البيض ، مرحلة نضج حبوب البيض ، الانتظار الناضج للولادة ، فترة ذروة التبويض ، ومرحلة التفريخالنهائي 13،14. تم تقسيم تطور المبيض لحفار الذرة الأوروبي إلى ست مراحل تنموية: مرحلة ترسب صفار البيض ، ونضج البيض ، والتخلص من البيض المسبق ، ومرحلة التفريخ القصوى ، ومرحلة التفريخالنهائي 15.

علاوة على ذلك ، فإن الحشرات من نفس الجنس لها مراحل مختلفة من التطور ، مثل مستويات تطور المبيض من Spodoptera frugiperda - دودة الحشد الخريفية - تقع في أربعة مستويات: مرحلة ترسب صفار البيض ، والانتظار الناضج للتسليم ، وذروة إيجابية ovi ، ومرحلة التفريخالنهائية 16. من ناحية أخرى ، فإن تطور المبيض في Spodoptera exigua - عثة البنجر - له خمسة مستويات: شفاف ، تكوين الجسم ، نضوج البيض ، إطلاق البيض ، ومستويات وضع البيضالمتأخرة 17.

يمكن للدراسات السابقة فقط تصنيف التطور من مستويات تطور المبيض الفردي إلى المتعدد باستخدام نضج اللون لتطور صفار البيض ووضع البيض والبويضات ، ولكن لا يمكن إجراء التصنيف بناء على تشريح الجهاز التناسلي. تطور المبيض على أساس تشريح التشكل هو مجال أقل دراسة. هنا ، تم تصميم طريقة التشريح للتنبؤ بالإناث المهاجرة في السكان باستخدام نوعين من أنسجة المبيض ، لتوضيح ديناميكيات التكاثر الخاصة بهم بناء على التشكل التشريحي لمرحلة تطور المبيض وكيس التزاوج - مما يوفر دليلا مباشرا لتمييز الإناث البرية المهاجرة.

وقد وجدت بعض الدراسات أن أنواع الحشرات Noctuidae المهاجرة تم التقاطها بشكل متكرر بواسطة الكشافات18. المبيض لمعظم أنواع الحشرات Noctuidae المهاجرة في المراحل الأولى من التطور خلال المرحلة الأولى من الهجرة ويزداد مستوى المبيض مع تقدم الهجرة. في هذه الدراسة ، تم وصف طريقة تشريح درجات تطور المبيض ، لدراسة النسجين التناسليين لآفات سكانية مختلفة من الإناث ، تم التقاطهما بواسطة ضوء البحث. لا تعمل هذه الطريقة على تطوير البحث لفهم ديناميكيات الهجرة فحسب ، بل تعمل أيضا على تصنيف الحشرات ، ودراسة فسيولوجيا الحشرات ، والتنبؤ بالآفات ، والتنبؤ بأنواع الآفات الأنثوية.

Protocol

ملاحظة: انتبه إلى قياسات السلامة قبل محاصرة الحشرات المهاجرة من النوع البري ، يقترح ارتداء معدات السلامة (القفازات والقمصان ذات الأكمام الطويلة والنظارات الواقية). أيضا ، قم بإيقاف تشغيل المصيدة عندما لا تكون قيد الاستخدام لتجنب مخاطر السلامة الأخرى وارتفاع درجة حرارة الضوء. من المهم اتباع بروتوكولات السلامة قبل التشريح ، مثل ارتداء القفازات والنظارات الواقية ومعطف المختبر لمنع التعرض لسوائل الجسم والمواد الكيميائية.

1. محاصرة الحشرات المهاجرة

  1. ابدأ هذا البروتوكول عن طريق محاصرة الحشرات باستخدام مصباح الكشاف. في هذا البروتوكول ، مصدر حشرات الاختبار هو منطقة جييانغ ، مدينة جينان ، مقاطعة شاندونغ ، الصين (36.977088 درجة شمالا ، 116.982747 درجة شرقا).
  2. استخدم الجسم الرئيسي لمصباح الكشاف ، المصنوع من الفولاذ غير الصدأ ، والصندوق ، وهو جسم مستطيل ، ومصباح الهالوجين الأمامي من نوع GT75 ، بقوة 1000 واط. ضع المصباح الأمامي في المنتصف كمصدر للضوء.
  3. ضع قناة لجمع الحشرات على شكل قمع داخل وأسفل الضوء ، ضع صندوقا لجمع الحشرات بقطر 5 سم ، متبوعا بكيس شبكي لجمع الحشرات مكون من 60 طلبا (0.5 م × 0.5 م) ، والذي يستخدم لجمع الحشرات المحاصرة بالضوء. يبلغ الإسقاط المعروف للضوء حوالي 500 متر فوق سطح الأرض.
  4. ويركز هذا البروتوكول على ديناميات هجرة الإناث من النوع البري وتطور المبيض؛ لذلك ، جمع أنواع مختلفة من الحشرات (هنا تم جمع من أبريل إلى أغسطس ، خلال 2021 إلى 2022). تجنب جمع الحشرات الصغيرة الحجم والمصابة ، حدد الآفات الكبيرة ذات الحجم المماثل لهذه التجربة.

