المؤلفون ممتنون للإسهامات الفنية Hyewon كوبر.

<ol>
	<li>Whitear, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chordotonal+organs+in+Crustacea.">Chordotonal organs in Crustacea.</a> Nature. 187, 522-523 (1038).</li><li>Alexandrowicz, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+comparative+anatomy+of+leg+propriocetors+in+some+decapod+Crustacea.">The comparative anatomy of leg propriocetors in some decapod Crustacea.</a> J. Mar. Biol. Assoc. U.K. 52 (3), 605-634 (1972).</li><li>Hartman, H. B., Boettiger, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+functional+organization+of+the+propys-dactylus+organ+in+Cancer+irroratus+Say.">The functional organization of the propys-dactylus organ in Cancer irroratus Say.</a> Comp. Biochem. Physiol. 22, 651-663 (1967).</li><li>Cooper, R. L., Hartman, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+the+bender+apodeme+tension+receptors+in+the+Dungeness+crab,+Cancer+magister.">Responses of the bender apodeme tension receptors in the Dungeness crab, Cancer magister.</a> Comp. Biochem. Physiol. A Physiol. 109 (2), 479-486 (1994).</li><li>Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mapping+proprioceptive+neurons+on+chordotonal+organs+in+the+crab,+Cancer+magister.">Mapping proprioceptive neurons on chordotonal organs in the crab, Cancer magister.</a> Crustaceana. 81 (4), 447-475 (2008).</li><li>Burke, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+organ+for+proprioception+and+vibration+sense+in+Carcinus+maenas.">An organ for proprioception and vibration sense in Carcinus maenas.</a> J. Exp. Biol. 31, 127-138 (1953).</li><li>Hill, A. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> First and Last Experiments in Muscle Mechanics. , (1970).</li><li>Stuart, D. G., Mosher, C. C., Gerlach, R. L., Reinking, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanical+arrangement+and+transducing+properties+of+Golgi+tendon+organs.">Mechanical arrangement and transducing properties of Golgi tendon organs.</a> Exp. Brain Res. 14 (3), 274-292 (1972).</li><li>Macmillan, D. L., Dando, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tension+receptors+on+the+apodemes+of+muscles+in+the+walking+legs+of+the+crab,+Cancer+magister.">Tension receptors on the apodemes of muscles in the walking legs of the crab, Cancer magister.</a> Mar. Behav. Physiol. 1 (1-4), 185-208 (1972).</li><li>B&#233;vengut, M., Simmers, A. J., Clarac, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+neuronal+projections+and+neuromuscular+organization+of+the+basal+region+of+the+shore+crab+leg.">Central neuronal projections and neuromuscular organization of the basal region of the shore crab leg.</a> J. Comp. Neurol. 221 (2), 185-198 (1983).</li><li>El Manira, A., Cattaert, D., Clarac, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monosynaptic+connections+mediate+resistance+reflex+in+crayfish+(Procambarus+clarkii)+legs.">Monosynaptic connections mediate resistance reflex in crayfish (Procambarus clarkii) legs.</a> J. Comp. Physiol. A. 168 (3), 337-349 (1991).</li><li>Le Bon-Jego, M., Cattaert, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inhibitory+component+of+the+resistance+reflex+in+the+locomotor+network+of+the+crayfish.">Inhibitory component of the resistance reflex in the locomotor network of the crayfish.</a> J. Neurophysiol. 88 (5), 2575-2588 (2002).</li><li>Ray, D. L., Clarac, F., Cattaert, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+analysis+of+the+sensory+motor+pathway+of+resistance+reflex+in+crayfish.+I.+Multisensory+coding+and+motor+neuron+monosynaptic+responses.">Functional analysis of the sensory motor pathway of resistance reflex in crayfish. I. Multisensory coding and motor neuron monosynaptic responses.</a> J. Neurophysiol. 78 (6), 3133-3143 (1997).</li><li>Wiersma, C. A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vergleichende+Untersuchungen&#252;ber+das+periphere+Nerve-muskelsystem+von+Crustaceen+(Comparative+studies+on+the+peripheral+nerve-muscle+system+of+crustaceans).">Vergleichende Untersuchungen&#252;ber das periphere Nerve-muskelsystem von Crustaceen (Comparative studies on the peripheral nerve-muscle system of crustaceans).</a> J. Comp. Physiol. 19, 349-385 (1933).</li><li>Wiersma, C. A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Movement+receptors+in+decapod+crustacea.">Movement receptors in decapod crustacea.</a> J. Mar. Biol. Assoc. U.K. 38 (01), 01-143 (1959).</li><li>Hartman, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tension+receptors+on+the+closer+muscle+apodeme+in+the+walking+legs+of+the+blue+crab+Callinectes+sapidus.">Tension receptors on the closer muscle apodeme in the walking legs of the blue crab Callinectes sapidus.</a> J. Comp. Physiol. A. 157 (3), 355-362 (1985).</li><li>Holsinger, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The effect of regional phenotypic differences of Procambarus clarkii opener muscle on sarcomere length, fiber diameter, and force development MSc thesis [dissertation]. , (2013).</li><li>Parsons, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+morphology+and+ultrastructure+of+tension+receptors+in+the+walking+legs+of+the+crab,+Carcinus+maenas.">The morphology and ultrastructure of tension receptors in the walking legs of the crab, Carcinus maenas.</a> Cell Tissue Res. 211 (1), 139-149 (1980).</li><li>Parsons, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+and+central+interactions+of+tension+receptors+in+the+leg+muscle+of+Carcinus.">Responses and central interactions of tension receptors in the leg muscle of Carcinus.</a> Comp. Biochem. Physiol. A Physiol. 72 (2), 391-399 (1982).</li><li>Tryba, A. K., Hartman, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+responses+of+series+force+receptors+innervating+the+opener+muscle+apodeme+in+the+blue+crab,+Callinectes+sapidus.">Dynamic responses of series force receptors innervating the opener muscle apodeme in the blue crab, Callinectes sapidus.</a> J. Comp. Physiol. A. 180 (3), 215-221 (1997).</li><li>Whitear, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+fine+structure+of+crustacean+proprioceptors.+I.+The+chordotonal+organs+in+the+legs+of+the+shore+crab,+Carcinus+meanas.">The fine structure of crustacean proprioceptors. I. The chordotonal organs in the legs of the shore crab, Carcinus meanas.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. 245 (725), 291-325 (1962).</li><li>Whitear, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+fine+structure+of+crustacean+proprioceptors.+II.+The+thoracico-coxal+organs+in+Carcinus,+Pagurus+and+Astacus.">The fine structure of crustacean proprioceptors. II. The thoracico-coxal organs in Carcinus, Pagurus and Astacus.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. 248 (752), 437-456 (1965).</li><li>Leksrisawat, B., Cooper, A. S., Gilberts, A. B., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+Receptor+Organs+in+the+Crayfish+Abdomen:+A+Student+Laboratory+Exercise+in+Proprioception.">Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception.</a> J. Vis. Exp. (45), e2323 (2010).</li><li>Baierlein, B., Thurow, A. L., Atwood, H. L., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Membrane+Potentials,+Synaptic+Responses,+Neuronal+Circuitry,+Neuromodulation+and+Muscle+Histology+Using+the+Crayfish:+Student+Laboratory+Exercises.">Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises.</a> J. Vis. Exp. (47), e2322 (2011).</li><li>Delaney, K., Gelperin, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cerebral+interneurons+controlling+fictive+feeding+in+Limaxmaximus;+I.+Anatomy+and+criteria+for+re-identification.">Cerebral interneurons controlling fictive feeding in Limaxmaximus; I. Anatomy and criteria for re-identification.</a> J. Comp. Physiol. A. 166, 297-310 (1990).</li><li>Hartman, H. B., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regeneration+and+molting+effects+on+a+proprioceptor+organ+in+the+Dungeness+crab,+Cancer+magister.">Regeneration and molting effects on a proprioceptor organ in the Dungeness crab, Cancer magister.</a> J. Neurobiol. 25 (5), 461-471 (1994).</li><li>Hartman, H. B., Austin, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proprioceptor+organs+in+the+antennae+of+Decapoda+Crustacea.">Proprioceptor organs in the antennae of Decapoda Crustacea.</a> J. Comp. Physiol. 81 (2), 187-202 (1972).</li><li>Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+sensory+processes+during+limb+regeneration+in+adult+crayfish.">Development of sensory processes during limb regeneration in adult crayfish.</a> J. Exp. Biol. 201 (Pt 11), 1745-1752 (1998).</li><li>Chung, Y. -. S., Cooper, R. M., Graff, J., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+acute+and+chronic+effect+of+low+temperature+on+survival,+heart+rate+and+neural+function+in+crayfish+(Procambarus+clarkii)+and+prawn+(Macrobrachium+rosenbergii)+species.">The acute and chronic effect of low temperature on survival, heart rate and neural function in crayfish (Procambarus clarkii) and prawn (Macrobrachium rosenbergii) species.</a> Open J. Mol. Int. Physiol. 2 (3), 75-86 (2012).</li><li>Blundon, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+temperature+and+thermal+history+on+neuromuscular+properties+of+two+crustacean+species.">Effects of temperature and thermal history on neuromuscular properties of two crustacean species.</a> J. Comp. Physiol. B. 158 (6), 689-696 (1989).</li><li>Cooper, R. M., Schapker, H., Adami, H., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+and+ventilatory+measures+in+crayfish+during+copulation.">Heart and ventilatory measures in crayfish during copulation.</a> Open J. Mol. Int. Physiol. 1 (3), 36-42 (2011).</li><li>Bierbower, S. M., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mechanistic+action+of+carbon+dioxide+on+a+neural+circuit+and+NMJ+communication.">The mechanistic action of carbon dioxide on a neural circuit and NMJ communication.</a> Journal of Experimental Zoology. , (2013).</li><li>Bierbower, S. M., Shuranova, Z. P., Viele, K., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensory+systems+and+environmental+change+on+behavior+during+social+interactions.">Sensory systems and environmental change on behavior during social interactions.</a> Brain Behav. 3 (1), 4-13 (2013).</li></ol>

يعلن الكتاب أنه ليس لديهم مصالح مالية المتنافسة.

الغرض من هذه المجموعة من التجارب هو 1) لتعليم ويحمل المبادئ الأساسية للتسجيلات خارج الخلية من جهاز التحفيز تحديدها والتوتر العصبي و2) التشديد على أهمية رسم الخرائط التشريحية فيما يتعلق ظيفة فسيولوجية معينة أنظمة حسية. هذا النهج التجريبية والنماذج الحيوانية المستخدمة هي غير مكلفة وسهلة نسبيا لإجراء التدريس في مختبرات الفسيولوجيا العصبية. الخلايا العصبية من أجهزة chordotonal نوعان ظيفية محددة، وتلك التي تستجيب لتلك الحركة والاستجابة للمواقف ثابتة. تسجيلات خلية واحدة من مجموعة متنوعة من الأجهزة chordotonal، بغض النظر عن أي يتم فحص المشتركة، أظهرت أن تكون هذه هي الحال 3،5. في الواقع، وأجهزة chordotonal المرتبطة المفاصل antennal من الكركند تكشف عن نفسها نوعين الحسية والتشريح الأساسية 27. بالإضافة إلى أن يكون هناك نوعين الخلايا العصبية (الحركة وpositiعلى)، والخلايا العصبية تشترك في نفس الترتيب التشريحية على خيوط مرنة لكل منهما. وsomata كبيرة تقع قريب على حبلا تميل إلى تنتمي إلى ديناميكية الخلايا العصبية الحساسة الحركة. الخلايا العصبية التي تدل على مواقع ثابتة لها somata الصغيرة وتقع بشكل أقصى. هذه الخلايا تنشط tonically. المفصل PD يحتوي فقط على جهاز واحد chordotonal في حين أن هناك اثنين من أجهزة chordotonal في رسغ-propodus (CP) وmerus-رسغ (MC) المفاصل. تشريح لفضح هياكل التحفيز في السرطانات الزرقاء (C. sapidus) لتسجيل الكهربية يتطلب استراتيجية تسمح الحركات المشتركة الذي سيعقد في المواقف الطبيعية أثناء التسجيل من الخلايا العصبية الحسية. العصب التوتر لعضلة الساق في المباراة الافتتاحية المشي هو العصب ناعم جدا تتكون من عدة خلايا عصبية. ما لم تتخذ الرعاية، العصب التوتر فضلا عن العصب المحرك التعصيب العضلات ليكون حافزا، يمكن أن تتلف خلال هذه تشريح. إلىتسجيلات الأمثل الأقطاب شفط تحتاج إلى أن يكون متلائما مع حجم العصب. تسجيلات يمكن الوصول إليها بسهولة في المختبر الطالب باستخدام 30-40X التكبير المجهر تشريح وmicromanipulators المنخفضة نهاية. أن التجارب المستقبلية التي من شأنها أن تكون مثيرة للاهتمام لمتابعة مع الأجهزة chordotonal مشتركة تكون لدراسة الأوضاع الهيكلية والفسيولوجية خلال تجديد الساق في الأنواع المختلفة في مراحل مختلفة في دورة حياة كمتابعة لدراسة الأولية التي تستخدم لمكافحة السرطان الماجستير 19،26 . الأسئلة المتبقية التي يتعين معالجتها هي 1) لا توزيع وتنظيم الخلايا العصبية مجدد تعتمد على عمر الحيوان عند تجديد أحد أطرافه، 2) هي التوقعات محور عصبي إلى الجهاز العصبي المركزي (الحبل البطني العصب) في أحد أطرافه تجديد وظيفية أو يفعل يستغرق وقتا طويلا والاستخدام المشترك لتأسيس اتصالات وظيفية، و 3) ما يحدث للمحاور قطعت الأقرب إلى الطائرة انشطار ذاتي عند الطرف هو autotomized؟ 28 القشريات تتوافق مع الظروف البيئية ودرجة الحرارة المحيطة بها، ولكن من غير الواضح كيف الحفاظ على التنسيق داخل الدوائر العصبية الخلايا العصبية كما يغير نشاطهم في استجابة للتغيرات في درجة الحرارة. وبطء وتيرة التغيير قد تسمح للحيوان بعض الوقت للتأقلم في حين أن التغير السريع قد not29، 30. التغيرات الفسيولوجية في درجة الحموضة أو الأسمولية بسبب التمثيل الغذائي والسلوك 31، أو الأثر البيئي قد يطرح تحديات على غرار الدوائر العصبية المشاركة في استقبال الحس العميق. هذه الاستعدادات القشريات تعتبر مثالية لمعالجة هذه الأنواع من المشاكل بسبب وظيفتها ويتميز كذلك على مستوى خلية واحدة. في هذا البروتوكول لقد أثبتنا أهمية الفسيولوجية للخلايا العصبية التوتر في رصد القوة التي تولدها العضلات فتحت. هذه المستقبلات التوتر يمكن أن تعزى إلى موقعها داخل apodeme باستخدام إجراءات تلطيخ. هؤلاءالخلايا العصبية، كما هو الحال في الثدييات، والكشف عن القوة على مختلف المستويات، وتجنيد الخلايا العصبية إضافية كما يزيد القوة. تردد في النشاط هو ذات الصلة إلى التردد تحفيز الخلايا العصبية الحركية حتى يتم التوصل إلى التشبع في الاستقبال. باستخدام بروتوكول الإفراج السريع مع المشترك إصبع استعرضوا والنشاط التوتر يختفي بسرعة ولكن بعد ذلك يعود على استعادة التوتر في مشتركة ممتدة بشكل كامل. هذا هو الإجراء التجريبي الكلاسيكي لتوضيح قوة تقاس مستقبلات التوتر. neuromodulators مختلفة يمكن تطبيقها على إعداد لنرى كيف يؤثر تطوير القوة والاستجابة العصبية. واحد من الجوانب المهم هو كيف تتم معالجة الردود العصبية ومتكاملة في الجهاز العصبي المركزي وتأثيرها على نشاط الخلايا العصبية الحركية. تقنيات أظهرنا تسمح لأحد للبدء في معالجة مزيد من المعلومات حول التوتر (الحسية) الأعصاب الحركية وظيفة الخلايا العصبية الدائرة، أي إشارة في الساق سليمة إلى العقدة والعودةإلى العضلات. الإجراءات تلطيخ أثبتت هي المفتاح لفهم علم وظائف الأعضاء من الخلايا العصبية الحسية التي يعصب أجهزة التحفيز. الترتيب التشريحي للخلايا العصبية على أساس الوظيفة وحجم سوما متشابهة في مختلف الأجهزة chordotonal داخل الساقين سرطان البحر. ومن غير المعروف ما إذا تم العثور على ترتيبات مماثلة أيضا الخلايا العصبية في الأنواع أو الحشرات القشريات الأخرى. الجمع بين التسجيلات الفسيولوجية من الخلايا واحد ورسم خرائط الموقع يسمح العلاقات ظيفة الهيكل مباشرة. الحفاظ على المدى الطويل للترتيب التشريحية مع كوكلي 2 تلطيخ والتثبيت يسمح احد لجعل متكررة التدابير وتقييم الترتيبات الهيكلية. استقبال الحس العميق واستقبال التوتر من عضلات الهيكل العظمي هي طرائق الحسية التي تمكن السلوكيات والردود على البيئة الخارجية والداخلية منسقة للحيوانات مفصلية في مجموعة متنوعة من تكوين العضلات والهيكل العظميق. الجهاز مستقبلات العضلات في البطن من جراد البحر هو إعداد أخرى موثقة جيدا (انظر مشروع Crawdad؛ <a href="http://www.crawdad.cornell.edu/">http://www.crawdad.cornell.edu/</a> ) لأغراض التدريس من استقبال الحس العميق مع اثنين فقط من الخلايا العصبية في البطن نصفي الجزء 23 . أن تكون قادرة على تسجيل من الخلايا العصبية واحد لحزم العصب الحسي يوفر المزيد من التفاصيل التي تساعد في فهم المبادئ الأساسية لاستقبال الحسية. هذه الاستعدادات القشريات بسيطة نسبيا تسمح لأحد لمعالجة الجوانب الأساسية لاستقبال الحس العميق ورصد التوتر، مع القدرة على تحديد الدوائر العصبية التي تمكن التكامل المركزية للمدخلات الحسية التحفيز وغيرها من 9-12، 32، 33.

<html> استقبال الحس العميق هو الإحساس من موقف الطرف والحركة التي تمكن السلوك منسقة السيارات. تتكون Proprioceptors للموقف (ثابت) وحركة (حركي) المستقبلات. في الحشرات والقشريات، وأجهزة chordotonal هي الهياكل التي توفر هذه المعلومات إلى الجهاز العصبي المركزي 1. ليس كل الأجهزة chordotonal تمتد مشتركة لكنها ما زالت قادرة على رصد تحركات مشتركة بسبب تمسكهم على apodemes (وتر مثل هياكل) التي تغطي المشتركة والتحرك بالتعاون مع العضلات والهيكل العظمي وصياغة مشتركة. الساقين سلطعون دينا ستة المفاصل، ولكل منها واحد أو اثنين من أجهزة chordotonal 2. عادة ما يكون لديه جهاز chordotonal 60-100 أو أكثر الخلايا العصبية الحسية جزءا لا يتجزأ من داخل حبلا المرنة، والخلايا العصبية التي تدل على موقف مشترك ثابت، اتجاه وسرعة الحركة 3-6. ثم تتم معالجة المدخلات من الأجهزة chordotonal في كل المفاصل وساق مركزيا السماح حركات منسقة من قبل الحيوان. &gt; يتم الكشف عن القوى التي تنتج عضلات الساق أثناء تقلصات متساوي القياس ومتساوي التوتر عن طريق المستقبلات التوتر المرتبطة ألياف العضلات ومرفقاتها إلى apodemes7-9. في القشريات بروتوكولات الساق المشي التي تتبع نقدم منهجية لتسجيلات من الخلايا العصبية الحسية الأولية التي ترصد استقبال الحس العميق والخلايا العصبية التي تستجيب للقوات التي تم إنشاؤها بواسطة ألياف العضلات. وتقدم تقنية لتفعيل حركات الساق وقياس قوة الجيل أيضا، فضلا عن تقنيات التشريحية التي يمكن استخدامها لوصف ترتيب هذه الهياكل الجهاز العصبي المحيطي. تمكين الإجراءات موضح أدناه التحليل البنيوي والوظيفي للخلايا العصبية التي يعصب كلا النوعين من المستقبلات النسبية لموقعها على حبلا مرونة chordotonal وapodeme. لتوضيح، ونحن نستخدم propodite-dactylopodite (PD) chordotonal الجهاز، الجهاز الذي يمتد القاصي معظم الجزء من الساق سرطان البحر 3.على الرغم بدأت الدراسات الكهربية مفصلة في 1930s و لا يزال يجري تنفيذها اليوم، أصبحت بعض جوانب معروف عن اتصالات قطعي في Proprioceptors في مختلف المفاصل ودورهم في مراقبة منسقة من muscles10-16. وإقامة العلاقة بين الهيكل وظيفة بين الأجهزة التحفيز والعضلات والجهاز العصبي مزيد من المساعدة في تحديد هذه الأدوار. على سبيل المثال، وصفها somata والنهايات البعيدة من الخلايا العصبية التوتر إدراجها في apodeme سوف تكشف عن الموقع النسبي لألياف العضلات 8،17-21. نقدم ثلاث تقنيات لتلطيخ الساقين القشريات التي يمكن استخدامها في الأبحاث أو المختبرات الأكاديمية. يوفر تلطيخ الأزرق الميثيلين النقيض مناسبة للعضلات والأعصاب والنحو الموصى به من تقنية بسيطة للطلاب لتعلم علم التشريح. يمكن أن يكون مختبرات الاجهزة مضان المجهري إنجاز تلطيخ الخلايا العصبية أكثر انتقائية من خلال تعريض لفترة وجيزة العصبق إلى حيوية صبغ 4-دي-2-ASP. البديل الثالث هو كوكلي 2 الردم، التي بقع وإصلاح الخلايا العصبية، و لا يتطلب التصوير مضان. على الرغم من أنه هو العمل والوقت مكثفة، وهذه العملية تلطيخ يعطي تباين عالية وخصوصية للأعصاب التي يتم شغلها. معا هذه التقنيات يمكن استخدامها لمقارنة مختلف الأجهزة chordotonal، ليس فقط داخل أحد أطرافه أو بين أطرافه، ولكن أيضا من بين الأنواع الأخرى القشريات والحشرات 20-22. متوفرة السرطانات الزرقاء (C. sapidus) المستخدمة في التسجيلات الفسيولوجية والتشريحية لتلطيخ جميع أنحاء الحدود الجنوبية والجنوبية الشرقية للولايات المتحدة. يخدم هذا النوع كممثل للترتيبات العصبية والتوتر chordotonal وجدت في معظم السرطانات. سوف المختبرات على الساحل الغربي يفضلون استخدام أكبر بكثير سرطان البحر دونجينيس (الماجستير السرطان) لهذه التجارب.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="686">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Sylgard</td>
			<td style="width:184px;">Dow Corning</td>
			<td style="width:119px;">182 silicone kit</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">NaCl</td>
			<td style="width:184px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">S7653</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">KCl</td>
			<td style="width:184px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">P9333</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">CaCl2</td>
			<td style="width:184px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">C5670</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">HEPES acid</td>
			<td style="width:184px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">3375</td>
			<td style="width:167px;">Free acid, crystalline</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">HEPES base</td>
			<td style="width:184px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">D-Glucose</td>
			<td style="width:184px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">G7021</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:216px;">MgSO4&#8226;7H2O</td>
			<td style="width:184px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">M2643</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:216px;">Na2SO4&#8226;10H2O</td>
			<td style="width:184px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">246980</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Bouin&#8217;s solution fixative</td>
			<td style="width:184px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">HT10-1-32</td>
			<td style="width:167px;">Caution: Hazardous material (Special shipping cost required)</td>
		</tr>
		<tr height="105">
			<td height="105" style="height:105px;width:216px;">CoCl2</td>
			<td style="width:184px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Caution: Hazardous material. Please follow proper disposal according to local and federal regulations.</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Methylene blue chloride</td>
			<td style="width:184px;">Matheson Co., Inc</td>
			<td style="width:119px;">Basic Blue 9, C.I. 52015</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">4-Di-2-ASP</td>
			<td style="width:184px;">Molecular Probes</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">4-(4-diethylaminostyryl)-N-methylpyridinium iodide</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Bleach</td>
			<td style="width:184px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">To chloride silver wire</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">NaOH</td>
			<td style="width:184px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">221465</td>
			<td style="width:167px;">To adjust pH</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">HCl</td>
			<td style="width:184px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">H1758</td>
			<td style="width:167px;">To adjust pH</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;"></td>
			<td style="width:184px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Materials</td>
			<td style="width:184px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Dissecting tools</td>
			<td style="width:184px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:119px;">assortment</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Intracellular electrode probe</td>
			<td style="width:184px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Faraday cage</td>
			<td style="width:184px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Insect Pins</td>
			<td style="width:184px;">Fine Science Tools, Inc</td>
			<td style="width:119px;">26001-60</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Dissecting microscope (100X)</td>
			<td style="width:184px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Fiber optic lamp</td>
			<td style="width:184px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Small adjustable mirror</td>
			<td style="width:184px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">To direct light beam toward the preparation.</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Glass electrodes</td>
			<td style="width:184px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">CLS7095B5X</td>
			<td style="width:167px;">Box of 200, suction electrodes</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Micromanipulator</td>
			<td style="width:184px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:119px;">MD4-M3-R</td>
			<td style="width:167px;">Can fix for base or on a metal rod</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Raised preparation stand</td>
			<td style="width:184px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Silver wire (10/1,000 inch)</td>
			<td style="width:184px;">A-M Systems</td>
			<td style="width:119px;">782500</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Computer</td>
			<td style="width:184px;">Any company</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">AC/DC differential amplifier</td>
			<td style="width:184px;">A-M Systems</td>
			<td style="width:119px;">Model 3000</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">PowerLab 26T</td>
			<td style="width:184px;">AD Instruments</td>
			<td style="width:119px;">27T</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Force transducer</td>
			<td style="width:184px;">AD Instruments</td>
			<td style="width:119px;">0-50g</td>
			<td style="width:167px;">MLTF050/ST</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Head stage</td>
			<td style="width:184px;">AD Instruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Comes with AC/DC amplifier</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">LabChart7</td>
			<td style="width:184px;">AD Instruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Electrical leads</td>
			<td style="width:184px;">Any company</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Glass tools</td>
			<td style="width:184px;">Make yourself</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">For manipulating nerves</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cable and connectors</td>
			<td style="width:184px;">Any company</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Pipettes with bulbs</td>
			<td style="width:184px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">13-711-7</td>
			<td style="width:167px;">Box of 500</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Beakers</td>
			<td style="width:184px;">Any company</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Wax or modeling clay</td>
			<td style="width:184px;">Any company or local stores</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Stimulator</td>
			<td style="width:184px;">Grass Instruments</td>
			<td style="width:119px;">SD9 or S88</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="84" rowspan="2" style="height:84px;width:216px;">Plastic tip for suction electrode</td>
			<td rowspan="2" style="width:184px;">Local hardware store (Watt&#8217;s brand)</td>
			<td rowspan="2" style="width:119px;">&#188; inch OD x 0.170 inch ID</td>
			<td style="width:167px;">Cut in small pieces. Pull out over a flame and cut back the tip to the correct size</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:167px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

proprioception and tension receptors in crab limbs: student laboratory exercises

الغرض الأساسي من هذه الإجراءات هو إظهار لأغراض التدريس والبحث كيفية تسجيل نشاط الخلايا العصبية الحسية يعيشون الرئيسية المسؤولة عن استقبال الحس العميق كما هي الكشف عن موقف مشترك والحركة، وتوتر العضلات. يتم تسجيل النشاط الكهربائي من proprioceptors القشريات ومستقبلات التوتر الأجهزة العصبية الأساسية، ويتم استخدام محول لقياس القوة في وقت واحد التي يتم إنشاؤها من خلال تحفيز العصب المحرك. بالإضافة إلى ذلك، ونحن لشرح كيفية وصمة عار على الخلايا العصبية لإجراء تقييم سريع للترتيبها التشريحية أو لتثبيت دائم. تلطيخ يكشف منظمة التشريحية التي هو ممثل أجهزة chordotonal في معظم القشريات. مقارنة استجابات التوتر العصبي لاستجابات التحفيز هو أداة تعليمية فعالة في تحديد كيفية تعريف هذه الخلايا العصبية الحسية وظيفيا وكيف يرتبط التشريح إلى وظيفة. ثلاث تقنيات تلطيخوتعرض مما يسمح للباحثين ومدربين لاختيار الأسلوب الذي هو المثل الأعلى للمختبر بهم.

عندما يتمدد الجهاز PD من خلال توسيع تماما مشتركة، والنشاط في العصب PD قوية خلال حركة كما هو مبين في الثانية الأولى في الشكل 10. يبقى بعض النشاط في حين يقام أنه لا يزال في موقف فتح. هذا النشاط هو من الخلايا العصبية موقف ثابت الحساسة (النصف الثاني من تسجيل هو مبين في الشكل 10). حركة تثير استجابة أثناء النزوح، واطلاق موجودا في الغالب خلال تمتد من حبلا chordotonal (الشكل 11). مزيد من التحليل للطفرات يمكن تناولها بسهولة عن طريق فرز سعة النسبية. هذا هو نهج لإظهار مجموعات مختلفة من الخلايا العصبية الحسية تجنيدهم لشغل وظائف أو أنواع من الحركات 5. تتراوح سعة نموذجية ،25-1،5 بالسيارات، ولكن هذه القيم هي التي تعتمد على المقاومة (أي ضيق) من ختم شفط القطب. تردد التموج في رانه يتراوح حجم مختلف يمكن أيضا تمثيلها بيانيا للتحليل. ويمكن مقارنة القوى التي تولدها العضلات فتحت فيما يتعلق تردد التحفيز عن طريق بتركيب آثار الجهد لمرة ومنها على رأس كل منهما الآخر (أرقام 13A و B). هذا ويمكن أيضا أن يؤديها لكل موقف مشترك في كل تردد التحفيز معين. نشاط العصب التوتر يمكن بعد ذلك يرتبط مقدار القوة النسبية المتولدة في كل تردد التحفيز، ولكل موقف مشترك. كما هو الحال في العصب PD، وينظر إلى مجموعة متنوعة من سعة ارتفاع في استجابة لتقلص العضلات فتحت (الشكل 13C). لوحظ الترتيب التشريحي للخلايا العصبية في الساق المشي بشكل واضح مع الميثيلين الأزرق تلطيخ (الشكل 14). لاحظ مرونة chordotonal حبلا والتوتر الخلايا العصبية التي هي قريبة إلى apodeme. عدة somata بأقطار مختلفة ومواقع محددة د واضحة أيضا في هذا الرقم. يتم عرض كامل للعصب التوتر والعصبية الحركية نقالة في الشكل 15. وتظهر الخلايا العصبية الفردية من العصب PD مع تباين أعلى باستخدام 4-دي-2-ASP (الشكل 16) وكوكلي 2 (الشكل 17) الردم التقنيات. في تضخم عالية يمكن أن ينظر إلى النهايات الحسية داخل scolopales داعمة (أرقام 16B) 21،22،26. <img alt="الرقم 10" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig10.jpg" width="500px" /> الرقم 10. نقل وعقد في 0 درجة. الخلايا العصبية الحيوية هي قوية في إطلاق النار أثناء الحركة والمسامير من الخلايا العصبية الحساسة ثابتة موجودة في حين يتم الاحتفاظ مشتركة مفتوحة. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig10highres.jpg" target="_blank">اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر &lt;</a>/ أ&gt;. <img alt="الرقم 11" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig11.jpg" width="500px" /> الرقم 11. السريع فتح وإغلاق من استعرضوا بشكل كامل لتمديد (90-0 °) الموقف. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig11highres.jpg" target="_blank">اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر</a> . <img alt="الرقم 12" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig12.jpg" width="500px" /> الرقم 12. المسامير خارج الخلية المسجلة من العصبية PD. تم تمديد مشتركة تماما ثم انتقل بسرعة إلى ½ استعرضوا الموقف وبعد ذلك عقدت يزال. لاحظ النشاط أثناء الحركة والنشاط انخفض عند ساكنة. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig12highres.jpg" target="_blank">انقر هنا لعرض أكبر معهد العالم العربي</a><html> جنرال الكتريك. <img alt="الرقم 13" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig13.jpg" width="500px" /> الرقم 13. قوات النسبية التي يتم تطويرها مع المشترك استعرضوا بشكل كامل وحفز على ترددات مختلفة. (A) وتظهر آثار الجهد لمرة من محول القوة مع كل تردد التحفيز. (ب) يتم فرضه وآثار في لوحة وبألوان مختلفة لسهولة المقارنة. (C) الجهد لمرة وآثار النشاط الكهربائي المسجلة من العصبية التوتر عندما تم تحفيز العصب المحرك في 80 هرتز. لاحظ نمط منتظم من القطع الأثرية التحفيز بالمقارنة مع النشاط العصبي. أيضا، لاحظ سعة مختلفة من الاستجابات العصبية. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig13highres.jpg" target="_blank">اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر</a> . <html> ithin صفحة = &quot;دائما&quot;&gt; <img alt="الرقم 14" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig14.jpg" width="500px" /> الرقم 14. الميثيلين الأزرق وصمة عار من إعداد الساق المشي. وتظهر SOMAS الفردية مع النهايات الحسية إسقاط بهم في حبلا مرونة. على مقربة من apodeme يظهر الخلايا العصبية التوتر. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig14highres.jpg" target="_blank">اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر</a> . <img alt="الرقم 15" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig15.jpg" width="500px" /> الرقم 15. العصب التوتر الناجم عن نهاية البعيدة (الأسهم الحمراء) والانضمام إلى العصب المحرك (السهم الأخضر). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig15highres.jpg" target="_blank">اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر</a> . <html> ه = &quot;دائما&quot;&gt; <img alt="الرقم 16" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig16.jpg" width="500px" /> الرقم 16 (أ) A الظهر ملء العصب PD في الماجستير السرطان مع 4-دي-2-ASP. (B) التكبير العالي من النهايات الحسية. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig16highres.jpg" target="_blank">اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر</a> . <img alt="الرقم 17" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig17.jpg" width="500px" /> الرقم 17. الخلايا العصبية التي امتلأت كوكلي 2 ومعالجتها (A). مخطط تتبع من إعداد ملطخة عرض (B). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig17highres.jpg" target="_blank">اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر</a> . <table border="0" cellpadding="0" cellspac</html style=";text-align:right;direction:rtl">جي = &quot;0&quot; العرض = &quot;392&quot;&gt; <colgroup><col /><col /></colgroup><tbody><tr height="21"><td height="21" style="height:21px;width:235px;"> ملحي </td><td style="width:157px;"> ز / L </td></tr><tr height="20"><td height="20" style="height:20px;width:235px;"> كلوريد الصوديوم </td><td style="width:157px;"> 27.29 </td></tr><tr height="20"><td height="20" style="height:20px;width:235px;"> بوكل </td><td style="width:157px;"> 0.81 </td></tr><tr height="26"><td height="26" style="height:26px;width:235px;"> MgSO 4 • 7H 2 O </td><td style="width:157px;"> 4.81 </td></tr><tr height="26"><td height="26" style="height:26px;width:235px;"> و CaCl 2 • 2H 2 O </td><td style="width:157px;"> 1.85 </td></tr><tr height="26"><td height="26" style="height:26px;width:235px;"> نا 2 SO 4 • 10H 2 O </td><td style="width:157px;"> 0.97 </td></tr><tr height=&quot;20&quot;&gt; <td height="20" style="height:20px;width:235px;"> سكر العنب (الجلوكوز D-) </td><td style="width:157px;"> 1.982 </td></tr><tr height="20"><td height="20" style="height:20px;width:235px;"> حمض HEPES </td><td style="width:157px;"> 0.476 </td></tr><tr height="20"><td height="20" style="height:20px;width:235px;"> HEPES الملح </td><td style="width:157px;"> 2.08 </td></tr><tr height="40"><td height="40" style="height:40px;width:235px;"> ضبط الرقم الهيدروجيني إلى 8.1 مع هيدروكسيد الصوديوم أو حمض الهيدروكلوريك </td><td style="width:157px;"></td></tr></tbody></table> الجدول 1. صفات لسرطان البحر المالحة.

Watch this Scientific Journal Video about Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises at JoVE.com

مستقبلات الحس العميق والتوتر في أطراف السلطعون | علم الأعصاب | فيديو

Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises

وأظهرت تقنيات الفسيولوجية والتشريحية لمعالجة وظيفة وهيكل لproprioceptors المشتركة ومستقبلات توتر العضلات في الاطراف المشي القشريات.

استقبال الحس العميق والتوتر المستقبلات في اطراف سرطان البحر: تمارين مختبر طالبة

The primary purpose of these procedures is to demonstrate for teaching and research purposes how to record the activity of living primary sensory neurons ...

proprioception-tension-receptors-crab-limbs-student-laboratory

Research

Education

JoVE Journal

JoVE Core

Biology

Neuroscience

Fundamentals

Scientific Inquiry

SCIENTISTS IN ACTION

25.0K Views.  University of Kentucky.  وأظهرت تقنيات الفسيولوجية والتشريحية لمعالجة وظيفة وهيكل لproprioceptors المشتركة ومستقبلات توتر العضلات في الاطراف المشي القشريات. 

Video: Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises

Combining Behavioral Endocrinology and Experimental Economics: Testosterone and Social Decision Making

Behavioral endocrinological research in humans as well as in animals suggests that testosterone plays a key role in social interactions. Studies in rodents have shown a direct link between testosterone and aggressive behavior1 and folk wisdom adapts these findings to humans, suggesting that testosterone induces antisocial, egoistic or even aggressive behavior2. However, many researchers doubt a direct testosterone-aggression link in humans, arguing instead that testosterone is primarily involved in status-related behavior3,4. As a high status can also be achieved by aggressive and antisocial means it can be difficult to distinguish between anti-social and status seeking behavior.
We therefore set up an experimental environment, in which status can only be achieved by prosocial means. In a double-blind and placebo-controlled experiment, we administered a single sublingual dose of 0.5 mg of testosterone (with a hydroxypropyl-&beta;-cyclodextrin carrier) to 121 women and investigated their social interaction behavior in an economic bargaining paradigm. Real monetary incentives are at stake in this paradigm; every player A receives a certain amount of money and has to make an offer to another player B on how to share the money. If B accepts, she gets what was offered and player A keeps the rest. If B refuses the offer, nobody gets anything. A status seeking player A is expected to avoid being rejected by behaving in a prosocial way, i.e. by making higher offers.
The results show that if expectations about the hormone are controlled for, testosterone administration leads to a significant increase in fair bargaining offers compared to placebo. The role of expectations is reflected in the fact that subjects who report that they believe to have received testosterone make lower offers than those who say they believe that they were treated with a placebo. These findings suggest that the experimental economics approach is sensitive for detecting neurobiological effects as subtle as those achieved by administration of hormones. Moreover, the findings point towards the importance of both psychosocial as well as neuroendocrine factors in determining the influence of testosterone on human social behavior.

The procedure described in this protocol shows that testosterone administration and folk beliefs about testosterone may be associated with directly opposed social behaviors.

الجمع بين السلوكية الغدد الصماء والاقتصاد التجريبي : التيستوستيرون والاجتماعي اتخاذ القرار

Behavioral endocrinological research in humans as well as in animals suggests that testosterone plays a key role in social interactions. Studies in ...

A Procedure for Studying the Footshock-Induced Reinstatement of Cocaine Seeking in Laboratory Rats

The most insidious aspect of drug addiction is the high propensity for relapse. Animal models of relapse, known as reinstatement procedures, have been used extensively to study the neurobiology and phenomenology of relapse to drug use. Although procedural variations have emerged over the past several decades, the most conventional reinstatement procedures are based on the drug self-administration (SA) model. In this model, an animal is trained to perform an operant response to obtain drug. Subsequently, the behavior is extinguished by withholding response-contingent reinforcement. Reinstatement of drug seeking is then triggered by a discrete event, such as an injection of the training drug, re-exposure to drug-associated cues, or exposure to a stressor 1.
Reinstatement procedures were originally developed to study the ability of acute non-contingent exposure to the training drug to reinstate drug seeking in rats and monkeys 1, 2. Reinstatement procedures have since been modified to study the role of environmental stimuli, including drug-associated cues and exposure to various forms of stress, in relapse to drug seeking 1, 3, 4.
Over the past 15 years, a major focus of the reinstatement literature has been on the role of stress in drug relapse. One of the most commonly used forms of stress for studying this relationship is acute exposures to mild, intermittent, electric footshocks. The ability of footshock stress to induce reinstatement of drug seeking was originally demonstrated by Shaham and colleagues (1995) in rats with a history of intravenous heroin SA5. Subsequently, the effect was generalized to rats with histories of intravenous cocaine, methamphetamine, and nicotine SA, as well as oral ethanol SA 3, 6.
Although footshock-induced reinstatement of drug seeking can be achieved reliably and robustly, it is an effect that tends to be sensitive to certain parametrical variables. These include the arrangement of extinction and reinstatement test sessions, the intensity and duration of footshock stress, and the presence of drug-associated cues during extinction and testing for reinstatement. Here we present a protocol for footshock-induced reinstatement of cocaine seeking that we have used with consistent success to study the relationship between stress and cocaine seeking.

Animal models of relapse, known as reinstatement procedures, have been used extensively to study the role of stress in relapse to drug seeking. Here, we report on a method for inducing the reinstatement of cocaine seeking in laboratory rats via acute exposures to mild, intermittent electric footshock.

إجراء دراسة لإعادة Footshock الناتج عن السعي من الكوكايين في فئران التجارب

The most insidious aspect of drug addiction is the high propensity for relapse.  Animal models of relapse, known as reinstatement procedures, have been ...

Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that influence a cell's membrane potential and which we address in these experiments are: (1) Ion concentration of K+ on the outside of the membrane, and (2) the permeability of the membrane to specific ions. The crayfish abdominal extensor muscles are in groupings with some being tonic (slow) and others phasic (fast) in their biochemical and physiological phenotypes, as well as in their structure; the motor neurons that innervate these muscles are correspondingly different in functional characteristics. We use these muscles as well as the superficial, tonic abdominal flexor muscle to demonstrate properties in synaptic transmission. In addition, we introduce a sensory-CNS-motor neuron-muscle circuit to demonstrate the effect of cuticular sensory stimulation as well as the influence of neuromodulators on certain aspects of the circuit. With the techniques obtained in this exercise, one can begin to answer many questions remaining in other experimental preparations as well as in physiological applications related to medicine and health. We have demonstrated the usefulness of model invertebrate preparations to address fundamental questions pertinent to all animals.

The experiments demonstrate an easy approach for students to gain experience in examining muscle structure, synaptic responses, the effects of ion gradients and permeability on membrane potentials. Also, a sensory-CNS-motor-muscle circuit is presented to show a means to test effects of compounds on a neuronal circuit.

الإمكانيات الغشاء ، الردود متشابك ، الدارات العصبية ، تعديل العمليات العصبية والأنسجة العضلية باستخدام جراد البحر : تمارين مختبر طالبة

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that ...

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this experiment is to learn anatomy of the preparation by staining, dissection and viewing of neurons and sensory structures under a dissecting microscope. This is performed by using basic neurophysiological equipment to record the electrical activity from a joint receptor organ and staining techniques. The muscle receptor organ (MRO) system in the crayfish is analogous to the intrafusal muscle spindle in mammals, which aids in serving as a comparative model that is more readily accessible for electrophysiological recordings. In addition, these are identifiable sensory neurons among preparations. The preparation is viable in a minimal saline for hours which is amenable for student laboratory exercises. The MRO is also susceptible to neuromodulation which encourages intriguing questions in the sites of modulatory action and integration of dynamic signals of movements and static position along with a gain that can be changed in the system.

The primary purpose of this experiment is to understand how primary sensory neurons convey information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this report is present the anatomy of the preparation by dissection and viewing of neurons under a dissecting microscope.

هيئات مستقبلات العضلات في البطن جراد البحر : تمرين الطلاب في مختبر استقبال الحس العميق

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive ...

Physiological Experimentation with the Crayfish Hindgut: A Student Laboratory Exercise

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings with a force transducer to monitor the strength of contraction. In addition, we demonstrate how to visually monitor peristaltic activity, which can be used as a bioassay for various peptides, biogenic amines and neurotransmitters. This preparation is amenable to student laboratories in physiology and for demonstrating pharmacological concepts to students. This preparation has been in use for over 100 years, and it still offers much as a model for investigating the generation and regulation of peristaltic rhythms and for describing the mechanisms underlying their modulation. The pharmacological assays and receptor sub-typing that were started over 50 years ago on the hindgut still contribute to research today. This robust preparation is well suited to training students in physiology and pharmacology.

In this report we demonstrate techniques that can be used to investigate the biology of the crayfish hindgut. We show how to dissect a crayfish abdomen and study the associated anatomy, physiology and modulation of activity. The peristaltic activity and strength of contractions are measured using a force transducer.

الفسيولوجية التجريب مع المعى المؤخر جراد البحر : تمرين الطلاب مختبر

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings ...

Assaying Surface Expression of Chemosensory Receptors in Heterologous Cells

The vivid world of odors is recognized by the sense of olfaction. Olfaction in mice is mediated by a repertoire of about 1200 G Protein Coupled Receptors (GPCRs) 1 that are postulated to bind volatile odorant molecules and converting the extracellular signal into an intracellular signal by coupling with G protein G&alpha;olf. Binding of the odorants to the receptors is thought to follow a combinatorial rule, that is, one odorant may bind several receptors and one receptor may bind several odorants to varying degrees 2. Biochemical, signaling and ligand binding studies have been conveniently carried out for most GPCRs using heterologous cells. However use of heterologous cells for study of odorant receptors, was precluded for a long time since on transfection they failed to export to the surface. Saito et al have demonstrated single membrane pass Receptor Transporting Protein (RTP) family chaperones show enhanced expression in the olfactory sensory neurons and act as chaperones to traffic odorant receptors to the surface in heterologous cells, when co transfected together 3. To carry out biochemical assays for receptors using heterologous cells, one must first determine if the receptor shows robust surface expression in the cell line. This can be assayed by overexpressing the receptors with the chaperone RTP1S followed by live cell staining to fluorescently label the extracellular domain or a tag in the extracellular domain exclusively. Here we demonstrate a protocol to carry out live cell staining that can be used to detect odorant receptors on the surface of HEK293T cells conveniently. In addition, it may also be used to assay for surface expression of other chemosensory receptors or GPCRs.

Here we demonstrate a protocol to carry out live cell staining that can be used to detect odorant receptors on the surface of HEK293T cells conveniently. In addition, it may also be used to assay for surface expression of other chemosensory receptors or GPCRs.

معايرة تعبير حسي كيميائي السطحية من المستقبلات في خلايا غيروي

The vivid world of odors is recognized by the sense of olfaction. Olfaction in mice is mediated by a repertoire of about 1200 G Protein Coupled Receptors ...

Optical Imaging of Neurons in the Crab Stomatogastric Ganglion with Voltage-sensitive Dyes

Voltage-sensitive dye imaging of neurons is a key methodology for the understanding of how neuronal networks are organised and how the simultaneous activity of participating neurons leads to the emergence of the integral functionality of the network. Here we present the methodology of application of this technique to identified pattern generating neurons in the crab stomatogastric ganglion. We demonstrate the loading of these neurons with the fluorescent voltage-sensitive dye Di-8-ANEPPQ and we show how to image the activity of dye loaded neurons using the MiCAM02 high speed and high resolution CCD camera imaging system. We demonstrate the analysis of the recorded imaging data using the BVAna imaging software associated with the MiCAM02 imaging system. The simultaneous voltage-sensitive dye imaging of the detailed activity of multiple neurons in the crab stomatogastric ganglion applied together with traditional electrophysiology techniques (intracellular and extracellular recordings) opens radically new opportunities for the understanding of how central pattern generator neural networks work.

Here we present the methodology for fast and high resolution fluorescent voltage-sensitive dye imaging of detailed activity of neurons in the crab stomatogastric ganglion.

التصوير الضوئي للخلايا العصبية في العقدة كراب فموي معدي مع الجهد حساسة للملونات

Voltage-sensitive dye imaging of neurons is a key methodology for the understanding of how neuronal networks are organised and how the simultaneous ...

Use of pHluorin to Assess the Dynamics of Axon Guidance Receptors in Cell Culture and in the Chick Embryo

During development, axon guidance receptors play a crucial role in regulating axons sensitivity to both attractive and repulsive cues. Indeed, activation of the guidance receptors is the first step of the signaling mechanisms allowing axon tips, the growth cones, to respond to the ligands. As such, the modulation of their availability at the cell surface is one of the mechanisms that participate in setting the growth cone sensitivity. We describe here a method to precisely visualize the spatio-temporal cell surface dynamics of an axon guidance receptor both in vitro and in vivo in the developing chick spinal cord. We took advantage of the pH-dependent fluorescence property of a green fluorescent protein (GFP) variant to specifically detect the fraction of the axon guidance receptor that is addressed to the plasma membrane. We first describe the in vitro validation of such pH-dependent constructs and we further detail their use in vivo, in the chick spinal chord, to assess the spatio-temporal dynamics of the axon guidance receptor of interest.

We describe here the use of a pH-sensitive green fluorescent protein variant, pHluorin, to study the spatio-temporal dynamics of axon guidance receptors trafficking at the cell surface.&#160;The pHluorin-tagged receptor is expressed both in cell culture and in vivo, using electroporation of the chick embryo.

استخدام pHluorin لتقييم ديناميات مستقبلات الإرشاد أكسون في زراعة الخلايا وفي الجنين الفرخ

During development, axon guidance receptors play a crucial role in regulating axons sensitivity to both attractive and repulsive cues. Indeed, activation ...

Inducing Plasticity of Astrocytic Receptors by Manipulation of Neuronal Firing Rates

Close to two decades of research has established that astrocytes in situ and in vivo express numerous G protein-coupled receptors (GPCRs) that can be stimulated by neuronally-released transmitter. However, the ability of astrocytic receptors to exhibit plasticity in response to changes in neuronal activity has received little attention. Here we describe a model system that can be used to globally scale up or down astrocytic group I metabotropic glutamate receptors (mGluRs) in acute brain slices. Included are methods on how to prepare parasagittal hippocampal slices, construct chambers suitable for long-term slice incubation, bidirectionally manipulate neuronal action potential frequency, load astrocytes and astrocyte processes with fluorescent Ca2+ indicator, and measure changes in astrocytic Gq GPCR activity by recording spontaneous and evoked astrocyte Ca2+ events using confocal microscopy. In essence, a &#8220;calcium roadmap&#8221; is provided for how to measure plasticity of astrocytic Gq GPCRs. Applications of the technique for study of astrocytes are discussed. Having an understanding of how astrocytic receptor signaling is affected by changes in neuronal activity has important implications for both normal synaptic function as well as processes underlying neurological disorders and neurodegenerative disease.

Here we describe an adaptation of protocols used to induce homeostatic plasticity in neurons for the study of plasticity of astrocytic G protein-coupled receptors. Recently used to examine changes in astrocytic group I mGluRs in juvenile mice, the method can be applied to measure scaling of various astrocytic GPCRs, in tissue from adult mice in situ and in vivo, and to gain a better appreciation of the sensitivity of astrocytic receptors to changes in neuronal activity.

حمل اللدونة من نجمي المستقبلات بواسطة التلاعب أسعار اطلاق النار متعلق بالخلايا العصبية

Close to two decades of research has established that astrocytes in situ and in vivo express numerous G protein-coupled receptors (GPCRs) that can be ...

Receptor Autoradiography Protocol for the Localized Visualization of Angiotensin II Receptors

This protocol describes receptor binding patterns for Angiotensin II (Ang II) in the rat brain using a radioligand specific for Ang II receptors to perform receptor autoradiographic mapping.
Tissue specimens are harvested and stored at -80 &#176;C. A cryostat is used to coronally section the tissue (brain) and thaw-mount the sections onto charged slides. The slide-mounted tissue sections are incubated in 125I-SI-Ang II to radiolabel Ang II receptors. Adjacent slides are separated into two sets: &#39;non-specific binding&#39; (NSP) in the presence of a receptor saturating concentration of non-radiolabeled Ang II, or an AT1 Ang II receptor subtype (AT1R) selective Ang II receptor antagonist, and &#39;total binding&#39; with no AT1R antagonist. A saturating concentration of AT2 Ang II receptor subtype (AT2R) antagonist (PD123319, 10 &#181;M) is also present in the incubation buffer to limit 125I-SI-Ang II binding to the AT1R subtype. During a 30 min pre-incubation at ~22 &#176;C, NSP slides are exposed to 10 &#181;M PD123319 and losartan, while &#39;total binding&#39; slides are exposed to 10 &#181;M PD123319. Slides are then incubated with 125I-SI-Ang II in the presence of PD123319 for &#39;total binding&#39;, and PD123319 and losartan for NSP in assay buffer, followed by several &#39;washes&#39; in buffer, and water to remove salt and non-specifically bound radioligand. The slides are dried using blow-dryers, then exposed to autoradiography film using a specialized film and cassette. The film is developed and the images are scanned into a computer for visual and quantitative densitometry using a proprietary imaging system and a spreadsheet. An additional set of slides are thionin-stained for histological comparisons.
The advantage of using receptor autoradiography is the ability to visualize Ang II receptors in situ, within a section of a tissue specimen, and anatomically identify the region of the tissue by comparing it to an adjacent histological reference section.

Here we present a protocol to describe the localization of angiotensin II Type 1 receptors in the rat brain by quantitative, densitometric, in vitro receptor autoradiography using an iodine-125 labeled analog of angiotensin II.

بروتوكول تصوير الإشعاع الذاتي مستقبلات للالتصور المترجمة من أنجيوتنسين الثاني المستقبلات

This protocol describes receptor binding patterns for Angiotensin II (Ang II) in the rat brain using a radioligand specific for Ang II receptors to ...