Name: proprioception and tension receptors in crab limbs: student laboratory exercises
Uploaded: 2013-10-24T17:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 58 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises at JoVE.com

Die Autoren bedanken sich für die künstlerischen Beiträge der Hyewon Cooper.

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	<li>Whitear, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chordotonal+organs+in+Crustacea.">Chordotonal organs in Crustacea.</a> Nature. 187, 522-523 (1038).</li><li>Alexandrowicz, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+comparative+anatomy+of+leg+propriocetors+in+some+decapod+Crustacea.">The comparative anatomy of leg propriocetors in some decapod Crustacea.</a> J. Mar. Biol. Assoc. U.K. 52 (3), 605-634 (1972).</li><li>Hartman, H. B., Boettiger, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+functional+organization+of+the+propys-dactylus+organ+in+Cancer+irroratus+Say.">The functional organization of the propys-dactylus organ in Cancer irroratus Say.</a> Comp. Biochem. 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L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regeneration+and+molting+effects+on+a+proprioceptor+organ+in+the+Dungeness+crab,+Cancer+magister.">Regeneration and molting effects on a proprioceptor organ in the Dungeness crab, Cancer magister.</a> J. Neurobiol. 25 (5), 461-471 (1994).</li><li>Hartman, H. B., Austin, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proprioceptor+organs+in+the+antennae+of+Decapoda+Crustacea.">Proprioceptor organs in the antennae of Decapoda Crustacea.</a> J. Comp. Physiol. 81 (2), 187-202 (1972).</li><li>Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+sensory+processes+during+limb+regeneration+in+adult+crayfish.">Development of sensory processes during limb regeneration in adult crayfish.</a> J. Exp. Biol. 201 (Pt 11), 1745-1752 (1998).</li><li>Chung, Y. -. S., Cooper, R. M., Graff, J., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+acute+and+chronic+effect+of+low+temperature+on+survival,+heart+rate+and+neural+function+in+crayfish+(Procambarus+clarkii)+and+prawn+(Macrobrachium+rosenbergii)+species.">The acute and chronic effect of low temperature on survival, heart rate and neural function in crayfish (Procambarus clarkii) and prawn (Macrobrachium rosenbergii) species.</a> Open J. Mol. Int. Physiol. 2 (3), 75-86 (2012).</li><li>Blundon, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+temperature+and+thermal+history+on+neuromuscular+properties+of+two+crustacean+species.">Effects of temperature and thermal history on neuromuscular properties of two crustacean species.</a> J. Comp. Physiol. B. 158 (6), 689-696 (1989).</li><li>Cooper, R. M., Schapker, H., Adami, H., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+and+ventilatory+measures+in+crayfish+during+copulation.">Heart and ventilatory measures in crayfish during copulation.</a> Open J. Mol. Int. Physiol. 1 (3), 36-42 (2011).</li><li>Bierbower, S. M., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mechanistic+action+of+carbon+dioxide+on+a+neural+circuit+and+NMJ+communication.">The mechanistic action of carbon dioxide on a neural circuit and NMJ communication.</a> Journal of Experimental Zoology. , (2013).</li><li>Bierbower, S. M., Shuranova, Z. P., Viele, K., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensory+systems+and+environmental+change+on+behavior+during+social+interactions.">Sensory systems and environmental change on behavior during social interactions.</a> Brain Behav. 3 (1), 4-13 (2013).</li></ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen konkurrieren.

Der Zweck dieser Versuchsreihe 1) von einer identifizierbaren propriozeptiven Nervenspannorgan und lehren und zeigen die Grundprinzipien der extrazellulären Aufzeichnungen und 2) die Bedeutung von anatomischen Karten für die physiologische Funktion von bestimmten sensorischen Systeme streichen. Dieser experimentelle Ansatz und die Tiermodelle verwendet werden, sind preiswert und relativ einfach in der Neurophysiologie Lehrlabors durchzuführen. Die Neuronen Chordotonalorgane sind von zwei spezifischen Funktionstypen, die, die auf Bewegungen und die Reaktion auf statische Positionen. Einzelzellaufnahmen aus einer Vielfalt von Chordotonalorgane, egal welche gemeinsamen untersucht wird, haben gezeigt, dass dies der Fall 3,5 sein. Tatsächlich Chordotonalorgane mit den Antennenverbindungen von Hummer verbunden zeigen die gleichen zwei Sinnestypen und grundlegende Anatomie 27. Zusätzlich zu, dass es zwei Neuronentypen (Bewegung und position), die Neuronen die gleiche anatomische Anordnung an ihren jeweiligen elastischen Fäden. Die große Somata proximal am Strang befindet eher auf die dynamische Bewegung sensiblen Neuronen gehören. Neuronen, die statischen Positionen signalisiert haben kleine Zellkörper und distal entfernt. Diese Zellen sind tonisch aktiv. Der PD-Joint enthält nur einen einzigen chordotonal Orgel, während es zwei Chordotonalorgane in der Handwurzel-propodus (CP) und merus-Handwurzel (MC) Gelenke. Die Präparation auf propriozeptiven Strukturen in Blaukrabben (C. sapidus) für elektrophysiologische Aufnahme aussetzen erfordert eine Strategie, die Gelenkbewegungen statt in den Natur Positionen zu nehmen, während der Aufnahme von sensorischen Neuronen ermöglicht. Die Spannung, Nerven für den Opener Muskel im Bein Walking ist eine sehr feine Nerven aus mehreren Neuronen. Sofern darauf geachtet wird, die Spannung Nerven sowie der motorischen Nerven innervieren die Muskeln stimuliert werden, können in dieser Präparation beschädigt werden. Füroptimale Aufnahmen Saugelektroden müssen auf die Größe des Nervs angepasst werden. Aufnahmen sind in einem Schülerlabor mit einer 30-40-facher Vergrößerung Binokular-und Low-End-Mikromanipulatoren leicht zugänglich. Zukünftige Experimente, das wäre interessant, mit den gemeinsamen Chordotonalorgane verfolgen wäre, die strukturellen und physiologischen Beinprofile während der Regeneration bei verschiedenen Spezies in verschiedenen Phasen des Lebenszyklus zu untersuchen, wie eine Folgemaßnahme zu einer ersten Studie, die Cancer magister 19,26 verwendet . Fragen noch zu richten sind: 1) hat die Verteilung und Organisation von Nervenzellen regeneriert hängen vom Alter des Tieres beim Regenerieren ein Glied, 2) sind die axonalen Projektionen des ZNS (Bauchmark) in einem Regenerations Gliedmaßen Funktions oder tut es nehmen Sie sich Zeit und die gemeinsame Nutzung zu funktionellen Verbindungen herzustellen, und 3), was passiert mit den abgetrennten Axone proximal der Autotomie Ebene, wenn das Glied autotomized? 28 Krebstiere entsprechen den Umweltbedingungen und ihrer Umgebungstemperatur, aber es ist unklar, wie sie Koordination zu erhalten in einem neuronalen Schaltkreis, wie Nervenzellen ändern ihre Aktivität in Reaktion auf Temperaturänderungen. Eine langsame Geschwindigkeit der Änderung könnte dem Tier einige Zeit zur Akklimatisierung zu ermöglichen, während eine schnelle Änderung kann not29, 30. Physiologische Veränderungen im pH-Wert oder Osmolarität durch Stoffwechsel, Verhalten 31 oder Auswirkungen auf die Umwelt können ähnliche Herausforderungen zu neuronalen Schaltkreise in Propriozeption beteiligt zu präsentieren. Diese Krustentierpräparate sind ideal für die Lösung dieser Art von Problemen, weil ihre Funktion auch bei einer Einzelzellebene aus. In diesem Protokoll haben wir die physiologische Bedeutung der Spannung Neuronen bei der Überwachung der Kraft, die von dem Opener Muskel erzeugt demonstriert. Diese Spannung Rezeptoren können, um ihre Position innerhalb der apodeme mithilfe Färbeverfahren zurückverfolgt werden. DieseNeuronen, wie in Säugetieren, erkennen Kraft auf verschiedenen Ebenen und zu rekrutieren zusätzliche Neuronen wie die Kraft steigt. Die Frequenz der Aktivität hängt mit der Anregungsfrequenz des Motors Neuron bis zur Sättigung in Empfang erreicht wird. Mit einem Schnellverschluss-Protokoll mit dem gebogenen dactylus Gelenk, schnell verschwindet Spannung Aktivität, sondern kehrt auf die Wiedererlangung Spannung in einer vollständig ausge Joint dann. Dies ist ein klassisches experimentelles Verfahren, um die Kraft auf Zug-Rezeptoren gemessen illustrieren. Verschiedene Neuromodulatoren können sich auf die Herstellung angewendet werden, um zu sehen, wie sie die Entwicklung der Kraft und der neuronalen Reaktion bewirkt. Einer der wichtigsten Aspekte ist, wie die neuronalen Antworten werden verarbeitet und im Zentralnervensystem und ihr Einfluss auf die Aktivität von Motoneuronen integriert. Die Techniken, die wir gezeigt haben, erlauben es, zu starten, um mehr Informationen über die Spannung (sensorischen) Nerven Motor Neuron Schaltungsfunktion, dh das Signal in einem intakten Bein zum Ganglion und Rücken Adresseauf den Muskel. Die Färbung Verfahren nachgewiesen sind der Schlüssel zum Verständnis der Physiologie der Sinnesnervenzellen, die propriozeptiven Organe innervieren. Anatomische Anordnung der Neuronen basierend auf der Funktion und der Größe des Soma sind ähnlich in den verschiedenen Chordotonalorgane innerhalb der Krabben Beine. Es ist nicht bekannt, ob ähnliche neuronale Arrangements sind auch in anderen Schalentierarten und Insekten gefunden. Die Kombination von physiologischen Aufnahmen von Einzelzellen und Kartierung der Lage ermöglicht direkten Strukturfunktionsbeziehungen. Die langfristige Erhaltung der anatomischen Anordnung mit CoCl 2-Färbung und Fixierung ermöglicht es, wiederholt zu Maßnahmen und Bewertung der strukturellen Anordnung. Propriozeption und Spannung Empfang der Skelettmuskeln sind Sinnesmodalitäten, die koordinierte Verhaltensweisen und Reaktionen auf externe und interne Umfeld für Gelenktiere in einer Vielzahl von Skelettmuskel-Konfiguration zu aktivierens. Der Muskel-Rezeptor-Orgel in der Bauch der Krebse ist eine weitere gut dokumentierte Vorbereitung (siehe Crawdad Projekt; <a href="http://www.crawdad.cornell.edu/">http://www.crawdad.cornell.edu/</a> ) für Lehrzwecke der Propriozeption mit nur zwei Neuronen pro Bauch Hemi-Segment 23 . Die Möglichkeit, von einzelnen Nervenzellen auf sensorische Nervenbündel aufnehmen weitere Einzelheiten, dass die Hilfe für das Verständnis der grundlegenden Prinzipien der sensorischen Rezeption. Diese relativ einfache Krustentierpräparate erlauben es, grundlegende Aspekte der Propriozeption und Spannungsüberwachung anzugehen, mit dem Potenzial, die neuronalen Schaltkreise, die zentrale Integration von propriozeptiven und andere sensorische Eingänge 9-12, 32, 33 ermöglichen zu bestimmen.

Propriozeption ist die Empfindung von Gliedmaßen Position und Bewegung, die koordinierte Verhalten des Motors ermöglicht. Propriozeptoren aus Position (statisch) und Bewegung (kinästhetischen)-Rezeptoren. Bei Insekten und Krebstiere, Chordotonalorgane sind die Strukturen, die diese Informationen an das ZNS 1 vorzusehen. Nicht alle Chordotonalorgane spannen einen gemeinsamen, aber sie können immer noch Gelenkbewegungen aufgrund ihrer Befestigung auf den apodemes (Sehnen-Strukturen), die das Gelenk überspannen und sich in Verbindung mit der Skelettmuskulatur und Gelenkbewegung zu überwachen. Crab Beine haben sechs Gelenke, die jeweils mit einem oder zwei Chordotonalorgane 2. Typischerweise wird eine chordotonal Orgel hat 60 bis 100 oder mehr sensorischen Neuronen innerhalb eines elastischen Strang eingebettet ist, Neuronen, die statische gemeinsame Position, Richtung und Geschwindigkeit der Bewegung 06.03 signalisieren. Die Eingabe von Chordotonalorgane an jedem Gelenk-und Bein wird dann zentral verarbeitet so dass koordinierte Bewegungen durch das Tier. <p class="jove_content"&gt; Die Kräfte, die Beinmuskulatur während isometrischer und isotonische Kontraktionen werden durch Spannung Rezeptoren mit Muskelfasern und deren Anhänge zu apodemes7-9 zugeordnet erkannt. In den Krebstieren Laufbein Protokolle, präsentieren wir Methodik für die Aufnahmen von primären sensorischen Neuronen, die Propriozeption überwachen und den Neuronen, die Kräfte, die durch Muskelfaser erzeugt reagieren zu folgen. Eine Technik zum Aktivieren Beinbewegungen und Quantifizierung Krafterzeugung wird ebenfalls vorgestellt sowie anatomische Techniken, die verwendet werden können, um die Anordnung dieser peripheren Nervensystemstrukturen zu charakterisieren. Die unten demonstriert Verfahren ermöglichen strukturelle und funktionelle Analyse der Neuronen, die beide Arten von Rezeptoren relativ zu ihrer Lage auf einem chordotonal elastischen Strang und apodeme innervieren. Um zu veranschaulichen, verwenden wir die propodite-dactylopodite (PD) chordotonal Organ, das Organ, das den meisten distalen Segment der Krabbenbein 3 überspannt.Obwohl detaillierte elektrophysiologische Studien begann in den 1930er Jahren und werden noch heute aus durchgeführt wird, haben einige Aspekte werden über die Segmentverbindungen von Propriozeptoren in den verschiedenen Gelenken und ihre Rollen in der koordinierten Steuerung muscles10-16 bekannt. Festlegung der Struktur-Funktions-Beziehung zwischen den propriozeptiven Organe, Muskeln und das Nervensystem wird dazu beitragen, diese Rollen zu definieren. Zum Beispiel wird die Beschriftung der Somata und distalen Enden der Spannung in den Neuronen apodeme eingefügt ihrer Lage relativ zu Muskelfasern 8,17-21 offenbaren. Wir präsentieren drei Färbetechniken für Krustentier Beine, die in der Forschung und akademischen Labors verwendet werden kann. Methylenblau-Färbung bietet geeigneten Kontrast für Muskeln und Nerven und wird als eine einfache Technik für Studenten, um Anatomie zu lernen empfohlen. Labs, die Fluoreszenzmikroskopie Setups können selektiver neuronaler Färbung durch kurzes Aussetzen des Nerven erreichens an den Vitalfarbstoff 4-Di-2-ASP. Die dritte Alternative ist CoCl 2 Hinterfüllung, die die Nervenzellen färbt und fixiert, und keine Fluoreszenz-Bildgebung erforderlich. Obwohl es Arbeit und Zeit intensiv, diese Färbung verleiht hohen Kontrast und Spezifität für die Nerven, die gefüllt sind. Zusammen können diese Techniken für den Vergleich verschiedener Chordotonalorgane nicht nur innerhalb einer Extremität oder zwischen den Gliedern, sondern auch bei anderen Krebstier-und Insektenarten 20-22, verwendet werden. Blaue Krabben (C. sapidus) in physiologischen und anatomischen Aufnahmen Färbung verwendet werden, sind in der ganzen Süd-und Südostgrenze der Vereinigten Staaten zur Verfügung stehen. Diese Art dient als Vertreter der chordotonal und Spannung Nerven Regelungen in den meisten Krebse gefunden. Laboratories an der Westküste wird es vorziehen, die viel größer Dungeness Crab (Cancer magister) für diese Experimente zu verwenden.

<table><tbody><tr><td>Sylgard</td><td>Dow Corning</td><td>182 silicone kit</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C5670</td><td></td></tr><tr><td>HEPES acid</td><td>Sigma</td><td>3375</td><td>Free acid, crystalline</td></tr><tr><td>HEPES base</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>D-Glucose</td><td>Sigma</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;&amp;bull;7H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Sigma</td><td>M2643</td><td></td></tr><tr><td>Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;SO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;&amp;bull;10H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Sigma</td><td>246980</td><td></td></tr><tr><td>Bouin&amp;rsquo;s solution fixative</td><td>Sigma</td><td>HT10-1-32</td><td>Caution: Hazardous material (Special shipping cost required)</td></tr><tr><td>CoCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma</td><td></td><td>Caution: Hazardous material. Please follow proper disposal according to local and federal regulations.</td></tr><tr><td>Methylene blue chloride</td><td>Matheson Co., Inc</td><td>Basic Blue 9, C.I. 52015</td><td></td></tr><tr><td>4-Di-2-ASP</td><td>Molecular Probes</td><td></td><td>4-(4-diethylaminostyryl)-N-methylpyridinium iodide</td></tr><tr><td>Bleach</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td>To chloride silver wire</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>221465</td><td>To adjust pH</td></tr><tr><td>HCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H1758</td><td>To adjust pH</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Materials</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dissecting tools</td><td>World Precision Instruments</td><td>assortment</td><td></td></tr><tr><td>Intracellular electrode probe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Faraday cage</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Insect Pins</td><td>Fine Science Tools, Inc</td><td>26001-60</td><td></td></tr><tr><td>Dissecting microscope (100X)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fiber optic lamp</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Small adjustable mirror</td><td></td><td></td><td>To direct light beam toward the preparation.</td></tr><tr><td>Glass electrodes</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CLS7095B5X</td><td>Box of 200, suction electrodes</td></tr><tr><td>Micromanipulator</td><td>World Precision Instruments</td><td>MD4-M3-R</td><td>Can fix for base or on a metal rod</td></tr><tr><td>Raised preparation stand</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Silver wire (10/1,000 inch)</td><td>A-M Systems</td><td>782500</td><td></td></tr><tr><td>Computer</td><td>Any company</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AC/DC differential amplifier</td><td>A-M Systems</td><td>Model 3000</td><td></td></tr><tr><td>PowerLab 26T</td><td>AD Instruments</td><td>27T</td><td></td></tr><tr><td>Force transducer</td><td>AD Instruments</td><td>0-50g</td><td>MLTF050/ST</td></tr><tr><td>Head stage</td><td>AD Instruments</td><td></td><td>Comes with AC/DC amplifier</td></tr><tr><td>LabChart7</td><td>AD Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Electrical leads</td><td>Any company</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glass tools</td><td>Make yourself</td><td></td><td>For manipulating nerves</td></tr><tr><td>Cable and connectors</td><td>Any company</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipettes with bulbs</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-711-7</td><td>Box of 500</td></tr><tr><td>Beakers</td><td>Any company</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wax or modeling clay</td><td>Any company or local stores</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stimulator</td><td>Grass Instruments</td><td>SD9 or S88</td><td></td></tr><tr><td>Plastic tip for suction electrode</td><td>Local hardware store (Watt&amp;rsquo;s brand)</td><td>&amp;frac14; inch OD x 0.170 inch ID</td><td>Cut in small pieces. Pull out over a flame and cut back the tip to the correct size</td></tr></tbody></table>

proprioception and tension receptors in crab limbs: student laboratory exercises

Das primäre Ziel dieser Verfahren ist es, Lehre und Forschung zeigen, wie die Aktivität der lebenden primären sensorischen Neuronen für Propriozeption verantwortlich, da sie gemeinsame Erfassung Position und Bewegung und Muskelspannung aufzeichnen. Die elektrische Aktivität von Krebstier Propriozeptoren und Spannung Rezeptoren wird durch neurophysiologische Grundlagen Instrumentierung aufgezeichnet und ein Wandler wird verwendet, um gleichzeitig die Kraft, die durch Stimulation eines motorischen Nerven erzeugt wird. Außerdem zeigen wir, wie man die Neuronen für eine schnelle Beurteilung ihrer anatomischen Anordnung oder zur dauerhaften Fixierung färben. Die Färbung zeigt anatomische Organisation, die Vertreter der Chordotonalorgane in den meisten Krebstieren ist. Vergleichen der Spannung Nervenreaktionen auf die propriozeptive Antwort ist ein wirksames Werkzeug für die Lehre, wie diese sensorischen Neuronen funktional definiert und wie die Anatomie der Funktion korreliert. Drei Färbetechnikenpräsentiert so dass die Forscher und Dozenten, eine Methode, die sich ideal für ihre Labor ist zu wählen.

Wenn die PD Organ wird durch die gemeinsame, die sich voll gestreckt, ist Aktivität in der PD Nerven während der Bewegung wie bei der ersten Sekunde in Abbildung 10 dargestellt robust. Einige Aktivität bleibt, während es noch in der geöffneten Position gehalten wird. Diese Tätigkeit ist von den statischen positionsempfindlichen Neuronen (zweite Hälfte des in Abbildung 10 dargestellt Aufnahme). Bewegung ruft eine Reaktion während der Verschiebung, und die Brenn ist vor allem während der Streckung der chordotonal Strang (Abbildung 11) vorhanden ist. Eine weitere Analyse der Spitzen können leicht durch Sortieren der relativen Amplituden fahren werden. Dies ist ein Ansatz, um verschiedene Populationen von sensorischen Neuronen, die für Positionen oder Arten von Bewegungen 5 rekrutiert demonstrieren. Typische Amplituden reichen von 0,25 bis 1,5 mV, aber diese Werte sind abhängig von dem Widerstand (dh Dichtigkeit) der Saugelektrode Dichtung. Häufigkeit der Spitzen in ter verschiedene Größenbereiche können auch zur Analyse grafisch dargestellt werden. Kräfte, die durch den Öffner Muskel bezüglich der Stimulationsfrequenz erzeugt wird, kann durch Überlagerung der jeweiligen Spannung-Zeit-Spuren auf der jeweils anderen (13A und B) verglichen werden. Dies kann auch für jedes gemeinsame Position zu jedem gegebenen Stimulationsfrequenz durchgeführt werden. Aktivität des Nerven Spannung kann dann mit dem Betrag der relativen Kraft an jedem Stimulationsfrequenz erzeugt korreliert werden, und für jede gemeinsame Position. Wie in der PD Nerven werden eine Vielzahl von Spitzenamplituden entsprechend der Kontraktion des Muskels Öffner (Fig. 13C) gesehen. Anatomische Anordnung der Neuronen in der Laufbein ist eindeutig mit Methylenblaufärbung (Fig. 14) beobachtet. Beachten Sie die elastischen chordotonal Strang und Spannung Neuron, das in der Nähe des apodeme ist. Mehrere Zellkörper mit unterschiedlichen Durchmessern eind bestimmten Orten sind auch in dieser Figur sichtbar. Der gesamte Verlauf der Spannung und Nerven Trage motorischen Nerven sind in Abbildung 15 dargestellt. Einzelne Neuronen des Nerven PD mit höheren Kontrast mit 4-Di-2-ASP (Abbildung 16) und CoCl 2 (Abbildung 17) Hinterfüllung Techniken gezeigt. Bei hoher Vergrößerung die sensorischen Endungen kann innerhalb der unterstütz scolopales (16B) 21,22,26 gesehen werden. <img alt="10" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig10.jpg" width="500px" /> Abbildung 10. Bewegen und halten bei 0 °. Die dynamischen Neuronen sind robust in Brand während der Bewegung und Spitzen von elektrostatisch empfindlichen Neuronen vorhanden sind, während die Verbindung offen gehalten. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig10highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Ansicht &lt;</a>/ A&gt;. <img alt="11" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig11.jpg" width="500px" /> Abbildung 11. Schneller und Schließen von offenen voll ausgebaut (90-0 °) Position gebogen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig11highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Ansicht</a> . <img alt="12" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig12.jpg" width="500px" /> Abbildung 12. Extrazelluläre Spikes von der PD Nerven aufgezeichnet. Das Gelenk ist voll ausgefahren und dann schnell bewegt, um einen ½ Beugestellung und dann ruhig halten. Beachten Sie die Aktivität während der Bewegung und verminderte Aktivität, wenn statisch. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig12highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier, um größere ima ansehen</a>ge. <img alt="13" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig13.jpg" width="500px" /> Abbildung 13. Die relativen Kräfte, die mit der gemeinsamen Entwicklung sind komplett gebogen und an den verschiedenen Frequenzen stimuliert. (A) Spannung-Zeitspuren aus dem Kraftaufnehmer sind mit jedem Stimulationsfrequenz gezeigt. (B) Die Spuren in Feld A sind in verschiedenen Farben für Leichtigkeit im Vergleich überlagert. (C) Spannung-Zeitverläufe der elektrischen Aktivität von Nerven der Spannung aufgezeichnet, wenn die motorischen Nerven wurde bei 80 Hz stimuliert. Beachten Sie die regelmäßigen Muster der Reizartefakten im Vergleich zu der neuronalen Aktivität. Beachten Sie auch, die verschiedenen Amplituden der neuronalen Antworten. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig13highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Ansicht</a> . Abbildung 14. Methylenblau-Färbung des Laufbein Vorbereitung. Individuelle Somen sind mit ihren sensorischen Endungen in den elastischen Strang vorstehenden gezeigt. In der Nähe des apodeme eine Spannung Neuron gezeigt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig14highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Ansicht</a> . <img alt="15" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig15.jpg" width="500px" /> Abbildung 15. Nerven Die Spannung, die sich aus distalen Ende (rote Pfeile) und Verbinden der motorischen Nerven (grüner Pfeil). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig15highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Ansicht</a> . Abbildung 16. (A) Ein Back-Füllung des PD Nerven in Cancer magister mit 4-Di-2-ASP. (B) Höhere Vergrößerung von sensorischen Endungen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig16highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Ansicht</a> . <img alt="17" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51050/51050fig17.jpg" width="500px" /> Abbildung 17. Neuronen, die mit CoCl 2 befüllt und verarbeitet wurden (A). Traced Umriss der Vorbereitung gezeigt gefärbt (B). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51050/51050fig17highres.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Ansicht</a> . <table border="0" cellpadding="0" cellspacIng. = &quot;0&quot; width = &quot;392&quot;&gt; <colgroup><col /><col /></colgroup><tbody><tr height="21"><td height="21" style="height:21px;width:235px;"> Salzig </td><td style="width:157px;"> g / L </td></tr><tr height="20"><td height="20" style="height:20px;width:235px;"> NaCl </td><td style="width:157px;"> 27.29 </td></tr><tr height="20"><td height="20" style="height:20px;width:235px;"> KCl </td><td style="width:157px;"> 0,81 </td></tr><tr height="26"><td height="26" style="height:26px;width:235px;"> MgSO 4 • 7H 2 O </td><td style="width:157px;"> 4,81 </td></tr><tr height="26"><td height="26" style="height:26px;width:235px;"> CaCl 2 • 2H 2 O </td><td style="width:157px;"> 1,85 </td></tr><tr height="26"><td height="26" style="height:26px;width:235px;"> Na 2 SO 4 • 10H 2 O </td><td style="width:157px;"> 0,97 </td></tr><tr height=&quot;20&quot;&gt; <td height="20" style="height:20px;width:235px;"> Dextrose (D-Glucose) </td><td style="width:157px;"> 1.982 </td></tr><tr height="20"><td height="20" style="height:20px;width:235px;"> HEPES Säure </td><td style="width:157px;"> 0.476 </td></tr><tr height="20"><td height="20" style="height:20px;width:235px;"> HEPES Salz </td><td style="width:157px;"> 2,08 </td></tr><tr height="40"><td height="40" style="height:40px;width:235px;"> Auf pH 8,1 mit NaOH oder HCl </td><td style="width:157px;"></td></tr></tbody></table> Tabelle 1. Krabben Rezepte für Kochsalzlösung.

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Propriozeption und Spannungsrezeptoren in Krabbengliedern | Neurowissenschaften | Video

Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises

Physiologischen und anatomischen Techniken werden gezeigt, Funktion und Struktur für die gemeinsame Propriozeptoren und Muskelspannung Rezeptoren in Krebstier Fuß Gliedmaßen zu adressieren.

Propriozeption und Spannungsrezeptoren in Crab Gliedmassen: Schülerlabor Übungen

The primary purpose of these procedures is to demonstrate for teaching and research purposes how to record the activity of living primary sensory neurons ...

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25.1K Aufrufe.  University of Kentucky.  Physiologischen und anatomischen Techniken werden gezeigt, Funktion und Struktur für die gemeinsame Propriozeptoren und Muskelspannung Rezeptoren in Krebstier Fuß Gliedmaßen zu adressieren. 

Serie: Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises

Assessing Forelimb Function after Unilateral Cervical SCI using Novel Tasks: Limb Step-alternation, Postural Instability and Pasta Handling

Cervical spinal cord injury (cSCI) can cause devastating neurological deficits, including impairment or loss of upper limb and hand function. A majority of the spinal cord injuries in humans occur at the cervical levels. Therefore, developing cervical injury models and developing relevant and sensitive behavioral tests is of great importance. Here we describe the use of a newly developed forelimb step-alternation test after cervical spinal cord injury in rats. In addition, we describe two behavioral tests that have not been used after spinal cord injury: a postural instability test (PIT), and a pasta-handling test. All three behavioral tests are highly sensitive to injury and are easy to use. Therefore, we feel that these behavioral tests can be instrumental in investigating therapeutic strategies after cSCI.

Three new behavioral tests (forelimb step-alternation, postural instability test, pasta handling test) for evaluating forelimb function after cervical spinal cord injury in rodents are described.

Bewertung der Vordergliedmaße Funktion nach Einseitige Cervical SCI mit Novel Aufgaben: Gliedmaßen Step-Wechsel, Haltungsinstabilität und Pasta Handhabung

Cervical spinal cord injury (cSCI) can cause devastating neurological deficits, including impairment or loss of upper limb and hand function. A majority ...

Forschung

Verhalten

Combining Behavioral Endocrinology and Experimental Economics: Testosterone and Social Decision Making

Behavioral endocrinological research in humans as well as in animals suggests that testosterone plays a key role in social interactions. Studies in rodents have shown a direct link between testosterone and aggressive behavior1 and folk wisdom adapts these findings to humans, suggesting that testosterone induces antisocial, egoistic or even aggressive behavior2. However, many researchers doubt a direct testosterone-aggression link in humans, arguing instead that testosterone is primarily involved in status-related behavior3,4. As a high status can also be achieved by aggressive and antisocial means it can be difficult to distinguish between anti-social and status seeking behavior.
We therefore set up an experimental environment, in which status can only be achieved by prosocial means. In a double-blind and placebo-controlled experiment, we administered a single sublingual dose of 0.5 mg of testosterone (with a hydroxypropyl-&beta;-cyclodextrin carrier) to 121 women and investigated their social interaction behavior in an economic bargaining paradigm. Real monetary incentives are at stake in this paradigm; every player A receives a certain amount of money and has to make an offer to another player B on how to share the money. If B accepts, she gets what was offered and player A keeps the rest. If B refuses the offer, nobody gets anything. A status seeking player A is expected to avoid being rejected by behaving in a prosocial way, i.e. by making higher offers.
The results show that if expectations about the hormone are controlled for, testosterone administration leads to a significant increase in fair bargaining offers compared to placebo. The role of expectations is reflected in the fact that subjects who report that they believe to have received testosterone make lower offers than those who say they believe that they were treated with a placebo. These findings suggest that the experimental economics approach is sensitive for detecting neurobiological effects as subtle as those achieved by administration of hormones. Moreover, the findings point towards the importance of both psychosocial as well as neuroendocrine factors in determining the influence of testosterone on human social behavior.

The procedure described in this protocol shows that testosterone administration and folk beliefs about testosterone may be associated with directly opposed social behaviors.

Die Kombination Behavioral Endokrinologie und Experimentelle Wirtschaftsforschung: Testosteron und Social Decision Making

Behavioral endocrinological research in humans as well as in animals suggests that testosterone plays a key role in social interactions. Studies in ...

Neurowissenschaften

Physiological Recordings of High and Low Output NMJs on the Crayfish Leg Extensor Muscle

We explain in detail how to expose and conduct electrophysiological recordings of synaptic responses for high (phasic) and low (tonic) output motor neurons innervating the extensor muscle in the walking leg of a crayfish. Distinct differences are present in the physiology and morphology of the phasic and tonic nerve terminals. The tonic axon contains many more mitochondria, enabling it to take a vital stain more intensely than the phasic axon. The tonic terminals have varicosities, and the phasic terminal is filiform. The tonic terminals are low in synaptic efficacy but show dramatic facilitated responses. In contrast, the phasic terminals are high in quantal efficacy but show synaptic depression with high frequency stimulation. The quantal output is measured with a focal macropatch electrode placed directly over the visualized nerve terminals. Both phasic and tonic terminals innervate the same muscle fibers, which suggests that inherent differences in the neurons, rather than differential retrograde feedback from the muscle, account for the morphological and physiological differentiation.

This article demonstrates how to conduct electrophysiological recordings of synaptic responses on the extensor muscle in the walking leg of a crayfish and how the nerve terminals are visualized to show the gross morphological differences of high- and low-output nerve terminals.

Physiologische Aufnahmen von High-und Low Output NMJs auf der Crayfish Leg Streckmuskel

We explain in detail how to expose and conduct electrophysiological recordings of synaptic responses for high (phasic) and low (tonic) output motor ...

Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that influence a cell's membrane potential and which we address in these experiments are: (1) Ion concentration of K+ on the outside of the membrane, and (2) the permeability of the membrane to specific ions. The crayfish abdominal extensor muscles are in groupings with some being tonic (slow) and others phasic (fast) in their biochemical and physiological phenotypes, as well as in their structure; the motor neurons that innervate these muscles are correspondingly different in functional characteristics. We use these muscles as well as the superficial, tonic abdominal flexor muscle to demonstrate properties in synaptic transmission. In addition, we introduce a sensory-CNS-motor neuron-muscle circuit to demonstrate the effect of cuticular sensory stimulation as well as the influence of neuromodulators on certain aspects of the circuit. With the techniques obtained in this exercise, one can begin to answer many questions remaining in other experimental preparations as well as in physiological applications related to medicine and health. We have demonstrated the usefulness of model invertebrate preparations to address fundamental questions pertinent to all animals.

The experiments demonstrate an easy approach for students to gain experience in examining muscle structure, synaptic responses, the effects of ion gradients and permeability on membrane potentials. Also, a sensory-CNS-motor-muscle circuit is presented to show a means to test effects of compounds on a neuronal circuit.

Membranpotentiale, Synaptic Responses, neuronalen, Neuromodulation und Muscle Histologie Mit dem Crayfish: Schülerlabor Übungen

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that ...

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception 

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this experiment is to learn anatomy of the preparation by staining, dissection and viewing of neurons and sensory structures under a dissecting microscope. This is performed by using basic neurophysiological equipment to record the electrical activity from a joint receptor organ and staining techniques. The muscle receptor organ (MRO) system in the crayfish is analogous to the intrafusal muscle spindle in mammals, which aids in serving as a comparative model that is more readily accessible for electrophysiological recordings. In addition, these are identifiable sensory neurons among preparations. The preparation is viable in a minimal saline for hours which is amenable for student laboratory exercises. The MRO is also susceptible to neuromodulation which encourages intriguing questions in the sites of modulatory action and integration of dynamic signals of movements and static position along with a gain that can be changed in the system.

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception

The primary purpose of this experiment is to understand how primary sensory neurons convey information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this report is present the anatomy of the preparation by dissection and viewing of neurons under a dissecting microscope.

Muscle-Rezeptor-Organe in der Crayfish Abdomen: Ein Schülerlabor Übung in Propriozeption

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive ...

Physiological Experimentation with the Crayfish Hindgut: A Student Laboratory Exercise

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings with a force transducer to monitor the strength of contraction. In addition, we demonstrate how to visually monitor peristaltic activity, which can be used as a bioassay for various peptides, biogenic amines and neurotransmitters. This preparation is amenable to student laboratories in physiology and for demonstrating pharmacological concepts to students. This preparation has been in use for over 100 years, and it still offers much as a model for investigating the generation and regulation of peristaltic rhythms and for describing the mechanisms underlying their modulation. The pharmacological assays and receptor sub-typing that were started over 50 years ago on the hindgut still contribute to research today. This robust preparation is well suited to training students in physiology and pharmacology.

In this report we demonstrate techniques that can be used to investigate the biology of the crayfish hindgut. We show how to dissect a crayfish abdomen and study the associated anatomy, physiology and modulation of activity. The peristaltic activity and strength of contractions are measured using a force transducer.

Physiologische Experimente mit den Crayfish Enddarm: Ein Schülerlabor Übung

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings ...

Assaying Surface Expression of Chemosensory Receptors in Heterologous Cells

The vivid world of odors is recognized by the sense of olfaction. Olfaction in mice is mediated by a repertoire of about 1200 G Protein Coupled Receptors (GPCRs) 1 that are postulated to bind volatile odorant molecules and converting the extracellular signal into an intracellular signal by coupling with G protein G&alpha;olf. Binding of the odorants to the receptors is thought to follow a combinatorial rule, that is, one odorant may bind several receptors and one receptor may bind several odorants to varying degrees 2. Biochemical, signaling and ligand binding studies have been conveniently carried out for most GPCRs using heterologous cells. However use of heterologous cells for study of odorant receptors, was precluded for a long time since on transfection they failed to export to the surface. Saito et al have demonstrated single membrane pass Receptor Transporting Protein (RTP) family chaperones show enhanced expression in the olfactory sensory neurons and act as chaperones to traffic odorant receptors to the surface in heterologous cells, when co transfected together 3. To carry out biochemical assays for receptors using heterologous cells, one must first determine if the receptor shows robust surface expression in the cell line. This can be assayed by overexpressing the receptors with the chaperone RTP1S followed by live cell staining to fluorescently label the extracellular domain or a tag in the extracellular domain exclusively. Here we demonstrate a protocol to carry out live cell staining that can be used to detect odorant receptors on the surface of HEK293T cells conveniently. In addition, it may also be used to assay for surface expression of other chemosensory receptors or GPCRs.

Here we demonstrate a protocol to carry out live cell staining that can be used to detect odorant receptors on the surface of HEK293T cells conveniently. In addition, it may also be used to assay for surface expression of other chemosensory receptors or GPCRs.

Assaying Oberfläche Expression von Chemosensoren in heterologen Zellen

The vivid world of odors is recognized by the sense of olfaction. Olfaction in mice is mediated by a repertoire of about 1200 G Protein Coupled Receptors ...

Studying the Neural Basis of Adaptive Locomotor Behavior in Insects

Studying the neural basis of walking behavior, one often faces the problem that it is hard to separate the neuronally produced stepping output from those leg movements that result from passive forces and interactions with other legs through the common contact with the substrate. If we want to understand, which part of a given movement is produced by nervous system motor output, kinematic analysis of stepping movements, therefore, needs to be complemented with electrophysiological recordings of motor activity. The recording of neuronal or muscular activity in a behaving animal is often limited by the electrophysiological equipment which can constrain the animal in its ability to move with as many degrees of freedom as possible. This can either be avoided by using implantable electrodes and then having the animal move on a long tether (i.e. Clarac et al., 1987; Duch &amp; Pfl&uuml;ger, 1995; B&ouml;hm et al., 1997; Gruhn &amp; Rathmayer, 2002) or by transmitting the data using telemetric devices (Kutsch et al, 1993; Fischer et al., 1996; Tsuchida et al. 2004; Hama et al., 2007; Wang et al., 2008). Both of these elegant methods, which are successfully used in larger arthropods, often prove difficult to apply in smaller walking insects which either easily get entangled in the long tether or are hindered by the weight of the telemetric device and its batteries. In addition, in all these cases, it is still impossible to distinguish between the purely neuronal basis of locomotion and the effects exerted by mechanical coupling between the walking legs through the substrate. One solution for this problem is to conduct the experiments in a tethered animal that is free to walk in place and that is locally suspended, for example over a slippery surface, which effectively removes most ground contact mechanics. This has been used to study escape responses (Camhi and Nolen, 1981; Camhi and Levy, 1988), turning (Tryba and Ritzman, 2000a,b; Gruhn et al., 2009a), backward walking (Graham and Epstein, 1985) or changes in velocity (Gruhn et al., 2009b) and it allows the experimenter easily to combine intra- and extracellular physiology with kinematic analyses (Gruhn et al., 2006).
We use a slippery surface setup to investigate the timing of leg muscles in the behaving stick insect with respect to touch-down and lift-off under different behavioral paradigms such as straight forward and curved walking in intact and reduced preparations.

We describe a method to record motor activity, timed to the electrically recorded tarsal contact signal in a tethered insect, walking on a slippery surface. This is used to study the neural basis of adaptive behavior under reduced influence of mechanical interaction between legs through the substrate.

Studium der neuronalen Basis Adaptive Fortbewegung bei Insekten

Studying the neural basis of walking behavior, one often faces the problem that it is hard to separate the neuronally produced stepping output from those ...

Using the Horseshoe Crab, Limulus Polyphemus, in Vision Research

The American horseshoe crab, Limulus Polyphemus is one of the oldest creatures on earth, and the animal continues to play an indispensable role in biomedical research. Not only does their blood contain special cells that scientists use to detect bacteriotoxins in our medicines, but their eyes also contain a neural network that has provided much insight about physiological processes operating in our visual system, such as light adaptation and lateral inhibition. The horseshoe crab remains an attractive model for vision research because the animal is large and hardy for an invertebrate, its retinal neurons are big and easily accessible, its visual system is compact and extensively studied, and its visual behavior is well defined. Moreover, the structure and function of the eyes are modulated on a daily basis by a circadian clock in the animal s brain. In short, the visual system of horseshoe crabs is simple enough to be understood yet complex enough to be interesting.
In this video we present three electrophysiological paradigms for investigating the neural basis of vision that can be performed in vivo with Limulus. They are electroretinogram recording, optic nerve recording, and intraretinal recording. Electroretinogram (ERG) recordings measure with a surface electrode the summed electrical response of all cells in the eye to a flash of light. They can be used to monitor the overall sensitivity of the eye for prolong periods of time. Optic nerve recordings measure the spiking activity of single nerve fibers with an extracellular microsuction electrode. They can be used to study visual messages conveyed from the eye to the brain as well as circadian-clock messages fed back from the brain to the eye. Intraretinal recordings measure with an intracellular microelectrode the voltage fluctuations induced by light in individual cells of the eye. They can be used to elucidate cellular mechanisms of retinal processing.

Using the Horseshoe Crab, Limulus Polyphemus, in Vision Research

In this video we perform electroretinogram recording, optic nerve recording, and intraretinal recording with the American horseshoe crab, Limulus Polyphemus. These electrophysiological paradigms can be used for investigating the neural basis of vision in a research or teaching lab.

Mit den Horseshoe Crab, Limulus Polyphemus, In Vision Research

The American horseshoe crab, Limulus Polyphemus is one of the oldest creatures on earth, and the animal continues to play an indispensable role in ...

Biologie

Modeling Biological Membranes with Circuit Boards and Measuring Electrical Signals in Axons: Student Laboratory Exercises

This is a demonstration of how electrical models can be used to characterize biological membranes. This exercise also introduces biophysical terminology used in electrophysiology. The same equipment is used in the membrane model as on live preparations. Some properties of an isolated nerve cord are investigated: nerve action potentials, recruitment of neurons, and responsiveness of the nerve cord to environmental factors.

This is a demonstration of how biological membranes can be understood using electrical models. We also demonstrate procedures for recording action potentials from the ventral nerve cord of the crayfish for student orientated laboratories.

Modellierung biologischer Membranen mit Leiterplatten und Messung elektrischer Signale in Axone: Schülerlabor Übungen

This is a demonstration of how electrical models can be used to characterize biological membranes. This exercise also introduces biophysical terminology ...