2. تحضير الحشرات

  1. نقل جميع الحشرات التي تم جمعها من كيس شبكي (0.5 م) إلى القفص الصافي (30 سم × 30 سم) ، ثم توفير طبق بتري يحتوي على محلول معقم من 10 ٪ من ماء العسل (التغذية اختيارية). ضع القفص في درجة حرارة 27 ± 2 درجة مئوية ، 65٪ ± رطوبة نسبية 12٪ ، واحتفظ به في الظلام لمدة 8-12 ساعة.
  2. حدد الإناث من النوع البري التي طارت داخل القفص في نفس اليوم ، وقم بنقلها بعناية إلى أنابيب القارورة الفردية ، وأغلق كل أنبوب بغطاء قطني. تجنب المناولة المباشرة التي قد تلحق الضرر أو تجرح الآفة بسبب الضغط المفرط.
    ملاحظة: تم القبض على جميع الإناث من النوع البري في الليل وتم إجراء التشريح في النهار. وهكذا ، تم إجراء كل تجربة في غضون يوم واحد.

3. التحضير لطريقة شلل الحشرات (الشكل 1)

  1. ضع الآفة الأنثوية المختارة بشكل فردي في أنبوب قارورة ذبابة في المنتصف وقم بتخدير الأنثى باستخدام غاز CO2 عن طريق الإمساك بإبرة مسدس النفخ لإحداث شلل خفيف. لتأكيد ما إذا كانت الآفة مشلولة أم لا ، قم بدفع الآفة أو لمسها برفق باستخدام فرشاة ناعمة. لا توجد استجابة للمنبهات اللينة وعدم الحركة تشير إلى شلل ناجح.
    ملاحظة: يمكن أيضا استخدام درجة الحرارة المنخفضة (-20 درجة مئوية) كتقنية بديلة لشل الحشرات.

4. تشريح الحشرات

  1. ضع الأنثى المشلولة حديثا في طبق بتري التشريحي الذي يحتوي على الإيثانول المطلق (10 مل). لتجنب تأثير الشعر القشري ومسحوق الأجنحة أثناء التشريح ، تسلل إلى الحشرة الحية أو المشلولة بالكحول المطلق وشطفه بالماء النظيف.
  2. افصل الأجنحة الظهرية عن تقاطع جسم الصدر والبطن ، باستخدام زوجين من الملقط.
  3. انقل البطن إلى طبق بتري جديد يمكن التخلص منه ، يحتوي على كمية مناسبة من الماء (بعمق 2-5 مم) ، وقشر الهيكل الخارجي البطني برفق على طول الخط البطني الظهري من الفم المدبب إلى الذيل ، باستخدام ملقط تشريح. كرر نفس الخطوات على الجانب الآخر ، ثم ضعها في ماء نظيف لتفريق الأنسجة السليمة.
  4. تقشر بعناية الأنسجة الدهنية للبشرة باستخدام ملقط ، واسحب المبايض برفق وحررها.
  5. استخدم ملقط تشريح لإزالة جزيئات الدهون والأعضاء الأخرى حول المبايض برفق. بشكل عام ، يتم طي مبيض الآفات في الغالب إلى الداخل على جانبي البطن ، وحاول العمل في بيئة سائلة أثناء فتح المبايض ، وقشر كيس التزاوج ببطء من المنتصف ، والتقاط جزيئات الدهون المرتبطة بأنابيب المبيض.
  6. تمسك برفق بكيس المبيض والتزاوج من الطرف الخلفي العمودي وافتحه بعناية لأسفل. لتجنب التلف أثناء التكشف ، انقل المبيض إلى طبق بتري جديد أو نظيف يحتوي على الماء. امسك طرف المبيض وافتح المبيض داخليا ؛ نفذ هذه الخطوة بعناية لتجنب تلف المبيضات.

5. تحليل البيانات لتشريح أنسجة المبيض

  1. في هذه الخطوة ، قم بتقييم نمو البيض لكل حشرة ، باتباع لون وحجم البيض ، للحكم على نضجها. ثم ، الحكم على درجة المبيض وفقا لتطور البيض.
    ملاحظة: ينقسم تقسيم مستويات نمو المبيض المختلفة بشكل أساسي ، إما قبل وضع البيض أو نمو البيض مع مستوى ترسيب صفار البيض. تنقسم الحشرات تطور حبوب البيض إلى مراحل لمزيد من الوضوح مثل مرحلة حدوث صفار البيض ومرحلة نضج الصفار ومرحلة زوال الصفار. يعتمد نضج حبة البيض على امتلاء البويضة ولونها وحجمها للحكم على نضجها.
  2. بعد التشريح ، تأكد من فصل أنسجة أكياس التزاوج الأنثوية عن المبايض السليمة ، ومراقبة التشكل لتمييز الأنواع لأن معظم تشريح أكياس التزاوج يختلف من نوع إلى آخر. لذلك ، استخدم أكياس التزاوج للتمييز بين الأنواع.
  3. في هذه الخطوة ، قم بتقييم تشريح المبيض ، وتحليل درجات تطور المبيض. قسم أنسجة المبيض إلى خمس درجات (الصف 1 إلى الصف 5).
    1. ابحث عن التغييرات والبنية التالية لتنظيم الأنسجة: الصف الأول (1) هو مرحلة مبكرة من التطور (شفاف حليبي) ، بطن كامل ، ناعم ، جسم دهني رقيق ، لون فاتح ، يصعب تقشيره. الصف الثاني (2) هو مرحلة ترسب صفار البيض وتصنيف المبيضين بشكل منفصل إذا لزم الأمر بعد مراقبة قناة المبيض الأطول والأكثر سمكا. الصف الثالث (3) لديه عدد أقل من الأجسام الدهنية وعدد قليل من الحبيبات المرتبطة بالمبيض. يبدو الصف الرابع (4) أقل مرونة وسهل الكسر ، ويمكن أن توجد بعض البويضات في منتصف أنبوب الرحم. من السهل التعرف على الصف الخامس (5) مع أجسام دهنية أقل أو معدومة ، ومبايض ضامرة وهشة.
  4. التقاط الصور باستخدام كاميرا رقمية حسب الحاجة التجريبية.

النتائج

تطور البيض
تم تطبيق البروتوكول أعلاه لتحليل تطور البيض في المبيض. لهذا الغرض ، أولا ، تم تصنيف البيض بشكل عام إلى أربع مراحل للتمييز بين المرحلة المبكرة والناضجة من تطور البيض بين جميع الأنواع ، على سبيل المثال ، دودة اللوز ، دودة الحشد ، كاتربيلر القلقاس ، وعثة البنجر. هنا ، لوح?...

Discussion

تستخدم طرق تحليل المبيض بشكل روتيني في وقاية النبات ، لتوضيح حركة طيران الحشرات وأعدادها للتنبؤب 19،20،21 ولتوضيح الاختلافات الفسيولوجية في الحشرات. وقد لوحظ أن الهجرة الفريدة وقدرة الانتشار السريع للآفات الزراعية الشائعة ، مثل دودة اللو?...

Disclosures

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإعلان عنه.

Acknowledgements

تم دعم هذه الدراسة من قبل مشروع الابتكار العلمي والتكنولوجي الرئيسي (2020CXGC010802).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Digital cameraCanon ( China ) co., LTDEOS 800D
DropperQingdao jindian biochemical equipment co., LTD
Ethanol absolute (99.7%)Shanghai Hushi Laboratory Equipmentco., LTD
Forceps Vetus Tools co., LTDST-14
GT75 type halogen headlamp (1000 W)Shanghai Yadeng Industry co., LTD
Helicoverpa armigera, Mythimna separate, Spodoptera litura, Spodoptera exiguaJiyang district, Jinan city, Shandong province, China
Measuring cylinder, beaker, flaskQingdao jindian biochemical equipment co., LTD
Net bag Qingdao jindian biochemical equipment co., LTD0.5 m 
Net cages Qingdao jindian biochemical equipment co., LTD30 cm x 30 cm
Petri dishesQingdao jindian biochemical equipment co., LTD 60 mm diameter

References

  1. Wu, K. Monitoring and management strategy for Helicoverpa armigera resistance to Bt cotton in China. Journal of Invertebrate Pathology. 95 (3), 220-223 (2007).
  2. Jiang, X., Luo, L., Zhang, L., Sappington, T. W., Hu, Y. Regulation of Migration in Mythimna separata (Walker) in China: A Review Integrating Environmental, Physiological, Hormonal, Genetic, and Molecular Factors. Environmental Entomology. 40 (3), 516-533 (2011).
  3. Su, J., Lai, T., Li, J. Susceptibility of field populations of Spodoptera litura (Fabricius) (Lepidoptera: Noctuidae) in China to chlorantraniliprole and the activities of detoxification enzymes. Crop Protection. 42, 217-222 (2012).
  4. Che, W., Shi, T. Insecticide Resistance Status of Field Populations of Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae) From China. Journal of Economic Entomology. 106 (4), 1855-1862 (2013).
  5. Jiang, X., Luo, L. Regulation of Migration in Mythimna separata (Walker) in China: A Review Integrating Environmental, Physiological, Hormonal, Genetic, and Molecular Factors. Environmental Entomology. 40 (3), 516-533 (2011).
  6. Kiss, M., Nowinszky, L., Puskás, J. Examination of female proportion of light trapped turnip moth (Scotia segetum Schiff.). Acta Phytopathologica Et Entomologica Hungarica. 37, 251-256 (2002).
  7. Jiang, X. F., Luo, L. Z., Sappington, T. W. Relationship of flight and reproduction in beet armyworm, Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae), a migrant lacking the oogenesis-flight syndrome. Journal of insect physiology. 56 (11), 1631-1637 (2010).
  8. Sun, Y., Chen, R., Wang, S., Bao, X. Morphological observation on the development of female reproductive system in meadow moth Loxostege sticticalis L. Acta Entomologica Sinica. 34, 248-249 (1991).
  9. Fu, X., Feng, H., Liu, Z., Wu, K. Trans-regional migration of the beet armyworm, Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae), in North-East Asia. PLoS One. 12 (8), e0183582 (2017).
  10. Cusson, M., McNeil, J. N., Tobe, S. S. In vitro biosynthesis of juvenile hormone by corpora allata of Pseudaletia unipuncta virgin females as a function of age, environmental conditions, calling behaviour and ovarian development. Journal of Insect Physiology. 36 (2), 139-146 (1990).
  11. Fu, X. W., et al. Seasonal migration of Cnaphalocrocis medinalis (Lepidoptera: Crambidae) over the Bohai Sea in northern China. Bulletin of entomological research. 104 (5), 601-609 (2014).
  12. Telfer, W. H. Egg formation in Lepidoptera. Journal of Insect Science. 9, 1-21 (2009).
  13. Wu, K., Guo, Y., Wu, Y. Ovarian development of adult females of cotton bollworm and its relation to migratory behavior around Bohai bay of China. Acta Ecologica Sinica. 22 (7), 1075-1078 (2002).
  14. Wada, T., Ogawa, Y., Nakasuga, T. Geographical difference in mated status and autumn migration in the rice leaf roller moth, Cnaphalocrocis medinalis. Entomologia Experimentalis et Applicata. 46 (2), 141-148 (1988).
  15. Xingquan, K., Calvin, D. D. Female European corn borer (Lepidoptera: Crambidae) ovarian developmental stages: Their association with oviposition and use in a classification system. Journal of economic entomology. 97 (3), 828-835 (2004).
  16. Ge, S., et al. Potential trade-offs between reproduction and migratory flight in Spodoptera frugiperda. Journal of insect physiology. 132, 104248 (2021).
  17. Han, L. Z., Gu, H. N. Reproduction-Flight Relationship in the Beet Armyworm, Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae). Environmental Entomology. 37 (2), 374-381 (2008).
  18. Zhou, Y., et al. Long-term insect censuses capture progressive loss of ecosystem functioning in East Asia. Science Advances. 9 (5), eade9341 (2023).
  19. Hu, G., Lim, K. S., Horvitz, N. Mass seasonal bioflows of high-flying insect migrants. Science. 354 (6319), 1584-1587 (2016).
  20. Hu, G., et al. Environmental drivers of annual population fluctuations in a trans-Saharan insect migrant. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (26), e2102762118 (2021).
  21. Fu, X., Liu, Y., Li, C. Seasonal migration of Apolygus lucorum (Hemiptera: Miridae) over the Bohai Sea in northern China. Journal of Economic Entomology. 107 (4), 1399-1410 (2014).
  22. Fu, X., Liu, Y., Li, Y., Ali, A., Wu, K. Does Athetis lepigone Moth (Lepidoptera: Noctuidae) Take a Long-Distance Migration. Journal of Economic Entomology. 107 (3), 995-1002 (2014).
  23. Huang, J., et al. The Effect of Larval Diet on the Flight Capability of the Adult Moth (Athetis lepigone) (Möschler) (Lepidoptera: Noctuidae). Florida Entomologist. 105 (4), 287-294 (2023).
  24. Sun, X., Hu, C., Jia, H. Case study on the first immigration of fall armyworm, Spodoptera frugiperda invading into China. Journal of Integrative Agriculture. 20 (3), 664-672 (2021).
  25. Feng, H. Q., Wu, K. M., Cheng, D. F., Guo, Y. Y. Northward migration of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) and other moths in early summer observed with radar in northern China. Journal of Economic Entomology. 97 (6), 1874-1883 (2004).
  26. Ge, S. S., et al. Flight activity promotes reproductive processes in the fall armyworm, Spodoptera frugiperda. Journal of Integrative Agriculture. 20 (3), 727-735 (2021).
  27. Guerra, P. A., Pollack, G. S. Flight behaviour attenuates the trade-off between flight capability and reproduction in a wing polymorphic cricket. Biology Letters. 5 (2), 229-231 (2009).
  28. He, W., Zhao, X., Ge, S., Wu, K. Food attractants for field population monitoring of Spodoptera exigua (Hübner). Crop Protection. 145, 105616 (2021).
  29. He, L. M., et al. Adult nutrition affects reproduction and flight performance of the invasive fall armyworm, Spodoptera frugiperda in China. Journal of Integrative Agriculture. 20 (3), 715-726 (2021).
  30. Kongming, W., Yuyuan, G., Yan, W. Ovarian development of adult females of cotton bollworm and its relation to migratory behavior around Bohai Bay of China. Acta Ecologica Sinica. 22 (7), 1075-1078 (2002).
  31. Feng, H., Wu, X. Seasonal Migration of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) Over the Bohai Sea. Journal of Economic Entomology. 102 (1), 95-104 (2009).
  32. Miao, J., Guo, P., Li, H. Low Barometric Pressure Enhances Tethered-Flight Performance and Reproductive of the Oriental Armyworm, Mythimna separata (Lepidoptera: Noctuidae). Journal of Economic Entomology. 114 (2), 620-626 (2021).
  33. Fu, X., Zhao, X. Seasonal Pattern of Spodoptera litura (Lepidoptera: Noctuidae) Migration Across the Bohai Strait in Northern China. Journal of Economic Entomology. 108 (2), 525-538 (2015).
  34. Rhainds, M., Kettela, E. G. Oviposition threshold for flight in an inter-reproductive migrant moth. Journal of Insect Behavior. 26 (6), 850-859 (2013).
  35. Showers, W. B. Migratory ecology of the black cutworm. Annual review of entomology. 42, 393-425 (1997).
  36. Zhang, Z., et al. Morphological differences of the reproductive system could be used to predict the optimum Grapholita molesta (Busck) control period. Scientific Reports. 7 (1), 8198 (2017).
  37. Zheng, D. B., Hu, G., Yang, Ovarian development status and population characteristics of Sogatella furcifera (Horváth) and Nilaparvata lugens (Stål): implications for pest forecasting. Journal of Applied Entomology. 138 (1-2), 67-77 (2014).
  38. Wan, G. J., Jiang, S. L. Geomagnetic field absence reduces adult body weight of a migratory insect by disrupting feeding behavior and appetite regulation. Insect Science. 28 (1), 251-260 (2021).
  39. Laštůvka, Z. Climate change and its possible influence on the occurrence and importance of insect pests. Plant protection science. 45, S53-S62 (2009).
  40. Xu, R. B., Ge, S. S. Physiological and Environmental Influences on Wingbeat Frequency of Oriental Armyworm, Mythimna separata (Lepidoptera: Noctuidae). Environmental Entomology. 52 (1), 1-8 (2022).
  41. Jiang, X., Cai, B. Influences of temperature and humidity synthesize on flight capacity in the moth s of Oriental armyworm, Mythimna separata(Walker). Acta Ecologica Sinica. 23 (4), 738-743 (2003).
  42. Zhang, L., Luo, L., Jiang, X. Starvation influences allatotropin gene expression and juvenile hormone titer in the female adult oriental armyworm, Mythimna separata. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 68 (2), 63-70 (2008).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

Helicoverpa Armigera Mythimna Separata Spodoptera Litura Spodoptera exigua Agrotis ipsilon Spaelotis Valida Athetis Lepigone Mamestra Brassicae

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved