كان ماليا دعم هذه الدراسة أساسا من مؤسسة Lundbeck.
بالإضافة إلى ذلك، كنود og إديث اريكسينس مينديفوند، Søster og فيرنر مولعا ليبيرتس، فوندين سمسم فريممي Lægevidenskabens، والجريدة الرسمية اجي جوهان لويس أنشأت مولعا يؤيد هذه الدراسة.

جميع المواضيع يجب أن تعطي موافقتها الكتابية قبل الفحص، وتسجيل البروتوكول يجب أن يقرها board(s) المراجعة الأخلاقية المحلية المناسبة. جميع الأساليب الموصوفة هنا بموافقة لجنة الأخلاقيات العلمية الإقليمية والوكالة الدانمركية لحماية البيانات.
ملاحظة: تتم التسجيلات مع بروتوكول تسجيل '''' تروندنف، وجزء من البرنامج (انظر الجدول للمواد). المعدات الأخرى المستخدمة هي مشجعا من قطبين ومزيل ضوضاء 50 هرتز مكبر للصوت تناظري إلى رقمي المجلس (A/D) (كما أوصى مكبر صوت لردود فعل نشاط electromyogram (EMG)، وكتم الصوت المربع إلى قطع الصوت أثناء التحفيز الكهربائي). المحرك رقم وحدة تقدير بواسطة الأسلوب مسكان ينطوي على ثلاث مراحل: 1) إعداد هذا الموضوع (أما بالنسبة للدراسات استثارة العصب)، 2) تسجيل الفحص CMAP، و 3) تحليل النتائج مع البرمجيات مسكان. تسجيل الإجراء الموضح أدناه الخاصة بالبرامج والأدوات التي نستخدمها (انظر الجدول للمواد)؛ هذه سوف تحتاج إلى تكييف للبرمجيات والأجهزة الأخرى.
1-التحضير للموضوع
<ol><li>شاشة المواضيع التأكد من أنه ليس لديهم أي تاريخ من اضطرابات الجهاز العصبي (لا سيما الاعتلال العصبي ومتلازمة النفق الرسغي)، عدا مجموعة الأمراض التي يجري التحقيق فيها.</li>
	<li>الإيعاز إلى هذا الموضوع بالتفصيل حول الامتحانات وطلب موافقة كتابية.<ol>
<li>إبلاغ هذا الموضوع أنه عندما يبدأ التسجيل، ستزداد القوة تدريجيا إلى حد أقصى متبوعة انخفاض تدريجي، والامتحانات سوف يستغرق حوالي 5-6 دقيقة.</li>
		<li>شرح أن هذا الموضوع سوف تجربة شعور دغدغة في اليد والأصابع.</li>
		<li>إبلاغ هذا الموضوع أن السلطة يمكن أن تنتقل فورا في أي لحظة أثناء التسجيل، إذا كان هذا الموضوع يشعر بالانزعاج أكثر من اللازم.</li>
	</ol>
</li>
	<li>تنظيف هذا الموضوع'ق اليد والساعد مع الجلد الإعدادية جل والكحول.</li>
	<li>مكان مسرى تسجيل نشطة أكثر في عضلة قصيرة مبعدة لإبهام وقطب مرجعي مشترك ميتاكاربو فالانجيل بالإبهام (الشكل 1).</li>
	<li>مكان قطب الأرضي في دورسوم الجهة.</li>
	<li>قم بتوصيل هذه الأقطاب قبل مكبر للصوت (الشكل 1).</li>
	<li>الشريط الأصابع معا للقضاء على الضوضاء والمصنوعات اليدوية بسبب الحركة الطوعية (الشكل 1).</li>
	<li>الحفاظ على درجة الحرارة الجلد بين 32 و 36 درجة مئوية مع مصباح الاحترار.</li>
</ol>2-تسجيل الفحص CMAP
ملاحظة: جميع البرمجيات الإجراءات الموصوفة أدناه الخاصة بالبرامج والأدوات التي نستخدمها (انظر الجدول للمواد)؛ هذه سوف تحتاج إلى تكييف للبرمجيات والأجهزة الأخرى.
<ol><li>بدء تشغيل نظام محوسب شبه الآلية.</li>
	<li>حدد بروتوكول تسجيل '' مسكان-R من النموذج 'حدد بروتوكول تسجيل'.</li>
	<li>قبول الإعدادات الافتراضية لما قبل مكبر للصوت، ومشجعا.</li>
	<li>في نموذج 'تحديد معلمات التسجيل'، أدخل في المربع 'ملف الإخراج' بادئة مشغل 2 أو 3 رسالة، ثم انقر فوق الزر موافق'' ''.</li>
	<li>عندما يقوم البرنامج بعرض الإدخال "الخام فريق الإدارة البيئية"، حدد أما المعلمات 'مسكان' (خطوة المسح الضوئي، والفاصل الزمني إينتيرستيمولوس، وعرض الحوافز) يدوياً، أو قبول المعلمات الافتراضية: عرض حافز لل 0.2 ms، خطوة مسح من 0.2 في المائة، وإينتيرستيمولوس الفاصل زمني 0.5 س. انقر على '''' موافق أو اضغط مفتاح الهروب'' ''للمتابعة. ملاحظة: تم قبول المعلمات الافتراضية في هذه الدراسة. إعدادات عامل التصفية كانت 3 هرتز-3 كيلو هرتز.</li>
	<li>مكان ريبوسيتيونابل قطب كهربائي حفز قطبين على العصب الوسيط في المعصم العثور على موقع لعتبة أدنى. موافق انقر فوق '''' لبدء التحفيز.</li>
	<li>يظهر العرض التالي الحافز (في البداية إخراج ماكس 15%)، ورد فريق الإدارة البيئية؛ ضبط موضع القطب للعثور على موقع لعتبة أدنى (أي استجابة أكبر). ضبط موضع الأقطاب التسجيل إذا لزم الأمر لضمان أن شكل CMAP ديفاسيك مع ذروة واحدة، إذا كان ذلك ممكناً. إذا لزم الأمر، ضبط قوة الحافز مع إدراج' ' '' حذف مفاتيح. ثم، انقر فوق '''' 'موافق' لمواصلة.
</li>
	<li>تظهر استجابة 'تعديل' مع 'نافذة'، الذي هو قياس الاستجابة، المبين بخط أرجواني أفقي. ضمان أن الخط الأخضر قصيرة قبل الإطار (يشير إلى خط الأساس) خط مسطح بين قطعة أثرية الحافز والاستجابة. إذا لزم الأمر، تعيين بدء نافذة بالاكتئاب الزر الأيمن للماوس، اسحب المؤشر إلى اليمين، ومن ثم حرر الزر لنهاية الإطار. ملاحظة: CMAP ذروة الارتفاع تقاس من خط الأساس إلى ذروة التصاعدي داخل الإطار، وهو مبين بالخط الأزرق الرأسي. موافق انقر '''' الاستمرار.</li>
	<li>استبدال مسرى ريبوسيتيونابل بمادة لاصقة غير بولاريزابل حفز القطب السالب ومكان أنود سم 2 بروكسيمالي على طول العصب الوسيط؛ الآن يظهر أسفل تتبع مكاسب عالية فريق الإدارة البيئية. ويشجع هذا الموضوع العثور على الموضع الأكثر استرخاء لأيديهم لتقليل النشاط العفوي. موافق انقر '''' الاستمرار.</li>
	<li>زيادة كثافة التحفيز يدوياً عن طريق الضغط على المفتاح Insert'' ''حتى حافز الحالي أعلى من المستوى السعة القصوى من CMAP؛ أولاً، زيادة بالخطوات من 3 في المائة في كثافة التحفيز، ومن ثم لتعديلات غرامة استخدام الخطوات من 1%.</li>
	<li>فحص قياس النافذة والذروة قبل النقر فوق الزر موافق'' ''بدء تشغيل التفحص CMAP.</li>
	<li>لاحظ أن بعد تسجيل الاستجابات للمنبهات سوبراماكسيمال 20 (فحص ما قبل)، كثافة الحافز هو تلقائياً انخفض في خطوات صغيرة، من التحفيز سوبراماكسيمال حتى لم يعد هناك استجابة محرك ملحوظ، ثم مجموعة أخرى من 20 كمابس (بعد انتهاء المسح) يتم تسجيلها. ملاحظة: يتم رسم البيانات كتفحص' 'CMAP، أو منحنى استجابة تحفيز مفصلة مع السعة للاستجابة الحركية على كثافة المحور الصادي والتحفيز على المحور س. في مواضيع صحية، وهذا يخلق منحنى على شكل S، بينما في المرضى الذين يعانون من انخفاض عدد الوحدات الحركية، كما هو الحال في المرض، تطور المنحنى مظهر صعدت (الشكل 2).</li>
	<li>لاحظ أن من الممكن بالإضافة إلى ردود الفعل تحقق من مربع كتم، تحقق في لوحة الأوسط على الجانب الأيسر في حالة استرخاء هذا الموضوع. انظروا إلى CMAP (تعديل) في أعلى اللوحة اليسرى، وعلى لوحة أسفل اليسار، الانخفاض في كثافة التحفيز (العتبة). متابعة مسح CMAP على الجانب الأيسر.</li>
	<li>إنهاء التسجيل عن طريق النقر على ''زر موافق'' في الزاوية اليمنى السفلي ما لم يكن مطلوباً تكرار فحص وحفظ البيانات. ملاحظة: عند إكمال 'أساطير وتحجيم' النموذج من الضروري استبدال كافة علامات الاستفهام.</li>
</ol>3-مسكان التحليلات
ملاحظة: جميع البرمجيات الإجراءات الموصوفة أدناه الخاصة بالبرامج والأدوات التي نستخدمها (انظر الجدول للمواد)؛ هذه سوف تحتاج إلى تكييف للبرمجيات والأجهزة الأخرى.
<ol><li>
تركيب نموذج للفحص CMAP
	<ol>
<li>إلى تحليل برنامج تحليل تسجيل بدء العمل دون اتصال، ثم انقر فوق ''السكارى'' لتحديد التسجيل الأخير لتحليل.
</li>
		<li>حدد انقر فوق '' 'قزد مسكان احتواء الملف'' من قائمة '''' مسكانفيت. ملاحظة: واحد بدلاً من ذلك حدد ''"مسكان صالح" في ملف MEM''. والو ممكن لتحديد ''"مسكان صالح" في ملف dat (mA mV)'' في حالة مسح CMAP تم تسجيلها مع معدات مختلفة عن تلك المستخدمة هنا. انظر أدناه كيفية إنشاء ملف DAT.</li>
		<li>نلاحظ أن البرنامج أولاً بإنشاء نموذج أولى ومن ثم يمضي إلى تحسين الملاءمة. لم تدخل المستخدم مطلوب حتى شريط التقدم متعددة الألوان في مربع 'الأمثل' هو استكمال والزر '''' وقف باهتاً.</li>
		<li>يوفر النموذج الأولى تخمين أول نموذج، المستمدة من المنحدر والفرق على أجزاء متتالية من التفحص. علما أن المسح الضوئي الأصلي (باللون الأسود) والمسح الضوئي التي تم إنشاؤها من النموذج (في أرجواني) قد تآمروا جنبا إلى جنب. اتبع النموذج والتحسينات في النموذج لعرض النص وعرض بديل. ملاحظة: قد يكون محدداً يعرض بديلة في أي وقت وفقا للخيارات الموجودة في 'البيانات الأرض'، 'ستريك الأرض ك' و 'مؤامرة من نوع' مربعات.</li>
		<li>أداء الأمثل لتحسين الملاءمة إلى CMAP مسجل بإجراء تعديلات المسلسل لتقليل الفرق بين المحاكاة ومسجل بمسح CMAP16. ملاحظة: هذا يعمل تحسينات عدة على التوالي، بدءاً من نموذج أولى، كما سبق ذكره في التفصيل15. إذا كان التحسين يزيد من عدد الوحدات، ثم محاولة التالية في تركيب المسح يبدأ بتوليد نموذج مع المزيد من الوحدات، بينما إذا كان التحسين الأولى تخفيض عدد الوحدات، المحاولة الثانية يبدأ مع نموذج مع وحدات أقل. إذا كان كل شيء يعمل بشكل جيد، أصفار الإجراء الأمثل في عدد الوحدات لتناسب المسح أفضل.</li>
		<li>لاحظ أنه عند تشغيل الإجراء الأمثل، تظهر لوحة الأمثل أيضا شريط تقدم متعددة الألوان.</li>
		<li>استخدام خيارات رسم مختلفة في مربع نوع'' ''الأرض، أي، مؤامرات كفاف، الخطأ الخامس N وحدات، والوحدات النموذجية، السعة التراكمي لمتابعة عملية التحسين. ملاحظة: يتم تحديث التغييرات في نموذج أثناء إجراء التحسين بشكل مستمر وفقا لأحدث طراز، والتحسينات في النموذج يمكن اتباعها بخيارات رسم مختلفة وعلى عرض النص.<ol>
<li>خرائط كِفافية<ol>
<li>وتستخدم خرائط كِفافية تقييم مدى دقة هذا النموذج بوضوح النقاط وتوليد درجة خطأ على أساس الفرق في توزيعات س-ص15. مهرجان دبي السينمائي الدولي حدد '''' ، ويعرض ''خريطة كِفافية'' لمعرفة الاختلافات بين مسجل ونموذج مسح CMAP كخريطة كِفافية. ومن هذه الاختلافات أن يحاول عملية التحسين للتقليل إلى أدنى حد. ملاحظة: يمكن 'خرائط كِفافية' كثافة الاحتمال للحصول على استجابة معينة مع حافز معين. درجة الخطأ يعتمد على الفرق بين الأصلي وعلى غرار الخريطة الكنتورية، ويمكن تصور هذا بتحديد لوحة 'الخيار المهرجان' في الجزء العلوي ومحيط الأرض' 'في لوحة نوع الأرض. الخطوط الحمراء تشير إلى أن هناك بكثافة أكبر من النقاط في المسح الضوئي الأصلي، وخطوط خضراء تشير إلى المزيد من النقاط في المسح الضوئي على غرار. المؤامرة الفرق في الجزء العلوي يشير إلى كثافة التحفيز التي تم العثور على أخطاء أكبر.</li>
			</ol>
</li>
			<li>الخطأ الخامس N وحدات<ol>
<li>اتبع الإجراء الأمثل عن طريق تحديد السجل في سجل 'الخطأ الخامس N وحدات' الأرض. يتم رسم كل مرحلة من مراحل الإجراء الأمثل في لون مختلف، المقابلة للقضبان في لوحة الأمثل' '.</li>
			</ol>
</li>
			<li>الوحدات النموذجية<ol>
<li>استخدم هذا لمعرفة كيف تتكون يعني السعة CMAP بتعيين محاور عصبية مختلفة في هذا النموذج؛ ويظهر الجزء العلوي ستريك الذروة وتوزيعات عتبة الوحدات الحركية الفردية.</li>
			</ol>
</li>
			<li>السعة التراكمي<ol>
<li>نلاحظ أن الوحدات التي يتم رسمها في ترتيب زيادة الحجم، بدلاً من العتبة. يرسم المنحنى الأسود العدد التراكمي وحدة، بينما يبين المنحنى الأحمر السعة التراكمي.</li>
			</ol>
</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>عند اكتمال عملية التحسين، وعرض نتائج التحليل في النص مسكانفيت 'العرض'. المعلمات مسكان المتوفرة، أي، عدد من الوحدات، ومتوسط السعة، أكبر من حجم وحدة ترد على عرض النص.</li>
	<li>انقر فوق الزر موافق'' في مربع 'حفظ تناسب MEM ملف' لحفظ النموذج في ملف MEM لتحليلات أخرى في ''.</li>
</ol>4-CMAP المسح الضوئي باستخدام MUNE. ملفات DAT
ملاحظة: نسخة بديلة والحرة للبرمجيات يتيح تحليل CMAP الأشعة التي سجلتها المعدات الأخرى.
<ol><li>إنشاء ملف a.DAT يحتوي على مسح CMAP ليتم تحليلها. ملاحظة: يجب أن يكون هذا ملف نصي في شكل 2-العمود قياسية، مع شدة التحفيز في mA في عمود واحد والسعة CMAP في المتوسط في عمود آخر.</li>
	<li>إنشاء مناسبة. ملف DAT بنسخ الأعمدة اثنين من ملف جدول بيانات في برامج تحرير نص ومن ثم تعيين على ملحق. دات بدلاً من. TXT.<ol>
<li>تنفيذ كافة الخطوات الأخرى لتحليل مسكان كما تم وصفه سابقا، بعد بدء تشغيل برنامج مستقل وتحديد. ملف DAT.</li>
	</ol>
</li>
	<li>البحث عن بيانات البرنامج، ودليل، وعينه مجانية على موقع جامعة كلية لندن FTP (المضيف: 144.82.46.62، اسم المستخدم: قتراكو، كلمة السر: Hg32wK5e).</li>
</ol>

<ol>
	<li>Sherrington, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=REMARKS+ON+THE+FOREGOING+LETTER.">REMARKS ON THE FOREGOING LETTER.</a> Can. Med. Assoc. J. 20, 66-67 (1929).</li><li>Gooch, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+unit+number+estimation:+a+technology+and+literature+review.">Motor unit number estimation: a technology and literature review.</a> Muscle Nerve. 50, 884-893 (2014).</li><li>McComas, A. J., Fawcett, P. R., Campbell, M. J., Sica, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+estimation+of+the+number+of+motor+units+within+a+human+muscle.">Electrophysiological estimation of the number of motor units within a human muscle.</a> J Neurol Neurosur Ps. 34, 121-131 (1971).</li><li>Oge, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+unit+number+estimation+in+transected+peripheral+nerves.">Motor unit number estimation in transected peripheral nerves.</a> Neurol Res. 32, 1072-1076 (2010).</li><li>Doherty, T. J., Brown, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+estimated+numbers+and+relative+sizes+of+thenar+motor+units+as+selected+by+multiple+point+stimulation+in+young+and+older+adults.">The estimated numbers and relative sizes of thenar motor units as selected by multiple point stimulation in young and older adults.</a> Muscle Nerve. 16, 355-366 (1993).</li><li>Bromberg, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+unit+estimation:+reproducibility+of+the+spike-triggered+averaging+technique+in+normal+and+ALS+subjects.">Motor unit estimation: reproducibility of the spike-triggered averaging technique in normal and ALS subjects.</a> Muscle Nerve. 16, 466-471 (1993).</li><li>Lomen-Hoerth, C., Slawnych, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Statistical+motor+unit+number+estimation:+from+theory+to+practice.">Statistical motor unit number estimation: from theory to practice.</a> Muscle Nerve. 28, 263-272 (2003).</li><li>Unlusoy Acar, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Decline+of+compound+muscle+action+potentials+and+statistical+MUNEs+during+Wallerian+degeneration.">Decline of compound muscle action potentials and statistical MUNEs during Wallerian degeneration.</a> Neurophysiol. Clin. 44, 257-265 (2014).</li><li>Henderson, R. D., Ridall, P. G., Hutchinson, N. M., Pettitt, A. N., McCombe, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bayesian+statistical+MUNE+method.">Bayesian statistical MUNE method.</a> Muscle Nerve. 36, 206-213 (2007).</li><li>Ridall, P. G., Pettitt, A. N., Henderson, R. D., McCombe, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+unit+number+estimation--a+Bayesian+approach.">Motor unit number estimation--a Bayesian approach.</a> Biometrics. 62, 1235-1250 (2006).</li><li>Nandedkar, S. D., Nandedkar, D. S., Barkhaus, P. E., Stalberg, E. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+unit+number+index+(MUNIX).">Motor unit number index (MUNIX).</a> IEEE Trans. Biomed. Eng. 51, 2209-2211 (2004).</li><li>Neuwirth, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+Unit+Number+Index+(MUNIX):+a+novel+neurophysiological+marker+for+neuromuscular+disorders;+test-retest+reliability+in+healthy+volunteers.">Motor Unit Number Index (MUNIX): a novel neurophysiological marker for neuromuscular disorders; test-retest reliability in healthy volunteers.</a> Clin. Neurophysiol. 122, 1867-1872 (2011).</li><li>Jacobsen, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproducibility,+and+sensitivity+to+motor+unit+loss+in+amyotrophic+lateral+sclerosis,+of+a+novel+MUNE+method:+MScanFit+MUNE.">Reproducibility, and sensitivity to motor unit loss in amyotrophic lateral sclerosis, of a novel MUNE method: MScanFit MUNE.</a> Clin neurophysiol. 128, 1380-1388 (2017).</li><li>Maathuis, E. M., Drenthen, J., Visser, G. H., Blok, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproducibility+of+the+CMAP+scan.">Reproducibility of the CMAP scan.</a> J. Electromyogr. Kinesiol. 21, 433-437 (2011).</li><li>Sleutjes, B. T. H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CMAP+scan+discontinuities:+automated+detection+and+relation+to+motor+unit+loss.">CMAP scan discontinuities: automated detection and relation to motor unit loss.</a> Clin Neurophysiol. 125, 388-395 (2014).</li><li>Bostock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimating+motor+unit+numbers+from+a+CMAP+scan.">Estimating motor unit numbers from a CMAP scan.</a> Muscle Nerve. 53, 889-896 (2016).</li><li>DeLong, E. R., DeLong, D. M., Clarke-Pearson, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparing+the+areas+under+two+or+more+correlated+receiver+operating+characteristic+curves:+a+nonparametric+approach.">Comparing the areas under two or more correlated receiver operating characteristic curves: a nonparametric approach.</a> Biometrics. 44, 837-845 (1988).</li><li>Hanley, J. A., McNeil, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+of+comparing+the+areas+under+receiver+operating+characteristic+curves+derived+from+the+same+cases.">A method of comparing the areas under receiver operating characteristic curves derived from the same cases.</a> Radiology. 148, 839-843 (1983).</li><li>Farschtschi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+action+potential+scans+and+ultrasound+imaging+in+neurofibromatosis+type+2+:+CMAP+Scans+and+Nerve+Imaging+in+NF2.">Muscle action potential scans and ultrasound imaging in neurofibromatosis type 2 : CMAP Scans and Nerve Imaging in NF2.</a> Muscle Nerve. 55, 350-358 (2017).</li></ol>

تضارب المصالح: غبطة يتلقى الإتاوات من UCL للمبيعات من بلده قتراك البرمجيات المستخدمة في هذه الدراسة. مؤلفين آخرين قد لا تضارب محتمل في المصالح. وقد وافق جميع المؤلفين المادة الأخيرة.

الخطوات الحاسمة في إطار البروتوكول: مسكان إجراء الآلي عالية، ولكن كما هو الحال مع جميع أساليب فريق الإدارة البيئية، وينبغي الحرص على الحصول على نتائج متسقة. في مرحلة التحضير، من المهم تحقيق الاسترخاء، منذ إدخال الفرق زائفة في CMAP التحف نشاط أو حركة عفوية أثناء الفحص CMAP وارباك تول?...

حركة المحرك نظام يعتمد على وحدة موتور، التي تشير إلى ألياف العصبية الحركية فردية جنبا إلى جنب مع ألياف العضلات أنه ينشط، وعدد السيارات وحدة هو عدد خلايا القرن الأمامي أو محاور عصبية إينيرفاتينج عضلة واحدة1. أثناء عمليات إزالة التعصيب ورينيرفيشن، محاور عصبية صحية تولي دور محاور عصبية المفقودة التي تنتشر في جانبية. ولذلك، لا تعطي السعة إمكانات العمل (CMAP) العضلات مجمع المعلومات الضرورية حول درجة فقدان الوحدة الحركية. قد يبدأ السعة CMAP فقط تقع عند فقدان أكثر من 50% وحدات الحركية. وبالمثل، لا يرتبط حجم النشاط العفوي غير طبيعي أو التغييرات المحتملة (MUP) وحدة المحرك بالدرجة من إزالة التعصيب.
وعموما، هناك لا تقنية الكهربية التي تسمح لقياسات بسيطة ومباشرة لعدد السيارات وحدة. بدلاً من ذلك، يستخدم لتقييم فقدان الخلايا العصبية الحركية السفلي2تقديراً لعدد السيارات وحدة (MUNE). وقد وضعت العديد من الأساليب MUNE منذ تنفيذ الأسلوب الأول، تحفيز تزايدي MUNE، الذي عرضته McComas3في عام 1971. قد استندت معظم طرق قياس عدة إمكانيات تسجيل سطح الوحدة الحركية (سموب)، وتقسيم CMAP القصوى من السعة سموب متوسط. وتشمل هذه الأساليب التحفيز تزايدي4ومتعددة النقاط التحفيز (MPS)5وتسبب ارتفاع معدل متوسط قدرة6. واستخدمت أساليب أخرى MUNE التقنيات الإحصائية استناداً إلى الطبيعة الاحتمالية لإطلاق وحدة السيارات استجابة لحافز7،،من89،10. ويعني هذا التغير أن إطلاق مجموعات مختلفة من الوحدات الحركية يؤدي إلى التغير في حجم الردود CMAP. وحدة موتور رقم الفهرس (من) هو أكثر مؤخرا عرض الأسلوب الذي يستخدم أنماط التدخل السطحية المسجلة خلال الانقباضات الطوعية لتقدير متوسط حجم سموب11،12.
هذه الأساليب MUNE جميعا يعانون من قيود واحد أو أكثر، مثل وجود الذاتية، الاعتماد على السعة CMAP المطلق، التحيز في اختيار وحدات أو طويلة الوقت اللازم لأخذ عينات كافية وحدات الوقت الطويل المطلوب لتحليل النتائج. تم مؤخرا تطوير أسلوب MUNE جديد، 'مسح CMAP MUNE' (مسكان)، للتغلب على هذه القيود13. هذا الأسلوب يتجنب المشاكل المتأصلة في اختيار الوحدة مع مراعاة مساهمة جميع الوحدات إلى CMAP، كما يقاس في منحنى التحفيز-ردا مفصلاً، أو CMAP تفحص14،15. وهو يتجنب أيضا وقت التحليل الموسع طريقة مشابهة، والنموذجي لتركيب9،10، باستخدام خوارزميات جديدة16. في دراسة أجريت مؤخرا، إمكانية تكرار نتائج مسكان في تقدير عدد الوحدات الحركية كان أفضل من أسلوبي أكثر تقليدية، MUNE أعضاء البرلمان ومونيكس13. بالإضافة إلى ذلك، يمكن أن تظهر مسكان خسارة الوحدة الحركية في المراحل المبكرة من "التصلب العضلي الجانبي" (المرض) من أعضاء البرلمان MUNE ومونيكس. وكان مسكان أسرع من MUNE أعضاء البرلمان وأسرع من13.
وتصف هذه الورقة منهجية مسكان بالتفصيل. وهو يلخص أيضا سبق الإبلاغ عنها داخل وبين ريتر إمكانية تكرار نتائج من مسكان في المرضى الذين يعانون من المرض ومراقبة صحية المواضيع13، مما قد يتيح للقارئ أن القاضي ما إذا كان الأسلوب الذي سيكون مناسباً لدراسة مخطط.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>QtracW software</td>
			<td>Digitimer Ltd (copyright Institute of Neurology, University College, London)&#160;&#160;</td>
			<td>QtracW</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MScanFit</td>
			<td>Digitimer Ltd (copyright Institute of Neurology, University College, London)&#160;&#160;</td>
			<td>QtracW</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DS5 bipolar stimulator</td>
			<td>Digitimer Ltd&#160;</td>
			<td>DS5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D440 amplifier&#160;</td>
			<td>Digitimer Ltd&#160;</td>
			<td>D440-2 (2 channel) or D440-4 (4 channel)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HumBug Noise Eliminator</td>
			<td>Digitimer Ltd&#160;</td>
			<td>Humbug</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analogue-to-digital (A/D) board&#160;&#160;</td>
			<td>National Instruments</td>
			<td>NI-6221&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cmap scan mune (mscan) - a novel motor unit number estimation (mune) method

مثل أساليب أخرى لتقدير عدد الوحدة الحركية (MUNE)، مجمع العضلات مسح إمكانات العمل (CMAP) MUNE (مسكان) أسلوب الكهربية غير الغازية لتقدير عدد الوحدات الحركية العاملة في العضلات. MUNE أداة هامة لتقييم اعتلالات الأعصاب ونيورونوباثيس. خلافا لمعظم طرق MUNE قيد الاستخدام، مسكان ويقيم جميع الوحدات الحركية في العضلات، بتركيب نموذج لمنحنى تحفيز-ردا مفصلاً، أو مسح CMAP. وبالتالي فإنه يتجنب التحيز المتأصل في جميع أساليب MUNE استناداً إلى استقراء من عينة صغيرة من وحدات. مثل 'MUNE بايزي،' مسكان تحليل أعمال تركيب نموذج، تتألف من وحدات السيارات مع ستريك مختلفة، والعتبات، وعتبة التقلبات، ولكن الأسلوب المناسب مختلف تماما، وأنجزت خلال خمس دقائق، بدلاً من عدة ساعات. تحليل مسكان دون اتصال يعمل على مرحلتين: أولاً، يتم إنشاء نموذج أولى استناداً إلى المنحدر والفرق من النقاط الواردة في المسح الضوئي، وثانيا، ثم يتم تكرير هذا النموذج عن طريق ضبط كافة المعلمات تحسين الملاءمة بين المسح الضوئي الأصلي و عمليات التفحص التي تم إنشاؤها بواسطة النموذج.
وقد تم اختبار هذا الأسلوب الجديد لإمكانية تكرار نتائج وتسجيل الوقت على مرضى التصلب العضلي الجانبي (المرض) 22 و 20 ضوابط صحية، مع كل اختبار تتكرر مرتين من قبل اثنين من الأطباء أعمى. مسكان أظهرت ممتازة داخلها وبينها راتير إمكانية تكرار نتائج مع قيم المحكمة الجنائية الدولية > 0.98 ومعامل التغير المتوسط 12.3 ± 1.6 في المائة. لم يكن هناك فرق في إمكانية تكرار داخل مصنف نتائج بين اثنين من المراقبين. تم تسجيل متوسط الوقت 6.27 ± 0.27 دقيقة.
ويصف هذا البروتوكول كيفية تسجيل تفحص CMAP وكيفية استخدام البرمجيات مسكان لاستخلاص تقدير عدد وأحجام الوحدات الحركية العاملة. مسكان هو طريقة سريعة ومريحة، واستنساخه، التي قد تكون مفيدة في تشخيص ومراقبة تطور المرض في الاضطرابات العصبية العضلية.

تم التوصل إلى النتائج التالية في دراسة أجريت مؤخرا، الذي كان الأسلوب مسكان مقارنة مع اثنين من التقنيات المتبعة: متعددة النقاط التحفيز MUNE (MPS) والوحدة موتور رقم الفهرس (مونيكس)13. وتظهر النتائج أنه مع الأسلوب الموصوفة في هذا البروتوكول، يمكن تحقيق نتائج متسقة م...

Watch this Scientific Journal Video about CMAP Scan MUNE MScan - A Novel Motor Unit Number Estimation MUNE Method at JoVE.com

CMAP Scan MUNE MScan - A Novel Motor Unit Number Estimation MUNE Method

ويصف هذا البروتوكول طريقة جديدة لتقدير عدد الوحدات الحركية العاملة في العضلات، بتركيب نموذج لمنحنى تحفيز-ردا مفصلاً من إمكانات العمل مجمع العضلات. أنها سريعة وسهلة لإجراء وتحليل وإمكانية تكرار نتائج ممتازة.

CMAP MUNE (مسكان)-طريقة تقدير (MUNE) رقم وحدة موتور رواية المسح الضوئي

Like other methods for motor unit number estimation (MUNE), compound muscle action potential (CMAP) scan MUNE (MScan) is a non-invasive electrophysiologic ...

cmap-scan-mune-mscan-a-novel-motor-unit-number-estimation-mune-method

Research

JoVE Journal

Neuroscience

CMAP Scan MUNE (MScan) - A Novel Motor Unit Number Estimation (MUNE) Method

12.2K Views.  Aarhus University Hospital. ويصف هذا البروتوكول طريقة جديدة لتقدير عدد الوحدات الحركية العاملة في العضلات، بتركيب نموذج لمنحنى تحفيز-ردا مفصلاً من إمكانات العمل مجمع العضلات. أنها سريعة وسهلة لإجراء وتحليل وإمكانية تكرار نتائج ممتازة.

Video: CMAP Scan MUNE MScan - A Novel Motor Unit Number Estimation MUNE Method

Novel Apparatus and Method for Drug Reinforcement

Animal models of reinforcement have proven to be useful for understanding the neurobiological mechanisms underlying drug addiction. Operant drug self-administration and conditioned place preference (CPP) procedures are expansively used in animal research to model various components of drug reinforcement, consumption, and addiction in humans. For this study, we used a novel approach to studying drug reinforcement in rats by combining traditional CPP and self-administration methodologies. We assembled an apparatus using two Med Associate operant chambers, sensory stimuli, and a Plexiglas-constructed neutral zone. These modifications allowed our experiments to encompass motivational aspects of drug intake through self-administration and drug-free assessment of drug/cue conditioning strength with the CPP test. In our experiments, rats self-administered cocaine (0.75 mg/kg/inj, i.v.) during either four (e.g., the "short-term") or eight (e.g., the "long-term") alternating-day sessions in an operant environment containing distinctive sensory cues (e.g., olfactory and visual). On the alternate days, in the other (differently-cued) operant environment, saline was available for self-infusion (0.1 ml, i.v.). Twenty-four hours after the last self-administration/cue-pairing session, a CPP test was conducted. Consistent with typical CPP findings, there was a significant preference for the chamber associated with cocaine self-administration. In addition, in animals undergoing the long-term experiment, a significant positive correlation between CPP magnitude and the number of cocaine-reinforced lever responses. In conclusion, this apparatus and approach is time and cost effective, can be used to examine a wide array of topics pertaining to drug abuse, and provides more flexibility in experimental design than CPP or self-administration methods alone.

Operant drug self-administration and conditioned place preference (CPP) procedures are expansively used in research to model various components of drug reinforcement, consumption, and addiction in humans. In this report, we combined traditional CPP and self-administration methods as a novel approach to studying drug reinforcement and addiction in rats.

رواية جهاز وطريقة لتدعيم المخدرات

Animal models of reinforcement have proven to be useful for understanding the neurobiological mechanisms underlying drug addiction.  Operant drug ...

Presynaptic Dopamine Dynamics in Striatal Brain Slices with Fast-scan Cyclic Voltammetry

Extensive research has focused on the neurotransmitter dopamine because of its importance in the mechanism of action of drugs of abuse (e.g. cocaine and amphetamine), the role it plays in psychiatric illnesses (e.g. schizophrenia and Attention Deficit Hyperactivity Disorder), and its involvement in degenerative disorders like Parkinson's and Huntington's disease. Under normal physiological conditions, dopamine is known to regulate locomotor activity, cognition, learning, emotional affect, and neuroendocrine hormone secretion. One of the largest densities of dopamine neurons is within the striatum, which can be divided in two distinct neuroanatomical regions known as the nucleus accumbens and the caudate-putamen. The objective is to illustrate a general protocol for slice fast-scan cyclic voltammetry (FSCV) within the mouse striatum. FSCV is a well-defined electrochemical technique providing the opportunity to measure dopamine release and uptake in real time in discrete brain regions. Carbon fiber microelectrodes (diameter of ~ 7 &mu;m) are used in FSCV to detect dopamine oxidation. The analytical advantage of using FSCV to detect dopamine is its enhanced temporal resolution of 100 milliseconds and spatial resolution of less than ten microns, providing complementary information to in vivo microdialysis.

Using fast-scan cyclic voltammetry to measure electrically evoked presynaptic dopamine dynamics in striatal brain slices.

حيوية قبل المشبكي الدوبامين في الدماغ العقدة المخططة مع شرائح Voltammetry دائرى سريع التفحص

Extensive research has focused on the neurotransmitter dopamine because of its importance in the mechanism of action of drugs of abuse (e.g. cocaine and ...

A Functional Motor Unit in the Culture Dish: Co-culture of Spinal Cord Explants and Muscle Cells

Human primary muscle cells cultured aneurally in monolayer rarely contract spontaneously because, in the absence of a nerve component, cell differentiation is limited and motor neuron stimulation is missing1. These limitations hamper the in vitro study of many neuromuscular diseases in cultured muscle cells. Importantly, the experimental constraints of monolayered, cultured muscle cells can be overcome by functional innervation of myofibers with spinal cord explants in co-cultures.
Here, we show the different steps required to achieve an efficient, proper innervation of human primary muscle cells, leading to complete differentiation and fiber contraction according to the method developed by Askanas2. To do so, muscle cells are co-cultured with spinal cord explants of rat embryos at ED 13.5, with the dorsal root ganglia still attached to the spinal cord slices. After a few days, the muscle fibers start to contract and eventually become cross-striated through innervation by functional neurites projecting from the spinal cord explants that connecting to the muscle cells. This structure can be maintained for many months, simply by regular exchange of the culture medium.
The applications of this invaluable tool are numerous, as it represents a functional model for multidisciplinary analyses of human muscle development and innervation. In fact, a complete de novo neuromuscular junction installation occurs in a culture dish, allowing an easy measurement of many parameters at each step, in a fundamental and physiological context.
Just to cite a few examples, genomic and/or proteomic studies can be performed directly on the co-cultures. Furthermore, pre- and post-synaptic effects can be specifically and separately assessed at the neuromuscular junction, because both components come from different species, rat and human, respectively. The nerve-muscle co-culture can also be performed with human muscle cells isolated from patients suffering from muscle or neuromuscular diseases3, and thus can be used as a screening tool for candidate drugs. Finally, no special equipment but a regular BSL2 facility is needed to reproduce a functional motor unit in a culture dish. This method thus is valuable for both the muscle as well as the neuromuscular research communities for physiological and mechanistic studies of neuromuscular function, in a normal and disease context.

Cultured muscle cells are an inadequate model to recapitulate innervated muscle in vivo. A functional motor unit can be reproduced in vitro by innervation of differentiated human primary muscle cells using rat embryo spinal cord explants. This article describes how co-cultures of spinal cord explants and muscle cells are established.

وحدة للسيارات وظيفية في صحن الثقافة: شارك في ثقافة Explants النخاع الشوكي وخلايا العضلات

Human primary muscle cells cultured  aneurally in monolayer rarely contract spontaneously because, in the absence of  a nerve component, cell ...

Simultaneous Intracellular Recording of a Lumbar Motoneuron and the Force Produced by its Motor Unit in the Adult Mouse In vivo

The spinal motoneuron has long been a good model system for studying neural function because it is a neuron of the central nervous system with the unique properties of (1) having readily identifiable targets (the muscle fibers) and therefore having a very well-known function (to control muscle contraction); (2) being the convergent target of many spinal and descending networks, hence the name of "final common pathway"; and (3) having a large soma which makes it possible to penetrate them with sharp intracellular electrodes. Furthermore, when studied in vivo, it is possible to record simultaneously the electrical activity of the motoneurons and the force developed by their muscle targets. Performing intracellular recordings of motoneurons in vivo therefore put the experimentalist in the unique position of being able to study, at the same time, all the compartments of the "motor unit" (the name given to the motoneuron, its axon, and the muscle fibers it innervates1): the inputs impinging on the motoneuron, the electrophysiological properties of the motoneuron, and the impact of these properties on the physiological function of the motoneurons, i.e. the force produced by its motor unit. However, this approach is very challenging because the preparation cannot be paralyzed and thus the mechanical stability for the intracellular recording is reduced. Thus, this kind of experiments has only been achieved in cats and in rats. However, the study of spinal motor systems could make a formidable leap if it was possible to perform similar experiments in normal and genetically modified mice.
For technical reasons, the study of the spinal networks in mice has mostly been limited to neonatal in vitro preparations, where the motoneurons and the spinal networks are immature, the motoneurons are separated from their targets, and when studied in slices, the motoneurons are separated from most of their inputs. Until recently, only a few groups had managed to perform intracellular recordings of motoneurons in vivo2-4 , including our team who published a new preparation which allowed us to obtain very stable recordings of motoneurons in vivo in adult mice5,6. However, these recordings were obtained in paralyzed animals, i.e. without the possibility to record the force output of these motoneurons. Here we present an extension of this original preparation in which we were able to obtain simultaneous recordings of the electrophysiological properties of the motoneurons and of the force developed by their motor unit. This is an important achievement, as it allows us to identify the different types of motoneurons based on their force profile, and thereby revealing their function. Coupled with genetic models disturbing spinal segmental circuitry7-9, or reproducting human disease10,11, we expect this technique to be an essential tool for the study of spinal motor system.

Simultaneous Intracellular Recording of a Lumbar Motoneuron and the Force Produced by its Motor Unit in the Adult Mouse In vivo

This new method permits the simultaneous intracellular recording of a single adult mouse motoneuron and the measurement of the force produced by its muscle fibers. The combined investigation of the electrical and mechanical properties of motor units in normal and genetically modified animals is a breakthrough for the study of the neuromuscular system.

بين الخلايا تسجيل في وقت واحد من العصبون الحركي القطني والقوة التي تنتجها وحدة موتور في الماوس الكبار<em&gt; في الجسم الحي</em

The  spinal motoneuron has long been a good model system for studying neural  function because it is a neuron of the central nervous system with the ...

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

In animals with large identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using intracellular techniques1,2,3,4. Recently, we developed a technique to extracellularly stimulate and record individual neurons in Aplysia californica5. We now describe a protocol for using this technique to uniquely identify and characterize motor neurons within a motor pool.
This extracellular technique has advantages. First, extracellular electrodes can stimulate and record neurons through the sheath5, so it does not need to be removed. Thus, neurons will be healthier in extracellular experiments than in intracellular ones. Second, if ganglia are rotated by appropriate pinning of the sheath, extracellular electrodes can access neurons on both sides of the ganglion, which makes it easier and more efficient to identify multiple neurons in the same preparation. Third, extracellular electrodes do not need to penetrate cells, and thus can be easily moved back and forth among neurons, causing less damage to them. This is especially useful when one tries to record multiple neurons during repeating motor patterns that may only persist for minutes. Fourth, extracellular electrodes are more flexible than intracellular ones during muscle movements. Intracellular electrodes may pull out and damage neurons during muscle contractions. In contrast, since extracellular electrodes are gently pressed onto the sheath above neurons, they usually stay above the same neuron during muscle contractions, and thus can be used in more intact preparations.
To uniquely identify motor neurons for a motor pool (in particular, the I1/I3 muscle in Aplysia) using extracellular electrodes, one can use features that do not require intracellular measurements as criteria: soma size and location, axonal projection, and muscle innervation4,6,7. For the particular motor pool used to illustrate the technique, we recorded from buccal nerves 2 and 3 to measure axonal projections, and measured the contraction forces of the I1/I3 muscle to determine the pattern of muscle innervation for the individual motor neurons.
We demonstrate the complete process of first identifying motor neurons using muscle innervation, then characterizing their timing during motor patterns, creating a simplified diagnostic method for rapid identification. The simplified and more rapid diagnostic method is superior for more intact preparations, e.g. in the suspended buccal mass preparation8 or in vivo9. This process can also be applied in other motor pools10,11,12 in Aplysia or in other animal systems2,3,13,14.

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

In animals with large identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using intracellular techniques1,2,3,4. Recently, we developed a technique to extracellularly stimulate and record individual neurons in Aplysia californica5. We now describe a protocol for using this technique to uniquely identify and characterize motor neurons within a motor pool.

تحديد الخلايا العصبية الحركية خارج الخلية لعضلة حمام سباحة للسيارات في<em&gt; Aplysia californica</em

In animals with large  identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using  intracellular techniques1,2,3,4. Recently,  we developed ...

A Novel Method of Drug Administration to Multiple Zebrafish (Danio rerio) and the Quantification of Withdrawal

Anxiety testing in zebrafish is often studied in combination with the application of pharmacological substances. In these studies, fish are routinely netted and transported between home aquaria and dosing tanks. In order to enhance the ease of compound administration, a novel method for transferring fish between tanks for drug administration was developed. Inserts that are designed for spawning were used to transfer groups of fish into the drug solution, allowing accurate dosing of all fish in the group. This increases the precision and efficiency of dosing, which becomes very important in long schedules of repeated drug administration. We implemented this procedure for use in a study examining the behavior of zebrafish in the light/dark test after administering ethanol with differing 21 day schedules. In fish exposed to daily-moderate amounts of alcohol there was a significant difference in location preference after 2 days of withdrawal when compared to the control group. However, a significant difference in location preference in a group exposed to weekly-binge administration was not observed. 
This protocol can be generalized for use with all types of compounds that are water-soluble and may be used in any situation when the behavior of fish during or after long schedules of drug administration is being examined. The light/dark test is also a valuable method of assessing withdrawal-induced changes in anxiety.

A Novel Method of Drug Administration to Multiple Zebrafish Danio rerio and the Quantification of Withdrawal

A novel method for reducing variability when exposing fish to drugs is explained. Fish exposed to various patterns of ethanol exposure were found to have altered anxiety levels during withdrawal in a light/dark scototaxic assay.

طريقة مبتكرة من الدواء إلى عدة الزرد (<em&gt; دانيو rerio</em&gt;) والكمي لسحب

Anxiety testing in zebrafish is often studied in combination with the application of pharmacological substances. In these studies, fish are routinely ...

Recording EEG in Freely Moving Neonatal Rats Using a Novel Method

EEG is a useful method to detect electrical activity in the brain. Moreover, it is a widely used diagnostic tool for various neurological conditions, such as epilepsy and neurodegenerative disorders. However, it is technically difficult to obtain EEG recordings in neonates as it requires specialized handling and great care. Here, we present a novel method to record EEG in neonatal rat pups (P8-P15). We designed a simple and reliable electrode using computer pin loci; it can be easily implanted into the skull of a rat pup to record high-quality EEG signals in the normal and epileptic brain. Pups were given an intraperitoneal (i.p.) injection of the neurotoxin kainic acid (KA) to induce epileptic seizures. The surgical implantation performed in this procedure is less expensive than other EEG procedures for neonates. This method allows one to record high-quality and stable EEG signals for more than 1 week. Furthermore, this procedure can also be applied to adult rats and mice to study epilepsy or other neurological disorders.

Here, we introduce a novel technique designed to record electroencephalography (EEG) in freely moving neonatal epileptic pups and describe its procedures, features, and applications. This method allows one to record EEG for more than 1 week.

تسجيل إيغ في التحرك بحرية الفئران حديثي الولادة باستخدام طريقة رواية

EEG is a useful method to detect electrical activity in the brain. Moreover, it is a widely used diagnostic tool for various neurological conditions, such ...

A Novel Method to Model Chronic Traumatic Encephalopathy in Drosophila

Chronic Traumatic Encephalopathy (CTE) is an established neurodegenerative disease that is closely associated with exposure to repetitive mild Traumatic Brain Injury (mTBI). The mechanisms responsible for its complex pathological changes remain largely elusive, despite a recent consensus to define the neuropathological criteria. Here, we describe a novel method to develop a model of CTE in Drosophila melanogaster&#160;(Drosophila&#160;)&#160;in an attempt to identify the key genes and pathways that lead to the characteristic hyperphosphorylated tau accumulation and neuronal death in the brain. Adjustable-strength impacts to inflict mild closed injury are delivered directly to the fly head, subjecting the head to rapid acceleration and deceleration. Our method eliminates the potential problems inherent with other Drosophila mTBI models (e.g.,animal death might be induced by damage to other parts of the body or to internal organs). The less labor- and cost-intensive animal care, short life span, and extensive genetic tools make the fruit fly ideal to study CTE pathogenesis and make it possible to perform large-scale, genome-wide forward genetic and pharmacological screens. We anticipate that the ongoing characterization of the model will generate important mechanistic insights on disease prevention and therapeutic approaches.

A Novel Method to Model Chronic Traumatic Encephalopathy in Drosophila

Here, we describe a new approach to inflict closed-head traumatic brain injury in Drosophila melanogaster. Our method has the advantage of directly delivering repetitive impacts with adjustable strength to the head alone. Further exploration of the invertebrate system will help to illuminate the pathogenesis of chronic traumatic encephalopathy.

طريقة جديدة لنموذج اعتلال الدماغ الصدمة المزمن في<em&gt; ذبابة الفاكهة</em

Chronic Traumatic Encephalopathy (CTE) is an established neurodegenerative disease that is closely associated with exposure to repetitive mild Traumatic ...

Stereological Estimation of Dopaminergic Neuron Number in the Mouse Substantia Nigra Using the Optical Fractionator and Standard Microscopy Equipment

In pre-clinical Parkinson&#39;s disease research, analysis of the nigrostriatal tract, including quantification of dopaminergic neuron loss within the substantia nigra, is essential. To estimate the total dopaminergic neuron number, unbiased stereology using the optical fractionator method is currently considered the gold standard. Because the theory behind the optical fractionator method is complex and because stereology is difficult to achieve without specialized equipment, several commercially available complete stereology systems that include the necessary software do exist, purely for cell counting reasons. Since purchasing a specialized stereology setup is not always feasible, for many reasons, this report describes a method for the stereological estimation of dopaminergic neuronal cell counts using standard microscopy equipment, including a light microscope, a motorized object table (x, y, z plane) with imaging software, and a computer for analysis. A step-by-step explanation is given on how to perform stereological quantification using the optical fractionator method, and pre-programmed files for the calculation of estimated cell counts are provided. To assess the accuracy of this method, a comparison to data obtained from a commercially available stereology apparatus was performed. Comparable cell numbers were found using this protocol and the stereology device, thus demonstrating the precision of this protocol for unbiased stereology.

This work presents a step-by-step protocol for the unbiased stereological estimation of dopaminergic neuronal cell numbers in the mouse substantia nigra using standard microscopy equipment (i.e., a light microscope, a motorized object table (x, y, z plane), and public domain software for digital image analysis.

ستيريولوجيكال تقدير عدد الخلايا العصبية تتميز في أسود الدماغ الماوس باستخدام فراكتيوناتور الضوئية ومعدات مجهرية القياسية

In pre-clinical Parkinson&#39;s disease research, analysis of the nigrostriatal tract, including quantification of dopaminergic neuron loss within the ...

Autoradiography as a Simple and Powerful Method for Visualization and Characterization of Pharmacological Targets

In vitro autoradiography aims to visualize the anatomical distribution of a protein of interest in tissue from experimental animals as well as humans. The method is based on the specific binding of a radioligand to its biological target. Therefore, frozen tissue sections are incubated with radioligand solution, and the binding to the target is subsequently localized by the detection of radioactive decay, for example, by using photosensitive film or phosphor imaging plates. Resulting digital autoradiograms display remarkable spatial resolution, which enables quantification and localization of radioligand binding in distinct anatomical structures. Moreover, quantification allows for the pharmacological characterization of ligand affinity by means of dissociation constants (Kd), inhibition constants (Ki) as well as the density of binding sites (Bmax) in selected tissues. Thus, the method provides information about both target localization and ligand selectivity. Here, the technique is exemplified with autoradiographic characterization of the high-affinity &#947;-hydroxybutyric acid (GHB) binding sites in mammalian brain tissue, with special emphasis on methodological considerations regarding the binding assay parameters, the choice of the radioligand and the detection method.

The method of autoradiography is routinely used to study binding of radioligands to tissue sections for determination of qualitative or quantitative pharmacology.

أوتوراديوجرافي كطريقة بسيطة وقوية للتصور وتوصيف الأهداف الدوائية

In vitro autoradiography aims to visualize the anatomical distribution of a protein of interest in tissue from experimental animals as well as humans. The ...