Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

هنا ، تم تفصيل بروتوكولين لتقييم مصدر الغذاء وتفضيلات وضع البيض في يرقات وإناث الذباب. وتشمل هذه أربعة خيارات مع عاملين متفاعلين: نوع الركيزة ودرجة الحرارة. تمكن المقايسات من تحديد تفضيل مصدر الغذاء لليرقات وتفضيل موقع وضع البيض للإناث.

Abstract

يقدم الذباب المنتفخ (Diptera: Calliphoridae) مجموعة واسعة من أنماط حياة اليرقات ، والتي تصنف عادة على أنها تطفل ملزم ، وتطفل اختياري ، و sapro-necrophagy كاملة. تعتبر العديد من الأنواع الطفيلية ، الملزمة والاختيارية ، ذات أهمية صحية واقتصادية ، حيث يمكن أن تسبب يرقاتها الانقباضات (غزو اليرقات في الأنسجة الحية). ومع ذلك ، من الجدير بالذكر أن الأنثى البالغة تلعب دورا حاسما لأنها تختار موقع وضع البيض ، وبالتالي ، تحدد إلى حد كبير عادة التغذية والظروف التنموية لليرقات. في هذه الدراسة ، تم اقتراح بروتوكولين لاختبار تفضيل تغذية اليرقات وتفضيل موقع وضع البيض الأنثوي مع مراعاة عاملين متفاعلين: نوع ركيزة اللحم ودرجة الحرارة. سمحت الإعدادات المعروضة هنا باختبار يرقات Lucilia cuprina والإناث الجاذبة في اختبار من أربعة خيارات مع درجتي حرارة (33 ± 2 درجة مئوية و 25 ± 2 درجة مئوية) ونوعين من ركائز اللحوم (اللحوم الطازجة المكملة بالدم واللحوم الفاسدة البالغة من العمر 5 أيام). يمكن لليرقات أو الإناث الجاذبة أن تختار الحفر أو وضع بيضها ، على التوالي ، في أي مما يلي: اللحوم الفاسدة عند 25 درجة مئوية (محاكاة حالة الأنواع الميتة) ، واللحوم الطازجة المكملة بالدم عند 33 درجة مئوية (محاكاة حالة الأنواع الطفيلية) ، واثنين من الضوابط ، اللحوم الفاسدة عند 33 درجة مئوية ، أو اللحوم الطازجة المكملة بالدم عند 25 درجة مئوية. يتم تقييم التفضيل عن طريق حساب عدد اليرقات أو البيض الموضوعة في كل خيار لكل نسخة مكررة. سمحت مقارنة النتائج المرصودة بالتوزيع العشوائي بتقدير الدلالة الإحصائية للتفضيل. أشارت النتائج إلى أن يرقات L. cuprina لها تفضيل قوي للركيزة الفاسدة عند 25 درجة مئوية. على العكس من ذلك ، كان تفضيل موقع وضع البيض من قبل الإناث أكثر تنوعا بالنسبة لنوع اللحوم. يمكن تكييف هذه المنهجية لاختبار تفضيل أنواع الحشرات الأخرى ذات الحجم المماثل. يمكن أيضا استكشاف أسئلة أخرى باستخدام شروط بديلة.

Introduction

الذباب ، وخاصة المسكوكات كاليبرات (بما في ذلك الذباب ، الذباب المنزلي ، ذباب الروبوت وذباب اللحم وغيرها) ، يظهر مجموعة واسعة من أنماط الحياة ، بما في ذلك السلوكيات الطفيلية والميتة1. عادة ما تسبب الأنواع الطفيلية الانقباضات ، وهي غزو الأنسجة الحية بواسطة اليرقات (اليرقات)2. في عائلة Calliphoridae ، تعتبر كل من الأنواع الطفيلية الإلزامية والاختيارية آفات حيوانية رئيسية مسؤولة عن الخسائر الاقتصادية وسوء رعاية الحيوانات بسبب تفشي اليرقات2،3،4،5،6،7. الطفيليات الملزمة ، مثل الديدان الحلزونية في العالم الجديد والعالم القديم (Cochliomyia hominivorax و Chrysomyia bezziana ، على التوالي) ، هي إشكالية خاصة4،7،8،9،10 جنبا إلى جنب مع الطفيليات الاختيارية ، مثل ذباب الأغنام (Lucilia cuprina و Lucilia sericata)2،5،6 ، 7. تتطور الأنواع غير الطفيلية ، بما في ذلك الأنواع sapro-necrophagous ، في المواد العضوية المتحللة والميتة وتوجد عادة في البيئات غير الصحية. يمكن استخدام نمط حياتهم غير الطفيلي بشكل صارم بنجاح لعلاج اليرقات ، والذي يستخدم يرقات الذباب لتنظيف جروح الأنسجة الميتة11،12،13. تستخدم الذباب أيضا في علم الطب الشرعي ، لأنها من بين الكائنات الحية الأولى التي تحدد موقع الجثث المتوفاة حديثا واستعمارها ، حيث تعمل اليرقات النامية كوسيلة لتقدير وقت الوفاة14.

كانت أنماط حياة الذبابة موضوع دراسات بحثية مختلفة (على سبيل المثال ، 15،16،17،18،19،20،21) نظرا لأهميتها فيما يتعلق بالمصالح البشرية. يمكن أن يوفر فهم الآليات البيولوجية التي تحكم نمط حياة الأنواع رؤى قيمة حول تحسين الأساليب التي تهدف إلى مكافحة أنواع الآفات. علاوة على ذلك ، يوفر تنوع وتطور أنماط حياة الذبابة سياقا مثاليا لدراسة أصول وآليات السمات المعقدة (مثل التطفل). تطور التطفل بسبب تغذية الديدان على الأنسجة الحية بشكل مستقل عدة مرات داخل عائلة Calliphoridae22,23. ومع ذلك ، لا يزال التاريخ التطوري لعادات تغذية الذباب غير معروف إلى حد كبير ، حيث تقتصر الدراسات على رسم خرائط للعادات على طول السلالات (على سبيل المثال ، 16،19،22) دون مساعدة المقايسات الوظيفية. على سبيل المثال ، من غير المؤكد ما إذا كانت الطفيليات الملزمة قد تطورت من عامة الناس (أي الطفيليات الاختيارية) أو مباشرة من الأنواع الميتة. كما أن العمليات الجزيئية والفسيولوجية والسلوكية المصاحبة للتحولات التطورية في نمط الحياة غير معروفة إلى حد كبير.

في هذا السياق ، توفر الطفيليات الاختيارية ، مثل ذبابة الأغنام Lucilia cuprina ، التي يمكن أن تتطور كطفيليات على مضيف أو كجثث على الجثث إمكانية استكشاف العوامل والآليات التي تتحكم في خيارات نمط الحياة. Lucilia cuprina هو نوع عالمي معروف بالتسبب في ذبابة الأغنام ، خاصة في أستراليا حيث يعتبر آفة 3,16. يمكن أن يحدث الانقباض الناتج عن L. cuprina أيضا في الماشية الأخرى والحيوانات الأليفة والبشر3،24،25،26،27،28،29،30. ومع ذلك ، يمكن أن تتطور يرقاتها أيضا في الأنسجة الميتة والمواد المتحللة وقد تم استخدام هذا النوع بنجاح في علم الحشرات الشرعي لأنه سريع جدا لتحديد موقع الجثث واستعمارها31،32،33،34. على الرغم من أن نمط الحياة الطفيلية مقابل غير الطفيلية للذباب يتم تحديده من خلال مرحلة اليرقات ، إلا أن الأنثى البالغة هي التي تختار موقع وضع البيض. وبالتالي ، فإن الأنثى البالغة تؤثر بشدة على نمط حياة اليرقات ، حيث أن هذه الأخيرة لديها حركة محدودة. ومع ذلك ، فإن اختيار الأنثى لا يعني بالضرورة أن اليرقات تفضل نفس الركيزة عند تقديمها مع الخيار35. إحدى الفرضيات هي أن التغييرات السلوكية التي تؤدي إلى وضع الإناث بيضها على الأنسجة الحية يمكن أن تكون جزءا من التحول المبكر نحو نمط حياة طفيلي. كانت التكيفات المسبقة أو القدرات الفسيولوجية لليرقات الناتجة ضرورية لتطورها الناجح على الأنسجة الحية ، مما أدى إلى ظهور نمط الحياة الطفيلية. على هذا النحو ، قد لا تتوافق العمليات المتأثرة والمختارة بالضرورة بين مرحلتي الحياة.

في هذا السياق ، تم تطوير طريقتين لاختبار التفضيل السلوكي في الذباب ، على وجه الخصوص ، ل L. cuprina ، فيما يتعلق بركيزة تغذية اليرقات (مقايسة تفضيل اليرقات) وموقع وضع البيض (مقايسة تفضيل الإناث). تأخذ هذه الطرق في الاعتبار عاملين متفاعلين: درجة الحرارة ونضارة اللحوم. تم اختيار درجة الحرارة كعامل حاسم لأن معظم حالات الانقباضات تحدث في الحيوانات المثليةالحرارة 2. ومن ثم ، تم اختيار درجة حرارة 33 درجة مئوية كبديل ل "عامل نمط الحياة الطفيلية" ، في حين أن درجة حرارة 25 درجة مئوية (درجة حرارة الغرفة) تمثل "العامل غير الطفيلي". تم اختيار درجة حرارة 25 درجة مئوية لأنها تمثل متوسط درجة الحرارة السنوية المسجلة في البرازيل (المعهد الوطني للأرصاد الجوية ، INMET). بالإضافة إلى ذلك ، تم النظر في نوعين من ركائز اللحوم ، كلاهما من مصادر بقري: (i) اللحوم الطازجة المكملة بالدم ، والتي تحاكي الركيزة لنمط الحياة الطفيلية ، والتي تستخدم لتربية الذبابة الطفيلية Co. hominivorax في ظروف المختبر36 ، و (ii) اللحوم الفاسدة البالغة من العمر 5 أيام ، والتي تحاكي الركيزة لنمط الحياة الميتة. تستخدم الركيزة البقرية بشكل شائع لتربية L. cuprina في ظروف المختبر27،37،38،39 لأنها توفر العديد من المزايا من حيث التوافر والفعالية من حيث التكلفة والتطبيق العملي مع كونها ركيزة مبررة بيئيا. استخدمت دراسات أخرى40,41 تقارن تأثير الركائز الفاسدة مقابل الركائز الطازجة في الذباب ركيزة فاسدة عمرها 7 أيام (في الظروف اللاهوائية) وأظهرت تأثيرا سلبيا للركيزة الفاسدة على معدلات النمو والبقاء والنمو. نظرا لأنه من المعروف أن L. cuprina تستعمر الجثث الطازجة التي تتعرض عادة للهواء ، فقد قررنا استخدام اللحوم الفاسدة البالغة من العمر 5 أيام (اللحم المفروم) في أواني غير محكمة الغلق (التحلل الهوائي واللاهوائي) لتقليد الركيزة الميتة.

توفر التصاميم التجريبية المعروضة هنا ميزة تمييز التفضيلات للعوامل الفردية بالإضافة إلى آثارها المشتركة. علاوة على ذلك ، فإن الأنماط الظاهرية المسجلة ، وهي اختيار ركيزة تغذية اليرقات وعدد البيض الموضوعة ، لها صلة مباشرة بالجوانب البيولوجية والبيئية لأنواع الذبابة. يتم تسليط الضوء على مدى ملاءمة هذه البروتوكولات من خلال إظهار فعاليتها في L. cuprina. بالإضافة إلى ذلك ، يتم توفير برنامج نصي للتحليل الإحصائي ، والذي يمكن استخدامه لمقارنة النتائج المرصودة التي تم الحصول عليها في L. cuprina بمحاكاة البيانات العشوائية ، مما يضمن تحليلا وتفسيرات إحصائية قوية.

Protocol

تم الحصول على عينات الذباب باستخدام الفخاخ وليس على الحيوانات المصابة. تم إصدار ترخيص SISBIO (67867-1) لجمع وحفظ ذباب عائلة Calliphoridae في الأسر في ظروف المختبر. عينات الحشرات معفاة من التقييم الأخلاقي في البحث في البرازيل. تم الحصول على لحوم الأبقار ودمها تجاريا ، ولم تكن هناك حاجة إلى تصريح أخلاقي.

1. تفضيل تغذية اليرقات

  1. تحضير أطباق بتري التي تحتوي على 2٪ أجار
    1. تحضير أربعة أطباق بتري مع 2 ٪ أجار. للقيام بذلك ، أضف 6 غرام من أجار البكتريولوجي إلى 300 مل من الماء وقم بإذابة هذا المزيج في الميكروويف. بعد ذلك ، قسم الحجم بالتساوي إلى أربعة أطباق زجاجية بتري (150 × 20 مم) ، باستخدام حوالي 70 مل في كل طبق.
      ملاحظة: قم بإعداد أطباق بتري مساوية لعدد النسخ التجريبية المطلوبة. في هذه الدراسة ، تم استخدام 36 مكررا.
    2. بمجرد أن يتجمد الآجار ، استخدم أنبوبا مخروطيا سعة 50 مل (قطره 3 سم) لكمة أربعة ثقوب في الأجار ، اثنان على كل جانب من طبق بتري ، باتباع نمط القطع المقدم (الشكل 1).
      ملاحظة: يشبه هذا الإعداد البروتوكولات الموصوفة سابقا بواسطة Fouche et al. (2021) 40 و Boulay et al. (2016) 42.
  2. تحضير ركائز
    1. لتحضير اللحم الطازج بالدم ، أضف 12 مل من دم البقر المخفف إلى 200 غرام من اللحم المفروم الطازج. تخلط جيدا. تأكد من استخدام أسطوانات وملاعق متدرجة مختلفة لكل نوع من أنواع اللحوم لتجنب التلوث المتبادل بين الركائز.
      ملاحظة: يتكون الدم المخفف من 50٪ دم نقي ممزوج بمضاد للتخثر (3.8٪ سترات الصوديوم) و 50٪ ماء مصفى.
    2. لتحضير الركيزة الفاسدة ، أضف 12 مل من الماء المصفى إلى 200 غرام من اللحم المفروم الفاسد البالغ من العمر 5 أيام واخلطه جيدا.
      ملاحظة: تم الحصول على اللحوم الفاسدة عن طريق احتضان اللحم المفروم الطازج لمدة خمسة أيام عند 25 درجة مئوية في أواني بلاستيكية غير محكمة الغلق (مزيج من التحلل الهوائي وغير الهوائي). يحتوي كل وعاء على 200 غرام من اللحم المفروم الطازج. ثم تم تجميده حتى الاستخدام.
    3. املأ فتحتين في كل طبق بتري بمزيج اللحم الطازج والدم والفتحتين المتبقيتين بمزيج اللحم الفاسد والماء.
      ملاحظة: لتجنب تحيزات الموقف ، قم بتغيير موضع أنواع اللحوم المختلفة في أطباق بتري. على سبيل المثال ، يجب أن تحتوي بعض أطباق بتري على نفس النوع من اللحوم التي تواجه بعضها البعض ، بينما في الأطباق الأخرى ، يجب عبور نوع اللحم ، كما هو موضح في الشكل 2.
  3. الإعداد التجريبي
    1. عند درجة حرارة الغرفة (RT) 25 درجة مئوية ، ضع وسادة التدفئة أسفل مصدر الضوء مباشرة لإضاءة المنطقة التجريبية بالتساوي وتجنب أي تحيز سلوكي تجاه الضوء أو ضده. ضع وسادات من الورق المقوى حول وسادة التدفئة لضمان بقاء الإعداد التجريبي مستويا.
      ملاحظة: كان مصدر الضوء المستخدم عبارة عن ضوء أبيض منخفض التسخين ينبعث منه ، مثل أنبوب نيون. تم وضع وسادة التدفئة على طاولة أسفل مصابيح السقف مباشرة (الشكل 3).
    2. قم بتغطية وسادة التدفئة ووسادات الورق المقوى المستوية بالكرتون الأسود وقم بتشغيل وسادة التدفئة.
      ملاحظة: يجب استخدام غطاء الورق المقوى الأسود لتجنب الإشارات المرئية التي قد تؤدي إلى تحيز فحص السلوك.
    3. ضع ستة أطباق بتري مع الآجار وركيزة اللحم فوق الورق المقوى الأسود مع ركيزتين ، واحدة من كل نوع ، على وسادة التدفئة والاثنان الآخران على سطح وسادة التدفئة (الشكل 2). دع الركائز تسخن لمدة 10 دقائق تقريبا.
      ملاحظة: قد يتشكل التكثيف على غطاء أطباق بتري.
  4. اختبار اليرقات
    1. تحقق من درجة حرارة الركائز (الجانب البارد: 25 ± 2 درجة مئوية ؛ الجانب الساخن: 33 ± 2 درجة مئوية) باستخدام مقياس حرارة الأشعة تحت الحمراء.
      ملاحظة: تبقى وسادة التدفئة مضاءة طوال مدة التجربة. تم إجراء قياسات درجة الحرارة في بداية التجربة ونهايتها. على الرغم من أن درجة الحرارة تقلبت بمقدار ± 2 درجة مئوية ، إلا أنه لا يزال هناك فرق في درجة الحرارة يبلغ 8 درجات مئوية على الأقل بين الظروف الحارة والباردة.
    2. بعد الوصول إلى درجة الحرارة المطلوبة ، ضع خمس يرقات ثالثة في وسط كل طبق بتري باستخدام ملاقط (الشكل 2) وقم بتغطية أطباق بتري بأغطية. دع تجربة الاختيار تستمر لمدة 10 دقائق.
      ملاحظة: قد تزحف بعض اليرقات حول الحواف وعلى غطاء أطباق بتري. إذا هربت أي يرقة ، استخدم ملقاطا لإعادتها إلى وسط طبق بتري.
    3. بعد 10 دقائق ، أخرج جميع أطباق بتري من وسادة التدفئة وضعها على سطح مختلف لتجنب الاستمرار في تسخين الركائز. ثم ، احسب عدد اليرقات في كل ركيزة ، وكذلك تلك التي لم تختر أي ركيزة.
      ملاحظة: تبقى يرقات Lucilia cuprina في الركيزة التي اختارتها ، كما لوحظ في هذه التجربة.

2. تفضيل موقع وضع البيض الإناث

  1. الإعداد التجريبي
    1. استخدم رفا عاديا مغطى مسبقا بورق مقوى أسود ومضاء بالتساوي بشرائط إضاءة LED بيضاء.
      ملاحظة: يجب استخدام أغطية الورق المقوى الأسود لتجنب الإشارات المرئية التي قد تؤدي إلى تحيز فحص السلوك. يتم تثبيت شرائط LED البيضاء بالطول في منتصف الرف فوق التجربة مباشرة. تم وضع الأرفف المستخدمة في الإعداد على بعد 45 سم.
    2. عند RT (25 درجة مئوية) ، ضع وسادة تدفئة في وسط الرف. استخدم وسادات من الورق المقوى حول وسادة التدفئة كدعم لضمان تسوية الإعداد التجريبي.
    3. قم بتغطية وسادة التدفئة ووسادات الورق المقوى المستوية بورق مقوى أسود للحفاظ على نفس النمط المرئي أسفل جميع الركائز.
    4. ضع حاويتين من الزجاج المتقاطع على رف واحد ، يجب أن يكون لكل منهما ذراعان فوق الورق المقوى الأسود ووسادة التدفئة. قم بتشغيل شرائط الإضاءة LED البيضاء ومنصات التدفئة قبل بدء التجربة.
    5. استخدم 70٪ إيثانول لتنظيف الصلبان (داخل الصليب والغطاء) لتجنب تلوث الرائحة.
  2. تحضير ركائز
    1. قم بإعداد أربعة أطباق بتري (60 مم × 15 مم) لكل صليب مع 5 غرام من اللحوم الفاسدة أو الطازجة البالغة من العمر 5 أيام (اثنان من كل نوع من الركيزة).
      ملاحظة: تحضير أطباق بتري يساوي عدد التكرارات التجريبية المطلوبة مضروبة في أربعة. في هذه الدراسة ، تم استخدام 30 نسخة مكررة ، بإجمالي 120 طبقا بتري معدا.
    2. أضف 1 مل من دم البقر المخفف (50٪ دم نقي مع مضادات التخثر و 50٪ ماء مصفى) على اللحم الطازج و 1 مل من الماء المصفى على اللحم الفاسد. اخلطي اللحم جيدا (طازجا أو فاسدا) مع السائل (الدم أو الماء) باستخدام ملعقة مختلفة لكل نوع من اللحوم.
      ملاحظة: إن تحضير اللحم لفحص الإناث يشبه إلى حد كبير فحص اليرقات ، على الرغم من اختلاف الكميات لأن اختبار الإناث سيستمر لفترة أطول من اختبار اليرقات. تذكر أن تستخدم أطراف وملاعق ماصة مختلفة لكل نوع من أنواع اللحوم لتجنب أي تلوث للرائحة بين الركائز.
    3. تحقق مما إذا كان الكحول قد تبخر تماما من الصلبان. بعد ذلك ، ضع أربعة أطباق بتري (واحد من كل نوع من اللحوم على وسادة التدفئة والاثنان الآخران على سطح وسادة التدفئة) في أقصى كل ذراع من الصليب (الشكل 4). أغلق الصلبان بأغطيتها واترك الركائز تسخن لمدة 10 دقائق تقريبا.
      ملاحظة: بالإضافة إلى ذلك ، لتجنب تحيزات الموضع ، قم بتغيير موضع أنواع اللحوم المختلفة في الصلبان. على سبيل المثال، يجب أن تحتوي بعض الصلبان على النوع نفسه من اللحم على أذرع متجاورة، بينما في الصلبان الأخرى، يجب أن يكون نوع اللحم نفسه متقابلا مع بعض، كما هو موضح في الشكل 4.
  3. اختبار الإناث
    1. جمع الإناث الجاذبة في قفص الذباب وعزلها في أنابيب فردية.
      ملاحظة: تتميز الإناث الجاذبة بوجود بطن متضخم وأصفر مائل للبياض على عكس الإناث غير الجاذبات (الشكل 5). تم جمع الإناث الجاذبة بين 10 و 16 يوما بعد ظهورها للتجارب.
    2. تحقق من درجة حرارة الركائز في الصلبان (الجانب البارد: 25 ± 2 درجة مئوية ؛ الجانب الساخن: 33 ± 2 درجة مئوية) باستخدام مقياس حرارة الأشعة تحت الحمراء.
      ملاحظة: تماما كما هو الحال في اختبار اليرقات ، تظل وسادة التسخين مضاءة طوال مدة التجربة. تم إجراء قياسات درجة الحرارة في بداية ونهاية التجربة. على الرغم من أن درجة الحرارة تقلبت بمقدار ± 2 درجة مئوية ، إلا أنه لا يزال هناك فرق في درجة الحرارة يبلغ 8 درجات مئوية على الأقل بين الظروف الحارة والباردة.
    3. ضع الأنبوب رأسا على عقب يحتوي على أنثى واحدة في الفتحة في وسط كل صليب. بعد دخول الأنثى الصليب ، قم بإزالة الأنبوب وأغلق الفتحة بغطاءها الصغير. بعد إغلاق جميع الصلبان ، ضع كرتونا أسود في مقدمة الرف لإحاطة الإعداد التجريبي. دع التجربة تستمر لمدة 4 ساعات.
    4. بعد ذلك ، قم بإزالة الأنثى ، عن طريق اصطيادها بعناية باستخدام أنبوب ، وتحقق مما إذا كان هناك أي بيض على الركائز.
    5. حدد غطاء كل طبق بتري بنوع الركيزة من كل صليب. استخدم 70٪ إيثانول لتنظيف الصلبان (داخل الصليب والغطاء) من أي رائحة من الاختبار.
      ملاحظة: في حالة تعذر عد البيض بعد التجربة مباشرة ، يمكن تخزين أطباق بتري مع ركائز في -20 درجة مئوية.
  4. عدد البيض
    ملاحظة: إذا تم تجميد الركائز الموجودة في أطباق بتري ، فقم بإذابتها قبل العد.
    1. استخدم مجهرا مجسما لحساب عدد البيض الموضوعة في كل ركيزة. استخدم فرشاة وماء للمساعدة في فصل البيض لعدها.

3. تحليل البيانات والإحصاءات

  1. حساب مؤشرات التفضيلات
    1. لكل تكرار لليرقات (ن = 36) والإناث (ن = 30) ، احسب مؤشر التفضيل للحوم (المعينةكلحوم PI) عن طريق تحديد نسبة اليرقات أو البيض الموجود على ركائز طازجة (طازجة ساخنة وباردة طازجة) إلى إجمالي عدد اليرقات أو البيض على جميع الركائز (طازج ساخن + بارد طازج + فاسد ساخن + بارد فاسد).
      لحم PI = (# يرقات أو بيض على ركائز طازجة) / # إجمالي اليرقات أو البيض
      ملاحظة: يشير المصطلحان "ساخن" و "بارد" إلى ظروف درجة حرارة 33 ± 2 درجة مئوية و 25 ± 2 درجة مئوية على التوالي.
    2. وبالمثل ، احسب مؤشر التفضيل لدرجة الحرارة (PItemp) لكل تكرار لاختبارات اليرقات والإناث كعدد اليرقات أو البيض الموجود على الركائز الساخنة ( الطازجة الساخنة والفاسدة الساخنة) مقسوما على إجمالي عدد اليرقات أو البيض على جميع الركائز (طازج ساخن + بارد طازج + فاسد ساخن + فاسد بارد).
      PItemp = (# اليرقات أو البيض على ركائز ساخنة) / # إجمالي اليرقات أو البيض
      ملاحظة: تعكس القيم القريبة من 1 تفضيلا للركائز الطازجة أو الساخنة وتشير القيم القريبة من الصفر إلى تفضيل الركائز الفاسدة أو الباردة. يمكن حساب مؤشرات الأداء يدويا أو باستخدام الكود المقدم (الملفات التكميلية S1 والملفات التكميلية S2).
  2. مقارنة التفضيل المرصود بالبيانات العشوائية المحاكاة
    1. قم بتشغيل الكود المقدم (الملف التكميلي S1 والملف التكميلي S1) لإنشاء البيانات المحاكاة ومقارنتها بالبيانات المرصودة.
      ملاحظة: يولد هذا الرمز 1000 مجموعة بيانات عشوائية محاكاة لليرقات والإناث ويحسب مؤشرات التفضيل (PIs) لكل نسخة مكررة من المحاكاة ، والبيانات المرصودة ل L. cuprina. تفترض عمليات المحاكاة أن كلا من اليرقات والإناث لا تظهر أي تفضيل للركيزة وتقوم باختيارات عشوائية. تتضمن عمليات المحاكاة الجوانب السلوكية الرئيسية للحيوانات ، وتشمل سيناريوهات مختلفة مثل: احتمال عدم اختيار اليرقات لأي ركيزة ، وتركيز الإناث البالغات على وضع البيض على ركيزة واحدة أو توزيع بيضها إما بشكل موحد أو لا بين ركائز مختلفة. تم استخدام النماذج الخطية المعممة (GLM ، العائلة: شبه ذات الحدين ؛ الرابط: logit) لمقارنة البيانات المرصودة من مقايسات السلوك مع البيانات العشوائية المحاكاة. كان GLM المستخدم مناسبا تماما لهذا التحليل نظرا للطبيعة المحدودة لمؤشر التفضيل (PI) ، والذي يتراوح بين 0 و 1. إن GLMs بارعة في التعامل مع متغيرات الاستجابة غير الموزعة بشكل طبيعي وتسمح بإجراء مقارنات إحصائية قوية. سهل هذا الاختيار رؤى ذات مغزى من خلال تمكين مقارنة البيانات المرصودة بشكل فعال من فحوصات السلوك مع الأنماط المعقدة الناتجة عن البيانات العشوائية المحاكاة. قد يلزم إجراء تعديلات طفيفة على الشفرة لمجموعات البيانات المنظمة الأخرى.

النتائج

لإثبات فعالية الطرق المقدمة ، أجريت التجارب باستخدام مجموعة مختبرية من Lucilia cuprina (العائلة: Calliphoridae) ، وهي ذبابة طفيلية اختيارية2. يمكن العثور على مجموعة البيانات الخام الكاملة التي تم الحصول عليها لهذا النوع في الملف التكميلي S3 مع نتائج اختبارات تفضيل اليرقات وال...

Discussion

يتطلب فهم تطور عادات التغذية ، لا سيما في سياق التطفل في الذباب ، فحص تفضيلات الركيزة عبر مراحل الحياة المختلفة للتغذية أو وضع البيض. لذلك ، في هذه الدراسة ، تم اقتراح طرق قوية ومباشرة للتحقيق في تفضيلات الركيزة في يرقات وإناث الذباب. تم اختبار هذه الطرق في Lucilia cuprina ، وهي ذبابة طفيلية ا...

Disclosures

لم يعلن أي منها.

Acknowledgements

نعرب عن تقديرنا لباتريشيا ج. تايسن وغابرييلا س. زامبيم ولوكاس دي ألميدا كارفاليو لتوفيرها مستعمرة L. cuprina ومساعدتهم في إعداد التجربة. نود أيضا أن نشكر رافائيل باروس دي أوليفيرا على تصوير الفيديو وتحريره. تم دعم هذا البحث من خلال منحة أبحاث الأمة النامية من جمعية سلوك الحيوان إلى V.A.S.C. ومنحة FAPESP Dimensions US-Biota-São Paulo إلى T.T.T. (20/05636-4). تم دعم ST و DLF من قبل FAPESP (19 / 07285-7 منحة ما بعد الدكتوراه و 21 / 10022-8 منحة دكتوراه ، على التوالي). تم دعم V.A.S.C. و AVR من خلال منح الدكتوراه CNPq (141391 / 2019-7 ، 140056 / 2019-0 ، على التوالي). تم دعم T.T.T. من قبل CNPq (310906 / 2022-9).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
AgarSigma-Aldrich05038-500GFor microbiology
Black cardboards--70x50 cm
Bovine blood with anticoagulat --50% pure bovine blood with anticoagulant (3.8% sodium citrate) + 50% of filtered water
Bovine ground Meat--Around 7-8% of fat
Brush--Made with plastic
Conical tubeFalcon or Generic-50 mL
Cross-shaped glass containersHandmadeNA48x48 cm, 8 cm of height and 8 cm of width
ErlenmeyerVidrolaborNA500 mL
70% EthanolSynthA1084.01.BL70% ethyl ethanol absolute + 30% filtered water
Graduated cylinderNalgon or Generic-500 mL and 50 mL
Heating padThermolux-30x40 cm dimensions, 40 W, 127 V
Infrared thermometerHeTaiDaHTD8808Non-contact body thermometer (Sample Rate: 0.5 S,
Accuracy: ±0.2 °C,
Measuring: 5-15 cm)
Petri dish (Glass)PrecisionNA150x20 mm dimensions
          (Note: the petri dishes can be plastic if used only once)
Petri dish PSCralplast1813060x15 mm dimensions
Plastic Pasteur pipette--3 mL (total volume)
Sodium citrateSynthC11033.01.AG3.8% Sodium citrate (38 g diluted in 1L of filtered water)
Spoons--More than one spoon is necessary. Use one for each type of meat substrate. Preferably stainless steel.
Stainless steel spatulaGeneric-Flat end and spoon end
StereomicroscopeBioptika-WF10X/22 lenses
Tweezer--Metal made and fine point
White led light stripsNANA4.8 W, 2x0.05 mm², 320 lumens, Color temperature:6500 K (white)

References

  1. Kutty, S. N., et al. Phylogenomic analysis of Calyptratae: Resolving the phylogenetic relationships within a major radiation of Diptera. Cladistics. 35 (6), 605-622 (2019).
  2. Zumpt, F. . Myiasis in Man and Animals in the Old World. A textbook for physicians, veterinarians and zoologists. , (1965).
  3. Hall, M., Wall, R. Myiasis of humans and domestic animals. Advances in Parasitology. 35, 257-334 (1995).
  4. Grisi, L., et al. Reassessment of the potential economic impact of cattle parasites in Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 23 (2), 150-156 (2014).
  5. Sackett, D., Holmes, P., Abbot, K., Jephcott, S., Barber, M. Assessing the economic cost of endemic disease on the profitability of Australian beef cattle and sheep producers. Meat & Livestock Australian Report. AHW.087. Meat & Livestock Australian Report. , (2006).
  6. Heath, A. C. G., Bishop, D. M. Flystrike in New Zealand: An overview based on a 16-year study, following the introduction and dispersal of the Australian sheep blowfly, Lucilia cuprina Wiedemann (Diptera: Calliphoridae). Veterinary Parasitology. 137 (3-4), 333-344 (2006).
  7. Mullen, G. R., Durden, L. A. . Medical and veterinary entomology. , (2009).
  8. Spradbery, J. P. Screw-worm fly: A tale of two species. Agricultural Zoology Reviews. 6 (1), (1994).
  9. World Organization for Animal Health (OIE). New World screwworm (Cochliomyia hominivorax) and Old World screwworm (Chrysomya bezziana), Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. World Organization for Animal Health (OIE). , (2013).
  10. Wardhana, A. H., Abadi, I., Cameron, M. M., Ready, P. D., Hall, M. J. R. Epidemiology of traumatic myiasis due to Chrysomya bezziana in Indonesia. Jurnal Ilmu Ternak dan Veteriner. 23 (1), 45 (2018).
  11. Linger, R. J., et al. Towards next generation maggot debridement therapy: Transgenic Lucilia sericata larvae that produce and secrete a human growth factor. BMC Biotechnology. 16 (1), 30 (2016).
  12. Fonseca-Muñoz, A., Sarmiento-Jiménez, H. E., Pérez-Pacheco, R., Thyssen, P. J., Sherman, R. A. Clinical study of Maggot therapy for Fournier's gangrene. International Wound Journal. 17 (6), 1551 (2020).
  13. Franciéle, S. M., Demetrius, S. M., Patricia, J. T. Larval Therapy and the application of larvae for healing: review and state of the art in Brazil and worldwide. Revista Thema. 12 (01), 4-14 (2015).
  14. Greenberg, B. Flies as forensic indicators. Journal of Medical Entomology. 28 (5), 565-577 (1991).
  15. Stevens, J. R., Wallman, J. F., Otranto, D., Wall, R., Pape, T. The evolution of myiasis in humans and other animals in the Old and New Worlds (Part II): Biological and life-history studies. Trends in Parasitology. 22 (4), 181-188 (2006).
  16. Stevens, J. R. The evolution of myiasis in blowflies (Calliphoridae). International Journal for Parasitology. 33 (10), 1105-1113 (2003).
  17. McDonagh, L. M., Stevens, J. R. The molecular systematics of blowflies and screwworm flies (Diptera: Calliphoridae) using 28S rRNA, COX1 and EF-1α Insights into the evolution of dipteran parasitism. Parasitology. 138 (13), 1760-1777 (2011).
  18. Wallman, J. F., Leys, R., Hogendoorn, K. Molecular systematics of Australian carrion-breeding blowflies (Diptera:Calliphoridae) based on mitochondrial DNA. Invertebrate Systematics. 19 (1), (2005).
  19. Yan, L., et al. Monophyletic blowflies revealed by phylogenomics. BMC Biology. 19 (1), 230 (2021).
  20. Cardoso, G. A., Deszo, M. S., Torres, T. T. Evolution of coding sequence and gene expression of blowflies and botflies with contrasting feeding habits. Genomics. 113 (1), 699-706 (2021).
  21. Cardoso, G. A., Marinho, M. A. T., Monfardini, R. D., Espin, A. M. L. D. A., Torres, T. T. Evolution of genes involved in feeding preference and metabolic processes in Calliphoridae (Diptera: Calyptratae). PeerJ. 4, 2598 (2016).
  22. Stevens, J. R., Wallman, J. F. The evolution of myiasis in humans and other animals in the Old and New Worlds (part I): Phylogenetic analyses. Trends in Parasitology. 22 (3), 129-136 (2006).
  23. Wiegmann, B. M., et al. Episodic radiations in the fly tree of life. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108 (14), 5690-5695 (2011).
  24. Azevedo, W. T. D. A., et al. Record of the first cases of human myiasis by Lucilia cuprina (Diptera: Calliphoridae), Rio de Janeiro, Brazil. Journal of Medical Entomology. 52 (6), 1368-1373 (2015).
  25. Bishop, D., Patel, D., Heath, A. A New Zealand case of nasal myiasis involving Lucilia cuprina (Diptera: Calliphoridae). The New Zealand Medical Journal (Online). 131 (1484), 68-70 (2018).
  26. Lukin, L. G. Human cutaneous myiasis in Brisbane: a prospective study. Medical Journal of Australia. 150 (5), 237-240 (1989).
  27. Paulo, D. F., et al. Specific gene disruption in the major livestock pests Cochliomyia hominivorax and Lucilia cuprina Using CRISPR/Cas9. G3 Genes|Genomes|Genetics. 9 (9), 3045-3055 (2019).
  28. Puttalakshmamma, G. C., Dhanalakshmi, H., D'souza, P. E., Ananda, K. J. Incidence of myiasis in domestic animals in Bangalore. Intas Polivet. 6 (2), 353-356 (2005).
  29. Rao, M. A. N., Pillay, M. R. Some notes on cutaneous myiasis in animals in the Madras presidency. Indian Journal of Veterinary Science. 6 (3), (1936).
  30. Soundararajan, C. Traumatic myiasis in an Indian peafowl (Pavo cristatus) due to Lucilia cuprina first report. Journal of Veterinary Parasitology. 34 (1), 49-51 (2020).
  31. Smith, K. G. V. . A manual of forensic entomology. , (1986).
  32. Goff, M. L. . A Fly for the Prosecution. , (2001).
  33. CRC Press. . Forensic entomology: the utility of arthropods in legal investigations. , (2001).
  34. Greenberg, B., Kunich, J. C. . Entomology and the law: flies as forensic indicators. , (2002).
  35. Ellis, A. M. Incorporating density dependence into the oviposition preference-offspring performance hypothesis. Journal of Animal Ecology. 77 (2), 247-256 (2008).
  36. Vargas, M. E. I., Azeredo-Espin, A. M. L. Genetic variability in mitochondrial DNA of the screwworm, Cochliomyia hominivorax (Diptera: Calliphoridae), from Brazil. Biochem Genet. 33, 237-256 (1995).
  37. Bambaradeniya, Y. T. B., Karunaratne, W. I. P., Tomberlin, J. K., Goonerathne, I., Kotakadeniya, R. B. Temperature and tissue type impact development of Lucilia cuprina (Diptera: Calliphoridae) in Sri Lanka. Journal of Medical Entomology. 55 (2), 285-291 (2018).
  38. Chaaban, A., et al. Insecticide activity of Curcuma longa (leaves) essential oil and its major compound α-phellandrene against Lucilia cuprina larvae (Diptera: Calliphoridae): Histological and ultrastructural biomarkers assessment. Pesticide Biochemistry and Physiology. 153, 17-27 (2019).
  39. Selem, G., Geden, C. J., Khater, H., Khater, K. S. Effects of larval diets on some biological parameters and morphometric and biochemical analysis of ovaries of Lucilia cuprina (Wiedemann) (Diptera: Calliphoridae). Journal of Vector Ecology. 48 (2), (2023).
  40. Fouche, Q., Hedouin, V., Charabidze, D. Effect of density and species preferences on collective choices: an experimental study on maggot aggregation behaviours. Journal of Experimental Biology. 224 (6), 233791 (2021).
  41. Richards, C. S., Rowlinson, C. C., Cuttiford, L., Grimsley, R., Hall, M. J. R. Decomposed liver has a significantly adverse affect on the development rate of the blowfly Calliphora vicina. International Journal of Legal Medicine. 127, (2013).
  42. Boulay, J., Deneubourg, J. -. L., Hédouin, V., Charabidzé, D. Interspecific shared collective decision-making in two forensically important species. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 283 (1824), 20152676 (2016).
  43. Joseph, R. M., Devineni, A. V., King, I. F. G., Heberlein, U. Oviposition preference for and positional avoidance of acetic acid provide a model for competing behavioral drives in Drosophila. Proceedings of the National Academy of Sciences. 106 (27), 11352-11357 (2009).
  44. Mierzejewski, M. K., Horn, C. J., Luong, L. T. Ecology of fear: Environment-dependent parasite avoidance among ovipositing Drosophila. Parasitology. 146 (12), 1564-1570 (2019).
  45. Stensmyr, M. C., et al. A conserved dedicated olfactory circuit for detecting harmful microbes in drosophila. Cell. 151 (6), 1345-1357 (2012).
  46. Yang, S. -. T., Shiao, S. -. F. Oviposition preferences of two forensically important blow fly species, chrysomya megacephala and C. rufifacies (Diptera: Calliphoridae), and implications for postmortem interval estimation. Journal of Medical Entomology. 49 (2), 424-435 (2012).
  47. Brodie, B. S., Wong, W. H. L., VanLaerhoven, S., Gries, G. Is aggregated oviposition by the blow flies Lucilia sericata and Phormia regina (Diptera: Calliphoridae) really pheromone-mediated?: Pheromone-mediated Lucilia sericata and Phormia regina flies. Insect Science. 22 (5), 651-660 (2015).
  48. Horn, C. J., Liang, C., Luong, L. T. Parasite preferences for large host body size can drive overdispersion in a fly-mite association. International Journal for Parasitology. , (2023).
  49. Liu, W., et al. Enterococci mediate the oviposition preference of Drosophila melanogaster through sucrose catabolism. Scientific Reports. 7 (1), 13420 (2017).
  50. Parodi, A., et al. Black soldier fly larvae show a stronger preference for manure than for a mass-rearing diet. Journal of Applied Entomology. 144 (7), 560-565 (2020).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

JoVE 201

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved